Name: improved fecundity and fertility assay for aedes aegypti using 24 well tissue culture plates (eagal plates)
Uploaded: 2021-05-04T12:30:00
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Agradecemos a Texas A&M Agrilife Research Insect Vectored Diseases Grant Program por su financiamiento. También agradecemos a los miembros del laboratorio de Adelman por su ayuda en el desarrollo de este método y sugerencias al redactar el manuscrito, así como a los miembros del laboratorio de Kevin Myles. También agradecemos a los revisores y editores por su ayuda para mejorar este manuscrito.

1. Preparación de placas
<ol><li>Perforar agujeros en 24 tapas de placas de cultivo de tejido de pozos (4−6 agujeros por pozo) utilizando un taladro doméstico con una broca de ~ 1,6 mm (1/16 pulgadas) (Figura 2). NOTA: Estos agujeros evitan que la condensación de agua de la agarosa se acumule en la tapa, donde los mosquitos pueden poner huevos. El tamaño estándar de la hembra Ae. aegypti ("cepa Liverpool") es de ~ 3,11 mm de envergadura. Se recomienda reducir el tamaño ...

<ol>
	<li>Bond, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimization+of+irradiation+dose+to+Aedes+aegypti+and+Ae.+albopictus+in+a+sterile+insect+technique+program.">Optimization of irradiation dose to Aedes aegypti and Ae. albopictus in a sterile insect technique program.</a> PLoS One. 14 (2), 0212520 (2019).</li><li>Fernandes, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aedes+aegypti+larvae+treated+with+spinosad+produce+adults+with+damaged+midgut+and+reduced+fecundity.">Aedes aegypti larvae treated with spinosad produce adults with damaged midgut and reduced fecundity.</a> Chemosphere. 221, 464-470 (2019).</li><li>Inocente, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insecticidal+and+Antifeedant+Activities+of+Malagasy+Medicinal+Plant+(Cinnamosma+sp.)+Extracts+and+Drimane-Type+Sesquiterpenes+against+Aedes+aegypti+Mosquitoes.">Insecticidal and Antifeedant Activities of Malagasy Medicinal Plant (Cinnamosma sp.) Extracts and Drimane-Type Sesquiterpenes against Aedes aegypti Mosquitoes.</a> Insects. 10 (11), 373 (2019).</li><li>Marrelli, M. T., Moreira, C. K., Kelly, D., Alphey, L., Jacobs-Lorena, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mosquito+transgenesis:+what+is+the+fitness+cost.">Mosquito transgenesis: what is the fitness cost.</a> Trends in Parasitology. 22 (5), 197-202 (2006).</li><li>da Silva Costa, G., Rodrigues, M. M. S., Silva, A. A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Toward+a+blood-free+diet+for+Anopheles+darlingi+(Diptera:+Culicidae).">Toward a blood-free diet for Anopheles darlingi (Diptera: Culicidae).</a> Journal of Medical Entomology. , 217 (2019).</li><li>Gonzales, K. K., Tsujimoto, H., Hansen, I. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+serum+and+BSA,+but+neither+red+blood+cells+nor+hemoglobin+can+support+vitellogenesis+and+egg+production+in+the+dengue+vector+Aedes+aegypti.">Blood serum and BSA, but neither red blood cells nor hemoglobin can support vitellogenesis and egg production in the dengue vector Aedes aegypti.</a> PeerJ. 3, 938 (2015).</li><li>Gonzales, K. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Effect+of+SkitoSnack,+an+Artificial+Blood+Meal+Replacement,+on+Aedes+aegypti+Life+History+Traits+and+Gut+Microbiota.">The Effect of SkitoSnack, an Artificial Blood Meal Replacement, on Aedes aegypti Life History Traits and Gut Microbiota.</a> Scientific Reports. 8 (1), 11023 (2018).</li><li>Tsujimoto, H., Anderson, M. A. E., Myles, K. M., Adelman, Z. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+Candidate+Iron+Transporters+From+the+ZIP/ZnT+Gene+Families+in+the+Mosquito+Aedes+aegypti.">Identification of Candidate Iron Transporters From the ZIP/ZnT Gene Families in the Mosquito Aedes aegypti.</a> Frontiers in Physiology. 9, 380 (2018).</li><li>Ioshino, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oviplate:+A+Convenient+and+Space-Saving+Method+to+Perform+Individual+Oviposition+Assays+in+Aedes+aegypti.">Oviplate: A Convenient and Space-Saving Method to Perform Individual Oviposition Assays in Aedes aegypti.</a> Insects. 9 (3), 103 (2018).</li><li>Price, D. P., Schilkey, F. D., Ulanov, A., Hansen, I. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small+mosquitoes,+large+implications:+crowding+and+starvation+affects+gene+expression+and+nutrient+accumulation+in+Aedes+aegypti.">Small mosquitoes, large implications: crowding and starvation affects gene expression and nutrient accumulation in Aedes aegypti.</a> Parasites &amp; Vectors. 8, 252 (2015).</li><li>Valerio, L., Matilda Collins, C., Lees, R. S., Benedict, M. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Benchmarking+vector+arthropod+culture:+an+example+using+the+African+malaria+mosquito,+Anopheles+gambiae+(Diptera:+Culicidae).">Benchmarking vector arthropod culture: an example using the African malaria mosquito, Anopheles gambiae (Diptera: Culicidae).</a> Malaria Journal. 15 (1), 262 (2016).</li><li>Rueden, C. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ImageJ2:+ImageJ+for+the+next+generation+of+scientific+image+data.">ImageJ2: ImageJ for the next generation of scientific image data.</a> BMC Bioinformatics. 18 (1), 529 (2017).</li></ol>

