Name: identifying amino acid overproducers using rare-codon-rich markers
Uploaded: 2019-06-24T13:30:00
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Die Arbeit wurde gemeinsam von der National Natural Science Foundation of China (Grant-Nr. 21676026), dem National Key R&D Program of China (Grant-Nr. 2017YFD0201400) und der China Postdoctoral Science Foundation (Grant-Nr. 2017M620643) unterstützt. Die Arbeiten am UCLA Institute of Advancement (Suzhou) wurden durch interne Zuschüsse der Provinz Jiangsu und des Industrieparks Suzhou unterstützt.

1. Aufbau der Plasmide, die die selten-codonreichen Markergene exemiten
<ol><li>Wählen Sie ein Markergen aus, das eine entsprechende Anzahl der gemeinsamen Codons für die zielgerichtete Aminosäure enthält. HINWEIS: Für L-Leucin wird das Kanamycinresistenzgen kanR, das 29 Leucin-Codons enthält, von denen 27 häufige Codons sind, für den Aufbau des Selektionssystems13verwendet. Das gfp-Gen, das 17 gemeinsame Codons aus 19 Leucin-Codons enthält, oder das vio...

<ol>
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Die Anzahl der seltenen Codons in den Markergenen und dem Selektions- oder Screeningmedium ist entscheidend, um Proteinausdrücke aus den selten-codonmodifizierten Markergenen zu hemmen. Wenn kein signifikanter Unterschied zwischen Proteinausdrücken aus den Wildtyp-Markergenen und ihren Derivaten nachgewiesen werden kann, kann die Erhöhung der Anzahl seltener Codons oder die Verwendung eines nährstoffbegrenzten Mediums die Unterschiede verstärken. Wenn die Hemmungswirkung jedoch zu stark ist, können die Proteinausdr...

