Name: a method for quantifying foliage-dwelling arthropods
Uploaded: 2019-10-20T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Method for Quantifying Foliage-Dwelling Arthropods at JoVE.com

Авторы хотели бы поблагодарить Министерство сельского хозяйства США Лесной службы для финансирования этого проекта через USFS Соглашения 13-CS-11090800-022. Мы хотели бы поблагодарить Дж. Суда, У. Холланда и других за лабораторную помощь, и Р. Ричардса за помощь на местах.

1. Создание устройства для отбора проб перед выходом на поле
<ol><li>Используя болторезы, большие резаки проволоки, или электрический шлифовальный диск, удалите нижней 1/3 из 30 см проволоки томатной клетки, так что это примерно 55 см в длину.</li>
	<li>Вырезать два, 50 см скобки из алюминия или анал?...

Двумя потребностями точной количественной членистоногих сообществ являются относительно высокие вероятности обнаружения и известные или последовательные области отбора проб. При отборе проб для членистоногих, менее 100% вероятность обнаружения может быть отнесена либо отдельных чле...

Наземные членистоногие играют важную роль в нашей экосистеме. В дополнение к тому, научного интереса членистоногих может быть как вредным и полезным для сельскохозяйственных культур, садоводческих растений и естественной растительности, а также обеспечить важную трофическую функцию в пищевых сетях. Таким образом, понимание факторов, влияющих на развитие членистоногих сообщества и изобилие имеет решающее значение для фермеров, менеджеров по борьбе с вредителями, биологов растений, энтомологов, экологов дикой природы и биологов сохранения, которые изучают динамику сообщества и управлять насекомоядными организмами. Понимание факторов, которые влияют на членистоногих общин и изобилия часто требует захвата лиц. Методы захвата, как правило, могут быть классифицированы в качественные методы, которые только обнаруживают наличие вида для оценки видового диапазона, богатства и разнообразия, или полуколичественные и количественные методы, которые позволяют индексировать или оценивать изобилие и плотность физических лиц в таксономической группе.
Квалификационные методы, позволяющие делать выводы только о наличии вида или структуры общины, имеют неизвестную или внутренне низкую вероятность обнаружения или не позволяют сделать вывод относительно вероятности обнаружения и размера отобранной площади. Поскольку вероятность обнаружения с помощью этих методов низка, вариативность, связанная с обнаружением, исключает достаточную точность для определения того, как пояснительные переменные влияют на показатели популяции членистоногих. Квалификационные методы, используемые для оценки присутствия включают всасывания выборки1, легкие ловушки2, появление ловушки3, кормления моделей на корнях4, рассол трубы5, приманки6, феромон3, ловушки ловушки 7, Малаис ловушки8, оконные ловушки9, всасывающие ловушки10, избиение лотки11, паутина12, лист мины, frass13, членистоногие галлы14, растительность и повреждение корня15 .
Кроме того, полуколичественные и количественные методы позволяют исследователям оценить или, по крайней мере, последовательно изобрать заданную область выборки и оценить вероятность обнаружения или предположить, что вероятность обнаружения является ненаправленной и адекватной, чтобы не скрыть способность исследователя обнаруживать пространственные или временные изменения в изобилии. Полуколичественные и количественные методы включают развертки сетей16, всасывания или вакуумной выборки17, систематический подсчет видимых членистоногих18, липкие ловушки19, различные ловушки пот типа20, вход или возникающие отверстия21, химический нокдаун22, липкие и заполненные водой цветные ловушки23, и ветвь мешки и отсечения24.
Недавние антропогенные изменения в климатических и помеховых режимах привели к резким изменениям в растительных сообществах, в результате чего взаимодействие между составом видов растительного сообщества и членистоногими сообществами стали активной областью исследования. Понимание того, как членистоногие сообщества варьируются в зависимости от состава видов растений, является важнейшим компонентом для понимания потенциального экономического и экологического воздействия изменений в растительных сообществах. Необходимы полуколичественные или количественные методы количественной оценки численности членистоногих с достаточной точностью для выявления различий между видами растений. В этой статье мы описываем метод индексации листвы, обитающих членистоногих, который, при разумных усилиях, при условии