Name: induction of complete transection-type spinal cord injury in mice
Uploaded: 2020-05-06T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice at JoVE.com

Dette arbeidet ble støttet av et Griffith University International Student (PhD) stipend til RR, en Perry Cross Foundation Grant til JE og JSJ, en Clem Jones Foundation Grant til JSJ og JE, og en Motor Accident Insurance Commission of Queensland stipend til JSJ og JE.

Alle prosedyrer ble utført med godkjenning av Griffith University Animal Ethics Committee (ESK/04/16 AEC og MSC/04/18 AEC) i henhold til retningslinjene til National Health and Medical Research Council of Australia.
1. Prosedyre for dyreforsøk for operasjonen
<ol><li>Bedøve og stabilisere dyret.<ol>
<li>Bruk 8–10 uker gamle kvinnelige C57BL/6 mus. Bruk 5 % isofluran i 1 l/min oksygen til induksjon av anestesi. For vedlikehold av anestesi, bruk 1,5–2 % isofluran i 1 l/min oksygen. Bekr...

<ol>
	<li>Sharif-Alhoseini, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+spinal+cord+injury:+a+systematic+review.">Animal models of spinal cord injury: a systematic review.</a> Spinal Cord. 55 (8), 714-721 (2017).</li><li>Lee, D. H., Lee, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+axon+regeneration+after+spinal+cord+injury.">Animal models of axon regeneration after spinal cord injury.</a> Neuroscience Bulletin. 29 (4), 436-444 (2013).</li><li>Sharif-Alhoseini, M., Rahimi-Movaghar, V., Dionyssiotis, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Topics in Paraplegia. , (2014).</li><li>Talac, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+spinal+cord+injury+for+evaluation+of+tissue+engineering+treatment+strategies.">Animal models of spinal cord injury for evaluation of tissue engineering treatment strategies.</a> Biomaterials. 25 (9), 1505-1510 (2004).</li><li>Nakae, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+animal+model+of+spinal+cord+injury+as+an+experimental+pain+model.">The animal model of spinal cord injury as an experimental pain model.</a> Journal of Biomedicine &amp; Biotechnology. 2011, 939023 (2011).</li><li>Kwon, B., Oxland, T., Tetzlaff, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+used+in+spinal+cord+regeneration+research.">Animal models used in spinal cord regeneration research.</a> Spine. 27, 1504-1510 (2002).</li><li>Kundi, S., Bicknell, R., Ahmed, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spinal+cord+injury:+current+mammalian+models.">Spinal cord injury: current mammalian models.</a> American Journal of Neuroscience. (4), 1-12 (2013).</li><li>Harrison, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vertebral+landmarks+for+the+identification+of+spinal+cord+segments+in+the+mouse.">Vertebral landmarks for the identification of spinal cord segments in the mouse.</a> Neuroimage. 68, 22-29 (2013).</li><li>Basso, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Basso+Mouse+Scale+for+locomotion+detects+differences+in+recovery+after+spinal+cord+injury+in+five+common+mouse+strains.">Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains.</a> Journal of Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).</li><li>Seitz, A., Aglow, E., Heber-Katz, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recovery+from+spinal+cord+injury:+a+new+transection+model+in+the+C57Bl/6+mouse.">Recovery from spinal cord injury: a new transection model in the C57Bl/6 mouse.</a> Journal of Neuroscience Research. 67 (3), 337-345 (2002).</li></ol>

Denne metoden induserer en fullstendig transeksjonstypeskade på T10 vertebralnivå hos mus, noe som resulterer i fullstendig paraplegi av dyret, under skadenivået. Samlet sett resulterer denne metoden i minimal blødning, ubetydelig sikkerhet skade og en stabil, reproduserbar skade. Sammenlignet med tidligere publiserte metoder for transeksjon uten laminektomi10, tilbyr denne metoden fordelene når det gjelder direkte visualisering uten å manipulere krumningen i ryggraden, bedre kontroll over f...

