Name: direct injection of a lentiviral vector highlights multiple motor pathways in the rat spinal cord
Uploaded: 2019-03-15T14:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Direct Injection of a Lentiviral Vector Highlights Multiple Motor Pathways in the Rat Spinal Cord at JoVE.com

Este trabajo fue financiado por una subvención del Instituto Nacional de trastornos neurológicos y accidente cerebrovascular R01 R01NS103481 y el Hospital de Shriners for Pediatric Research otorga SHC 84051 y SHC 86000 y el Departamento de defensa (SC140089).

Todos los procedimientos de atención quirúrgica y animales han sido aprobados por el cuidado Animal y el Comité de uso de la Universidad de Temple.
1. pre-quirúrgicos preparados
<ol><li>Preparar el vidrio tirado agujas para inyección viral unos días antes de la cirugía usando 3,5 nanoliter capilares pipetas de vidrio diseñados para nanoliter inyectores. Tire de cada pipeta en un extractor de aguja de dos pasos según las instrucciones del fabricante para crear dos plantillas de aguja...

Manipulación genética de las neuronas en el cerebro y la médula espinal ha servido para destacar sensorial, motor y autonómicas vías mediante trazo fluorescente y explorar potencial de rebrote de tractos neuronales después de lesiones27,28, 29 , 30 , 31 , 32 , 33. dirigir la inyección...