адекватной точности для выявления различий в индивидуальном изобилии и биомассе, разнообразии и богатстве среди 5 таксонов деревьев, обычно встречающихся в юго-восточных лиственных лесов Северной Америки25. Этот подход обеспечил точность, достаточную для оценки изобилия, чтобы сделать вывод о том, как изменения в составе видов лесных растений из-за антропоопических модифицированных режимов нарушения влияют на состав членистоногих, потенциально влияние на изобилие и распределение более высоких трофических насекомоядных птиц и млекопитающих. В частности, с помощью модифицированной техники багажа, впервые описанной Crossley et al.24,мы оценили плотность поверхности, членистоногих, живущих в листве, и проверили прогноз, что мы обнаружим различия в разнообразии, богатстве и обилие членистоногих в листве быстрее растущих более ксерических видов деревьев по сравнению с более медленными растущими более мезическими видами. Целью данной статьи является предоставление подробных инструкций по технике.
Мы провели исследование по Шони Национальный лес (SNF) в южном Иллинойсе. SNF является 115,738-га лес расположен в центральной области лиственных пород Ozarks и Шони Хиллз природных подразделений26. Лес состоит из мозаики 37% дуба / гикори, 25% смешанных нагорье лиственных пород, 16% бука / клена, и 10% дна лиственных пород. SNF доминирует второй рост дуба / гикори в горных ксрикических районах и сахарный клен, американский бук, и тюльпан дерево (Liriodendron tulipifera) в защищенных мезиковых долин27,28.
Выбор сайта для этого метода будет зависеть от общих целей исследования. Например, в первую очередь цель нашего первоначального исследования состояла в том, чтобы дать представление о том, как изменения в древесном сообществе могут влиять на более высокие трофические организмы, сравнивая метрики сообщества членистоногих, живущих в листве, между мезическими и ксерикическими сообществами деревьев. Таким образом, наша основная цель состояла в том, чтобы количественно членистоногих сообщества на отдельных деревьев, расположенных в ксерик или mesic дерево сообщества. Мы выбрали 22 исследования сайтов вдоль дуба / гикори (ксерика) бука / клена (месик) доминируют градиент с помощью USFS стенд покрытия карты (allveg2008.shp) в ArcGIS 10.1.1. Для предотвращения потенциального запутанных эффектов мы выбрали участки по следующим критериям: не расположенные в районах, где находятся 12 га, а в пределах прилегающей наверху лиственной лесной среды обитания (т.е. высота выше 120 м). Все сайты содержали зрелые деревья, которые были в холмистой местности, таким образом, включали в себя аналогичные склоны и аспекты. В то время как границы бук/кленовые участки были разграничены на основе перехода древесных сообществ, границы участка дуба/гикори были идентифицированы искусственно с помощью карт покрытия SNF и ArcGIS 10.1.1. Все участки были большими лесными блоками в пределах неледниковой местности; их различия в составе видов деревьев не были обусловлены различиями в местоположении ландшафта, а репрезентативными для использования земли в прошлом (например, четкие сокращения или селективный урожай). Мы наземные истины карты, загрузив дискретные полигон shapefiles каждого исследования сайта в портативный Глобальной системы позиционирования (GPS) и проверки состава видов деревьев. Мы случайным образом выбрали точки выборки (n No 5) на каждом участке. В каждой точке, мы взяли пробы трех деревьев от 0600 до 1400 часов в течение 23 мая по 25 июня 2014 года. Чтобы найти образцы деревьев, мы искали наружу в радиусе 30 м от точек растительности, пока зрелые деревья (Зgt;20 см d.b.h.) с ветвями достаточно низким, чтобы образец были найдены. Как правило, три зрелых деревьев, которые представляли три из пяти родов(Acer, Кэря, Фагус, Лириодендрон, и Кверк ),интерес и были ближе всего к центральной точке были отобраны.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>13 gallon garbage bags</td>
			<td>Glad</td>
			<td>78374</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aluminum rod</td>
			<td>Grainger</td>
			<td>48ku20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pruner</td>
			<td>Bartlet arborist supply</td>
			<td>pp-125b-2stick</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Telescoping pole</td>
			<td>BES</td>
			<td>TPF620</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tomato Cage</td>
			<td>Gilbert and Bennet</td>
			<td>42 inch galvanized</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a method for quantifying foliage-dwelling arthropods

