Name: thawing, culturing, and cryopreserving drosophila cell lines
Uploaded: 2019-04-16T15:00:00
Duration: 7 min 57 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Thawing, Culturing, and Cryopreserving Drosophila Cell Lines at JoVE.com

Мы благодарим национальных институтов здравоохранения (низ P40OD010949 премия) и научно-исследовательское сообщество для использования различных ресурсов ДНК/вектор/клеток D. melanogaster , куратор на НАУЧНЫМ.

1. оттаивания и возрождение замороженных дрозофилы клеточных линий
<ol><li>Стерилизуйте капот, вытирая рабочей поверхности с 70% этиловом спирте. Отказаться от 5 мл соответствующей среды (Таблица 1) в 25 см2 T-колбу (T-25).</li>
	<li>Удалите cryovial/ампулы из жидкости N2 или сухого льда. Протрите cryovial с 70% этанола, тщательно ослабить и распечатывания ампулы.</li>
	<li>С помощью пипетки Пастера, 1 мл комнатной температуры (RT) средств массовой информации покинуть T-25 колбу. Медленно добавьте СМИ в cryovial и осторожно перемешать таять замороженных клеток, обеспечивая, что суспензию клеток не переполнения.</li>
	<li>Перевести весь объем суспензии клеток талой из ампулы в T-25 колбу. Повторите, чтобы убедиться, что суспензию клеток были переданы полностью.</li>
	<li>Фляга в инкубаторе 25 ° C, позволяя клеток урегулировать и придерживаться для по крайней мере 2 h. изучить клетки под микроскопом, чтобы обеспечить, что большинство клеток поселились на поверхности растущего. Аккуратно удалите старые средства массовой информации и замените 5 мл свежего средств массовой информации. Вернуть настой в инкубаторе.</li>
	<li>На следующий день аккуратно удалить старые средства массовой информации и заменить с 5 мл свежего средств массовой информации. Возвращение культуры в инкубаторе.</li>
</ol>2. оттаивания и возрождение замороженных дрозофилы клеточных линий (альтернатива)
<ol><li>В стерильные капот оттепель клетки, resuspending замороженных лепешка с 1 мл раствора RT СМИ. Передача всех суспензию талой клеток в коническую пробирку 15 мл.</li>
	<li>Пелле клетки центрифугированием на 1000 x g для 5 минут удалить супернатант и Ресуспензируйте Пелле клеток в 5 мл свежего средств массовой информации.</li>
	<li>Перевести весь объем суспензии клеток в T-25 колбу и инкубировать культуры при 25 ° C.</li>
	<li>1-2 h позже, изучить клетки под микроскопом, чтобы обеспечить, что большинство клеток поселились на поверхности растущего. На следующий день заменить старые средства массовой информации с 5 мл свежего СМИ и возвращение культуры в инкубаторе.</li>
</ol>3. subculturing полу адэрентных клеток, выращенных в 100 мм культуры пластин
<ol><li>Стерилизуйте капот, вытирая с 70% этиловом спирте. Принесите стерильных материалов для subculturing в капот, включая СМИ бутылки, пипетки, помощи пипетки и культуры пластин.</li>
	<li>Изучения морфологии и слияния культуры под микроскопом. Ищите признаки microorganismal загрязнений в культуре. Определить, готовы ли клетки к пассированной, основываясь на характеристиках культуры: сотовый плотности и удвоение времени, в том числе в последний раз, они были subcultured.</li>
	<li>Если культура очень притока (рис. 1), определить плотность клеток. В стерильные капот выбить клетки с поверхности растущего дозирование до 10 мл среды от плиты и дозирования над клетки. Повторите несколько раз, обеспечивая не для создания пены, до тех пор, пока рост поверхности становится ясно. Определите плотность клеток с помощью Горяева или счетчик автоматический частиц (раздел 5, рис. 3). Субкультура клетки, если плотность ячеек между 5 x 10-6 и 1 x 10-7 кл/мл. Примечание: Сделать не субкультура дрозофилы клеточных линий клеток плотности менее 1 x 106 клеток/мл.</li>
	<li>
Разбавления суспензии клеток, соответственно с использованием соответствующих средств для окончательного заполнения концентрации по крайней мере 1 x 106 клеток/мл.
	<ol>
<li>Для обычной пассированый и техническое обслуживание добавьте соответствующий объем суспензии клеток предопределенного объема среды в новой культуры пластины для достижения желаемого плотность посева клеток.</li>
		<li>Для расширения масштабов культуры, перевести все суспензию клеток в большой колбу. Разбавления суспензии клеток для нужной ячейки плотности с Томом соответствующей среды. Распространите равных объемах подвеска разреженных ячейки для новых плит. Этот метод минимизирует вариации в плотность ячеек между пластинами.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Обложка и этикетке плиты с инициалами оператора, Дата, Сплит соотношение, плотность посева клеток, клеток линии идентификатор, СМИ, номер прохода и любые дополнения СМИ, такие как антибиотики.</li>
	<li>Поместите пластины в пластиковый контейнер и вернуть окно в инкубаторе. Примечание: таблица 3 списки судов культуры, часто используемые для культивирования дрозофилы клеточных линий и связанные рабочие объемы.</li>
</ol>4. выбивании адэрентных клеток, выращенных в 100 мм культуры пластин
<ol><li>Передать все средства от пластины новую стерильную колбу. Сохраните средства.</li>
	<li>Промойте клетки, медленно добавляя 1 мл 0,05% трипсина-ЭДТА к пластине. Вихревой мягко, чтобы убедиться, что решение трипсина охватывает весь рост поверхности. Слейте раствор трипсина.</li>