Die aktuelle Produktion von Aminosäuren hängt stark von der Fermentation ab. Allerdings liegen die Titer und Erträge für die meisten Aminosäurenproduktionsstämme unter den steigenden Anforderungen des globalen Aminosäuremarktes, der Milliarden von Dollar wert ist1,2. Die Gewinnung von Hochleistungs-Aminosäure-Overproduzenten sind entscheidend für die Aufwertung der Aminosäureindustrie.
Traditionelle Strategie zur Identifizierung von Aminosäureüberproduzenten nutzt die Wettbewerbe zwischen Aminosäuren und ihren Analoga in der Proteinsynthese3,4. Diese Analoga sind in der Lage, die tRNAs aufzuladen, die die entsprechenden Aminosäuren erkennen und so die Dehnungen der Peptidketten hemmen, was zu festem Wachstum oder Zelltodführt 5. Eine Möglichkeit, den analogen Spannungen zu widerstehen, besteht darin, die Konzentrationen von intrazellulären Aminosäuren zu erhöhen. Die angereicherten Aminosäuren übertreffen die Analoga für die endlichen tRNAs und sorgen für die korrekte Synthese funktioneller Proteine. Daher können Stämme, die die Analoga überleben, ausgewählt werden und sind wahrscheinlich die Überproduzenten der entsprechenden Aminosäuren.
Obwohl sich bei der Auswahl von Überproduzenten für Aminosäuren wie L-Leucin6als erfolgreich erwiesen hat, leidet die analoge Strategie unter gravierenden Nachteilen. Ein Hauptanliegen ist der analoge Widerstand, der aus dem Prozess der Mutagenese oder durch spontane Mutationen entstanden ist. Stämme mit Widerstand können der Auswahl entkommen, indem sie die Analoga5blockieren, exportieren oder herabstufen. Ein weiteres Problem sind die toxischen Nebenwirkungen der Analoga auf andere zelluläre Prozesse7. Infolgedessen können Stämme, die die analoge Selektion überleben, nicht die Aminosäure-Overproduzenten sein, während die gewünschten Overproduzenten aufgrund der negativen Nebenwirkungen fälschlicherweise ausgerottet werden könnten.
Hier wird eine neuartige Strategie vorgestellt, die auf dem Gesetz der Kodonvoreingenommenheit basiert, um genaue und schnelle Identifizierungen von Aminosäureüberproduzenten zu erreichen. Die meisten Aminosäuren werden durch mehr als ein Nukleotid-Triplet kodiert, das von den Wirtsorganismen anders bevorzugt wird8,9. Einige Codons werden selten in den Codierungssequenzen verwendet und werden als die seltenen Codons bezeichnet. Ihre Übersetzungen in Aminosäuren basieren auf den cognate tRNAs, die die entsprechenden Aminosäuren tragen. Jedoch, die tRNAs, die seltene Codons erkennen, haben in der Regel viel geringere Überfluss als die tRNAs der gemeinsamen Codons10,11. Folglich sind diese seltenen tRNAs weniger wahrscheinlich, die freien Aminosäuren in den Wettbewerben mit anderen Isoaktoren zu erfassen, und Übersetzungen der selten-codonreichen Sequenzen beginnen zu verlangsamen oder werden sogar beendet, wenn die Mengen an Aminosäuren begrenzt sind. 10. Die Übersetzungen könnten theoretisch wiederhergestellt werden, wenn nach dem Aufladen der synonymen gemeinsamen tRNAs aufgrund von Überproduktionen oder Extra-Fütterungen der entsprechenden Aminosäuren12ein Aminosäureüberschuss vorliegt. Wenn das selten-kodonreiche Gen einen Selektions- oder Screening-Marker kodiert, können Stämme, die die entsprechenden Phänotypen aufweisen, leicht identifiziert werden und sind wahrscheinlich die Überproduzenten der zielgerichteten Aminosäuren.
Die obige Strategie wird angewendet, um eine Auswahl und ein Screening-System zur Identifizierung von Aminosäureüberproduzenten zu etablieren. Das Selektionssystem verwendet Antibiotikaresistenzgene (z. B. kanR) als Marker, während das Screening-System die Gene verwendet, die fluoreszierende (z. B. grünes fluoreszierendes Protein [GFP]) oder chromogene (z. B. PrancerPurple) Proteine kodieren. Die Markergene in beiden Systemen werden modifiziert, indem definierte Zahlen der gemeinsamen Codons für die zielgerichtete Aminosäure durch ihre synonyme seltene Alternative ersetzt werden. Stämme in der Mutationsbibliothek, die das selten-kodonreiche Markergen beherbergen, werden unter geeigneten Bedingungen ausgewählt oder gescreent, und die Überproduzenten der zielgerichteten Aminosäuren können leicht identifiziert werden. Der Arbeitsablauf beginnt mit dem Aufbau des selten-kodonreichen Marker-Gensystems, gefolgt von der Optimierung der Arbeitsbedingungen und der Identifizierung und Verifizierung der Aminosäure-Überproduzenten. Diese analog-unabhängige Strategie basiert auf dem Dogma in der Proteintranslation und wurde praktisch verifiziert, um eine genaue und schnelle Identifizierung von Aminosäureüberproduzenten zu ermöglichen. Theoretisch könnte es direkt an Aminosäuren mit seltenen Codons und an alle Mikroorganismen angewendet werden. Insgesamt wird die auf seltenen Kodonen basierende Strategie als effiziente Alternative zum herkömmlichen analogen Ansatz dienen, wenn geeignete Analoga für bestimmte Aminosäuren nicht verfügbar sind oder wenn eine hohe falsch positive Rate das Hauptanliegen ist. Das nachstehende Protokoll verwendet seltenes Leucin-Kodon, um diese Strategie bei der Identifizierung von Escherichia coli L-Leucin-Overproduzenten zu demonstrieren.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Acetonitrile</td>
			<td>Thermo</td>
			<td>51101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EasyPure HiPure Plasmid MiniPrep Kit</td>
			<td>Transgen</td>
			<td>EM111-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EasyPure Quick Gel Extraction Kit</td>
			<td>Transgen</td>
			<td>EG101-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gibson assembly master mix</td>
			<td>NEB</td>
			<td>E2611S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropyl &#946;-D-1-thiogalactopyranoside</td>
			<td>Solarbio</td>
			<td>I8070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-leucine</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>L8000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microplate reader</td>
			<td>Biotek</td>
			<td>Synergy 2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>n-hexane</td>
			<td>Thermo</td>
			<td>H3061</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phenyl isothiocyanate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P1034</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PrancerPurple CPB-37-441</td>
			<td>ATUM</td>
			<td>CPB-37-441</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TransStar FastPfu Fly DNA polymerase</td>
			<td>Transgen</td>
			<td>AP231-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triethylamine</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T0886</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultra-high performance liquid chromatography</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>1290 Infinity II</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wild type C. glutamicum</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>13032</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>XL10-Gold E. coli competent cell</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>200314</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ZORBAX RRHD Eclipse Plus C18 column</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>959759-902K</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

