Name: chronic implantation of whole-cortical electrocorticographic array in the common marmoset
Uploaded: 2019-02-01T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset at JoVE.com

Wir danken für die Bereitstellung, Tierpflege, Training und wach-Aufnahmen Yuri Shinomoto. Das ECoG-Arrays wurden von Cir-Tech (www.cir-tech.co.jp) hergestellt. Darüber hinaus möchten wir Editage (www.editage.jp) für die englische Sprache Bearbeitung zu danken. Diese Arbeit wurde von der Brain Mapping durch integrierte Neurotechnologien für Krankheit Studien (Gehirn/Geist), der Japan-Agentur für medizinische Forschung und Entwicklung (AMED) (JP18dm0207001), Gehirn-Science-Projekt des Zentrums für Roman Science Initiativen (unterstützt. CNSI), National Institute of Natural Sciences (NINS) (BS291004, m.k.) und von der Japan Society for the Promotion of Science (JSPS) KAKENHI (JP17H06034, m.k.).

Dieses Protokoll wurde auf 6 gemeinsame Krallenaffen durchgeführt (4 Rüden, 2 Hündinnen; Körpergewicht = 320-470 g; Alter = 14-53 Monate). Alle Verfahren wurden entsprechend den Empfehlungen der nationalen Institute der Gesundheit Leitlinien für die Pflege und Verwendung von Versuchstieren durchgeführt. Das Protokoll wurde von RIKEN Ethikkommission (Nr. genehmigt. H28-2-221(3)). Alle chirurgischen Eingriffe unter Narkose durchgeführt wurden, und wurden alle Anstrengungen unternommen, die Anzahl der Versuchstiere s...