	<li>Аккуратно добавьте 1 мл 0,05% трипсина-ЭДТА к пластине. Инкубируйте пластины при 25 ° C между 3−10 мин хотя мониторинг для видимых признаков отсоединение слой клеток и скольжения с растущей поверхности.</li>
	<li>Добавьте 9 мл сохраненных среды к пластине, чтобы остановить активность трипсина. Перемешайте суспензию клеток не присоединяться скопления клеток. После того, как были выбиты все клетки, растущей поверхность будет ясно. Примечание: Использование пищеварительных ферментов, таких как СПИД трипсина в пассированый линии сильно адэрентных клеток. Трипсин представляет собой смесь протеазы, часто выведены из поджелудочной железы свиней и коммерчески доступна в различных классов чистоты.</li>
</ol>5. ручной клеток подсчета с помощью ячейки Нойбауэр, считая слайд
<ol><li>Подготовьте Горяева слайд и coverslip, вытирая поверхность с 70% спирта.</li>
	<li>Перемешать суспензию клеток и лунки 15 мкл суспензии клеток в рифленый край Горяева (Рисунок 3А), чтобы заполнить в первой камере Горяева. Заполните второй камеры Горяева. Суспензию клеток будет отрисован в Счетной палате действием капилляров.</li>
	<li>С помощью 10 x микроскопом цель, подсчитать количество ячеек в пределах области2 1 мм в середине сетки, связанные с параллельными линиями (рис. 3 c,D). Чтобы избежать дублирования подсчета, граф клетки, которые накладываются верхней и левой границ, но не те клетки, которые пересекают правой и нижней границ 200 µm2 квадратов. Граф между 100−200 клетки. Повторите граф с второй камеры.</li>
	<li>Вычислить среднее по двум пунктам и определить плотность ячеек по следующей формуле: клетки (клеток/мл) плотность = средний клеток count (n1 + n2/2) х 104. Примечание: Жизнеспособность клеток выражается в виде процента жизнеспособных клеток над общей клетки. Чтобы определить жизнеспособность клеток, перемешать суспензию клеток с равным объемом Трипановый синий (0.4%) решение до ручного или автоматического клеток подсчета. Живые клетки не займет краситель, в то время как мертвые клетки будет окрашенных в синий.</li>
</ol>6. криоконсервирования клеточных линий дрозофилы
<ol><li>Проверьте культуры здорового морфологии, роста и отсутствие загрязнения. Урожай культур от середины к фазе роста конца журнала (шаг 3.3, или раздел 4). Для многих дрозофилы клеточных линий это примерно между 4 х 106 клеток/мл до 8 х 106 клеток/мл.</li>
	<li>Перенесите всю ячейку подвеска в 15 мл или 50 мл Конические трубки. Собирать клетки центрифугированием на 1000 x g 5 минут и удалить супернатант.</li>
	<li>Ресуспензируйте Пелле клеток в объеме замораживания среды (Таблица 4), которая приведет к плотность окончательный клеток, по крайней мере 4 x 107 клеток/мл.</li>
	<li>Добавьте каплям соответствующее количество криопротектора диметилсульфоксида (ДМСО) в суспензию клеток таким образом, что конечная концентрация ДМСО составляет 10%. Аккуратно перемешайте суспензию клеток.</li>
	<li>Тщательно распределять 0,5 мл суспензии клеток на аликвоты предварительно помечены криопробирки (~ 2 x 10-7 клеток/флакон). Поместите ампулы в замораживания контейнер заполнен изопропиловый спирт (рис. 4A). Перевести заморозки контейнера в морозильник-80 ° C ночь чтобы температура криопробирки медленно падать (-1 ° C/мин) до температуры морозильной камеры.</li>
	<li>Возьмите замороженные криовалы и быстро прикрепить их к трости (рис. 4В). Вставьте трости, содержащие криопробирки в фильтр (рис. 4 c). Кроме того место замороженные криовалы внутри предварительно охлажденным замораживания коробки (рис. 4 d). Храните замороженные криовалы в жидкой фазе N2 морозильных камер (Рисунок 4E,F). Примечание: При использовании замораживания средств массовой информации содержащей ДМСО, задержка до 30 мин на RT не вредно для ячейки.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Baum, B., Cherbas, L., Dahmann, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila:+Methods+and+Protocols.">Drosophila: Methods and Protocols.</a> Methods in Molecular Biology. 420, 391-424 (2008).</li><li>Cherbas, L., Gong, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+lines.">Cell lines.</a> Methods. 68 (1), 74-81 (2014).</li><li>Luhur, A., Klueg, K. M., Zelhof, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generating+and+working+with+Drosophila+cell+cultures:+Current+challenges+and+opportunities.">Generating and working with Drosophila cell cultures: Current challenges and opportunities.</a> Wiley Interdisciplinary Reviews: Developmental Biology. , e339 (2018).</li><li>Franz, A., Brunner, E., Basler, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+genome-modified+Drosophila+cell+lines+using+SwAP.">Generation of genome-modified Drosophila cell lines using SwAP.</a> Fly (Austin). 11 (4), 303-311 (2017).</li><li>Housden, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+potential+drug+targets+for+tuberous+sclerosis+complex+by+synthetic+screens+combining+CRISPR-based+knockouts+with+RNAi.">Identification of potential drug targets for tuberous sclerosis complex by synthetic screens combining CRISPR-based knockouts with RNAi.</a> Science Signaling. 8 (393), r9 (2015).