Name: silencing the spark: crispr/cas9 genome editing in weakly electric fish
Uploaded: 2019-10-27T14:00:00
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저자들은 모니카 루카스, 캐서린 쇼, 라이언 테일러, 제러드 톰슨, 니콜 로비쇼, 호프 힐리가 물고기 사육, 데이터 수집 및 초기 프로토콜 개발에 도움을 준 영웅적인 노력을 인정한다. 우리는 또한 원고에 대한 그들의 제안에 대한 세 검토자에게 감사드립니다. 우리는 그들의 의견을 해결 한 후 더 나은 품질의 최종 제품을 믿습니다. 이 작품은 국립 과학 재단 #1644965 JRG에 #1455405 지원, 그리고 VLS에 자연 과학 및 공학 연구 위원회 DG 보조금에 의해 지원되었다.

여기에 설명된 모든 방법은 미시간 주립 대학의 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC)에 의해 승인되었습니다.
1. sgRNA 표적 선택
참고: 1.1단계에서 sgRNAs의 수동 설계를 위한 프로토콜이 제공됩니다. 이것은 scn4aa 표적 선택에 이용되었다. EFISHGENOMICS 웹 포털을 사용하여 이러한 프로세스(단계 1.2)를 용이하게 하기 위해 추가 프로토콜이 제?...

약한 전기 물고기의 현상학적 풍요로움은 유전체학 자원의 최근 확산과 함께, 약한 전기 물고기 모델에서 기능적 유전체 도구에 대한 강력한 필요성을 동기를 부여합니다. 이 시스템은 실험실에서 쉽게 보관되는 물고기의 병렬 계보에서 수많은 현상형 특성의 수렴 진화로 인해 특히 매력적입니다.
여기에 설명된 프로토콜은 전기 발생과 전기 수신을 병렬로 진화시킨 약한 전...