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	<li>Fukushima, M., Chao, Z. C., Fujii, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studying+brain+functions+with+mesoscopic+measurements:+Advances+in+electrocorticography+for+non-human+primates.">Studying brain functions with mesoscopic measurements: Advances in electrocorticography for non-human primates.</a> Current Opinion in Neurobiology. 32, 124-131 (2015).</li><li>Nagasaka, Y., Shimoda, K., Fujii, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multidimensional+recording+(MDR)+and+data+sharing:+an+ecological+open+research+and+educational+platform+for+neuroscience.">Multidimensional recording (MDR) and data sharing: an ecological open research and educational platform for neuroscience.</a> PLoS One. 6 (7), e22561 (2011).</li><li>Fukushima, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+electrocorticographic+electrode+array+for+simultaneous+recording+from+medial,+lateral,+and+intrasulcal+surface+of+the+cortex+in+macaque+monkeys.">An electrocorticographic electrode array for simultaneous recording from medial, lateral, and intrasulcal surface of the cortex in macaque monkeys.</a> Journal of Neuroscience Methods. 233, 155-165 (2014).</li><li>Komatsu, M., Sugano, E., Tomita, H., Fujii, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Chronically+Implantable+Bidirectional+Neural+Interface+for+Non-human+Primates.">A Chronically Implantable Bidirectional Neural Interface for Non-human Primates.</a> Frontiers in Neuroscience. 11, 514 (2017).</li><li>Komatsu, M., Takaura, K., Fujii, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mismatch+negativity+in+common+marmosets:+Whole-cortical+recordings+with+multi-channel+electrocorticograms.">Mismatch negativity in common marmosets: Whole-cortical recordings with multi-channel electrocorticograms.</a> Scientific Reports. 5, 15006 (2015).</li><li>Sasaki, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+transgenic+non-human+primates+with+germline+transmission.">Generation of transgenic non-human primates with germline transmission.</a> Nature. 459 (7246), 523-527 (2009).</li><li>Okano, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brain/MINDS:+A+Japanese+National+Brain+Project+for+Marmoset+Neuroscience.">Brain/MINDS: A Japanese National Brain Project for Marmoset Neuroscience.</a> Neuron. 92 (3), 582-590 (2016).</li><li>de la Mothe, L. A., Blumell, S., Kajikawa, Y., Hackett, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+connections+of+auditory+cortex+in+marmoset+monkeys:+lateral+belt+and+parabelt+regions.">Cortical connections of auditory cortex in marmoset monkeys: lateral belt and parabelt regions.</a> Anatomical Record. 295 (5), 800-821 (2012).</li><li>Kaas, J. H., Hackett, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subdivisions+of+auditory+cortex+and+processing+streams+in+primates.">Subdivisions of auditory cortex and processing streams in primates.</a> Proceedings of National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (22), 11793-11799 (2000).</li><li>Ghahremani, M., Hutchison, R. M., Menon, R. S., Everling, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Frontoparietal+Functional+Connectivity+in+the+Common+Marmoset.">Frontoparietal Functional Connectivity in the Common Marmoset.</a> Cerebral Cortex. , (2016).</li><li>Belcher, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+Connectivity+Hubs+and+Networks+in+the+Awake+Marmoset+Brain.">Functional Connectivity Hubs and Networks in the Awake Marmoset Brain.</a> Frontiers in Integrative Neuroscience. 10, 9 (2016).</li><li>Mitchell, J. F., Leopold, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+marmoset+monkey+as+a+model+for+visual+neuroscience.">The marmoset monkey as a model for visual neuroscience.</a> Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).</li><li>Solomon, S. G., Rosa, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simpler+primate+brain:+the+visual+system+of+the+marmoset+monkey.">A simpler primate brain: the visual system of the marmoset monkey.</a> Frontiers in Neural Circuits. 8, 96 (2014).</li><li>Burman, K. J., Palmer, S. M., Gamberini, M., Rosa, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytoarchitectonic+subdivisions+of+the+dorsolateral+frontal+cortex+of+the+marmoset+monkey+(Callithrix+jacchus),+and+their+projections+to+dorsal+visual+areas.">Cytoarchitectonic subdivisions of the dorsolateral frontal cortex of the marmoset monkey (Callithrix jacchus), and their projections to dorsal visual areas.</a> Journals of Comparative Neurology. 495 (2), 149-172 (2006).</li><li>Bakola, S., Burman, K. J., Rosa, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cortical+motor+system+of+the+marmoset+monkey+(Callithrix+jacchus).">The cortical motor system of the marmoset monkey (Callithrix jacchus).</a> Neuroscience Research. 93, 72-81 (2015).</li><li>Krubitzer, L. A., Kaas, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+organization+and+connections+of+somatosensory+cortex+in+marmosets.">The organization and connections of somatosensory cortex in marmosets.</a> Journal of Neuroscience. 10 (3), 952-974 (1990).</li><li>Miller, C. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Marmosets:+A+Neuroscientific+Model+of+Human+Social+Behavior.">Marmosets: A Neuroscientific Model of Human Social Behavior.</a> Neuron. 90 (2), 219-233 (2016).</li><li>Cox, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=AFNI:+software+for+analysis+and+visualization+of+functional+magnetic+resonance+neuroimages.">AFNI: software for analysis and visualization of functional magnetic resonance neuroimages.</a> Computers and Biomedical Research. 29 (3), 162-173 (1996).</li><li>Avants, B. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+reproducible+evaluation+of+ANTs+similarity+metric+performance+in+brain+image+registration.">A reproducible evaluation of ANTs similarity metric performance in brain image registration.</a> Neuroimage. 54 (3), 2033-2044 (2011).</li><li>Hashikawa, T., Nakatomi, R., Iriki, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+models+of+the+marmoset+brain.">Current models of the marmoset brain.</a> Neuroscience Research. 93, 116-127 (2015).</li></ol>

Für eine erfolgreiche Implantation sollte Tiere mit adäquater Ernährung vor und nach der Operation erfolgen. Kurzer Betriebszeit ist auch wichtig, das Tier Erholung zu optimieren. Die Vorbereitungen sollten mindestens einen Tag vor der Operation beendet werden. Um die Betriebszeit zu verringern, empfiehlt Kraniotomie Vorbildung mit Elektrode Array einfügen bei gekündigten Tieren für andere experimentelle Zwecke. Tabelle 1 zeigt ein Beispiel für den zeitlichen Verlauf für dieses Protokoll.
<p...