</li><li>Kunzelmann, S., Bottcher, R., Schmidts, I., Forstemann, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Comprehensive+Toolbox+for+Genome+Editing+in+Cultured+Drosophila+melanogaster+Cells.">A Comprehensive Toolbox for Genome Editing in Cultured Drosophila melanogaster Cells.</a> G3 (Bethesda). 6 (6), 1777-1785 (2016).</li><li>Ishizu, H., Sumiyoshi, T., Siomi, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+the+CRISPR-Cas9+system+for+genome+editing+in+cultured+Drosophila+ovarian+somatic+cells.">Use of the CRISPR-Cas9 system for genome editing in cultured Drosophila ovarian somatic cells.</a> Methods. 126, 186-192 (2017).</li><li>Echalier, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila Cells in Culture. , (1997).</li><li>Echalier, G., Perrimon, N., Mohr, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila cells in culture. 2nd edition. , (2017).</li><li>Cherbas, L., Cherbas, P., Roberts, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: A practical approach. 10, 319-346 (1998).</li><li>Schneider, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+lines+derived+from+late+embryonic+stages+of+Drosophila+melanogaster.">Cell lines derived from late embryonic stages of Drosophila melanogaster.</a> Journal of Embryollgy and Experimental Morphology. 27 (2), 353-365 (1972).</li><li>Echalier, G., Ohanessian, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolement,+en+cultures+in+vitro,+de+lignees+cellulaires+diploides+de+Drosophila+melanogaster.">Isolement, en cultures in vitro, de lignees cellulaires diploides de Drosophila melanogaster.</a> Comptes rendus de l'Acad&#233;mie des Sciences. 268, 1771-1773 (1969).</li><li>Ui, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Newly+established+cell+lines+from+Drosophila+larval+CNS+express+neural+specific+characteristics.">Newly established cell lines from Drosophila larval CNS express neural specific characteristics.</a> In Vitro Cellular &amp; Developmental Biology &#8722; Animal. 30A (4), 209-216 (1994).</li><li>Ui, K., Ueda, R., Miyake, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+lines+from+imaginal+discs+of+Drosophila+melanogaster.">Cell lines from imaginal discs of Drosophila melanogaster.</a> In Vitro Cellular &amp; Developmental Biology. 23 (10), 707-711 (1987).</li><li>Currie, D. A., Milner, M. J., Evans, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+growth+and+differentiation+in+vitro+of+leg+and+wing+imaginal+disc+cells+from+Drosophila+melanogaster.">The growth and differentiation in vitro of leg and wing imaginal disc cells from Drosophila melanogaster.</a> Development. 102, 805-814 (1988).</li><li>Niki, Y., Yamaguchi, T., Mahowald, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+stable+cell+lines+of+Drosophila+germ-line+stem+cells.">Establishment of stable cell lines of Drosophila germ-line stem cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (44), 16325-16330 (2006).</li><li>Saito, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+regulatory+circuit+for+piwi+by+the+large+Maf+gene+traffic+jam+in+Drosophila.">A regulatory circuit for piwi by the large Maf gene traffic jam in Drosophila.</a> Nature. 461 (7268), 1296-1299 (2009).</li><li>Simcox, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+genetic+method+for+establishing+Drosophila+cell+lines+unlocks+the+potential+to+create+lines+of+specific+genotypes.">Efficient genetic method for establishing Drosophila cell lines unlocks the potential to create lines of specific genotypes.</a> PLoS Genetics. 4 (8), e1000142 (2008).</li><li>Sumiyoshi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Loss+of+l(3)mbt+leads+to+acquisition+of+the+ping-pong+cycle+in+Drosophila+ovarian+somatic+cells.">Loss of l(3)mbt leads to acquisition of the ping-pong cycle in Drosophila ovarian somatic cells.</a> Genes &amp; Development. 30 (14), 1617-1622 (2016).</li><li>Dequeant, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Discovery+of+progenitor+cell+signatures+by+time-series+synexpression+analysis+during+Drosophila+embryonic+cell+immortalization.">Discovery of progenitor cell signatures by time-series synexpression analysis during Drosophila embryonic cell immortalization.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (42), 12974-12979 (2015).</li><li>Young, L., Sung, J., Stacey, G., Masters, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection+of+Mycoplasma+in+cell+cultures.">Detection of Mycoplasma in cell cultures.</a> Nature Protocols. 5 (5), 929-934 (2010).</li><li>Shields, G., Sang, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+medium+for+culture+of+Drosophila+embryonic+cells.">Improved medium for culture of Drosophila embryonic cells.</a> Drosophila Information Service. 52, 161 (1977).</li><li>Freshney, R. I., Capes-Davis, A., Gregory, C., Przyborski, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Culture of animal cells : a manual of basic technique and specialized applications. Seventh edition. edn. , (2016).</li><li>Lee, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DNA+copy+number+evolution+in+Drosophila+cell+lines.">DNA copy number evolution in Drosophila cell lines.</a> Genome Biology. 15 (8), R70 (2014).</li></ol>