Наземные членистоногие играют важную роль в нашей среде. Количественная количественная членистоногие таким образом, что позволяет точно индексировать или оценки плотности требует метод с высокой вероятностью обнаружения и известной области отбора проб. Хотя большинство описанных методов обеспечивают качественную или полуколичественную оценку, достаточную для описания присутствия видов, богатства и разнообразия, лишь немногие обеспечивают достаточно согласованную вероятность обнаружения и известные или последовательные области отбора проб индекс или оценка с достаточной точностью для выявления различий в изобилии по экологическим, пространственным или временным переменным. Мы описываем, как количественно лист-жилище членистоногих путем уплотнения листьев и конца ветвей в мешок, отсечения и замораживания мешков материала, а также промыть ранее замороженный материал в воде, чтобы отделить членистоногих от субстрата и количественно их. Как мы демонстрируем, этот метод может быть использован в ландшафтном масштабе для количественной оценки листообитаемх членистоногих с адекватной точностью для проверки и описания того, как пространственные, временные, экологические и экологические переменные влияют на богатство и изобилие членистоногих. Этот метод позволил нам обнаружить различия в плотности, богатстве и разнообразии листообитаемх членистоногих среди 5 родов деревьев, обычно встречающихся в юго-восточных лиственных лесах.

Мы собрали 626 образцов из 323 отдельных деревьев, составляющих 5 групп деревьев. Для оценки общей биомассы членистоногих на метр отобранной ветви стандартная погрешность колебалась от 12% до 18% от среднего показателя для 5 групп деревьев(таблица 1). Этот уровень то...

Watch this Scientific Journal Video about A Method for Quantifying Foliage-Dwelling Arthropods at JoVE.com

A Method for Quantifying Foliage-Dwelling Arthropods

Мы описываем, как количественно лист жилища членистоногих путем уплотнения листьев и конца ветвей в мешок, отсечения и замораживания мешков материала, а также промыть ранее замороженный материал в воде, чтобы отделить членистоногих от субстрата для количественной оценки.

Метод количественной оценки листвы-обитающих артроподов

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density ...