전기 수신 및 전기 발생은 척추 동물의 진화 역사에서 변경되었습니다. 텔레오스트 물고기, 골테오그로시포메 및 실리리폼의 두 계보, 병렬로 진화된 전기 수신, 텔레오스트의 다섯 계보(체육관, 모르미리드, 그리고 제네라 아스트로스코푸스, 말라프테루스, 시노돈티스) 병렬로 진화 전기 발생. 이러한 독립적으로 파생된 표현형에는 공통의 유전 아키텍처1,2,3을공유하는 수렴정도가 눈에 띄는 정도이다.
이것은 아마도 가장 좋은 체육관과 mormyrids의 수많은 수렴 기능에 의해 예시, 생산 하 고 약한 전기 물고기 라고 하는 두 종 풍부한 teleost clades, 약한 전기 물고기 라고. 약한 전기 물고기가 주변을 감지하고의사소통하기 위해 전기를 사용하는 발견 이후 50 년 동안, 과학자의 성장 커뮤니티는 개발1,5의 진화에 엄청난 통찰력을 얻고있다 ,6, 시스템 및 회로 신경 과학7,8,9,10,세포 생리학11,12,생태 및 에너지13 ,14,15,16,17, 동작18,19, 및 매크로 진화3,20,21 .
최근에는 전기어류1,22,23,24,25,26, 27,28. 이러한 자원의 사용은 이미 이 종1, 2,3,28,29에서 유전자형과 표현형 사이의 연결에 관한 중요한 통찰력을 생성했습니다. ,30. 유전체학 데이터를 약한 전기 어류의 자형적 데이터와 통합하는 데 큰 장애물은 기능성 유전체학도구(31)의현재 부족이다.
이러한 도구 중 하나는 Cas9 엔도너첼리스(CRISPR/Cas9, CRISPR) 기법과 결합된 최근 개발된 클러스터된 정규 간격 짧은 Palindromic 반복입니다. CRISPR/Cas9는 모델32,33,34 및 비모델 유기체35,36,37 모두에서 광범위하게 사용되었던 게놈 편집 도구입니다. CRISPR/Cas9 기술은 비복제 방법38을사용하여 저렴한 비용으로 기본 분자 생물학이 가능한 실험실에서 짧은 가이드 RNA(sgRNAs)라고 불리는 유전자 특이적 프로브를 쉽게 생성할 수 있는 지점으로 발전했습니다. CRISPR은 모폴리노스39,40,전사 활성제 와 같은 이펙터 뉴클레아제(TALENs) 및 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN)와 같은 다른 녹아웃/녹다운 전략에 비해 비용이 많이 들고 모든 표적 유전자를 생성하는 데 시간이 많이 걸립니다.
CRISPR/Cas9 시스템은 sgRNA 서열에 의해 지시된 게놈의 특정 영역을 표적으로 하고, 이중 가닥 중단을 일으키는 원인이 되어 유전자 녹아웃을 생성하기 위하여 기능합니다. 이중 가닥 휴식은 세포에 의해 검출되고 비상동종 종단 접합(NHEJ) 경로를 우선적으로 사용하여 내인성 DNA 복구 메커니즘을 유발합니다. 이 통로는 높게 오류가 발생하기 쉽습니다: 복구 프로세스 도중, DNA 분자는 수시로 이중 좌초 된 중단 사이트에 삽입 또는 삭제 (indels)를 통합할 것입니다. 이러한 인델은 (1) 개방 판독 프레임의 이동, (2) 조기 정지 코돈의 삽입, 또는 (3) 유전자 생성물의 중요한 1차 구조의 이동으로 인해 기능의 손실을 초래할 수 있다. 이 프로토콜에서는, 우리는 약한 전기 물고기 종에 있는 NHEJ를 사용하여 표적 유전자에 있는 표적 점 돌연변이를 표적으로 하기 위하여 CRISPR/Cas9 편집을 이용합니다. 다른 기술보다 간단하고 효율적이지만, 돌연변이 발생의이 방법은 유전 모자이크41,42,43에 기인하는 F 0에서 현상형 경건의 범위를 초래할 것으로 예상된다 ,44.
유기체의 선택 약한 전기 물고기의 비교 유전체학에 대한 미래 연구를 촉진하기 위해 프로토콜 개발을위한 체육관 및 mormyrids 모두에 대한 대표적인 종을 선택해야합니다. 우루과이 몬테비데오에서 열린 2016 년 전기 물고기 회의에서 논의 한 후, 이미 실험실에서 사육 될 수있는 종을 활용하고 유전체 자원을 사용할 수있는 종을 활용하기 위한 지역 사회의 합의가 있었습니다. 체육관 브라키하이포무스 가우디오와 모르미리드 브리노미러스 브라키시스티우스는 이러한 기준에 맞는 종으로 선정되었다. 두 종 모두에서 번식 조건을 유도하고 유지하는 자연 신호는 포로로 모방하기 쉽습니다. B. gauderio,남미에서 체육관 종, 낮은 축산 요구 사항의 장점을 가지고 : 물고기는 상대적으로 작은 (4 L) 탱크에서 상대적으로 높은 밀도로 유지 될 수있다. B. gauderio는 또한 포로 조건하에서 빠른 세대 회전율을 가지고있습니다. 실험실 조건에서, B. gauderio 약에 계란에서 성인으로 개발할 수 있습니다 4 개월.
B. brachyistius, 서중앙 아프리카에서 모미리드 물고기의 종, 포로에서 쉽게 품종. B. brachyistius는 수족관 무역을 통해 쉽게 사용할 수 있으며, 많은 연구에서 널리 사용되어 왔으며, 현재 는 다수의 유전체 자원을 사용할 수 있습니다. 그들의 수명 주기는 실험실 조건에 따라 1-3 년 동안 지속됩니다. 축산 요구 사항은 이 종에 대해 다소 더 집중적이며, 사육 중 침략으로 인해 적당한 크기의 탱크 (50−100 L)가 필요합니다.
전기 물고기의 그밖 종을 공부하는 실험실은 종을 사육할 수 있는 한 이 프로토콜을 쉽게 적응할 수 있어야 하고, 단세포 배아는 성인으로 집합되고 양육될 수 있습니다. 주택, 애벌레 축산, 체외 수정 (IVF) 비율은 가능성이 다른 종으로 변경됩니다; 그러나,이 프로토콜은 다른 약한 전기 물고기의 번식 시도를위한 출발점으로 사용할 수 있습니다.
개념 증명을 위한 이상적인 유전자 표적: scn4aa 약한 전기 mormyrid 및 체육관 물고기는 전기 기관이라고 하는 특수 기관을 방전해서 전기장 (전기 발생)을 생성합니다. 전기 기관 방전 (EODs)는 전기 세포라는 전기 기관 세포에서 활동 전위가 동시에 생성되어 발생합니다. EOD는 물고기의 주변의 고해상도 전기 이미지를 만들기 위해 피부에 전기 수용체의 배열에 의해검출된다 45. 약한 전기 물고기는 또한 그들의 conspecifics의 EOD 파형의 기능을 감지 할 수 있습니다18 뿐만 아니라 그들의 방전 속도46,EOD는 새소리 또는 개구리와 유사한 소셜 통신 신호로 추가로 작동 할 수 있도록 발성47.