Kognition erfordert die Koordination der neuronalen Ensembles in weit verbreiteten Gehirnnetzwerke, besonders der Großhirnrinde, die ist gut ausgebaut, beim Menschen und glaubten an höheren kognitiven Verhaltensweisen zu beteiligen. Wie der Neocortex dieses kognitive Verhalten erreicht, ist jedoch ein ungelöstes Problem im Bereich Neurowissenschaften. Jüngste Entwicklung von dünnen, flexiblen Electrocorticographic (ECoG) Elektroden ermöglicht Wärmeleitung stabile Aufnahmen von großen kortikale Aktivität1. Fujii und Kollegen entwickelten eine ganze kortikalen ECoG-Array für Makaken-Affen-2,-3. Das Array kontinuierlich deckt fast die gesamte seitliche Kortex, vom okzipitalen Pol um die zeitliche und frontal Pole, und fängt ganz kortikale neuronale Aktivität auf einen Schlag. Wir haben dieses System zur Anwendung in der gemeinsamen Marmoset4,5, eine kleine, neue Welt Affe mit genetischen Manipulierbarkeit6,7weiterentwickelt. Dieses Tier hat mehrere Vorteile im Vergleich zu anderen Arten. Die visuelle, auditive, somatosensorische, motor, und frontalen kortikalen Bereiche dieser Art wurden bisher zugeordnet und berichtet, dass homologe Grundorganisation in Menschen und Makaken8,9, die gleichen Gebiete 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16. ihre Gehirne sind glatt, und die meisten seitlichen kortikalen Bereiche an der Oberfläche der Hirnrinde, die schwieriger ist, Zugang mit ECoG in Makaken ausgesetzt sind. Die Marmoset eignet basierend auf diese Funktionen, sich für Electrocorticographic Studien. Darüber hinaus Krallenaffen soziale Verhaltensweisen und dienen als Modell für menschliche Sozialverhalten17Kandidaten vorgeschlagen wurden.
Dieses Protokoll beschreibt eine epidurale Implantationsverfahren ECoG-Arrays auf die gesamten Mantelfläche des Kortex in ein Weißbüschelaffe. Es bietet die Möglichkeit, großflächige kortikale Aktivität für kortikale Neurowissenschaften Primaten, einschließlich der sensorischen, motorischen, überwachen höheren kognitiven und sozialen Bereiche.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Beaker (100 cc)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton ball</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Absorption triangles</td>
			<td>Fine Science Tools Inc.</td>
			<td>18105-03</td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton swab with fine tip</td>
			<td>Clean Cross Co., Ltd.</td>
			<td>HUBY340 BB-013</td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Towel forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel handle</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holder</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Scissor</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro-Mosquito Forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adson, 1x2 teeth</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bone Curette</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro spatura</td>
			<td>Fine Science Tools Inc.</td>
			<td>10091-12</td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holders, 12.5cm, Curved, Smooth Jaws</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>14132</td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vessel Dilator, 12cm, 0.1mm tip</td>
			<td>Fine Science Tools Inc.</td>
			<td>18131-12</td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vessel Dilator, 12cm, 0.2 mm tip</td>
			<td>Fine Science Tools Inc.</td>
			<td>18132-12</td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine-tipped rongeur</td>
			<td>Fine Science Tools Inc.</td>
			<td>16221-14</td>
			<td>Outocrave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Manipurator of a stereotaxic frame</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wrench for the manipurator</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hand-made fixture for the connector</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicon cup for dental acril</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicon cup hlder</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paintbrush</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pencil</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro screw, 1.4 mm x 2.0 mm</td>
			<td>Nippon Chemical Screw Co., Ltd.</td>
			<td>PEEK/MPH-M1.4-L2</td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screw driver for the micro screw</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micromotor handpiece of a drill</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless steel burr, 1.4 mm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless steel burr, 1.0 mm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill bit, 1.2 mm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber air blower</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gas sterilization</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

chronic implantation of whole-cortical electrocorticographic array in the common marmoset

Electrocorticography (ECoG) ermöglicht die Überwachung des elektrischen Feldes Potentiale aus der Großhirnrinde mit hoher räumlich-zeitliche Auflösung. Jüngste Entwicklung von dünnen und flexiblen ECoG-Elektroden hat Wärmeleitung stabile Aufnahmen von großen kortikale Aktivität ermöglicht. Wir haben eine ganze kortikalen ECoG-Array für die Weißbüschelaffe entwickelt. Das Array kontinuierlich deckt fast die gesamte Mantelfläche der kortikalen Hemisphäre aus dem okzipitalen Pol an die zeitlichen und frontal Pole, und es fängt ganz kortikale neuronale Aktivität auf einen Schlag. Dieses Protokoll beschreibt eine chronische Implantationsverfahren des Arrays in den Epiduralraum des Gehirns Marmoset. Krallenaffen haben zwei Vorteile bezüglich ECoG Aufnahmen, wobei die homologen Organisation der anatomischen Strukturen im Menschen und Makaken, einschließlich zeitliche frontalen und parietalen komplexe. Ein weiterer Vorteil ist, dass die Marmoset Gehirn Lissencephalic und enthält eine große Anzahl von komplexen, die sind schwieriger zu Makaken mit ECoG, zugreifen, die das Gehirn Oberfläche ausgesetzt sind. Diese Features ermöglichen direkten Zugang zu den meisten kortikalen Gebieten unter der Oberfläche des Gehirns. Dieses System bietet die Möglichkeit, globale kortikale Informationsverarbeitung mit hohen Auflösungen zu einem Sub Millisekunde Bestellung rechtzeitig und Millimeter-Auftrag im Raum zu untersuchen.