Основным преимуществом этого протокола является то, что он позволяет исследователям захватывать как летающих, так и ползущих членистоногих из листвы. Хотя мы используем этот метод на деревьях он также может быть использован на кустах и кустарниках. Будьте осторожны, чтобы практиковать мешки ветви быстро, не нарушая листвы так активных членистоногих не избежать захвата.Чтобы начать эту процедуру, используйте болторезы, большие резаки проволоки, или электрический шлифовальный диск, чтобы удалить нижнюю треть 30-сантиметровой проволоки томатной клетке, так что это примерно 55 сантиметров в длину. Затем вырежьте две 50-сантиметровые скобки из алюминиевых труб или аналогично полутвердый материал для использования в качестве крепления стержней и брекетов с каждой стороны самого большого конца томатной клетки. На 38 сантиметров от конца используйте настольный порок или большие цепляющие инструменты, такие как замки каналов, чтобы согнуть скобки под углом примерно 30 градусов.Прикрепите длинный конец каждого стержня крепления к противоположным концам томатной клетки с застежкой-молнией. Используйте либо клейкой лентой или электрической лентой для поддержки этого крепления убедившись, что лента обернута вокруг по крайней мере шесть сантиметров клетки и стержня. Прикрепите другой конец каждого стержня на противоположных сторонах конца удлиняемого полюса с застежкой-молнией связей.Используйте либо клейкой лентой или электрической лентой для поддержки этого крепления убедившись, чтобы обернуть ленту вокруг несколько раз, и что он перекрывает полюс и стержни, по крайней мере шесть сантиметров. Убедитесь, что открытие клетки контакт с концом телескопической полюса, когда клетка прилагается. Затем прикрепите клетку прямо на конец полюса с помощью ленты.Прикрепите крюк и петли крепления полос в двух точках к открытию клетки 90 градусов от ранее прикрепленного полюса. Во-первых, прикрепите два куска крючка и петли крепеж к внешнему открытию сумки так, чтобы они выравниваются с крючком и креплением петли, прикрепленным к открытию клетки. Будьте уверены, что крюк и петля крепления выравнивается так, когда мешок вставляется и прилагается отверстие для тянуть строки мешок работать параллельно телескопической полюса.Вставьте 49-литровый кухонный мешок для мусора в клетку помидоров. Поместите три gator клипы равномерно рассеяны по каждой стороне нижней части сумки и прикрепить клипы как к сумке и проволоки клетке так, что мешок проводится против клетки. Ориентация клипа аллигатора на отверстие мешка так, чтобы он был прикреплен к шнуровку параллельно телескопической полюсу, противоположной расположению вложения полюса.Прикрепите паракорд к шнурку сумки ближе всего к полюсу. Разрежьте четыре куска пластика или твердой резиновой трубки на четырех сантиметрах и прикрепите их в четырех местах клейкой лентой или электрической лентой. Сначала следует разместить на расширяющой части полюса примерно в 0,5 метрах от конца полюса, ближайшего к томатной клетке.Остальные три должны быть размещены равновесие вдоль нижней части простираия, начиная около пяти сантиметров от верхней части нижней части. Нить конца паракорда, который не прилагается к сумке через пластиковые трубки. После этого запуска как паракорд строки вместе через пластиковые трубы вставки, чтобы держать его на месте.Для каждого образца дерева используйте генератор случайных чисел, чтобы выбрать высоту выборки, которая находится в высоте полюса расширения при продлении на максимальной длине. Используйте генератор случайных чисел, чтобы выбрать выборку расстояния от ствола дерева и определить ветку, которая будет поться в сумке с минимальным нарушением листвы. И это надлежащая высота и расстояние от ствола на основе генерируемых чисел.Поднимите полюс выборки на высоту, параллельную с нужной ветвью. Быстро сдвиньте мешок над веткой, а затем быстро потяните паракорд строки, которые прикреплены к шнурки для уплотнения мешок. У второго лица использовать расширение полюса чернослив для клипа филиала в месте, прилегающем к открытию сумки.Затем аккуратно принесите образец мешок на землю и быстро связать шнурки мешок закрыт. Храните мешковатую ветку в морозильной камере до готовности провести лабораторный анализ членистоногих. Держите замороженный мешок и ветвь вертикально и встряхните ветку образца, пока она находится в сумке, чтобы выбить членистоногих в мешок.Аккуратно снимите ветку с мешка и промойте ее в большой кастрюле коллекции, чтобы удалить все оставшиеся членистоногие. Затем опорожните материал, оставшийся в сумке, в кастрюлю для сбора и удалите неистоногий мусор. Разделит членистоногих на желаемые таксономические группы.Замеяв различия между личинками и взрослыми. Количественная оценка членистоногих по желанию. Если биомасса представляет интерес, либо измерить длину членистоногих и использовать опубликованную таблицу длины массы для оценки биомассы.Замените членистоногих в небольших сушильных кастрюлях. Высушите в сушильной духовке в течение 24 часов при температуре 45 градусов по Цельсию и взвесите на электронном балансе. Высушите листья в сушильной печи в течение 48 часов при температуре 45 градусов по Цельсию и взвесите их на электронном балансе.Или измерьте длину всех древесных ветвей в образце. В репрезентативном исследовании, 626 образцов собраны из 323 отдельных деревьев, которые состоят из пяти групп деревьев. Для оценок общей биомассы членистоногих на метр выборки веток стандартная погрешность колеблется от 12% до 18% от среднего для пяти групп деревьев.Этот уровень точности является достаточным для выявления различий между группами деревьев в квадратном изменении биомассы по дате. Этот метод обеспечивает большую точность при оценке разнообразия гильдии, о чем свидетельствует стандартная ошибка разнообразия гильдии членистоногих в диапазоне от 3% до 7% от среднего разнообразия в пяти группах деревьев. Точность на этом уровне достаточна для обнаружения различий между пятью группами деревьев.Точность оценок богатств также очень точна, о чем свидетельствуют стандартные ошибки, которые варьировались от 3% до 7% от среднего уровня богатство среди пяти групп деревьев. Такой уровень точности является достаточным для определения различий между группами деревьев. Квадратная связь с датой, уменьшение богатств с высотой на дереве, и положительная связь между членистоногих богатство и расстояние от ствола дерева.Будьте уверены, что вы приложите ветку быстро, не нарушая листвы, чтобы обеспечить активные членистоногие не избежать захвата.