Авторы не имеют ничего сообщать.

Дрозофилы клеточных культур являются первичной реагентов для высокой пропускной способности на основе ячеек экранов. Их использование также дополняет исследования in vivo генетических, предоставляя однородная популяция клеток для биохимии, быстрое тестирование трансгенных конструкций до впрыскивать в мух, клеточная биология, микроскопии и совсем недавно соматических клеток генетического манипуляции с геном редактирования1,2,3,8,9,10.
Жизнеспособность и восстановление замороженных клеток дрозофилы чувствительна к резким колебаниям даже при низких температурах. НАУЧНЫМ магазины замороженные клеточные линии в жидкой фазе N2 (-196 ° C) и перевозит их в сухого льда (-78.5 ° C). Замороженные ампулы, которые были перевезены в сухой лед не должны передаваться обратно в жидкость N2 или морозильник-80 ° C для хранения. Вместо этого замороженные клетки следует разморозить, заполнения на плотность высокой клеток как можно скорее по прибытии (протокол раздел 1) и культивированный по назначению (протокол раздел 3). Если линии клетки не используются непосредственно для экспериментов, ячейки, строки должны быть криоконсервированных (раздел 6 протокол) до тех пор, пока они готовы для использования.
Некоторые клеточных линий, таких как линии ML-BG2-c2 и ран нужно несколько дней, чтобы оправиться от последствий возрождаются из криоконсервированных государства. Значительное количество сотовой мусора сопровождает эти клеточные линии в первые несколько дней после оттаивания. Покинул спокойно, клетки будет восстановить и размножаться. Многие дрозофилы клеточных линий на НАУЧНЫМ были адаптированы к расти в м3 на базе СМИ22. Для клеточных линий, которые медленно, чтобы оправиться от последствий таяния использование кондиционерами СМИ может быть полезным. Кондиционерами СМИ вероятно содержит факторы роста, выделяется клетками в средствах массовой информации, которые могут способствовать восстановлению и пролиферации клеток после оттаивания.
Клеточных линий, как правило, следуют кривая стереотипных роста, состоящий из участка запаздывания, экспоненциальная фаза, фаза плато и фазы обострения. Многие дрозофилы клеточных линий размножаться в лаг фазы роста, когда они выращиваются на плотность от 1 x 10-6 и 1 x 107 кл/мл при 25 ° C. Важно, что клеточных линий пассированные таким образом, чтобы они находятся всегда в фазы экспоненциального роста.
Слияние культуры, выраженный в процентах, описывает рост площади поверхности, которая охватывается клеток. Слияния клеток для строки ячейки зависит от его клетки форму и размер. Различных клеточных линий имеют различные морфологии и присоединения свойства. В результате различных клеточных линий на приблизительно одинаковые слияния может иметь плотность значительно различных клеток (рис. 1). Слияние культуры не может быть идеальный показатель для пассированый дрозофилы клеточных культур, потому что дрозофилы клеточных линий продолжают распространяться либо путем укладки поверх друг друга как очагов или подвеска, даже после того, как был рост поверхности крытая (рис. 1). Однако пользователи опытных с конкретными клеточных линий может часто используют слияния как быстрым Путеводитель для когда для субкультуры.
Хотя это можно выращивать дрозофилы линии окружающего RT между 19−25 ° C, не рекомендуется, потому что колебания температуры окружающей среды может повлиять на скорость распространения. Рекомендуется использовать выделенный 25 ° C-инкубатора. Инкубатор для культур клеток дрозофилы не нужно облегчить обмен газа CO2 , потому что дрозофилы клетки культуры СМИ не используйте CO2 для буферизации. Влажность внутри инкубатора для культивирования клеток линии является важным фактором не следует упускать из виду при культивировании клеток в тарелках. В зависимости от типа инкубатора и рабочей среды может быть необходимо разместить стакан стерильной воды внутри инкубатора. Чтобы свести к минимуму испарения СМИ, использовать закрытые T-настой или хранить культуры пластин в плотно закрытом пластиковом контейнере внутри инкубатора.
Важно разработать график для subculturing дрозофила клеточных линий. Для оценки последовательности монитора и темпы роста, это удобно для субкультуры в даже геометрические пропорции (Сплит соотношение 1:2, 1:4, 1:8). Например 10 мл вырожденная плита Kc167 клеток в 8 х 106 клеток/мл может быть разделен на соотношение 1:8 для достижения посева плотность 1 х 106 клеток/мл (1,25 мл суспензии клеток, разбавляют в 8,75 мл свежего СМИ). В 72 h Kc167 культур, как ожидается, размножаться к плотности 8 х 106 клеток/мл, учитывая его удвоения время 24 ч. Коэффициент разделения таким образом определяется для облегчения удобный субкультура рутинной до два раза в неделю, обеспечивая, что клетки всегда культивировали в фазе роста их экспоненциальный журнала. Это позволяет для регулярного расписания для subculturing клетки, так что время слияния является слишком коротким и не слишком долго. Если время слияния является слишком коротким, клетки subcultured на более низкую плотность клеток (высокий коэффициент разделения). Аналогично Если время достичь слияния является слишком длинным, клетки subcultured на более высокую плотность клеток (Нижняя Сплит соотношение). Важно отметить, что большинство дрозофилы клеточных линий очень чувствительны к низкой сотовый плотности (< 1 х 105 клеток/мл), в котором клетки вряд ли размножаться и может в конечном итоге умрет.