identifying amino acid overproducers using rare-codon-rich markers

Um den ständig wachsenden Markt für Aminosäuren zu befriedigen, werden Hochleistungs-Produktionsstämme benötigt. Die Aminosäure-Overproduzenten werden konventionell identifiziert, indem sie die Wettbewerbe zwischen Aminosäuren und ihren Analoga nutzen. Diese analoge Methode ist jedoch von geringer Genauigkeit, und richtige Analoga für bestimmte Aminosäuren sind begrenzt. Hier stellen wir eine alternative Strategie vor, die ein genaues, sensibles und hochdurchsatzreiches Screening von Aminosäureüberproduzenten mit selten-kodonreichen Markern ermöglicht. Diese Strategie ist inspiriert von dem Phänomen der Kodonverwendungsverzerrung in der Proteintranslation, für das Codons in häufige oder seltene basierend auf ihren Häufigkeiten des Auftretens in der kodierenden DNA kategorisiert werden. Die Übersetzung seltener Codons hängt von ihren entsprechenden seltenen Transfer-RNAs (tRNAs) ab, die von den cognate-Aminosäuren unter Hunger nicht vollständig aufgeladen werden können. Theoretisch können die seltenen tRNAs aufgeladen werden, wenn es einen Überschuss der Aminosäuren nach dem Aufladen der synonymen gemeinsamen Isoaktoren gibt. Daher könnten verzögerte Übersetzungen, die durch seltene Codons verursacht werden, durch Fütterung oder intrazelluläre Überproduktion der entsprechenden Aminosäuren wiederhergestellt werden. Unter dieser Annahme wird ein Selektions- oder Screening-System zur Identifizierung von Aminosäureüberproduzenten eingerichtet, indem die gemeinsamen Kodone der zielgerichteten Aminosäuren durch ihre synonymen seltenen Alternativen in den Antibiotikaresistenzgenen oder den Genen ersetzt werden. fluoreszierende oder chromogene Proteine. Wir zeigen, dass die Proteinausdrücke durch die Aufnahme seltener Codons stark behindert werden können und dass die Proteine positiv mit den Aminosäurekonzentrationen korrelieren. Mit diesem System können Überproduzenten mehrerer Aminosäuren leicht aus Mutationsbibliotheken abgeschirmt werden. Diese auf seltenen Kodonen basierende Strategie erfordert nur ein einzelnes modifiziertes Gen, und der Wirt ist weniger wahrscheinlich, der Auswahl zu entgehen als bei anderen Methoden. Es bietet einen alternativen Ansatz für die Gewinnung von Aminosäure-Overproduzenten.

Für das Selektionssystem sollte eine starke Abnahme der OD600 für Stämme beobachtet werden, die das selten-codonreiche Antibiotikaresistenzgen beherbergen, im Vergleich zu dem Stamm, der das Wildtyp-Antibiotikaresistenzgen beherbergt, wenn er in einem geeigneten mittel (Abbildung 1a). Unter den gleichen Bedingungen wird die Abnahme der Zelle OD600 deutlicher, wenn die Anzahl der seltenen Codons im Antibiotikum-Resistenzgen zunimmt (<s...

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Identifying Amino Acid Overproducers Using Rare-Codon-Rich Markers

Diese Studie präsentiert eine alternative Strategie zur herkömmlichen toxischen analogen Methode zur Identifizierung von Aminosäureüberproduzenten durch verwendung seltener Kodon-reicher Marker, um Genauigkeit, Empfindlichkeit und hohen Durchsatz gleichzeitig zu erreichen.

