Name: using near-infrared fluorescence and high-resolution scanning to measure protein expression in the rodent brain
Uploaded: 2019-05-23T15:00:00
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Die Forschung in diesem Bericht wurde durch ein Zielzuschuss der NIGMS (1P20GM103653) an DK finanziert.

Das folgende Protokoll wurde vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der Universität Delaware genehmigt. Männliche Sprague Dawley Ratten etwa 55 – 75 Tage alt wurden für dieses Protokoll verwendet.
1. Gehirnerschütterung und Zahnarztepräparation
<ol><li>Anästhesie-Ratte mit Isoofluran in der Anästhesie-Induktionskammer, bis die Ratte keine Antwort mehr auf die Fußspinne ausweist.</li>
	<li>Opfere Ratten durch schnelle Enthaktung mit einer Guillotine.</li>
	<li>Die H...

<ol>
	<li>Kandel, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Principles of Neural Science. , (2013).</li><li>Byrne, J. H., Roberts, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> From Molecules to Networks: An Introduction to Cellular and Molecular Neuroscience. , (2009).</li><li>Salami, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dopamine+D2/3+binding+potential+modulates+neural+signatures+of+working+memory+in+a+load-dependent+fashion.">Dopamine D2/3 binding potential modulates neural signatures of working memory in a load-dependent fashion.</a> Journal of Neuroscience. , (2018).</li><li>Merali, Z., Khan, S., Michaud, D. S., Shippy, S. A., Anisman, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Does+amygdaloid+corticotropin-releasing+hormone+(CRH)+mediate+anxiety-like+behaviors?+Dissociation+of+anxiogenic+effects+and+CRH+release.">Does amygdaloid corticotropin-releasing hormone (CRH) mediate anxiety-like behaviors? Dissociation of anxiogenic effects and CRH release.</a> European Journal of Neuroscience. 20 (1), 229-239 (2004).</li><li>English, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dataset+of+mouse+hippocampus+profiled+by+LC-MS/MS+for+label-free+quantitation.">Dataset of mouse hippocampus profiled by LC-MS/MS for label-free quantitation.</a> Data in Brief. 7, 341-343 (2016).</li><li>David, M. A., Tayebi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection+of+protein+aggregates+in+brain+and+cerebrospinal+fluid+derived+from+multiple+sclerosis+patients.">Detection of protein aggregates in brain and cerebrospinal fluid derived from multiple sclerosis patients.</a> Frontiers in Neurology. 5, 251 (2014).</li><li>Oliver, C., Jamur, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunocytochemical+methods+and+protocols.">Immunocytochemical methods and protocols.</a> Methods in Molecular Biology. , (2010).</li><li>Spitzer, N., Sammons, G. S., Price, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Autofluorescent+cells+in+rat+brain+can+be+convincing+impostors+in+green+fluorescent+reporter+studies.">Autofluorescent cells in rat brain can be convincing impostors in green fluorescent reporter studies.</a> Journal of Neuroscience Methods. 197 (1), 48-55 (2011).</li><li>Knox, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+c-Jun+to+identify+fear+extinction+learning-specific+patterns+of+neural+activity+that+are+affected+by+single+prolonged+stress.">Using c-Jun to identify fear extinction learning-specific patterns of neural activity that are affected by single prolonged stress.</a> Behavioural Brain Researach. 341, 189-197 (2018).</li><li>Knox, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+circuits+via+which+single+prolonged+stress+exposure+leads+to+fear+extinction+retention+deficits.">Neural circuits via which single prolonged stress exposure leads to fear extinction retention deficits.</a> Learning &amp; Memory. 23 (12), 689-698 (2016).</li><li>Malinow, R., Malenka, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=AMPA+receptor+trafficking+and+synaptic+plasticity.">AMPA receptor trafficking and synaptic plasticity.</a> Annual Review of Neuroscience. 25, 103-126 (2002).</li><li>Nabavi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+a+memory+with+LTD+and+LTP.">Engineering a memory with LTD and LTP.</a> Nature. 511 (7509), 348-352 (2014).</li><li>Kimmelmann-Shultz, B., Mohammadmirzaei, N., Della Valle, R., Knox, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+high+resolution+near+infrared+imaging+to+measure+fear-learning+induced+changes+in+AMPA/NMDA+ratios+throughout+the+fear+circuit.">Using high resolution near infrared imaging to measure fear-learning induced changes in AMPA/NMDA ratios throughout the fear circuit.</a> , (2018).</li><li>Eagle, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single+prolonged+stress+enhances+hippocampal+glucocorticoid+receptor+and+phosphorylated+protein+kinase+B+levels.">Single prolonged stress enhances hippocampal glucocorticoid receptor and phosphorylated protein kinase B levels.</a> Neuroscience Research. 75 (2), 130-137 (2013).</li></ol>