모르마이리드와 체육관의 전위 전위 생성의 주요 구성 요소는 전압 게이트 나트륨 채널 NaV1.42입니다. 비전기 텔레오스스트는 전압 게이트 나트륨 채널 NaV1.430에대한 코딩, 두 개의 paralogous 유전자 사본을 표현, scn4aa 및 scn4ab. 체육관에서 약하게 전기 물고기 혈통 모두에서, scn4aa는 급속하게 진화하고 그것의 운동 특성에 영향을 미치는 수많은 아미노산 치환을 겪었다48. 가장 중요한 것은, scn4aa는 전기 기관2,3에두 계보에서 구획화되고있다. 전기 기관에 scn4aa의 상대적으로 제한 된 발현, 뿐만 아니라 EODs의 생성에 그것의 중요 한 역할, 그것은 CRISPR/Cas9 녹아웃 실험에 대 한 이상적인 대상, 그것은 최소한의 해로운 pleiotropic 효과. 약한 전기 물고기는 그들의 애벌레 전기 기관을 배출 하기 시작 하기 때문에 6-8 일 후 수정 (DPF), scn4aaa의 타겟팅은 이상적으로 배아 미세 주입 다음 빠른 자형질에 적합.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>20 mg/mL RNA grade Glycogen</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>R0551</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 bp DNA ladder</td>
			<td>NEB</td>
			<td>N3236L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>borosilicate glass capillary with filament</td>
			<td>Sutter Instrument</td>
			<td>BF100-58-10</td>
			<td>(O.D. 1.0mm, I.D. 0.58 mm, 10 cm length)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cas9 protein with NLS; 1 mg/mL</td>
			<td>PNA Biology</td>
			<td>CP01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dneasy Blood &#38; Tissue Kit</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>69506</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eppendorf FemptoJet 4i Microinjector</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>E5252000021</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eppendorf Microloader Pipette Tips</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>10289651</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hamilton syringe</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-824-654</td>
			<td>referred to as &#34;precision glass syringe&#34; in the protocol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kimwipe</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>06-666</td>
			<td>referred to as &#34;delicate task wipe&#34; in the protocol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MEGAscript T7 Transcription Kit</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>AM1334</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NEBuffer 3</td>
			<td>NEB</td>
			<td>B7003S</td>
			<td>used for in vitro cleavage assay</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OneTaq DNA kit</td>
			<td>NEB</td>
			<td>M0480L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ovaprim</td>
			<td>Syndel USA</td>
			<td>https://www.syndel.com/ovaprim-ovammmlu010.html</td>
			<td>referred to as &#34;spawning agent&#34; in the protocol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>S37440</td>
			<td>referred to as &#34;thermoplastic&#34; in the protocol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette puller</td>
			<td>WPI</td>
			<td>SU-P97</td>
			<td>sutter brand</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>QIAquick PCR Purification Kit</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>28106</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reusable needle- requires customization</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>7803-02</td>
			<td>Customize to 0.7 inches long; point style 4 and angle 25</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T4 DNA polymerase</td>
			<td>NEB</td>
			<td>M0203L</td>
			<td>Use with the 10X NEB buffer that is included</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Teflon coated tools</td>
			<td>bonefolder.com</td>
			<td>T-SPATULA4PIECE</td>
			<td>referred to as &#34;polytetrafluoroethene&#34; in the protocol</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