a-method-for-quantifying-foliage-dwelling-arthropods

Research

JoVE Journal

Environment

A Simple Method for Automated Solid Phase Extraction of Water Samples for Immunological Analysis of Small Pollutants

A new method for solid phase extraction (SPE) of environmental water samples is proposed. The developed prototype is cost-efficient and user friendly, and enables to perform rapid, automated and simple SPE. The pre-concentrated solution is compatible with analysis by immunoassay, with a low organic solvent content. A method is described for the extraction and pre-concentration of natural hormone 17&#946;-estradiol in 100 ml water samples. Reverse phase SPE is performed with octadecyl-silica sorbent and elution is done with 200 &#181;l of methanol 50% v/v. Eluent is diluted by adding di-water to lower the amount of methanol. After preparing manually the SPE column, the overall procedure is performed automatically within 1 hr. At the end of the process, estradiol concentration is measured by using a commercial enzyme-linked immune-sorbent assay (ELISA). 100-fold pre-concentration is achieved and the methanol content in only 10% v/v. Full recoveries of the molecule are achieved with 1 ng/L spiked de-ionized and synthetic sea water samples.

A protocol for the extraction and pre-concentration of estradiol from water samples by using an automated and miniaturized system is presented.

Простой метод Автоматизированная твердофазной экстракции водных образцов для анализа иммунологических малых загрязнителях

A new method for solid phase extraction (SPE) of environmental water samples is proposed. The developed prototype is cost-efficient and user friendly, and ...

Administering and Detecting Protein Marks on Arthropods for Dispersal Research

Monitoring arthropod movement is often required to better understand associated population dynamics, dispersal patterns, host plant preferences, and other ecological interactions. Arthropods are usually tracked in nature by tagging them with a unique mark and then re-collecting them over time and space to determine their dispersal capabilities. In addition to actual physical tags, such as colored dust or paint, various types of proteins have proven very effective for marking arthropods for ecological research. Proteins can be administered internally and/or externally. The proteins can then be detected on recaptured arthropods with a protein-specific enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Here we describe protocols for externally and internally tagging arthropods with protein. Two simple experimental examples are demonstrated: (1) an internal protein mark introduced to an insect by providing a protein-enriched diet and (2) an external protein mark topically applied to an insect using a medical nebulizer. We then relate a step-by-step guide of the sandwich and indirect ELISA methods used to detect protein marks on the insects. In this demonstration, various aspects of the acquisition and detection of protein markers on arthropods for mark-release-recapture, mark-capture, and self-mark-capture types of research are discussed, along with the various ways that the immunomarking procedure has been adapted to suit a wide variety of research objectives.

Proteins are often used to mark arthropods for dispersal research. Methods for administering internal and external protein marks on arthropods are demonstrated. Protein mark detection techniques, either through indirect or sandwich enzyme-linked immunosorbent assays (ELISAs), are also illustrated.

Администрирование и обнаружения меток белка на членистоногих для разгона исследований

Monitoring arthropod movement is often required to better understand associated population dynamics, dispersal patterns, host plant preferences, and other ...

Alternative Method of Removing Otoliths from Sturgeon

Extracting the otoliths (ear bones) from fish that have very thick skulls can be difficult and very time consuming. The common practice of making a transverse vertical incision on the top of the skull with a hand or electrical saw may damage the otolith if not performed correctly. Sturgeons (Acipenseridae) are one family in particular that have a very large and thick skull. A new laboratory method entering the brain cavity from the ventral side of the fish to expose the otoliths was easier than other otolith extraction methods found in the literature. Methods reviewed in the literature are designed for the field and are more efficient at processing large quantities of fish quickly. However, this new technique was designed to be more suited for a laboratory setting when time is not pressing and successful extraction from each specimen is critical. The success of finding and removing otoliths using this technique is very high and does not compromise the structure in any manner. This alternative technique is applicable to other similar fish species for extracting the otoliths.