Die in diesem Artikel vorgestellten Ergebnisse zeigen, dass die nahezu infrarote Immunozytochemie in Kombination mit hochauflösendem Scannen genutzt werden kann, um semiquantitative Maßnahmen der Proteinexpression im Hirngewebe zu erhalten. Es kann auch verwendet werden, um zwei Proteine gleichzeitig in der gleichen Hirnregion zu kennzeichnen. Wir haben zuvor die Infrarot-Immunhistochemie verwendet, um die sofortige frühe Genexpression in mehreren Hirnregionen9,10zu...

Die Studie der Neurowissenschaften betrifft eine Untersuchung, wie Zellen im Gehirnbestimmte Funktionen 1vermitteln. Diese können zellulärer Natur sein, wie zum Beispiel, wie Gliazellen Immunität im zentralen Nervensystem gewähren oder Experimente beinhalten, die erklären sollen, wie die Aktivität von Neuronen im dorsalen Hippocampus zu einer räumlichen Navigation führt. Im weitesten Sinne wird die zelluläre Funktion durch die Proteine bestimmt, die in einer Zelle ausgedrückt werden, und dieAktivität dieser Proteine 2. Daher ist die Messung des Ausdrucks und/oder Aktivität von Proteinen in Gehirnzellen entscheidend für die Untersuchung der Neurowissenschaften.
Eine Reihe von Techniken stehen zur Verfügung, um Proteinausdruck im Gehirn zu messen. Dazu gehören in vivo-Methoden wie Positronen-Emissionstopografie für Rezeptordichten 3 und Mikrodialyse für kleine Peptide4. Häufiger werden Ex-vivo-Methoden verwendet, um Proteinfunktion und-ausdruck zu untersuchen. Dazu gehören Massenspektrometrie-Techniken 5, Western Blot und enzym-verknüpfte immunsorbierende Assay(ELISA) 6, und Immunozytochemie7. Die Immunozytochemie ist im Bereich der Neurowissenschaften weit verbreitet. Bei dieser Technik wird ein primärer Antikörper verwendet, um ein Protein (oder Antigen) von Interesse zu erkennen (z.B. c-Fos) und einen konjugierten sekundären Antikörper, um den Protein-primären Antikörper-Komplex zu erkennen (Abbildung1). Um den Nachweis des protein-primären Antikörper-Sekundarkkomplexes zu ermöglichen, haben sekundäre Antikörper oxidierende Substanzen wie Meerrettiche Peroxidase (HRP), die ihnen konjugiert werden. Dies ermöglicht die Bildung von Niederschlägen in Zellen, die mit Lichtmikroskopie7erkannt werden können. Sekundäre Antikörper können auch Chemikalien haben, die fluoreszieren, um sie zu konjugieren (z.B. Fluorophore). Bei der Stimulierung stoßen diese Chemikalien Licht aus, mit dem Protein-primäre Antikörper-sekundäre Antikörper-Komplexe 7 erkannt werden können. Schließlich sind primäre Antikörper manchmal mit Reduktionsmitteln und Fluoreszenzchemikalien versehen, die direkt die Notwendigkeit von sekundären Antikörpern7 beeinträchtigen (Abbildung1).
Interessanterweise erlauben viele immunozytochemische Methoden die Visualisierung von Proteinen in Gehirnzellen, nicht aber die Fähigkeit, die Proteinmenge in einer bestimmten Zell-oder Hirnregion zu quantifizieren. Der Einsatz von Lichtmikroskopie zur Erkennung von Niederschlägen aus Reduktionsreaktionen ermöglicht die Visualisierung von Neuronen und Glia, aber diese Methode kann nicht verwendet werden, um Proteinexpression in Zellen oder in einer bestimmten Hirnregion zu quantifizieren. Theoretisch kann dafür die Fluoreszenzmikroskopie verwendet werden, denn das Licht, das aus dem fluoreszierenden sekundären Antikörper emittiert wird, ist ein Maß für den proteinprimären Antikörper-Sekundenkomplex. Die Autofluoreszenz im Hirngewebe kann es jedoch schwierig machen, mit der Fluoreszenzmikroskopie die Proteinexpression im Hirngewebe 8zuquantifizieren. Daher wird Licht, das aus fluoreszierenden Bildern von Hirngewebe emittiert wird, nur selten zur Quantifizierung des Proteinausdrucks im Gehirn verwendet.
Viele dieser Probleme können mit Hilfe der Infrarot-Immunozytochemie in Verbindung mit hochauflösenden Scannenvon 9,10angegangenwerden. In diesem Artikel beschreiben wir, wie die Immunozytochemie in Verbindung mit Fluorophoren in den nahezu infrarotfarbenen Emissionsspektren mit hochauflösenden Scannen (z.B. 10 – 21 μm) kombiniert werden kann, um scharfe Bilder zu erhalten, die eine Halbquantifizierung des Proteins in unterschiedlichen Hirnregionen.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:658px;" width="657">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td colspan="4" height="21" style="height:21px;width:658px;">Brain Extraction</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:207px;">Anesthesia Induction Chamber</td>
			<td style="width:147px;">Kent Scientific</td>
			<td>VetFlo-0530SM</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Kleine Guillotine</td>
			<td style="width:147px;">Harvard Apparatus</td>
			<td>73-1920</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:207px;">Friedman Rongeur</td>
			<td style="width:147px;">Fine Science Tools</td>
			<td>16000-14</td>
			<td>used to remove back of skull</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:207px;">Delicate Dissecting Scissors</td>
			<td style="width:147px;">Fischer Scientific</td>
			<td>08-951-5</td>
			<td>used to cut upward along midline of skull</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:207px;">Micro Spatula</td>
			<td style="width:147px;">Fischer Scientific</td>
			<td>21-401-5</td>
			<td>used to scoop out brain</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:207px;">Glass Microscope Slides</td>
			<td style="width:147px;">Fischer Scientific</td>
			<td style="width:114px;">12-549-6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td colspan="4" height="21" style="height:21px;width:658px;">Immunohistochemical Reaction</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:207px;">&#160;Triton X-100</td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td style="width:114px;"></td>
			<td>Used as a mild detergent to permeabilize cells after fixing in Paraformaldehyde, also used as mild detergent in combination with host serum and secondary antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:207px;">Tween-20</td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td style="width:114px;"></td>
			<td>Used as a small amount of detergent added to TBS&#160; to procuce TBS-T after coverslipping slides with primary antibody</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:207px;">Licor Odyssey scanner</td>
			<td style="width:147px;">Licor Biotechnology Inc.</td>
			<td style="width:114px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:207px;">Image Studio</td>
			<td style="width:147px;">Licor Biotechnology Inc.</td>
			<td style="width:114px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