Vectores virales son importantes herramientas biológicas que pueden introducir material genético en las células con el fin de compensar los genes defectuosos, proteínas de crecimiento importante de alza o fabricar proteínas marcadoras que ponen de relieve la estructura y conexiones sinápticas del sus objetivos. Este artículo se centra en la inyección directa de un vector lentivirales retrogradely transportable muy eficiente en la médula espinal de rata para resaltar los caminos importantes del motor con trazo fluorescente.  Este método también es muy apropiado para estudios de regeneración y regeneración axonales a introducir proteínas de interés en diversas poblaciones de neuronas y se ha utilizado para silenciar a las neuronas para mapeo funcional estudios1,2.
Muchos de los detalles anatómicos de las vías motor espinales fueron aclados mediante estudios de inyección directa con marcadores clásicos como la BDA y fluoro-oro3,4,5,6,7 , 8. estos marcadores se consideran patrón oro pero pueden tener ciertas desventajas como la absorción por axones dañados, o axones en pasaje de la materia blanca circundante una inyección sitio9,10,11 . Esto podría llevar a interpretaciones incorrectas de la conectividad vía y puede ser un inconveniente en los estudios de regeneración donde podría confundir con absorción de tinte por axones dañados o cortadas para regenerar las fibras durante el más adelante análisis12.
Vectores lentivirales son populares en estudios de terapia génica, ya que proporcionan la expresión estable y a largo plazo en poblaciones neuronales13,14,15,16,17,18 ,19. Sin embargo, tradicionalmente envasados vectores lentivirales puede haber limitado el transporte retrógrado y dispare la respuesta del sistema inmunitario cuando se utiliza en vivo4,20,21. Un vector de transporte retrógrado muy eficiente llamado HiRet ha sido producido por Kato et mediante la modificación de la envuelta viral con una glicoproteína del virus rabia para crear un vector híbrido que mejora el transporte retrógrado22,23.
Trazado retrógrado introduce un vector en el espacio sináptico de la neurona de destino, lo que le permite ser tomado por el axón de la célula y transportados al cuerpo de la célula. Ha demostrado éxito transporte de HiRet de sinapsis neuronales en los cerebros de ratones y primates23,24 y de los músculos en las neuronas de motor22. Este protocolo muestra la inyección en la médula espinal lumbar, específicamente dirigidos a los terminales sinápticos de propiospinal interneuronas y las neuronas del tronco encefálico. PNs reciban conexiones de muchos diferentes vías espinales y por lo tanto pueden ser utilizados para una diversa población de neuronas en la médula espinal y tronco encefálico. Etiquetado las neuronas en este estudio representan circuitos inervan motoneuronas piscinas relativos a la función motora del miembro posterior. Etiquetado sólido se observa en la médula espinal y tronco encefálico, incluyendo datos de alta fidelidad de cenadores dendríticos y terminales de axón. También hemos utilizado este método en estudios anteriores de la médula espinal cervical para etiqueta propiospinal y del médula oblonga reticulospinal vías25.
Este protocolo muestra la inyección de un vector viral en la médula espinal lumbar de una rata. Como se ve en la película 1, la incisión es dirigida por la identificación de la vértebra L1 situada en la última costilla. Esto se utiliza como una señal caudal para una incisión de 3-4 cm que expone la musculatura sobre la médula espinal de L1-L4. Laminectomies de los aspectos dorsales de las vértebras T11-T13 se realizan y se dirige una aguja de vidrio biselado 0.8 mm lateral de la línea media y reducido 1,5 mm en la materia gris para inyectar virus.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>#10 Scalpel Blades</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-9801-10</td>
			<td>For use with the scalpel.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mL Syringes</td>
			<td>Becton, Dickinson and Company</td>
			<td>309659</td>
			<td>For anesthetic IP injection, potential anesthetic booster shots, and antibiotic injections.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10mL Syringes</td>
			<td>Becton, Dickinson and Company</td>
			<td>309604</td>
			<td>For injecting saline into the animal, post-surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4.0 Chromic Catgut Suture</td>
			<td>DemeTECH</td>
			<td>NN374-16</td>
			<td>To re-bind muscle during closing.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>48000 Micropipette Beveler</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>32416</td>
			<td>Used to bevel the tips of the pulled glass capillary tubes to form functional glass needles.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5% Iodine Solution</td>
			<td>Purdue Products L.P.</td>
			<td>L01020-08</td>
			<td>For use in sterilzation of the surgical site.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>70% Ethanol</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>For sterilization of newly prepared glass needles, animal models during surgical preparation, and surgeon&#39;s hands during surgery, as well as all other minor maintainances of sterility.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anesthetic (Ketamine/Xylazine Solution)</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>240048</td>
			<td>For keeping the animal in the correct plane of consciousness during surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Antibiotic (Cefazolin)</td>
			<td>West-Ward Pharmaceuticals</td>
			<td>NPC 0143-9924-90</td>
			<td>To be injected subcutaneously to prevent infection post-surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bead Sterilizer</td>
			<td>CellPoint</td>
			<td>5-1450</td>
			<td>To heat sterilize surgical instruments.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bonewax</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>19009-00</td>
			<td>To seal up bone in the case of bone bleeding.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cauterizer</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>18010-00</td>
			<td>To seal any arteries or veins severed during surgery to prevent excessive blood loss.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital Scale</td>
			<td>Okaus</td>
			<td>REV.005</td>
			<td>For weighing the animal during surgical preparation.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flexible Needle Attachment</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>MF34G-5</td>