silencing the spark: crispr/cas9 genome editing in weakly electric fish

전기 수신 및 전기 발생은 척추 동물의 진화 역사에서 변경되었습니다. 일반적인 유전 아키텍처를 공유하는 이 독립적으로 파생된 표현형에는 수렴의 현저한 정도가 있습니다. 이것은 아마도 가장 좋은 체육관과 mormyrids의 수많은 수렴 기능에 의해 예시, 생산 하 고 약한 전기 물고기 라고 하는 두 종 풍부한 teleost clades. 약한 전기 물고기가 주변 을 감지하고 의사 소통하기 위해 전기를 사용하는 발견 이후 50 년 동안, 과학자의 성장 커뮤니티는 개발, 시스템 및 회로 신경 과학의 진화에 엄청난 통찰력을 얻고있다, 세포 생리학, 생태학, 진화 생물학 및 행동. 최근에는 전기 어류에 대한 게놈 자원이 확산되고 있습니다. 이 자원의 사용은 이미 이 종에 있는 유전자형과 표현형 사이 연결에 관하여 중요한 통찰력을 촉진했습니다. 유전체학 데이터를 약한 전기 어류의 자형적 데이터와 통합하는 데 큰 장애물은 기능성 유전체학 도구가 부족하다는 것입니다. 우리는 약한 전기 물고기에 있는 내인성 DNA 복구 기계장치를 이용하는 CRISPR/Cas9 돌연변이 발생을 능력을 발휘하기 위한 가득 차있는 프로토콜을 여기에서 보고합니다. 우리는 이 프로토콜이 CRISPR/Cas9를 사용하여 인델과 포인트 돌연변이를 표적으로 하여 모미리드 종 브리아노미러스 brachyistius와 체육관 브라키하이포무스 고데리오 모두에서 동등하게 효과적이라는 것을 입증합니다. 나트륨 채널 유전자 scn4aa. 이 프로토콜을 사용하여, 두 종으로부터의 배아를 수득하고 유전자형화하여 나트륨 채널 scn4aa의 제1 엑소에서 예측된 돌연변이가 존재했다는 것을 확인하였다. 녹아웃 성공 표현형은 주입되지 않은 크기 일치 대조군과 비교할 때 감소된 전기 기관 방전 진폭을 보여주는 기록으로 확인되었다.

sgRNA 표적 부위는 섹션 1에 기재된 바와 같이 B. gauderio 및 B. brachyistius 둘 다에서 scn4aa의 엑톤 1 내에서 확인되었다. sgRNAs는 섹션 2에 기재된 바와 같이 생성되었다. 성공적인 sgRNA 선택 및합성(도 1)에이어, 시험관내 절단을 시험하였다(도2). 시험관내 절단을 시나는 sgRNAs는 그 후 단일 세포 미세 주사를 위해 선택되었다.
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Silencing the Spark: CRISPR/Cas9 Genome Editing in Weakly Electric Fish

여기서, CRISPR/Cas9 게놈 녹아웃 전기 물고기를 생산하고 후방에 프로토콜이 제시된다. 상세히 설명된 것은 체육관 및 모르미리드 모두에 필요한 분자 생물학, 사육 및 축산 요구 사항, 및 Cas9-유도 인델 F0 애벌레를 생산하는 주입 기술이다.

불꽃을 침묵 : 약한 전기 물고기에서 CRISPR / Cas9 게놈 편집

Electroreception and electrogenesis have changed in the evolutionary history of vertebrates. There is a striking degree of convergence in these ...