Identifizieren von Aminosäure-Overproduzenten mit selten-Codon-reichen Markern

To satisfy the ever-growing market for amino acids, high-performance production strains are needed. The amino acid overproducers are conventionally ...

Diese Methode bietet eine effiziente Alternative zum herkömmlichen analogen Ansatz bei der Gewinnung von Aminosäureüberproduzenten. Diese Technik übertrifft die herkömmliche analoge Methode, indem sie genauigkeit, Empfindlichkeit und hohen Durchsatz gleichzeitig bereitstellt. Diese Methode wirft ein neues Licht auf das Verständnis der Überproduktionsstärken von Aminosäuren und die Übersetzung seltener Kodone und könnte theoretisch auf alle Mikroorganismen angewendet werden.Dieses Protokoll stützt sich hauptsächlich auf grundlegende molekulare experimentelle Operationen, die leicht zu befolgen sind, aber möglicherweise mehrere Versuche erfordern, um die geeignete Auswahl von belastenden Stringencies zu erreichen. Eine visuelle Demonstration dieser Technik bietet eine direkte Wertschätzung der Leistung der Auswahl und ein Screening-System bei der Identifizierung von Aminosäurenherstellern. Um dieses Verfahren zu beginnen, fügen Sie den Vektor in den Markerfragmenten, auf Eis, in einem Molverhältnis von eins zu eins zu sieben Punkt fünf Mikroliter Montagemischung zu einem Gesamtvolumen von zehn Mikrolitern.Eine Stunde lang bei 50 Grad Celsius brüten. Verwandeln Sie fünf Mikroliter des Montageprodukts 30 Sekunden lang in 50 Mikroliter Komponentenzellen bei 42 Grad Celsius. Stellen Sie die Zellen in Super Optimal Brühe mit Katabolit Repression Medium bei 37 Grad Celsius für eine Stunde.Dann, Platte sie auf LB Agar Medium und inkubieren über Nacht bei 37 Grad Celsius. Verwenden Sie am nächsten Tag ein bevorzugtes kommerzielles Kit, um das Plasmid zu isolieren. Erstens transformieren Sie 50 Mikroliter der kompetenten Zellen mit einem Mikroliter Plasmid, der den Wildtyp KanR trägt.Transformieren Sie einen zweiten Satz der kompetenten Zellen mit dem Plasmid, das KanR RC 29 enthält, wobei alle Leucin-Codons durch das seltene Codon CTA ersetzt werden. Plate und inkubieren Sie die Zellkultur, wie im Textprotokoll beschrieben. Übertragen Sie als nächstes die Kolonien, die das Wildtyp-Selektionsmarkergen in dem selten-codonreichen Derivat beherbergen, einzeln in fünf Milliliter fünffach verdünntes LB-Medium mit Kanamycin in einer Konzentration von 50 Mikrogramm pro Milliliter.Inkubieren Sie die Proben in einem Shaker bei 37 Grad Celsius, während sie bei 250 Rpm schütteln. Dann übertragen Sie 200 Mikroliter jeder der Zellkulturen in eine 96-Well-Platte in dreifacher Auslaktezustellung zu definierten Zeitpunkten. Verwenden Sie einen Plattenleser, um den OD600 zu messen.Impfen Sie die Flecken, die das KanR RC 29 Marker-Gen beherbergen, in zwei Sätzen von fünf Millilitern des 0,2 x LB Mediums, das Kanamycin enthält, mit oder ohne Zufuhr von L-Leucin. Fügen Sie L-Leucin zu einem der Medien mit einer Endkonzentration von einem Gramm pro Liter hinzu. Inkubieren Sie die Proben in einem Shaker bei 37 Grad Celsius mit Schütteln bei 250 Rpm und messen Sie die OD600 für jede Kultur zu definierten Zeitpunkten.Um zu beginnen, transformieren Sie 50 Mikroliter des Elternstamms, der für die Mutagenese