Дрозофилы клеточных линий различаются характеристики роста и морфологии. В результате клеточных линий с различных свойств могут должны обрабатываться по-разному. Большинство линий клетки дрозофилы полу сторонником. На нижнем плотность клеток, они придерживаться сильнее поверхности роста и культуры становится вырожденная, клетки становятся менее сторонником и легко отсоединить. Это постепенное изменение в сотовый присоединению облегчает легко subculturing наиболее широко используемых дрозофилы клеточных линий (Шнайдер, Kc линий, имагинальных дисков и ЦНС линии), как это позволяет оператору просто обойтись СМИ над монослое клеток выбить их от роста поверхности при плотной культуры. Для линий, которые являются приверженцем поверхности, такие как женские зародышевой линии стволовых/яичников соматических оболочка (fGS/OSS) и Ras линии, важно для инкубации клеток в трипсина на короткий срок для помощи в отделение клетки с поверхности роста.
Средства массовой информации дополнения для большинства дрозофилы клеточных линий включают плода телячьей сыворотки (FCS). Инсулин и взрослых летать экстракт (ФЕКС) требуются для некоторых конкретных линий. ФЕКС содержит неопределенный компонентов необходимых для роста конкретных личиночных имагинальных дисков линий и линий клеток взрослого яичников. Готовит НАУЧНЫМ, и делает доступных взрослых ФЕКС производных от 1 неделя старый мух Орегон-R-modENCODE (RRID: BDSC_25211) в 2,5 мл и 10 мл аликвоты. НАУЧНЫМ также предоставляет инструкции для малого масштаба ФЕКС подготовку на своем веб-сайте < https://dgrc.bio.indiana.edu/include/file/additions_to_medium.pdf>. Подготовка ФЕКС, однако, много времени и требует большое количество взрослых мух.
Криоконсервирования клеточных линий дрозофилы экономит время и реагенты для поддержания клеточных линий не в немедленного использования. Криоконсервация достигается медленно замораживание клеток (-1 ° C/мин) до-80 ° C в среде, содержащей ДМСО, криозащитных агента. Медленное охлаждение шаг имеет решающее значение для успешного криоконсервирования. В морозильной камере-80 ° C ампулы клеток охлаждается в размере-1 ° C/мин при помещении в заморозки контейнера, заполненного изопропиловый спирт. Начиная с при окружающей температуре 25 ° C, он будет принимать до 2 ч для температуры в ампулах до-80 ° C. Рекомендуется оставить ампулы заморозить на ночь.
Замороженные ампулы должны быть быстро передано в жидкой фазы азота для длительного хранения. При температуре окружающего воздуха cryovial будет быстро разогреть примерно 10 ° C/мин и жизнеспособность будет ставиться на выше-50 ° C23. Чтобы сохранить быстрой передачи, обработки ампул в небольших партий для сведения к минимуму воздействия температуры окружающей среды. Кроме того, место замороженные криовалы на сухой лед при подготовке к их передачи в жидкость N2. Если жидкий азот не доступен, клетки могут храниться в морозильной камере-80 ° C, хотя с риском значительного ухудшения с течением времени.
Плотность клеток имеет решающее значение для успешного криоконсервирования и последующего возрождения клеточных линий. В целом новая ячейка, которую линии должны быть заморожены для создания первоначальной заморозить (1−3 ампулы) как только избыток клеток становится доступной. Как только линия клетки были далее культивировали стабильно, замороженные запас 10−20 ампулы должны быть созданы. Затем этот запас разморожен для проверки ее восстановления после заморозки клеток и жизнеспособности, после чего она распространяется для экспериментов или заменить акции, когда количество замороженных запасов ампулы падает ниже 5. Наконец важно проверить, что талой клетки сохраняют характеристики своих родителей акций как клеточные линии известны развиваться3,24.
В заключение эта статья представляет грунтовка для работы с дрозофилы клеточных культур путем предоставления основной информации о различных линий, наилучшей практики и аудиовизуальных протоколы для базовой обработки дрозофилы клеточных линий. Этот доступный ресурс предназначен для плавно облегчить введение в работу с культивируемых клеток дрозофилы и дополнить существующие учебные руководства любой исследовательской лаборатории.