using near-infrared fluorescence and high-resolution scanning to measure protein expression in the rodent brain

Neurowissenschaften ist die Studie, wie Zellen im Gehirn verschiedene Funktionen vermitteln. Die Messung der Proteinexpression in Neuronen und Glia ist für die Erforschung der Neurowissenschaft von entscheidender Bedeutung, da die zelluläre Funktion durch die Zusammensetzung und Aktivität zellulärer Proteine bestimmt wird. In diesem Artikel beschreiben wir, wie die Immunozytochemie mit dem Infrarot-hochauflösenden Scannen kombiniert werden kann, um eine halbquantitative Messung der Proteinexpression in unterschiedlichen Hirnregionen zu ermöglichen. Diese Technik kann für den Einzel-oder Doppelproteinausdruck in der gleichen Hirnregion verwendet werden. Die Messung von Proteinen auf diese Weise kann verwendet werden, um eine relative Veränderung des Proteinausdrucks mit einer experimentellen Manipulation, molekularer Signatur von Lernen und Gedächtnis, Aktivität in molekularen Wegen und neuronale Aktivität in mehreren Hirnregionen zu erreichen. Mit den richtigen Proteinen und statistischen Analysen kann auch die funktionelle Konnektivität zwischen Hirnregionen ermittelt werden. Angesichts der Leichtigkeit der Einführung der Immunozytochemie in einem Labor, die Verwendung von Immunozytochemie mit nahezu infraroten hochauflösenden Scannen kann die Fähigkeit der Neurowissenschaftler, neurobiologische Prozesse auf einer Systemebene zu untersuchen zu erweitern.