The goal of the protocol is to show an effective method to extract the otoliths from sturgeon carcasses.

Альтернативный метод удаления Отолиты из осетрины

Extracting the otoliths (ear bones) from fish that have very thick skulls can be difficult and very time consuming. The common practice of making a ...

Modification and Application of a Leaf Blower-vac for Field Sampling of Arthropods

Rice fields host a large diversity of arthropods, but investigating their population dynamics and interactions is challenging. Here we describe the modification and application of a leaf blower-vac for suction sampling of arthropod populations in rice. When used in combination with an enclosure, application of this sampling device provides absolute estimates of the populations of arthropods as numbers per standardized sampling area. The sampling efficiency depends critically on the sampling duration. In a mature rice crop, a two-minute sampling in an enclosure of 0.13 m2 yields more than 90% of the arthropod population. The device also allows sampling of arthropods dwelling on the water surface or the soil in rice paddies, but it is not suitable for sampling fast flying insects, such as predatory Odonata or larger hymenopterous parasitoids. The modified blower-vac is simple to construct, and cheaper and easier to handle than traditional suction sampling devices, such as D-vac. The low cost makes the modified blower-vac also accessible to researchers in developing countries.

Assessment of arthropod abundance in crops is critical for investigating population dynamics and species interactions. Here we describe the modification and application of a leaf blower-vac for suction sampling of arthropods in rice.

Модификация и применение листа Blower-Vac для отбора проб на местах членистоногих

Rice fields host a large diversity of arthropods, but investigating their population dynamics and interactions is challenging. Here we describe the ...

Reliable Method for Assessing Seed Germination, Dormancy, and Mortality under Field Conditions

We describe techniques for approximating seed bank dynamics over time using Helianthus annuus as an example study species. Strips of permeable polyester fabric and glue can be folded and glued to construct a strip of compartments that house seeds and identifying information, while allowing contact with soil leachate, water, microorganisms, and ambient temperature. Strips may be constructed with a wide range of compartment numbers and sizes and allow the researcher to house a variety of genotypes within a single species, different species, or seeds that have experienced different treatments. As opposed to individual seed packets, strips are more easily retrieved as a unit. While replicate packets can be included within a strip, different strips can act as blocks or can be retrieved at different times for observation of seed behavior over time. We used a high temperature glue gun to delineate compartments and sealed the strips once the seed and tags identifying block and removal times were inserted. The seed strips were then buried in the field at the desired depth, with the location marked for later removal. Burrowing animal predators were effectively excluded by use of a covering of metal mesh hardware cloth on the soil surface. After the selected time interval for burial, strips were dug up and seeds were assessed for germination, dormancy and mortality. While clearly dead seeds can often be distinguished from ungerminated living ones by eye, dormant seeds were conclusively identified using a standard Tetrazolium chloride colorimetric test for seed viability.

Here we present a protocol for assessing seed survivorship, germination and dormancy under field conditions using buried, labeled seed strips and tetrazolium chloride (TZ) viability testing.

Надежный метод оценки всхожести семян, пок, и смертности в полевых условиях

We describe techniques for approximating seed bank dynamics over time using Helianthus annuus as an example study species. Strips of permeable polyester ...

Protocols for Quantifying Transferable Pesticide Residues in Turfgrass Systems

Plant canopies in established turfgrass systems can intercept an appreciable amount of sprayed pesticides, which can be transferred through various routes onto humans. For this reason, transferable pesticide residue experiments are required for registration and re-registration by the United States Environmental Protection Agency (USEPA). Although such experiments are required, limited specificity is required pertaining to experimental approach. Experimental approaches used to assess pesticide transfer to humans including hand wiping with cotton gloves, modified California roller (moving a roller of known mass over cotton cloth) and soccer ball roll (ball wrapped with sorbent strip) over three treated turfgrass species (creeping bentgrass, hybrid bermudagrass and tall fescue maintained at 0.4, 5 and 9 cm, respectively) are presented. The modified California roller is the most extensively utilized approach to date, and is best suited for use at low mowing heights due to its reproducibility and large sampling area. The soccer ball roll is a less aggressive transfer approach; however, it mimics a very common occurrence in the most popular international sport, and has many implications for nondietary pesticide exposure from hand-to-mouth contact. Additionally, this approach may be adjusted for other athletic activities with limited modification. Hand wiping is the best approach to transfer pesticides at higher mowing heights, as roller-based approaches can lay blades over; however, it is more subjective due to more variable sampling pressure. Utility of these methods across turfgrass species is presented, and additional considerations to conduct transferable pesticide residue research in turfgrass systems are discussed.