Использование дрозофилы культивируемых клеток дополняет в естественных условиях летать генетического анализа и служит в качестве первичного расследования инструмент для решения многих основных биологических вопросов1,2,3. Дрозофилы клеточных линий предлагают уникальные однородной популяции клеток, полученных из источников различных тканей с различных генетических стола. Клеточные линии подходят для многих приложений, включая выражение трансгенных гена, геномики, transcriptomics, протеомики, метаболомики, высокая пропускная способность РНК интерференции (RNAi) экранов, клеточной биологии и микроскопии. Важно отметить, что использование дрозофилы клеточной культуры облегчает характеристику немедленного временного ответы на известных раздражителей. Кроме того культура клетки дрозофилы поддается ТРИФОСФАТЫ-Cas9 генома редактирования, что делает его относительно легко создать новые линии клетки с конкретным геном модификации4,5,6, 7.
Центр ресурсов дрозофилы геномики (НАУЧНЫМ) выступает в качестве репозитория и распределительный центр для дрозофилы клеточных линий. Одна из целей НАУЧНЫМ заключается в оказании помощи членам научно-исследовательского сообщества в использовании ресурсов культуры клеток дрозофилы . В статье представлены основные протоколы для обработки дрозофилы клеточных линий. Она дополняет существующие ресурсы, чтобы помочь исследователей стать комфортно с обработкой дрозофилы клеточных культур и достичь уровня независимости в их экспериментов1,2,8,9 ,10.
Наиболее часто используемые линии клетки дрозофилы являются: Шнайдер линии11, Kc16712, Mitsubishi/Мияке имагинальных дисков и центральной нервной системы (ЦНС) линии13,14, Милнер Лаборатория имагинальных дисков линии 15,16,линии клеток взрослого яичников17и Ras линии18 (Таблица 1). Шнайдер и Kc167 линии являются общие универсальные клеточные линии для использования в биохимии, экспрессии рекомбинантных трансгенных генов и обратного генетического экраны. Mitsubishi/Мияке лаборатории (мл) линии были получены от личиночных имагинальных дисков или центральной нервной системы (ЦНС), и они были полезны для исследования связанных с нейросекрета, правилам транскрипции и обработки РНК. Милнер (CME) диск линии были важными для изучения сигнала. ФГС/OSS клеточных линий, производный от мутантов взрослых яичники остаются важным реагентов для изучения влияния некодирующих небольшой биологии РНК в клетки семенозачатка содержание и дифференцирования17,19. И наконец Ras линии являются уникальными, потому что эти клеточных линий, полученных эмбрионов, ectopically выражая онкогена ран. Они имеют transcriptional подпись мышечных клеток-предшественников и выражает активную piRNA машины20. Последние обзорных статей и глав книг охватывают применение этих популярных клеточных линий с более детали2,,3-9.
Все эти линии клетки может быть subcultured и заморожены. Есть небольшие, но важные различные требования к как каждой ячейки строки поддерживается и подготовлен для криоконсервации. Например различные клеточные линии требуют различных средств массовой информации и добавки (Таблица 1). Строки также различаются по поверхности присоединения свойства, морфологии (рис. 1 и рис. 2), генотип и удвоение времени (Таблица 2). Мы представляем основные протоколы и подчеркнуть уникальные различия для обработки различных широко используемых дрозофилы клеточных линий.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:899px;" width="898">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">100 mm tissue culture plates</td>
			<td style="width:252px;">Corning&#160;</td>
			<td align="right" style="width:123px;">430167</td>
			<td style="width:171px;">Subculturing</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">25 cm2 T-flask</td>
			<td style="width:252px;">Corning&#160;</td>
			<td align="right" style="width:123px;">430168</td>
			<td>Subculturing</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">35HC Liquid Nitrogen Storage Tank</td>
			<td style="width:252px;">Taylor-Wharton</td>
			<td style="width:123px;">35HCB-11M</td>
			<td>Cryopreservation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Automated Cell counter</td>
			<td style="width:252px;">BIO-RAD</td>
			<td style="width:123px;">TC20</td>
			<td>Counting</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Bactopeptone</td>
			<td style="width:252px;">BD BioSciences</td>
			<td style="width:123px;">211677</td>
			<td>Medium additions</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Counting Slides</td>
			<td style="width:252px;">BIO-RAD</td>
			<td style="width:123px;">145-0011</td>
			<td>Counting</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Cryovial 1 mL</td>
			<td style="width:252px;">Greiner&#160;</td>
			<td align="right" style="width:123px;">123263</td>
			<td>Cryopreservation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">DMSO</td>
			<td style="width:252px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:123px;">D5879</td>
			<td>Cryopreservation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Freezing Box</td>
			<td style="width:252px;">Nalgene</td>
			<td style="width:123px;">5029-0909</td>
			<td>Cryopreservation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Freezing Container</td>
			<td style="width:252px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:123px;">15-350-50</td>
			<td>Cryopreservation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Hematocytometer</td>
			<td style="width:252px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:123px;">#0267110</td>
			<td>Counting</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Human Insulin</td>
			<td style="width:252px;">Millipore Sigma</td>
			<td style="width:123px;">I9278</td>
			<td>Medium additions</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Hyclone CCM3 media</td>
			<td style="width:252px;">GE Healthcare Life Sciences</td>
			<td style="width:123px;">SH30061.03</td>
			<td>Medium</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Hyclone Fetal Bovine Serum</td>
			<td style="width:252px;">GE Healthcare Life Sciences</td>
			<td style="width:123px;">SH30070.03</td>
			<td>Medium additions</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">L-Glutamic acid potassium salt monohydrate</td>
			<td style="width:252px;">Millipore Sigma</td>
			<td style="width:123px;">G1149</td>
			<td>Medium additions</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">L-Glutathione reduced</td>
			<td style="width:252px;">Millipore Sigma</td>
			<td style="width:123px;">G6013</td>
			<td>Medium additions</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Potassium Bicarbonate</td>
			<td style="width:252px;">Millipore Sigma</td>
			<td style="width:123px;">237205</td>
			<td>Medium additions</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Select Yeast Extract&#160;</td>
			<td style="width:252px;">Millipore Sigma</td>
			<td style="width:123px;">Y1000</td>
			<td>Medium additions</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Shields and Sang&#39;s M3 Insect medium</td>
			<td style="width:252px;">Millipore Sigma</td>
			<td style="width:123px;">S8398</td>
			<td>Medium</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Trpsin-EDTA (0.05 %), phenol red&#160;</td>
			<td style="width:252px;">ThermoFisher Scientific</td>
			<td style="width:123px;">25300054</td>
			<td>Subculturing</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:354px;">Trypan Blue (0.4%)</td>
			<td style="width:252px;">BIO-RAD</td>
			<td style="width:123px;">145-0013</td>
			<td>Counting</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