			<td>For cleaning glass needles and loading red oil into glass needles.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gelfoam</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>H68079</td>
			<td>To seal up bone in the case of bone bleeding.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Capillary Tubes</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>4878</td>
			<td>For pulled glass needles - should be designed for nanoliter injectors.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hair Clippers</td>
			<td>Oster</td>
			<td>111038-060-000</td>
			<td>For clearing the surgical site of hair.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemostats</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-7231</td>
			<td>For general use in surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kimwipes</td>
			<td>Kimtech</td>
			<td>34155</td>
			<td>For general use in surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medium Point Curved Forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-5136</td>
			<td>For general use in surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micromanipulator with a Vernier Scale</td>
			<td>Kanetec</td>
			<td>N/A</td>
			<td>For precise targeting during surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscissors</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-5621</td>
			<td>For cutting glass whisps off of freshly pulled glass capillary tubes.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope with Light and Vernier Scale Ocular</td>
			<td>Leitz Wetzlar</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Used to visualize and measure beveling of pulled glass capillary tubes into functional glass needles.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MicroSyringe Pump Controller</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>62403</td>
			<td>To control the rate of injection.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nanoliter 2000 Pump Head Injector</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>500150</td>
			<td>To load and inject virus in a controlled fashion.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Puller</td>
			<td>Narishige</td>
			<td>PC-100</td>
			<td>To heat and pull apart glass capillary tubes to form glass needles.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ophthalamic Ointment</td>
			<td>Dechra Veterinary Products</td>
			<td>RAC 0119</td>
			<td>To protect the animal&#39;s eyes during surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td>Bemis</td>
			<td>PM-996</td>
			<td>To assist with loading virus into the nanoinjector.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PrecisionGlide Needles (25G x 5/8)</td>
			<td>Becton, Dickinson and Company</td>
			<td>305122</td>
			<td>For use with the 1mL and 10 mL syringes to allow injection of the animal model.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat Tooth Forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-5152</td>
			<td>For griping spinous processes.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Red Oil</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>To provide a front for visualization of virus entering tissue during injection.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Retractors</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-6510</td>
			<td>To hold open the surgical wound.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rimadyl Tablets</td>
			<td>Bio Serv</td>
			<td>MP275-050</td>
			<td>For pain management post-surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rongeurs</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-8300</td>
			<td>To remove muscle from the spinal column during surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel Blade Handle</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-9843</td>
			<td>To slice open skin and fat pad of animal model during surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-5980</td>
			<td>For general use in surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless Steal Wound Clips</td>
			<td>CellPoint</td>
			<td>201-1000</td>
			<td>To bind the skin of the surgical wound during closing.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Staple Removing Forceps</td>
			<td>Kent Scientific</td>
			<td>INS750347</td>
			<td>To remove the staples, should they be applied incorrectly.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Cloth</td>
			<td>Phenix Research Products</td>
			<td>BP-989</td>
			<td>To provide a sterile surface for the operation.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Cotton-Tipped Applicators</td>
			<td>Puritan</td>
			<td>806-WC</td>
			<td>To soak up blood in the surgical wound while maintaining sterility.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Gauze</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>2146</td>
			<td>To clean the surgical area and surgical tools while maintaining sterility.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Saline</td>
			<td>Baxter Healthcare Corporation</td>
			<td>281324</td>
			<td>For use in blood clearing, and for replacing fluids post-surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gloves</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>For use by the surgeon to maintain sterile field during surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Heating Pad</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>For maintaining the body temperature of the animal model during surgery.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Microscope</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>For enhanced visualization of the surgical wound.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Stapler</td>
			<td>Kent Scientific</td>
			<td>INS750546</td>
			<td>To apply the staples.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T/Pump Heat Therapy Water Pump</td>
			<td>Gaymar</td>
			<td>TP500C</td>
			<td>To pump warm water into the water convection warming pad.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water Convection Warming Pad</td>
			<td>Baxter Healthcare Corporation</td>
			<td>L1K018</td>
			<td>For use in the post-operational recovery area to maintain the body temperature of the unconscious animal.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weighted Hooks</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>To hold open the surgical wound.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