Ryggmargsskade (SCI) er et komplekst medisinsk problem som resulterer i drastiske endringer i helse og livsstil. Det er ingen kur for SCI, og patofysiologien til SCI er ikke grundig forstått. Animal SCI-modeller, spesielt gnagermodeller, tilbyr et uvurderlig verktøy for å prøve nye behandlinger, og har blitt brukt til å utforske SCI i flere tiår. Hittil har over 72% av prekliniske SCI-studier ansatt rottemodeller, sammenlignet med bare 16% som har brukt mus1. Selv om rotter, på grunn av deres større størrelse og tendens til å danne hulrom beslektet med menneskelige SCIer, tradisjonelt har vært den foretrukne modellen dyr for å studere nye terapeutiske tilnærminger, mus (inkludert mange transgene musemodeller) blir nå brukt oftere for å studere cellulære ogmolekylære mekanismeri SCI 2 . Musemodellen gir ekstra fordeler når det gjelder enklere håndtering, raskere reproduktive priser og lavere kostnader enn rotter; mus viser også en høy grad av genomisk likhet med mennesker1,2,3. Den største ulempen med musemodellen har blitt identifisert som den betydelig mindre størrelsen som skaper utfordringer for kirurgiske inngrep for å skape og behandle ryggmargsskader4,5.
Det er et gap i den eksisterende litteraturen som understreker behovet for en robust og reproduserbar kirurgisk protokoll for å indusere stabil SCI i musemodellen. Derfor gir vi en ny og presis kirurgisk tilnærming i denne protokollen for å overvinne disse begrensningene. Denne protokollen gir dyptgående retningslinjer for å indusere en transeksjon-type skade hos mus, da denne skadetypen har blitt anerkjent for å være den mest hensiktsmessige å studere regenerative og degenerative endringer etter en skade6, samt nevroplastisitet, nevrale kretser og vevsteknikk tilnærminger7. Vi har valgt å indusere skaden i den nedre thoraxregionen, siden thoraxnivå SCI brukes oftest i litteraturen1.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1037px;" width="1036">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Baytril injectable 50 mg/mL, 50 mL</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">BAYT I</td>
			<td style="width:184px;">Post-operative care drug</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Betadine 500 mL</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">BETA AS</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Castroviejo needle holder, locking</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">T149C</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:21px;width:449px;">Ceramic zirconia blade, round with sharp sides, single edge, angled</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">TXD101A-X</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Cotton swabs (5pcs)</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">21-893</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Dremel Micro</td>
			<td style="width:243px;">DREMEL</td>
			<td style="width:161px;">8050-N/18</td>
			<td>Cordless rotary tool</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:21px;width:449px;">Dressing forceps fine</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">06-306</td>
			<td>Single use disposable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Drill bits</td>
			<td style="width:243px;">Kemmer Pr&#228;zision</td>
			<td style="width:161px;">SM 32 M 0550 070</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Dumont #7b forceps</td>
			<td style="width:243px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:161px;">11270-20</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Dumont tweezers, style 5</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">T05-822</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Fur trimmer</td>
			<td style="width:243px;">WAHL</td>
			<td style="width:161px;">WA9884-312</td>
			<td>Zero Overlap Hair Trimmer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Iris scissors, Ti, sharp tips, straight, 90mm</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">TY-3032</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Isoflurane isothesia NXT 250</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">ISOF 00 HS</td>
			<td>Anaesthetic agent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Colibri Retractor - 4cm</td>
			<td style="width:243px;">Fine Science Tools</td>
			<td>17000-04</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Scalpel handle</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">T133</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Signature latex surgical gloves size 7.5</td>
			<td style="width:243px;">Medline</td>
			<td style="width:161px;">MSG5475</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Sodium Chloride 0.9%</td>
			<td style="width:243px;">STS</td>
			<td>PHA19042005</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Sterile Dressing Pack</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">08-709</td>
			<td>Single use disposable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Sterile Fluid Impervious Drape 60x60 cm</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">29-220</td>
			<td>Single use disposable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Surgical spirit 100 mL</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;"># SURG SP</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Suture Material - SILK BLK 45CM 5/0 FS-2</td>
			<td style="width:243px;">Johnson &#38; Johnson Medical</td>
			<td style="width:161px;">682G</td>
			<td>Silk Suture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Suture Material - Vicryl 70CM 5-0 S/A FS-2</td>
			<td style="width:243px;">Johnson &#38; Johnson Medical</td>
			<td style="width:161px;">VCP421H</td>
			<td>Vicryl Suture</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:449px;">Temgesic 0.3 mg in 1 mL, x 5 ampoules (class S8 drug)</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">TEMG I</td>
			<td>Post-operative care drug</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