verwendet wird, mit einem Mikroliter Plasmid, der den Wildtyp GFP oder den Wildtyp PPG trägt. Platte und inkubieren Sie die Zellkulturen, wie im Textprotokoll beschrieben. Als nächstes übertragen Sie die Kolonien einzeln auf fünf Milliliter des ordnungsgemäß verdünnten LB-Mediums.Inkubieren Sie die Proben in einem Shaker bei 37 Grad Celsius mit Schütteln bei 250 Rpm. Übertragen Sie bei Fluoreszenzmarkern 200 Mikroliter der Zellkulturen in eine 96 gut klare Bodenrückplatte in dreifacher Auszeit zu definierten Zeitpunkten. Messen Sie die OD600 in der Fluoreszenz und berechnen Sie die Fluoreszenzintensität.Bei chromogenen Markern können Sie die Farbentwicklung der Zellkulturen messen. Führen Sie den Fütterungstest wie zuvor beschrieben durch und messen Sie die Fluoreszenzintensität oder die Farbentwicklung zu definierten Zeitpunkten. Zunächst transformieren Sie 50 Mikroliter der mutierten Zellen mit einem Mikroliter des Plasmids, das den Selektionsmarker KanR RC 29 oder die Screening-Marker GFP RC oder PPG RC trägt. Als nächstes zentrifugieren Sie die Zellkulturen bei 4000 mal G für fünf Minuten.Zur Auswahl den Überstand ablegen und fünf Milliliter 0,2 x LB-Medium mit Kanamycin zu Zellen hinzufügen, die den Selektionsmarker tragen. Inkubieren Sie die Probe über Nacht in einem Shaker bei 37 Grad Celsius. Am nächsten Tag die Nachtkultur auf 0,2 x LB-Agarmedium mit Kanamycin aufbringen und 12 Stunden lang bei 37 Grad Celsius brüten.Zum Screening die entsprechende Anzahl von Zellen, die den Screening-Marker beherbergen, auf lb-Agarmedium, das das entsprechende Antibiotikum enthält. Bei 37 Grad Celsius für acht Stunden inkubieren. Danach impfen Sie das LB-Medium, das das entsprechende Antibiotikum enthält, mit jeder einzelnen Kolonie von der Platte.Inkubieren Sie die Proben in einem Shaker bei 37 Grad Celsius, während sie bei 250 Rpm schütteln. Messen Sie die OD600 und die Fluoreszenz und berechnen Sie die Fluoreszenzintensität, wenn GFP RC verwendet wird. Messen Sie die Farbentwicklung der Zellkulturen, wenn PPG RC verwendet wird.Um die Aminosäure-Imulitäten der Kandidatenstämme zu überprüfen, bereiten Sie die Samenkultur vor, indem Sie fünf Milliliter LB-Medium mit jedem der Kandidatenstämme impfen und die Zellen über Nacht in einem Shaker bei 250 Umdrehungen pro Minute und bei 37 Grad Celsius wachsen lassen. Am nächsten Tag ernten Sie die Zellen von einem Milliliter der Zellkultur, indem Sie bei 4000 mal G für zwei Minuten zentrieren. Entsorgen Sie den Überstand und setzen Sie die Palette mit einem Milliliter sterilem Wasser wieder auf.20 Milliliter M9-Medium mit vier Prozent Glukose mit 200 Mikrolitern der Zellsuspension impfen und in einem 250-Milliliter-Shaker bei 250 U/min und bei 37 Grad Celsius für 24 Stunden inkubieren. Am nächsten Tag zentrifugieren Sie einen Milliliter des Kulturmediums bei 4000 mal G für fünf Minuten. 