CRISPR/Cas9 유전자 편집 약한 전기 물고기에, 특히 비교 맥락에서, 특정 유전자와 유전 적 분산 이 현상 변이에 기여하는 방법에 대한 가설을 테스트 하는 연구원을 가능하게 할 것 이다. CRISPR/Cas9는 돌연변이 F-제로 배아를 생성하는 효율적인 방법입니다. 이 프로토콜은 연구원이 약하게 전기 물고기의 두 수렴 진화 종에서 CRISPR-Cas9 조작을 수행 할 수 있습니다.다른 전기 물고기 또는 다른 물고기 종의 몇 가지 수정과 함께이 접근 방식을 사용하는 열쇠는 sgRNAs를 만들기 위해 전사 또는 유전체 자원의 가용성입니다. 2D 평면 내의 3D 위치에서 미세 주입을 수행하고 세포를 시각화하는 것은 어려울 수 있습니다. 일반적인 미세 주입 기술을 연습하기 위해 계란에 대한 작은 제브라피시 식민지를 가져옵니다.사바스 콘스탄티노우와 함께 절차를 시연하는 것은 제러드 톰슨, 내 실험실에서 기술자가 될 것입니다. 적절한 번식 조건하에서 관심있는 물고기 종을 수용 한 후, 중력으로 보이는 암컷 물고기를 식별합니다. B.gauderio에서 암컷은 통풍구에 소달이 부어 있을 것입니다.B.brachyistius 에서 여성은 부어 배를 가지고 깊은 몸을 나타납니다. 마취 투여 후, 철저한 혼합과 PCR 튜브에 DPBS의 4 배에 산란제를 추가합니다. 솔루션은 흐리게 됩니다.파이펫을 사용하여 계산된 용량을 측정하고 28게이지 19~25밀리리터 길이의 beveled 바늘이 장착된 정밀 유리 주사기로 용액을 그리기 전에 희석된 제를 열가소성 플라스틱 조각에 분배합니다. 부드러운 속도로 등대 트렁크 근육에 용액을 주입하고 바늘이 제거하기 전에 2 ~ 4 초 동안 앉아 보자. 그런 다음 즉시 물고기를 신선한 시스템 물에 넣고 복구하십시오.B.gauderio 정자 수집의 경우, 24 시간 후, 큰 수컷 물고기를 선택하고 퇴학 후 가능한 한 빨리, 특히 머리와 통풍구 주위에 철저하게 물고기를 건조. 말린 생선 복부면을 왼쪽에 앞쪽으로 올려 놓고, MS222에 담근 축축한 종이 타월로 덮여 있어 머리를 테이블과 평행하게 맞설 수 있습니다. 즉시 통풍구쪽으로 곤드를 통해 즉시 빛을 압박하고 팁마이크로 파이프터를 사용하여, 신중하게 50 마이크로 리터 단위로 남성에서 압착으로 정자를 수집으로 장밋방향으로 코달에 압력을 적용합니다.얼음에 정자 익스텐더 솔루션의 500 마이크로 리터 볼륨에 직접 정자의 알리쿼트추가. 컬렉션 직후, 생선을 점액 코트 보호 상품처리 담수에 넣습니다. B.gauderio 계란 컬렉션의 경우, 마취 된 B.gauderio 암컷 물고기를 건조 한 후 즉시 머리가 지배적 인 손을 향한 측면으로 물고기를 놓고 코달에 압력을 가하여 곤나드를 통해 중간으로 압착하여 곤나드를 향해 간장을 맞습니다.폴리테트라플루오로틸렌 도구를 사용하여 클로카에서 압착되는 계란을 조심스럽게 수집하고 계란을 덮은 작은 페트리 접시에 빠르게 놓습니다. 압착 후 혼자 작업하는 경우, 그들은 여성에서 추방으로 작은 페트리 접시의 기지에 계란 질량을 터치합니다. 계란을 수집 한 직후, 슬라임 코트 보호 제품 처리 신선한 시스템 물에 물고기를 배치합니다.B.gauderio 체외 수정의 경우 잘 혼합 된 정자 SES 용액 100 마이크로 리터를 계란 질량 에 직접 넣고 담근 시스템 물 1 밀리리터를 넣습니다. 