Transferable pesticide residue experiments in turfgrass systems are integral components of human risk exposure assessments. Experimental approaches to measure transferable residues should be adjusted to the human interaction of interest and turfgrass system dynamics. Three transferable pesticide residue protocols are presented and the suitability across three turfgrass systems is discussed.

Протоколы для Количественная переводных остаточным пестицидам в системах Turfgrass

Plant canopies in established turfgrass systems can intercept an appreciable amount of sprayed pesticides, which can be transferred through various routes ...

Development of New Methods for Quantifying Fish Density Using Underwater Stereo-video Tools

The use of video camera systems in ecological studies of fish continues to gain traction as a viable, non-extractive method of measuring fish lengths and estimating fish abundance. We developed and implemented a rotating stereo-video camera tool that covers a full 360 degrees of sampling, which maximizes sampling effort compared to stationary camera tools. A variety of studies have detailed the ability of static, stereo-camera systems to obtain highly accurate and precise measurements of fish; the focus here was on the development of methodological approaches to quantify fish density using rotating camera systems. The first approach was to develop a modification of the metric MaxN, which typically is a conservative count of the minimum number of fish observed on a given camera survey. We redefine MaxN to be the maximum number of fish observed in any given rotation of the camera system. When precautions are taken to avoid double counting, this method for MaxN may more accurately reflect true abundance than that obtained from a fixed camera. Secondly, because stereo-video allows fish to be mapped in three-dimensional space, precise estimates of the distance-from-camera can be obtained for each fish. By using the 95% percentile of the observed distance from camera to establish species-specific areas surveyed, we account for differences in detectability among species while avoiding diluting density estimates by using the maximum distance a species was observed. Accounting for this range of detectability is critical to accurately estimate fish abundances. This methodology will facilitate the integration of rotating stereo-video tools in both applied science and management contexts.

We describe a new method for counting fishes, and estimating relative abundance (MaxN) and fish density using rotating stereo-video camera systems. We also demonstrate how to use distance from camera (Z distance) to estimate species-specific detectability.

Разработка новых методов для количественной оценки плотности рыбы с помощью подводного стерео видео инструменты

The use of video camera systems in ecological studies of fish continues to gain traction as a viable, non-extractive method of measuring fish lengths and ...

A Novel Method for the Pentosan Analysis Present in Jute Biomass and Its Conversion into Sugar Monomers Using Acidic Ionic Liquid

Recently, ionic liquids (ILs) are used for biomass valorization into valuable chemicals because of their remarkable properties such as thermal stability, lower vapor pressure, non-flammability, higher heat capacity, and tunable solubility and acidity. Here, we demonstrate a method for the synthesis of C5 sugars (xylose and arabinose) from the pentosan present in jute biomass in a one-pot process by utilizing a catalytic amount of Br&#248;nsted acidic 1-methyl-3-(3-sulfopropyl)-imidazolium hydrogen sulfate IL. The acidic IL is synthesized in the lab and characterized using NMR spectroscopic techniques for understanding its purity. The various properties of BAIL are measured such as acid strength, thermal and hydrothermal stability, which showed that the catalyst is stable at a higher temperature (250 &#176;C) and possesses very high acid strength (Ho 1.57). The acidic IL converts over 90% of pentosan into sugars and furfural. Hence, the presenting method in this study can also be employed for the evaluation of pentosan concentration in other kinds of lignocellulosic biomass.

We present a protocol for the synthesis of C5 sugars (xylose and arabinose) from a renewable non-edible lignocellulosic biomass (i.e., jute) with the presence of Br&#248;nsted acidic ionic liquids (BAILs) as the catalyst in water. The BAILs catalyst exhibited better catalytic performance than conventional mineral acid catalysts (H2SO4 and HCl).