200 Mikroliter des Überstandes in ein sauberes 1,5-Milliliter-Rohr geben.Bereiten Sie L-Leucin Standardlösungen in den hier gezeigten Konzentrationen vor. In einer Dunstabzugshaube fügen Sie 100 Mikroliter eines Millimolaren Triethylamins und 100 Mikroliter eines Molarenphenylisothiocyanats sowohl dem Überstand als auch den Standards hinzu. Mischen Sie die Lösungen sanft und inkubieren Sie sie bei Raumtemperatur für eine Stunde.Dann 400 Mikroliter n-Hexan in das gleiche Rohr geben und zehn Sekunden lang wirbeln. Die untere Phase enthält die Aminosäurederivate und wird für die HPLC-Analyse verwendet. Filtern Sie die untere Phase durch 0,2 Mikroliter Polytetrafluorethylenmembranen.Danach einen Mikroliter der Probe auf einem Ultra-HPLC mit einer C18-Säule mit einer Durchflussrate von 0,42 Milliliter pro Minute und bei Einer Spaltentemperatur für 40 Grad Celsius ausführen. Verwenden Sie einen Dioden-Array-Detektor, um die zielgerichteten Aminosäuren mit 254 Nanometern zu erkennen und ihre Konzentrationen zu berechnen, indem Sie die Spitzenbereiche unter der Standardkurve kartieren. In dieser Studie werden Aminosäure-Overproduzenten identifiziert, indem seltene kodonreiche Marker verwendet werden, um gleichzeitig Genauigkeit, Empfindlichkeit und hohen Durchsatz zu erreichen.Für das Selektionssystem sollte ein starker Rückgang der OD600 für Stämme beobachtet werden, die das seltene codonreiche Antibiotikaresistenzgen beherbergen, im Vergleich zu dem Stamm, der den Wildtyp beherbergt. Die Hemmung seltener Codon auf Proteinausdrücke erfolgt meist unter verhungerten Bedingungen. Nach zusätzlicher Fütterung der entsprechenden Aminosäure erhöht sich die OD600 für den Stamm, der das seltene codonreiche Antibiotikaresistenzgen beherbergt, deutlich an.Für das Screening-System ist die Fluoreszenzintensität in der Anzahl der fluoreszierenden Zellen für den Stamm, der das fluoreszierende Protein aus dem seltenen codonreichen Gen ausdrückt, signifikant geringer als aus dem Wildtyp-Gen. Die Fütterung der entsprechenden Aminosäure wird Proteinausdrücke aus den seltenen codonreichen Genen wiederherstellen. Bei der Verwendung des violetten Proteins ist die Farbe, die sich aus dem seltenen codonreichen PPG entwickelt hat, leichter als die des Wildtyp-Gens.Das unverdünnte LB-Medium ermöglicht eine langsame Expression des seltenen codonreichen PPG ohne L-Leucin-Fütterung im exprimierten violetten Protein, sobald die Zellen pelletiert sind. Dies verhehlt jedoch nicht, dass die Genexpression aus dem seltenen codonreichen PPG durch die Fütterung des L-Leucins verstärkt wird. Die seltene kodonbasierte Strategie könnte Überproduzenten der zielgerichteten Aminosäuren aus der Mutationsbibliothek identifizieren und diese Mutanten sollten höhere Mengen der zielgerichteten Aminosäuren produzieren als die Elternstämme.Beim Versuch dieses Verfahrens ist es wichtig, seltene Codon-Frequenz anzupassen, um eine klare Diskriminierung in der OD oder Farbe zwischen Zellen zu erreichen, die die Wildtyp-Marker und die seltenen codonreichen Derivate beherbergen. Die Transkriptomanalyse und die Genomsequenzierung könnten auf die ausgewählten Stämme angewendet werden, um den Mechanismus im Zusammenhang mit Aminosäureproduktionen zu untersuchen. Mit dieser Technik könnten Aminosäureüberproduzenten effizient identifiziert werden und die Analyse ihrer genetischen Informationen würde neue Einblicke in ihre Mechanismen hinter Aminosäureüberproduktionen bieten.Die Aminosäurederivatisierung könnte schädlich sein. Achten Sie darauf, Handschuhe und die Schutzkleidung zu tragen und führen Sie diese Schritte in einer Dunstabzugshaube aus.