direct injection of a lentiviral vector highlights multiple motor pathways in the rat spinal cord

Introducir proteínas de interés en las células en el sistema nervioso es difícil debido a las barreras biológicas innatas que limitan el acceso a la mayoría de las moléculas. Inyección directamente en el tejido de la médula espinal pasa por alto estas barreras, proporcionando acceso a los cuerpos de la célula o sinapsis donde las moléculas pueden ser incorporadas. Combinando tecnología de vector viral con este método permite la introducción de genes de la blanco en tejido nervioso con el fin de la terapia génica o el trazado de vías. Aquí se introduce un virus diseñado para un transporte retrógrado altamente eficiente (HiRet) en las sinapsis de interneuronas propiospinal (PNs) para fomentar el transporte específico para neuronas en la médula espinal y los núcleos del médula oblonga. Dirigidas a PNs aprovecha las numerosas conexiones que reciben de los caminos del motor como los tractos rubroespinal y reticulospinal, así como su interconexión con los demás a lo largo de los segmentos de la médula espinal. Representante de seguimiento utilizando el vector de HiRet con detalles de alta fidelidad de espectáculos constitutivamente activa proteína verde fluorescente (GFP) de cuerpos celulares, axones y cenadores dendríticos PNs torácicas y reticulospinal neuronas en la formación reticular del pontine. HiRet incorpora en vías del médula oblonga y PNs pero muestra integración dependiente de edad en las neuronas del tracto corticoespinal. En Resumen, la inyección de médula espinal usando vectores virales es un método adecuado para la introducción de proteínas de interés en las neuronas de las zonas específicas.

Transducción de una población robusta de unilaterales neuronas en la médula espinal y en ciertos núcleos del tronco encefálico deben resultar exitosa inyección y transporte de los vectores virales. Figura 1 muestra etiquetas estereotipadas de las neuronas y los axones de la médula espinal torácica y en la formación reticular del pontine del médula oblonga en inyección después de cuatro semanas. Significativa expresión de GFP se observa en las neuronas en la s...

Watch this Scientific Journal Video about Direct Injection of a Lentiviral Vector Highlights Multiple Motor Pathways in the Rat Spinal Cord at JoVE.com

Direct Injection of a Lentiviral Vector Highlights Multiple Motor Pathways in the Rat Spinal Cord

Este protocolo muestra la inyección de un vector viral retrogradely transportable en tejido de médula espinal de rata. El vector es tomado en la sinapsis y transportado al cuerpo celular de las neuronas de destino. Este modelo es adecuado para rastreo retrógrada de importantes vías espinales o dirigidos a las células para usos de la terapia génica.

Inyección directa de un Vector lentivirales destaca múltiples caminos del Motor en la médula espinal de rata

Introducing proteins of interest into cells in the nervous system is challenging due to innate biological barriers that limit access to most molecules. ...