게임테 서스펜션을 30~60초 동안 철저히 섞은 후 0.22마이크로미터 의 모공 여과 시스템 물을 추가로 추가합니다. 시험관 내 수정 시간으로 접시에 라벨을 지정하고 29도 섭씨 인큐베이터에 접시를 배치하여 개발 진행 상황을 확인하기 위해 50 분 타이머를 설정합니다.수정 기간 동안 마이크로 로더 파이펫 팁을 사용하여 관심있는 주입 용액의 두 마이크로 리터를 마이크로 주입 바늘에 역으로 내리고 가능한 한 팁에 가까운 액체를 추방하십시오. 단일 세포가 적어도 하나의 세포의 동물 극에서 형성되면, 해부 현미경으로 접시를 옮기고 바늘의 테이퍼가 강성을 입증하기 시작하는 곳을 향해 경부 각도로 바늘 끝을 깰 미세 집게 쌍을 사용합니다. 바늘의 구멍은 단단한 테이퍼를 유지하면서 가능한 한 작게 유지되어야합니다.현미경의 밑에 개발 zygotes를 확인하고 페트리 접시의 반전 상단에 설정 유리 현미경 슬라이드의 가장자리에 가능한 한 작은 물에 10 ~ 20 계란을 배치 절단 팁 플라스틱 전송 파이펫을 사용합니다. 섬세한 작업 닦아, 부드럽게 계란슬라이드의 가장자리에 단단히 부착 할 수 있도록 여분의 물을 제거하기 위해 슬라이드를 누릅니다. 물은 슬라이드 아래에 사악하고 가장자리에 계란을 당깁니다.주사 중 계란의 움직임을 피하기 위해 약간의 서 수분을 유지하면서 계란을 촉촉하게 유지하기에 충분한 물이 있어야합니다. 접근 바늘에 수직으로 슬라이드에 계란을 정렬하고, 초리온에 바늘을 배치하기 위해 미세 조작기를 사용합니다. 그런 다음 바늘을 약 45도 각도로 잡고 먼저 초리온에 팁을 삽입한 다음 단일 세포에 삽입하여 가능하면 노른자를 통해 주입합니다.미세 한 집게주입 하는 동안 깨진 계란을 제거 합니다. 모든 계란을 주입한 경우, 0.22 마이크로미터 모공 여과 시스템 물의 분출 병을 사용하여 주입 단계에서 계란을 새로운 100mm 직경페트리 접시로 부드럽게 씻어냅니다. 성공적인 짧은 가이드 RNA 선택 및 합성에 따라, 체외 분열은 단세포 미세 주입을 위한 선택을 위해 시험될 수 있습니다.PCR 정화 및 복제 후, 본 대표적인 실험에서 CRISPR-Cas9 유도돌연변이는 강력한 전기 기관 방전 진폭 감소를 가진 개별 B.gauderio 및 B.brachyistius 클론에서 확인되었으며, 주입되지 않은 제어는 참조된 유전자형만 표시하였다. 확인된 CRISPR 돌연변이체와 에이전트 크기 사이의 전기 기관 방전 진폭의 시각화는 SCN-4 AA 돌연변이 B.brachyistius 와 B.gauderio 배아 모두 대조군보다 전기 기관 방전 진폭이 현저히 낮았다는 것을 입증했습니다. 마이크로 주사를 수행할 때 생존하는 단일 세포 주입 배아의 수를 최대화하기 위해 가능한 한 신속하고 의도적으로 움직입니다.어려운 계란으로 시간을 낭비하지 마십시오. 성공적인 돌연변이가 확인되면 전통적인 사육 방법은 CRSPR 관련 모자이크 문제를 제거하는 안정적인 돌연변이 선을 만들 수 있습니다. 이 프로토콜은 연구원이 약한 전기 물고기의 두 수렴 된 종에서 기능 검증과 비교 게놈 연구를 수행 할 수 있습니다.

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