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Method for Identifying Small Molecule Inhibitors of the Protein-protein Interaction Between HCN1 and TRIP8b

Verfahren zur Identifizierung von niedermolekularen Inhibitoren des Protein-Protein-Wechselwirkung zwischen HCN1- und TRIP8b

Hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated (HCN) channels are expressed ubiquitously throughout the brain, where they function to regulate the ...

Forschung

Biochemie

Preparation and In Vivo Use of an Activity-based Probe for N-acylethanolamine Acid Amidase

Preparation and In Vivo Use of an Activity-based Probe for N-acylethanolamine Acid Amidase

Vorbereitung und<em&gt; In Vivo</em&gt; Die Verwendung eines aktivitätsbasierte Sonde für<em&gt; N</em&gt; -acylethanolamine Säure Amidase

Activity-based protein profiling (ABPP) is a method for the identification of an enzyme of interest in a complex proteome through the use of a chemical ...

Utilizing the Ethylene-releasing Compound, 2-Chloroethylphosphonic Acid, as a Tool to Study Ethylene Response in Bacteria

Unter Verwendung der Ethylen-freisetzenden Verbindung, 2-Chlorethylphosphonsäure, als Werkzeug Ethylen-Antwort in Bakterien zu studieren

Ethylene (C2H4) is a gaseous phytohormone that is involved in numerous aspects of plant development, playing a dominant role in senescence and fruit ...

Voltage-clamp Fluorometry in Xenopus Oocytes Using Fluorescent Unnatural Amino Acids

Voltage-clamp Fluorometry in Xenopus Oocytes Using Fluorescent Unnatural Amino Acids

Spannklemme Fluorometrie in<em&gt; Xenopus</em&gt; Oozyten mit fluoreszierenden unnatürlichen Aminosäuren

Voltage-Clamp Fluorometry (VCF) has been the technique of choice to investigate the structure and function of electrogenic membrane proteins where ...

Hydrolysis of a Ni-Schiff-Base Complex Using Conditions Suitable for Retention of Acid-labile Protecting Groups

Hydrolyse eines Ni-Schiff-Base-Komplex unter Verwendung von Bedingungen, die für Retention von säurelabilen Schutzgruppen

Unnatural amino acids, amino acids containing side-chain functionalities not commonly seen in nature, are increasingly found in synthetic peptide ...

Kinetic Screening of Nuclease Activity using Nucleic Acid Probes

Kinetisches Screening der Nuklease-Aktivität mit Nukleinsäuresonden

Nucleases are a class of enzymes that break down nucleic acids by catalyzing the hydrolysis of the phosphodiester bonds that link the ribose sugars. ...

Isolation of Histone from Sorghum Leaf Tissue for Top Down Mass Spectrometry Profiling of Potential Epigenetic Markers

Isolierung von Histon von Sorghum Blattgewebe für Top Down Mass Spektrometrie Profilierung von potenziellen epigenetischen Markern

Histones belong to a family of highly conserved proteins in eukaryotes. They pack DNA into nucleosomes as functional units of chromatin. ...

Estimation of Plant Biomass Lignin Content using Thioglycolic Acid (TGA)

Estimation of Plant Biomass Lignin Content using Thioglycolic Acid TGA

Abschätzung des Ligningehalts von pflanzlicher Biomasse mit Thioglykolsäure (TGA)

Lignin is a natural polymer that is the second most abundant polymer on Earth after cellulose. Lignin is mainly deposited in plant secondary cell walls ...

Optimized Incorporation of Alkynyl Fatty Acid Analogs for the Detection of Fatty Acylated Proteins using Click Chemistry

Optimierter Einbau von Alkynyl-Fettsäure-Analoga zum Nachweis von fettacylierten Proteinen mittels Klickchemie

Fatty acylation, the covalent addition of saturated fatty acids to protein substrates, is important in regulating a myriad of cellular functions in ...

Identifying the Binding Proteins of Small Ligands with the Differential Radial Capillary Action of Ligand Assay (DRaCALA)

Identifying the Binding Proteins of Small Ligands with the Differential Radial Capillary Action of Ligand Assay DRaCALA

Identifizierung der Bindungsproteine kleiner Liganden mit der differentiellen radialen Kapillarwirkung des Ligandenassays (DRaCALA)

The past decade has seen tremendous progress in the understanding of small signaling molecules in bacterial physiology. In particular, the target proteins ...