Das gesamte kortikalen ECoG-Array kann neuronalen Aktivität aus der Gesamtheit einer Halbkugel gleichzeitig erfassen. Abbildung 4 zeigt Beispiele von akustisch evozierten Potentialen (AEPs) aus mehreren auditiven Bereichen in einem wach Marmoset. ECoG-Aufnahmen wurden in passive Hörbedingungen durchgeführt. Jede Marmoset wurde auf auditive Reize, die bestand aus randomisierten Sinustönen mit 20 Arten von Frequenz ausgesetzt. Dann berechnet wir AEPs anhand...

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Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset

Chronische Implantation des gesamten kortikalen Electrocorticographic Arrays in der Weißbüschelaffe

Wir haben eine ganze kortikale Electrocorticographic-Array für die Weißbüschelaffe entwickelt, die kontinuierlich fast die gesamte Mantelfläche des Kortex, aus dem okzipitalen Pol an die zeitlichen und frontal Pole abdeckt. Dieses Protokoll beschreibt eine chronische Implantationsverfahren des Arrays in den Epiduralraum des Gehirns Marmoset.

Electrocorticography (ECoG) allows the monitoring of electrical field potentials from the cerebral cortex with high spatiotemporal resolution. Recent ...

Dieses Protokoll demonstriert die Implantation eines elektrokortikographischen Arrays auf den Kortex eines nichtmenschlichen Primaten. Licht in die großangelegte Informationsverarbeitung in der Primatenschicht-Neurowissenschaft zu werfen. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie eine Möglichkeit bietet, großflächige kortikale Aktivitäten mit hoher räumlicher zeitlicher Auflösung zu überwachen.Beginnen Sie mit einem vier Zentimeter großen Hautschnitt durch die Mittellinie der Kopfhaut. Verwenden Sie ein Heilmittel, um den zeitlichen Muskel vom Schädel zu lösen, bis der gesamte Operationsbereich freigelegt ist. Und alle Gewebe von der Schädeloberfläche zu löschen.Stoppen Sie die Blutung bei Bedarf vollständig mit Druckhämostase oder Knochenwachs. Wickeln Sie den Rand der Haut und Muskeln mit befeuchteter Gaze. Und legen Sie die Frontkante des Arrays auf den Rand des Frontpols.Verwenden Sie einen Bleistift, um den Bereich für die geplante Kraniotomie, Schlitze und Löcher auf dem Schädel zu markieren. Und positionieren Sie das Sezieren des Mikroskops über dem Operationsbereich. Bohren Sie die Kraniotomie entlang Mark eins.Während des Bohrens, Blasen Luft an der Schneide, um eine klare Sicht für den Chirurgen zu halten, schneiden den Knochen den ganzen Weg um Marke zwei, wie das Knochenstück wird immer noch an Dura in der Mitte befestigt werden. Langsam und vorsichtig, heben Sie das Stück von einer Kante nach oben. Und schälen Sie die Dura mit einem Spachtel ab.Entfernen Sie die Knochenspitzen aus dem Knochenstück und halten Sie den Knochen in befeuchtete Gaze gewickelt, bis er am Ende des Eingriffs an den Schädel zurückgegeben wird. Bohren Sie an den Markierungen drei und vier, um das Einführen von Elektroden in die Orbital-, Frontal- und Okzipitalbereiche zu ermöglichen. Bohrschlitze auf Markierung fünf, um eine Bestätigung zu ermöglichen, wenn das Array richtig eingefügt ist.Die Dura wird nun freigelegt. Waschen Sie den Bereich mit Kochchen und stoppen Sie die Blutung mit Druckhämostase und einem Gelatineschwamm bei Bedarf. Reinigen Sie bei Bedarf die Kante der offenen Kraniotomie und machen Sie die Markierung sechs Schlitze, in die die Referenzelektroden platziert werden.Einsetzen eines Spachtel unter dem Schädel, um die Dura-Materie zu schützen, verwenden Sie eine Ein-Millimeter-Schraube, um Schraubenlöcher an vier Punkten um jeden Stiel des Steckers zu bohren. Und installieren Sie Spitzenschrauben als Anker, um den Stecker am Schädel zu befestigen. Fügen Sie dann mit Flathead-Zangen das Array ein, und fügen Sie das elektrokardiographische Array in den Epiduralraum ein.Platzieren Sie die Referenzelektroden im Epiduralraum. Dann zahnärztliches Acryl auf die Referenz auftragen. Legen Sie die Bodenelektroden auf die Schädeloberfläche.Dann Zahnacryl auf die gemahlene Elektrode auftragen. Setzen Sie das Knochenstück wieder an Ort und Stelle, und wenden Sie Dental-Acryl auf die Schrauben, um den Stecker und Kopfpfosten auf den Schädel zu fixieren. Verwenden Sie dann eine 6 O Nylon Naht, um die Haut an der Stirn und an der Rückseite des Endes zu schließen.Und verwenden Sie Hautverschlüsse, um die Haut an den Seiten des Steckers zu fixieren. Hier werden Beispiele für auditive evozierte Potenziale aus mehreren Hörbereichen in einem wachen Marmoset gezeigt. Während der Exposition gegenüber randomisierten reinen Tönen mit 20 Frequenztypen können verschiedene Wellenformen aus unteren und höheren Hörbereichen beobachtet werden, was darauf hindeutet, dass die räumliche Auflösung des elektrokardiographischen Arrays verschiedene Informationsverarbeitungen in verschiedenen kortikalen Bereichen erfassen kann.Die Option kann im Marmoset-Gehirn viral transduziert werden, da die elektrische Implantation eine langfristige chronische Fotostimulation und gleichzeitige Überwachung der kortikalen Reaktionen ermöglicht.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Multielectrode Array Recordings of the Vomeronasal Epithelium