induction of complete transection-type spinal cord injury in mice

Ryggmargsskade (SCI) fører i stor grad til irreversibel og permanent tap av funksjon, oftest som følge av traumer. Flere behandlingstilbud, som celletransplantasjonsmetoder, undersøkes for å overvinne de ødeleggende funksjonshemningene som oppstår fra SCI. De fleste prekliniske dyrestudier utføres i gnagermodeller av SCI. Mens rottemodeller av SCI har blitt mye brukt, har musemodeller fått mindre oppmerksomhet, selv om musemodeller kan ha betydelige fordeler fremfor rottemodeller. Den lille størrelsen på mus tilsvarer lavere vedlikeholdskostnader for dyr enn for rotter, og tilgjengeligheten av mange transgene musemodeller er en fordel for mange typer studier. Indusere repeterbar og presis skade hos dyrene er den primære utfordringen for SCI forskning, som i små gnagere krever høy presisjon kirurgi. Transeksjonstypeskademodellen har vært en vanlig skadetamodell det siste tiåret for transplantasjonsbasert terapeutisk forskning, men en standardisert metode for å indusere en fullstendig transeksjonstypeskade hos mus eksisterer ikke. Vi har utviklet en kirurgisk protokoll for å indusere en fullstendig transeksjonstypeskade hos C57BL/6-mus på thorax vertebral nivå 10 (T10). Prosedyren bruker en liten spiss drill i stedet for rongeurs å nøyaktig fjerne lamina, hvorav et tynt blad med avrundet cutting edge brukes til å indusere ryggmargen transeksjon. Denne metoden fører til reproduserbar transeksjonstypeskade hos små gnagere med minimal sikkerhet muskel- og beinskade og minimerer derfor forvirrende faktorer, spesielt der atferdsmessige funksjonelle resultater analyseres.

Den resulterende metoden som avbildet i figur 1, innebærer tilstrekkelig stabilisering av musen (figur 1A) og god visualisering av ryggraden og paraspinous vev (Figur 1B). Spinøs prosess og laminae kan tydelig visualiseres med minimal muskelspisseksjon og blodtap (figur 1C, uthevet sone). Boringen av finspiss utføres som vist i figur 1D, for å lage et laminektomivindu s...

Watch this Scientific Journal Video about Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice at JoVE.com

Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice

Denne protokollen beskriver hvordan man lager en presis laminektomi for induksjon av stabil transeksjonstype ryggmargsskade i musemodellen, med minimal sikkerhet skade for ryggmargsskade forskning.

Induksjon av fullstendig transeksjon-type ryggmargsskade hos mus

Spinal cord injury (SCI) largely leads to irreversible and permanent loss of function, most commonly as a result of trauma. Several treatment options, ...