Los vectores virales pueden introducir material genético en las células para compensar los genes defectuosos, para regular las proteínas de crecimiento importantes o para fabricar marcadores que puedan rastrear circuitos neuronales. Introducir vectores virales en el sistema nervioso es un desafío debido a las barreras biológicas innatas. La inyección directa en el tejido de la médula espinal evita estas barreras, lo que permite el acceso a cuerpos celulares o sinapsis.Apuntar correctamente a los niveles de L1 a L4 espinal puede ser difícil. Es importante utilizar puntos de referencia para verificar el objetivo y recordar que estos segmentos se alinean a las vértebras T11 a T13. El día del procedimiento, conecte el inyector en la microbobo bomba y coloque la microbobo bomba en un micromaniprógrafo con una escala vernier.Utilice una jeringa con una aguja flexible para cargar cuidadosamente un tinte de color en una de las agujas de vidrio e inserte la aguja de vidrio en el inyector. A continuación, confirme que la aguja se siembra correctamente en las arandelas, y que la tapa del inyector está atornillada apretada, y que la aguja del inyector de acero se extiende aproximadamente tres cuartas partes de la longitud de la aguja de vidrio. Antes de comenzar el procedimiento, descongele al menos un microlitro, más un pequeño volumen de virus adicional por inyección del almacenamiento del congelador, y confirme la falta de respuesta de la pellizca del dedo del pie en una rata anestesiada.Afeitarse a lo largo de la línea media dorsal desde las caderas hasta el ángulo inferior de las escápulas del animal, tirando de la piel tensa para un afeitado más fácil y preciso, y desinfectar la piel expuesta con 5% de yodo secuencial y 70%exfoliantes de etanol. Aplique pomada oftálmica en ambos ojos. Luego coloque el animal en un paño estéril y coloque la gasa debajo de la vejiga para recoger cualquier orina.Para identificar el sitio de la incisión de la piel, presione los dedos suavemente en la última costilla para localizar la vértebra L1. Usando esta vértebra como un punto de referencia y sosteniendo la piel tensa por suave propagación mientras presiona firmemente con el bisturí, utilice una cuchilla quirúrgica número 10 para hacer una incisión de piel de tres a cuatro centímetros terminando sólo inferior a L1 para exponer el músculo. Utilice fórceps y tijeras para sentir los procesos espinosos.Haga pequeños cortes rostrales para dejar espacio para agarrar de forma segura en un proceso superior con fórceps de dientes de rata. Y hacer dos cortes largos y profundos lo más cerca posible de los procesos. Después de asegurar los músculos laterales en su lugar, limpiar el músculo alrededor de los procesos para determinar la forma de sus cabezas.A continuación, visualice las formas de las cabezas de los procesos espinosos para identificar el sitio de laminectomía. El T11 y los procesos T12 y T13 que se unen serán el lugar de la laminectomía. Una vez que el área objetivo ha sido identificada correctamente, esparza suavemente las vértebras para revelar los ligamentos intervertebrales, y usa rongeurs para tomar pequeñas picaduras de los procesos espinosos y el aspecto dorsal de las vértebras.Limpie el hueso lejos de la línea media para que se pueda observar el vaso sanguíneo de línea media, dejando una ventana que revela claramente el tejido de la médula espinal y está libre de desechos. A continuación, apriete los fórceps estabilizadores a los procesos espinosos rostrales y caudal a la ventana de laminectomía para asegurar al animal en un soporte espinal. Y elevar el abdomen del animal para negar el efecto de los movimientos respiratorios.Para cargar el virus en el inyector, pipetee aproximadamente cinco microlitros de la acción descongelada en un pedazo de Parafilm, y coloque las agujas de vidrio de modo que la punta esté dentro de la gota. Utilice la microbobo bomba para retirar hasta cuatro microlitros de virus a una velocidad de 20 a 100 nanolitros por segundo, y configure el controlador para que se inyecte antes de liberar una pequeña cantidad de virus de la punta de la aguja para asegurarse de que no está bloqueado. Limpie cualquier exceso de virus con una toallita de laboratorio y coloque los micromanipuladores para que la escala vernier sea visible.Coloque la aguja en la línea media de la médula espinal y utilice la escala vernier en el micromaniprógrafo para dirigir la aguja lateralmente 0,8 milímetros. A continuación, baje la aguja a la cuerda espinal hasta que esté sangrando, pero no punturando, la dura, y utilice un movimiento de torsión rápida para perforar la dura con la aguja hasta que la punta de la aguja se haya hundido a una profundidad de 1,5 milímetros. Una vez que la aguja está en su lugar, programe el inyector para entregar el virus a una velocidad de 400 nanolitros por minuto, y confirme que el virus está entrando en el acorde espinal observando el progreso del frente del tinte.Una vez finalizada la inyección, deje reposar la aguja en la médula espinal durante dos a cinco minutos para facilitar la difusión del virus, antes de retirar lentamente la aguja para su colocación en el siguiente lugar de inyección. Después de la última inyección, retire el animal del soporte de la columna vertebral para permitir la eliminación de cualquier dispositivo utilizado para extender el músculo lateral. A continuación, cierre el músculo con una sutura de catgut cromático 4.0 y grapa la piel con clips de herida de nueve milímetros.Cuatro semanas después de una inyección exitosa, se observa una expresión significativa de la GFP en las neuronas dentro de la materia gris de la médula espinal torácica en el lado, ipsilateral a la inyección. En la materia blanca, la expresión de GFP se observa en los axones en el cordón ipsilateral, especialmente en áreas típicas de los axones propriospinales. Un aumento más alto de las neuronas de materia gris revela un ejemplo de una expresión de señal típica en cuerpos celulares neuronales y dendritas.La expresión de GFP en las neuronas también se puede observar en núcleos de tronco encefálica, como dentro de la formación reticular pontina. Los factores clave para un procedimiento exitoso de inyección de la médula espinal son la orientación vertebral correcta y asegurarse de que el virus está entrando en el tejido Si se realiza una lesión de la médula espinal rostral antes de este procedimiento, se puede utilizar la inyección directa para rastrear las neuronas que restablecen las conexiones alrededor de la lesión.