Multielektroden Array Recordings der Vomeronasal Epithel

Understanding neural circuits requires methods to record from many neurons simultaneously. For in vitro studies, one currently available technology is ...

Forschung

Neurowissenschaften

Surgical Implantation of Chronic Neural Electrodes for Recording Single Unit Activity and Electrocorticographic Signals

Chirurgische Implantation von Elektroden für die Neural Chronische Aufnahme Single Unit Activity und Electrocorticographic Signale

The success of long-term electrophysiological recordings often depends on the quality of the implantation surgery.  Here we provide useful information for ...

Fiber-optic Implantation for Chronic Optogenetic Stimulation of Brain Tissue

LWL-Implantation für chronische optogenetische Stimulation des Hirngewebes

Elucidating patterns of neuronal connectivity has been a challenge for both clinical and basic neuroscience. Electrophysiology has been the gold standard ...

Implantation of Chronic Silicon Probes and Recording of Hippocampal Place Cells in an Enriched Treadmill Apparatus

Implantation von chronischen Silicon Sonden und Aufzeichnung der Hippocampal Platzzellen in eine angereicherte Laufband-Vorrichtung

An important requisite for understanding brain function is the identification of behavior and cell activity correlates. Silicon probes are advanced ...

Chronic Implantation of Multiple Flexible Polymer Electrode Arrays

Chronische Implantation mehrerer flexibler Polymerelektroden-Arrays

Simultaneous recordings from large populations of individual neurons across distributed brain regions over months to years will enable new avenues of ...

Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset (Callithrix jacchus)

Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset Callithrix jacchus

Stereotaxic Chirurgie für die Implantation von Mikroelektroden-Arrays im Gemeinsamen Marmoset (Callithrix jacchus)

Marmosets (Callithrix jacchus) are small non-human primates that are gaining popularity in biomedical and preclinical research, including the ...

Preparation of Peripheral Nerve Stimulation Electrodes for Chronic Implantation in Rats

Vorbereitung von peripheren Nervenstimulationselektroden für die chronische Implantation bei Ratten

Peripheral nerve cuff electrodes have long been used in the neurosciences and related fields for stimulation of, for example, vagus or sciatic nerves. ...

Electrocorticographic Recording of Cerebral Cortex Areas Manipulated Using an Adeno-Associated Virus Targeting Cofilin in Mice

Elektrokortikographische Aufzeichnung von Großhirnrindenbereichen manipuliert mit einem Adeno-assoziierten Virus, das auf Cofilin bei Mäusen abzielt

The use of electrocorticographic (ECoG) recordings in rodents is relevant to sleep research and to the study of a wide range of neurological conditions. ...

Direct Cannula Implantation in the Cisterna Magna of Pigs

Direkte Kanülenimplantation in der Cisterna Magna der Schweine

The glymphatic system is a waste clearance system in the brain that relies on the flow of cerebrospinal fluid (CSF) in astrocyte-bound perivascular spaces ...