Denne protokollen gir en presis, kirurgisk kontrollert skade for å indusere en full ryggmargstranseksjon hos mus med høy reproduserbarhet og svært høye overlevelsesrater. Bruken av en fin drill for beinskaden minimerer skaden på det omkringliggende vevet, slik at skade- og behandlingsresponsene kan modelleres med mer nøyaktighet. For å utføre en laminektomi, etter å ha bekreftet mangel på respons på pedalrefleks i en bedøvet åtte til 10 uker gammel kvinnelig C57 svart 6-mus, barber ryggpelsen for å eksponere det kirurgiske området over ryggryggraden og sterilisere det barberte området med sterile bomullspinner gjennomvåt i povidone jod antiseptisk væske og kirurgisk ånd.Ved hjelp av en skalpell, gjør et vertikalt midtlinjet snitt på T10 vertebral nivå og bruk rette tang for å løfte huden fra den underliggende fascia for å lette tilbaketrekkingsplasseringen. For å utsette ryggradene i T9 gjennom T11 ryggvirvler, bruk den stumpe kanten av skalpellen til å lage et lite midtlinjet snitt i det subkutane vevet og underliggende fascia og bruk fine spisser ikke-skarpe tang for å stumpe dissekere og reflektere fascia. For å utsette laminae, bruk den stumpe spissen av skalpellen til å dele ryggstammen og paraspinous muskler langs ryggradene i T9 gjennom T11 ryggvirvler og bruk de stumpe fine spissene til å stumpe dissekere musklene i lag for å avsløre laminae av ryggvirvlene.Bruk de samme tangene til å lage små lommer rundt de tverrgående prosessene til T10 vertebra og hekte stikkene på de buede tangene under de tverrgående prosessene i de opprettede lommene for å stabilisere T10 vertebral kroppen. Skyll T10-laminaet grundig med varm saltvann og bruk bomullspinner til å forsiktig tørke den benete overflaten ren, og vær forsiktig så du på at ingen muskel- eller ligamenttilbehør forblir langs den bilaterale overflaten. For å bryte laminae bilateralt, bruk en 0,55 millimeter diameter, syv millimeter lengde borkrone tips for å spore en vertikal bane fra T9 / T10 intervertebral plass til T10 / T11 intervertebral plass langs både T10 laminae med drill av.Når stien er sporet, slå på boret og sakte og forsiktig lage en vertikal grøft på høyre lamina av T10 vertebra, ved hjelp av de buede tang for å holde vertebra stabil. Etter å ha gjentatt prosessen på venstre side av lamina, vanne vevet med varm saltvann for å vaske bort eventuelle gjenværende beinfragmenter. Å opprettholde et godt grep på ryggraden med den ene hånden er avgjørende for dette trinnet.Det er også viktig å bli komfortabel og trygg med å bruke boret. Deretter bruker du de vinklede fine spisstippene til å gripe tak i den spinøse prosessen og fjerne hele dorsalsegmentet av laminae atskilt av den bilaterale boringen. Deretter vanne og vattpinne etter behov for å tillate en klar visualisering av ryggmargen i laminektomivinduet.For å indusere ryggmargsskaden i den eksponerte ledningen, bruk et smalt, rundt skjærekantet blad til å skjære ledningen i midten av laminektomivinduet, og vær forsiktig med å feie de laterale fordypningene i ryggsøylen for å indusere en fullstendig transeksjonsskade. For å bekrefte fullstendigheten av transeksjonsskaden, bruk de stumpe fine spisstippene til å fjerne eventuelle gjenværende tilkoblinger på transeksjonsstedet. Når hemostase er oppnådd på transeksjonsstedet, slipp den buede forceps grep på T10 vertebra og bringe kantene av dissekerte musklene sammen langs midtlinjen for å oppnå god apposition.Bruk 5/0 polyglactin 910 absorberbare suturer, sutur musklene i lag, og sørg for at den naturlige krumningen i ryggraden ikke forårsaker noen spenning på suturlinjen eller åpner opp suturene. Deretter bruker du 5/0 ikke-absorberbare silkesuturer for å lukke det subkutane vevet og huden, og vær forsiktig med at det ikke er blødninger, blodpropper eller rusk igjen under huden før lukking. For å vurdere om denne metoden for å indusere transeksjonstype ryggmargsskade hos mus er reproduserbar og konsekvent, kan den skadede ryggmargen analyseres ved immunohistokjemi og atferdstesting kan utføres på musene.Immuno-merking mot astrocyttmarkøren, glialflimmersyreprotein, letter avgrensning av grensen til den intakte ryggmargen. I denne langsgående delen kan skadestedet som ligger visualiseres mellom ledningstubbene som forventet. En konsistent størrelsesfeil kan induseres på transeksjonsstedet med en gjennomsnittlig minimal avstand på 550,4, pluss eller minus 17,3 mikrometer.Atferdsdata som distribuerer Basso Mouse Scale av en åpen felttest viser at de skadde musene ikke viser noen baklembevegelse etter skaden. Dermed produserer protokollen en fullstendig og pålitelig transeksjonstypeskade som resulterer i et fullstendig funksjonstap under skadenivået som ikke fører til spontan reversering av lammelsen. Pass på å bore i en rett linje med en stabil hånd, fordi det kan være svært vanskelig å reparere laminektomivinduet når det er boret feil.Etter ryggmargsskadeinduksjon kan ulike behandlingsalternativer brukes, inkludert legemiddellevering og celletransplantasjon for å identifisere potensielle behandlinger som forbedrer ryggmargsskadegjenoppretting.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Dissection and Culture of Commissural Neurons from Embryonic Spinal Cord