thawing, culturing, and cryopreserving drosophila cell lines

В настоящее время насчитывается более 160 различных клеточных линий дрозофилы , распределены по дрозофилы центр ресурсов геномики (НАУЧНЫМ). С инженерной генома, количество новых клеточных линий ожидается увеличение. НАУЧНЫМ призвана ознакомить исследователей с использованием дрозофилы клеточных линий как экспериментальный инструмент для дополнения и управлять их исследований. Предоставляются процедуры для работы с различными дрозофилы клеточных линий с отличительные особенности, включая протоколы для оттаивания, культивирования и cryopreserving клеточных линий. Важно отметить, что эта публикация демонстрирует лучшие практики, необходимые для работы с дрозофилы клеточных линий для сведения к минимуму риска загрязнений от случайного микроорганизмов или других клеточных линий. Исследователи, которые стали знакомы с этими процедурами будут иметь возможность углубиться в многих приложений, использующих дрозофилы культивируемых клеток, включая биохимии, клеточной биологии и функциональной геномики.

Watch this Scientific Journal Video about Thawing, Culturing, and Cryopreserving Drosophila Cell Lines at JoVE.com

Thawing, Culturing, and Cryopreserving Drosophila Cell Lines

Линии клетки дрозофилы являются важными реагенты для фундаментальных и биомедицинских исследований. Эта статья обеспечивает протоколы для оттаивания, subculturing и криоконсервации часто используемых дрозофилы клеточных линий для оказания помощи исследователям в посредством использования этих реагентов в их исследованиях.

Размораживание, культивирования и Cryopreserving дрозофила клеточных линий

There are currently over 160 distinct Drosophila cell lines distributed by the Drosophila Genomics Resource Center (DGRC). With genome engineering, the ...

Эти протоколы помогут любому исследователю включить использование линий клеток Drosophila для привода или дополнения их исследовательской повестки дня. Большинство, если не все культуры клеток Drosophila оживить, размножаться, и крио-сохранить хорошо при работе в соответствии с этими руководящими принципами. После вытирания рабочей поверхности ламинарного потока капот с 70% этанола, обойтись пять миллилитров соответствующей среде в 25 сантиметров в квадрате Т-колбу.Протрите контейнер замороженной клеточной линии 70%этанолом и осторожно ослабьте и опечатайте крышку. Используя пипетку Pasteur, перенесите один миллилитр среды комнатной температуры из колбы в крио-флакон и аккуратно перемешайте, чтобы разморозить замороженные клетки. Заботясь о том, чтобы подвеска клетки не переполнялась, перенесите весь объем талой клеточной подвески в колбу и прополощите крио-флакон свежей средой.Позвольте клеткам осесть на дне колбы, по крайней мере два часа в 25 градусов по Цельсию инкубатора. Не возвращайм замороженные клетки, которые были упакованы для путешествия обратно в морозильную камеру минус 80 градусов по Цельсию в течение длительного периода времени или в жидкий азот. Вместо этого оттаивать клетки как можно скорее.Подтвердив вложение под световым микроскопом, аккуратно замените супернатант пятью миллилитров свежей среды, прежде чем вернуть колбу в инкубатор. Кроме того, после оттаивания, передача подвески клетки в 15 миллилитров конической трубки для центрифугации и повторно приостановить гранулы в пять миллилитров свежей среды перед посевом в колбу Т-25, как только что продемонстрировали. Чтобы определить, готовы ли клетки к прохождению, изучите морфологию и слияние культуры под микроскопом.Учитывая плотность клеток и удвоение времени, в последний раз клетки были суб-культурных, и любые признаки загрязнения микроорганизмов в культуре. Если культура представляется весьма сотрясающимся, используйте десять миллилитров супернатанта культуры, чтобы аккуратно выбить клетки из дна пластины культуры и определить плотность клеток, подсчитав количество жизнеспособных клеток в полученной одноклеточной подвеске. Суб-культура клеток, если плотность клеток составляет от пяти до десяти раз десять до шестой клетки на миллилитр в соответствующей среде.Добавьте по крайней мере один раз десять к шестой клетки на миллилитр концентрации в новой пластине культуры для достижения желаемой плотности посева клеток. Затем накройте и обозначить пластины с оператором инициалы, дата, соотношение сплит, плотность посевных клеток, идентификатор линии клеток, средний, проход номер, и любые средние дополнения, такие как антибиотики, и поместите пластины в пластиковый контейнер для их дальнейшей инкубации в 25 градусов по Цельсию инкубатор. Чтобы выбить клетки-адепты из 100-миллиметрового культурного дна, сначала перенесите все супернатанты в стерильную колбу и промойте клетки с медленным добавлением одного миллилитра 0,05%трипсина ЭДТА.Аккуратно вихрем, чтобы убедиться, что трипсин решение охватывает всю поверхность роста, прежде чем отказаться от решения. Затем аккуратно добавьте от одного до двух миллилитров свежего 0,05%трипсина EDTA к пластине и поместите пластину в инкубатор 25 градусов по Цельсию в течение трех-десяти минут. Когда клеточный слой можно наблюдать отсоединения и скольжения от растущей поверхности, остановить трипсин деятельности с добавлением девяти миллилитров сохраненных supernatant и смешать подвеску клетки тщательно разъединить клетки сгустки.Когда все клетки будут выбиты, растущая поверхность будет ясной. Чтобы вручную подсчитать клетки с помощью слайда подсчета клеток Neubauer, сначала протрите поверхность слайда гемоцитометра и накройте скольжение 70% алкоголя. После смешивания добавьте 15 микролитров клеток в каждый рифленый край гемоцитометра, чтобы заполнить обе камеры.Подвеска ячейки будет втянута в счетную камеру капиллярным действием. Используя цель 10x микроскопа, подсчитайте от 100 до 200 ячеек в пределах одной миллиметровой площади в квадрате в середине сетки, связанной параллельными линиями. Затем повторите перечисление со второй камерой и используйте среднее значение двух подсчетов для определения плотности клеток в соответствии с формулой.Для крио-сохранения крио-сохранения линии drosophila повторно приостанавливайте клеточные гранулы в объеме замораживания среды, что приведет к окончательной плотности клеток по крайней мере в четыре раза от десяти до седьмого клетки на миллилитр. Добавьте соответствующий объем крио-защиты, диметилсульфсид или DMSO, в падение подвески клетки таким образом, чтобы окончательная концентрация DMSO составила 10% и аккуратно смешивала подвес клетки. Затем аккуратно добавьте 0,5 миллилитров алициты клеточной суспензии в предварительно помеченные крио-флаконы и поместите крио-флаконы в замораживающий контейнер, наполненный изопропанолом.Затем перенесите замораживающий контейнер в морозильную камеру минус 80 градусов по Цельсию в течение ночи, чтобы температура крио-флаконов медленно опускаться до температуры морозильной камеры. Далее, быстро перенося крио-флаконы на рысы для вставки в канистру с жидким азотом. Кроме того, перенесите замороженные крио-флаконы в предварительно охлажденое замораживание коробки и храните замороженные крио-флаконы в жидкой фазе азотной морозильной камеры.Слияние клеточной линии можно определить с помощью светового микроскопа. Быстро растущие клеточные линии, которые достигают слияния рано должны быть прохождение регулярно, до двух раз в неделю. В отличие от этого, медленно растущие клетки могут быть пролет по крайней мере один раз в две недели или дольше, хотя эти клетки должны быть накормлены свежей среде каждую неделю.Клеточные линии, полученные из различных источников тканей, отличаются по морфологии, свойствам присоединения, требованиям к средствам массовой информации и времени удвоения. Для количественных экспериментов, подсчет клеток имеет важное значение. Клетки можно пересчитать с помощью гемоцитометра или автоматизированного счетчика частиц.Слияние клеток является визуальным руководством, когда субкультуры для опытного оператора. Тем не менее, подсчет клеток приводит к предсказуемому графику субкульирования и облегчает выявление аномалий роста. Будьте осторожны и используйте соответствующее защитное снаряжение при работе с жидким азотом.