Vor dem Einsatz hochauflösender Scannern für Immunhistochemie sollte man überprüfen, ob das Protokoll funktioniert. Dies kann mit einem Validierungs-Test erreicht werden, bei dem Hirnabschnitte aus dem gleichen Tier mit primären und sekundären Antikörpern, sekundären Antikörpern allein oder weder primären noch sekundären Antikörpern inkubiert werden. Die Ergebnisse für einen solchen Validierungs-Test sind in Abbildung2 dargestellt. In dieser Reak...

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Using Near-infrared Fluorescence and High-resolution Scanning to Measure Protein Expression in the Rodent Brain

Einsatz von Infrarot-Fluoreszenz und hochauflösendem Scannen zur Messung des Protein-Expression im Rodentrains

Hier stellen wir ein Protokoll vor, das nahezu infrarote Farbstoffe in Verbindung mit Immunhistochemie und hochauflösendem Scannen verwendet, um Proteine in Hirnregionen zu untersuchen.

Neuroscience is the study of how cells in the brain mediate various functions. Measuring protein expression in neurons and glia is critical for the study ...

Dieses Protokoll ist wichtig, weil es die Quantifizierung von zwei Proteinen in derselben Hirnregion ermöglicht. Dies ermöglicht es dem Experimentator, die Aktivität in molekularen Signalwegen in Hirnregionen zu betrachten, indem er Pan- und Phosphoproteine ansieht. Es kann auch verwendet werden, um Proteine zu assay, die Marker für verschiedene kognitive Phänomene sind.Wir verwenden eine relativ einfache Technik, wie die Immunhistochemie, um Fragen zu beantworten, die in der Regel mehr beteiligte Techniken erfordern. Einschließlich der Untersuchung der Aktivität molekularer Signalwege, Untersuchung des AMPA/NMDA-Verhältnisses. Mit einem Kryostat zwischen minus 9 Grad Celsius und minus 12 Grad Celsius, Schneiden Sie zuvor isoliert und gefrorene Ratten Gehirn in Regionen von Interesse bei 30-50 Mikrometer.Scheiben direkt auf Glasrutschen montieren und bei minus 80 Grad Celsius bis zur Immunzytochemie lagern. Entfernen Sie die Glasgletten aus dem Gefrierschrank und lassen Sie sie 30 Minuten lang auf Raumtemperatur ausdemieren. Arbeiten unter einer Dunstabzugshaube, legen Sie die Dias in 4%Paraformaldehyd in 0,1 molaren PBS für ein bis zwei Stunden bei Raumtemperatur für Gewebefixierung.Dann spülen Sie die Dias in 0,1 Molaren TBS dreimal für jeweils 10 Minuten. Um Zellmembranen zu permeabilisieren, inkubieren Sie die Dias 30-60 Minuten lang in einem milden Reinigungsmittel. Und spülen Sie wieder in TBS dreimal für jeweils 15 Minuten.Verdünnung des primärantikörpers für Protein von Interesse an PBS in der richtigen Konzentration, wie im Manuskript beschrieben. Pipette primäre Antikörperlösung direkt auf das Gehirngewebe. Legen Sie Deckelrutschen auf die Dias und inkubieren Sie das Gehirngewebe in primäre Antikörperverdünnung für 1-2 Stunden bei Raumtemperatur.Nach der Inkubation entfernen Sie die Deckelscheine und waschen Sie die Dias in TBS, dem eine kleine Menge Reinigungsmittel zugesetzt wird, viermal für jeweils 15 Minuten. Sekundärantikörper in einem Verdünnungsmittel, das TBS, Waschmittel und 1,5 % des Wirtsserums enthält, verdünnen. Sekundären Antikörper zu den Dias hinzufügen, mit Deckelscheine abdecken und bei Raumtemperatur zwei Stunden lang inkubieren.Nach der Inkubation spülen Sie die Dias in TBS-T viermal für jeweils 20 Minuten und dann viermal für jeweils 20 Minuten in TBS. Trocknen Sie die Dias bei Raumtemperatur im Dunkeln, über Nacht. Platzieren Sie Dias auf der Nahinfrarot-Scan-Schnittstelle mit dem Nachuntengewebe.Bildn ermehrere Folien gleichzeitig mit dem Auswahlwerkzeug. Stellen Sie die Dias mit der höchsten Qualitätseinstellung mit einer Auflösung von 21 Mikrometern ab. Importieren Sie Bilder in einem Offset von null Nanometern in Bildanalysesoftware, um sie für die semiquantitative