Commissural neurons have been widely used to investigate the mechanisms underlying axon guidance during embryonic spinal cord development. The cell bodies ...

Lateral Fluid Percussion: Model of Traumatic Brain Injury in Mice

Traumatic brain injury (TBI) research has attained renewed momentum due to the increasing awareness of head injuries, which result in morbidity and ...

Complete Spinal Cord Injury and Brain Dissection Protocol for Subsequent Wholemount In Situ Hybridization in Larval Sea Lamprey

Complete Spinal Cord Injury and Brain Dissection Protocol for Subsequent Wholemount In Situ Hybridization in Larval Sea Lamprey

Komplett ryggmargsskade og Brain Dissection Protokoll for Følgende Wholemount<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridisering i Larve Sea Lamprey

After a complete spinal cord injury, sea lampreys at first are paralyzed below the level of transection. However, they recover locomotion after several ...

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

En<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Laser-indusert ryggmargsskade Model å vurdere Mekanismer av aksonal degenerasjon i sanntid

Injured CNS axons fail to regenerate and often retract away from the injury site. Axons spared from the initial injury may later undergo secondary axonal ...

Spinal Cord Neurons Isolation and Culture from Neonatal Mice

Spinal Cord Neurons Isolasjon og kultur fra neonatale mus

We present a protocol for the isolation and culture of spinal cord neurons. The neurons are obtained from neonatal C57BL/6 mice and are isolated on ...

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

Imaging nevrale aktivitet i primære Somatosensory Cortex ved hjelp av Thy1-GCaMP6s transgene mus

The mammalian brain exhibits marked symmetry across the sagittal plane. However, detailed description of neural dynamics in symmetric brain regions in ...

An In Vivo Duo-color Method for Imaging Vascular Dynamics Following Contusive Spinal Cord Injury

An In Vivo Duo-color Method for Imaging Vascular Dynamics Following Contusive Spinal Cord Injury

En i Vivo Duo-farge metode for Imaging vaskulær Dynamics etter Contusive ryggmargsskade

Spinal cord injury (SCI) causes significant vascular disruption at the site of injury. Vascular pathology occurs immediately after SCI and continues ...

Activity-based Training on a Treadmill with Spinal Cord Injured Wistar Rats

Aktivitet-basert trening på en tredemølle med ryggmargen skadet Wistar rotter

Spinal cord injury (SCI) results in lasting deficits that include both mobility and a multitude of autonomic-related dysfunctions. Locomotor training (LT) ...

Intra-Arterial Delivery of Neural Stem Cells to the Rat and Mouse Brain: Application to Cerebral Ischemia

Intraarteriell levering av nevrale stamceller til rotte- og mushjernen: Søknad om cerebral iskemi

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to ...

Electromagnetic Controlled Closed-Head Model of Mild Traumatic Brain Injury in Mice

Elektromagnetisk kontrollert lukket hodemodell av mild traumatisk hjerneskade hos mus

Highly reproducible animal models of traumatic brain injury (TBI), with well-defined pathologies, are needed for testing therapeutic interventions and ...