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Thawing, Culturing, and Cryopreserving Drosophila Cell Lines

Assaying Blood Cell Populations of the Drosophila melanogaster Larva

Assaying Blood Cell Populations of the Drosophila melanogaster Larva

Опробование клеток крови народам<em&gt; Дрозофилы</em&gt; Личинка

In vertebrates, hematopoiesis is regulated by inductive microenvironments (niches). Likewise, in the invertebrate model organism&#160;Drosophila ...

Establishment of Genome-edited Human Pluripotent Stem Cell Lines: From Targeting to Isolation

Создание Геном человека-редакцией плюрипотентных стволовых клеток: От Ориентация в изоляцию

Genome-editing of human pluripotent stem cells (hPSCs) provides a genetically controlled and clinically relevant platform from which to understand human ...

Culturing Human Pluripotent and Neural Stem Cells in an Enclosed Cell Culture System for Basic and Preclinical Research

Культивирование Человеческий плюрипотентных и нервные стволовые клетки в замкнутой системе клеточной культуре фундаментальных и доклинических исследований

This paper describes how to use a custom manufactured, commercially available enclosed cell culture system for basic and preclinical research. Biosafety ...

Imaging of Cell Shape Alteration and Cell Movement in Drosophila Gastrulation Using DE-cadherin Reporter Transgenic Flies

Imaging of Cell Shape Alteration and Cell Movement in Drosophila Gastrulation Using DE-cadherin Reporter Transgenic Flies

Визуализация Cell Shape Переоборудование и Cell движения в<em&gt; Drosophila</em&gt; гаструляцией Использование DE-кадгерин Reporter Трансгенные Мухи

Gastrulation is the first set of morphologically dynamic events that occur during the embryonic development of multicellular animals such as Drosophila. ...

Derivation of Stem Cell Lines from Mouse Preimplantation Embryos

Дифференцирование линий стволовых клеток мыши Предимплантационная эмбрионов

Mouse embryonic stem cell (mESC) derivation is the process by which pluripotent cell lines are established from preimplantation embryos. These lines ...

Dissection and Staining of Drosophila Pupal Ovaries

Dissection and Staining of Drosophila Pupal Ovaries

Рассечение и пятнать дрозофилы куколки яичников

Unlike adult Drosophila ovaries, pupal ovaries are relatively difficult to access and examine due to their small size, translucence, and encasing within a ...

An Efficient Strategy for Generating Tissue-specific Binary Transcription Systems in Drosophila by Genome Editing

An Efficient Strategy for Generating Tissue-specific Binary Transcription Systems in Drosophila by Genome Editing

Эффективная стратегия для генерации двоичного транскрипции ткани конкретных систем у дрозофилы путем изменения генома

Binary transcription systems are powerful genetic tools widely used for visualizing and manipulating cell fate and gene expression in specific groups of ...

In Vitro Assays to Evaluate the Migration, Invasion, and Proliferation of Immortalized Human First-trimester Trophoblast Cell Lines

В Vitro анализов для оценки миграции, вторжения и распространения увековечен человека первого триместра трофобласта клеточных линий

Cell movement is a critical property of trophoblasts during placental development and early pregnancy. The significance of proper trophoblast migration ...

Culturing and Measuring Fetal and Newborn Murine Long Bones

Культивирование и измерение фетального и новорожденного Мурина длинные кости

Long bones are complex and dynamic structures, which arise from endochondral ossification via a cartilage intermediate. The limited access to healthy ...

Cell-cell Fusion of Genome Edited Cell Lines for Perturbation of Cellular Structure and Function

Слияние клеток генома Отредактированные клеточные линии для возмущения клеточной структуры и функции

Life is spatially partitioned within lipid membranes to allow the isolated formation of distinct molecular states inside cells and organelles. Cell fusion ...