Proteinanalyse anzuzeigen und zu markieren.Wählen Sie nach dem Öffnen der Bildanalysesoftware den Arbeitsbereich aus, in den das Bild gescannt wurde. Öffnen Sie dann das gescannte Bild in der Bildanalysesoftware, um die angezeigten Scan- und Längenwellenlängen, Kontraste, Helligkeit und Vergrößerung anzuzeigen, ohne das Rohbild oder die gesamte quantifizierte Emission zu verändern. Nachdem Sie die Schlüsselbereiche für die Quantifizierung identifiziert haben, wählen Sie die Registerkarte Analyse am oberen Rand der Seite aus, und wählen Sie dann Rechteck zeichnen aus, um ein Rechteck über den zu quantifizierenden Bereich zu zeichnen.Um die Rechteckgröße anzuzeigen, wählen Sie Shapes unten links auf dem Bildschirm aus. Wählen Sie dann Spalten unten rechts aus. Fügen Sie dann Spalten in Höhe und Breite hinzu, um die Formgröße zu identifizieren.Benennen Sie schließlich die Form, und wiederholen Sie sie. Sobald alle Regionen abgetastet wurden, fahren Sie mit dem Kombinieren und Analysieren der daten aus der Registerkarte Spalten fort. Um zu überprüfen, ob dieses Protokoll funktioniert, wurden Hirnabschnitte mit primären und sekundären Antikörpern, sekundärem Antikörper allein oder weder primärem noch sekundärem Antikörper inkubiert.Die sofortige frühe frühe Gen-c-jun-Expression wurde im dorsalen Hippocampus und Amygdala nur nachgewiesen, wenn sowohl primäre als auch sekundäre Antikörper auf das Gehirngewebe angewendet wurden. GluR1-Untereinheit des AMPA-Rezeptors und die NR2A-Untereinheit des NMDA-Rezeptors wurden im Stuhlproteinnachweis in Amygdala-Kernen assayed. Dies ermöglichte die Untersuchung des Verhältnisses der AMPA-NMDA-Rezeptoren in Subkernen der Amygdala, die eine neurobiologische Signatur des Lernens und Gedächtnisses ist.Mittlere und normalisierte Messungen der Proteinexpression wurden aus hochauflösenden Scans im ventralen Hippocampus gewonnen. Mit Hilfe der Bildanalyse-Software wird ein Rechteck in den Bereich des Interesses gelegt und die mittlere Intensität des Lichts aus der Form wurde als Maß für die Fluorophorexpression verwendet, die ein Maß für die Proteinexpression ist. Um die normalisierte Kurve zu erhalten, wurde eine Form über einen Bereich gelegt, der ein hohes Signal ausdrückt, und ein niedriges Signal im Bereich unter der Kurve wurde als Maß für die Proteinexpression verwendet.Der größte Kampf mit diesem Verfahren ist es, einen Antikörper zu finden und sicherzustellen, dass es funktioniert. Die Anwendung ist einfach. Mein Rat wäre, zuerst ein regelmäßiges immunhistochemisches Verfahren zu versuchen, dann versuchen Sie diese Technik.Führen Sie immer zuerst einen Validierungstest durch. Das Wichtigste, was Sie sich merken sollten, ist, Ihre Antikörperverdünnung zu überprüfen und sicherzustellen, dass sie richtig angewendet wird. Ohne diese Schritte schlägt das Verfahren fehl.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

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To examine the neural basis of the blood oxygenation level dependent (BOLD) magnetic resonance imaging (MRI) signal, we have developed a rodent model in ...

Forschung

Neurowissenschaften

A Rapid Approach to High-Resolution Fluorescence Imaging in Semi-Thick Brain Slices

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Using MazeSuite and Functional Near Infrared Spectroscopy to Study Learning in Spatial Navigation

Mit MazeSuite und Functional Near Infrared Spectroscopy man Lernen in Spatial Navigation

MazeSuite is a complete toolset to prepare, present and analyze navigational and spatial experiments1. MazeSuite can be used to design and edit adapted ...

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Hochauflösende Live-Bildgebung von Zell-Verhalten in der Entwicklung von Neuroepithel

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