Research

Education

JoVE Core

JoVE Journal

Anatomy and Physiology

Neuroscience

Unit 1

Functions of the Central and Peripheral Nervous System

SCIENTISTS IN ACTION

A Functional Motor Unit in the Culture Dish: Co-culture of Spinal Cord Explants and Muscle Cells

Una unidad motora funcional en la placa de cultivo: Co-cultivo de explantes de la médula espinal y las células musculares

Human primary muscle cells cultured  aneurally in monolayer rarely contract spontaneously because, in the absence of  a nerve component, cell ...

Investigación

Neurociencias

Stereotaxic Injection of a Viral Vector for Conditional Gene Manipulation in the Mouse Spinal Cord

Inyección estereotáxica de un vector viral para la manipulación genética condicional en la médula espinal de ratón

Intraparenchymal injection of a viral vector enables conditional gene manipulation in distinct populations of neurons or particular regions of the central ...

Production of RNA for Transcriptomic Analysis from Mouse Spinal Cord Motor Neuron Cell Bodies by Laser Capture Microdissection

Producción De ARN Para El Análisis Transcriptómico De Los Cuerpos Celulares De La Neurona Motora De La Médula Espinal De Ratón Por Microdisección De Captura Láser

Preparation of high-quality RNA from cells of interest is critical to precise and meaningful analysis of transcriptional differences among cell types or ...

Spinal Cord Transection in the Larval Zebrafish

La transección de la médula espinal en el pez cebra larval

Mammals fail in sensory and motor recovery following spinal cord injury due to lack of axonal regrowth below the level of injury as well as an inability ...

Diffusion Imaging in the Rat Cervical Spinal Cord

Imágenes de difusión en la médula espinal de rata Cervical

Magnetic resonance imaging (MRI) is the state of the art approach for assessing the status of the spinal cord noninvasively, and can be used as a ...

Zebrafish In Situ Spinal Cord Preparation for Electrophysiological Recordings from Spinal Sensory and Motor Neurons

Zebrafish In Situ Spinal Cord Preparation for Electrophysiological Recordings from Spinal Sensory and Motor Neurons

El pez cebra<em&gt; In Situ</em&gt; Médula Espinal Preparación para Registros electrofisiológicos de Spinal Sensory y neuronas motoras

Zebrafish, first introduced as a developmental model, have gained popularity in many other fields. The ease of rearing large numbers of rapidly developing ...

Laminectomy and Spinal Cord Window Implantation in the Mouse

Laminectomía e implantación de la ventana de la médula espinal en el ratón

This protocol describes a method for spinal cord laminectomy and glass window implantation for in vivo imaging of the mouse spinal cord. An integrated ...

Thoracic Spinal Cord Hemisection Surgery and Open-Field Locomotor Assessment in the Rat

Cirugía de hemisección de la médula espinal torácica y evaluación locomotora de campo abierto en la rata

Spinal cord injury (SCI) causes disturbances in motor, sensory, and autonomic function below the level of the lesion. Experimental animal models are ...

Intra-Arterial Delivery of Neural Stem Cells to the Rat and Mouse Brain: Application to Cerebral Ischemia

Entrega intra-arterial de células madre neuronales a la rata y el cerebro del ratón: aplicación a la isquemia cerebral

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to ...

In Vivo Intracellular Recording of Type-Identified Rat Spinal Motoneurons During Trans-Spinal Direct Current Stimulation

En Vivo Registro Intracelular de Motoneurones Espinales de Rata Tipo Identificados Durante estimulación de corriente directa trans-espinal

Intracellular recording of spinal motoneurons in vivo provides a &#8220;gold standard&#8221; for determining the cells&#8217; electrophysiological ...