Новый метод для анализа Пентозанполисульфат в джута биомассы и превращения его в сахар мономеров, с использованием кислой ионные жидкости

Recently, ionic liquids (ILs) are used for biomass valorization into valuable chemicals because of their remarkable properties such as thermal stability, ...

Quantifying Plant Soluble Protein and Digestible Carbohydrate Content, Using Corn (Zea mays) As an Exemplar

Elemental data are commonly used to infer plant quality as a resource to herbivores. However, the ubiquity of carbon in biomolecules, the presence of nitrogen-containing plant defensive compounds, and variation in species-specific correlations between nitrogen and plant protein content all limit the accuracy of these inferences. Additionally, research focused on plant and/or herbivore physiology require a level of accuracy that is not achieved using generalized correlations. The methods presented here offer researchers a clear and rapid protocol for directly measuring plant soluble proteins and digestible carbohydrates, the two plant macronutrients most closely tied to animal physiological performance. The protocols combine well characterized colorimetric assays with optimized plant-specific digestion steps to provide precise and reproducible results. Our analyses of different sweet corn tissues show that these assays have the sensitivity to detect variation in plant soluble protein and digestible carbohydrate content across multiple spatial scales. These include between-plant differences across growing regions and plant species or varieties, as well as within-plant differences in tissue type and even positional differences within the same tissue. Combining soluble protein and digestible carbohydrate content with elemental data also has the potential to provide new opportunities in plant biology to connect plant mineral nutrition with plant physiological processes. These analyses also help generate the soluble protein and digestible carbohydrate data needed to study nutritional ecology, plant-herbivore interactions and food-web dynamics, which will in turn enhance physiology and ecological research.

Quantifying Plant Soluble Protein and Digestible Carbohydrate Content, Using Corn Zea mays As an Exemplar

The protocols described herein provide a clear and approachable methodology for measuring soluble protein and digestible (non-structural) carbohydrate content in plant tissues. The ability to quantify these two plant macronutrients has significant implications for advancing the fields of plant physiology, nutritional ecology, plant-herbivore interactions and food-web ecology.

Количественная оценка завод растворимого белка и усваиваемых углеводов контента, используя кукурузы (Zea mays) как образец

Elemental data are commonly used to infer plant quality as a resource to herbivores. However, the ubiquity of carbon in biomolecules, the presence of ...

Design and Use of an Apparatus for Quantifying Bivalve Suspension Feeding at Sea

As shellfish aquaculture moves from coastal embayments and estuaries to offshore locations, the need to quantify ecosystem interactions of farmed bivalves (i.e., mussels, oysters, and clams) presents new challenges. Quantitative data on the feeding behavior of suspension-feeding mollusks is necessary to determine important ecosystem interactions of offshore shellfish farms, including their carrying capacity, the competition with the zooplankton community, the availability of trophic resources at different depths, and the deposition to the benthos. The biodeposition method is used to quantify feeding variables in suspension-feeding bivalves in a natural setting and represents a more realistic proxy than laboratory experiments. This method, however, relies upon a stable platform to satisfy the requirements that water flow rates supplied to the shellfish remain constant and the bivalves are undisturbed. A flow-through device and process for using the biodeposition method to quantify the feeding of bivalve mollusks were modified from a land-based format for shipboard use by building a two-dimensional gimbal table around the device. Planimeter data reveal a minimal pitch and yaw of the chambers containing the test shellfish despite boat motion, the flow rates within the chambers remain constant, and operators are able to collect the biodeposits (feces and pseudofeces) with sufficient consistency to obtain accurate measurements of the bivalve clearance, filtration, selection, ingestion, rejection, and absorption at offshore shellfish aquaculture sites.

A flow-through device for using the biodeposition method to quantify filtration and feeding behavior of bivalve mollusks was modified for shipboard use. A two-dimensional gimbal table built around the device isolates the apparatus from boat motion, thereby allowing the accurate quantification of bivalve filtration variables at offshore shellfish aquaculture sites.

Дизайн и использование аппарата для количественной оценки двустворчатых подвеска кормления на море

As shellfish aquaculture moves from coastal embayments and estuaries to offshore locations, the need to quantify ecosystem interactions of farmed bivalves ...