La placa EAgaL reduce drásticamente el trabajo de parto, el tiempo y el espacio para realizar ensayos individuales de fecundidad y fertilidad en Aedes aegypti en comparación con el método FT. La comparación preliminar entre el método de FT y la placa de EAgaL resultó en tiempos más cortos para todos los pasos (se aplicó la técnica de imagen al método de FT) (Tabla 1). Como referencia, en la Tabla 2 se proporciona una estimación de los costos de inicio y por ensayo (una placa ...

El control de los mosquitos para proteger a los seres humanos de los patógenos transmitidos por vectores es un objetivo importante de salud pública, principalmente debido a la falta de vacunas efectivas para la mayoría de los patógenos transportados por los mosquitos. Muchos estudios tienen como objetivo reducir la aptitud de los mosquitos junto con una estrategia de reducción de la población aplicable en el campo1,2,3. Esto incluye amplios estudios para crear mosquitos transgénicos y/o líneas de knockout CRISPR/Cas9. Estos enfoques de modificación de la población requieren una evaluación detallada de los parámetros individuales de aptitud4. Las técnicas de laboratorio convencionales para evaluar la aptitud de los mosquitos hembra incluyen la contención individual de mosquitos hembra apareados y alimentados con sangre en contenedores de 100 mL5,tubos cónicos modificados de 50 mL, o tubos para la cría de Drosophila modificados mediante el suministro de superficies húmedas utilizando discos húmedos de algodón y papel de filtro para la oviposición (es decir, papeles de huevo)1,2,6,7. Tales métodos requieren un espacio relativamente grande (por ejemplo, 30 cm x 30 cm x 10 cm: W x L x H para hasta 100 tubos de Drosophila) (Figura 1),y la manipulación de papeles de huevo individuales para contar huevos y larvas de eclosión, que pueden ser intensivos en mano de obra. Este manuscrito presenta un método para contar los huevos de mosquitos y determinar las tasas de eclosión utilizando 24 placas de pozos y agarosa como superficie de oviposición para evitar estos problemas8.
Simultáneamente, Ioshino et al.9 describieron un método detallado utilizando placas de 12 y 24 pozos para realizar el conteo de huevos obtenidos de hembras individuales. Su protocolo representó una mejora significativa de los métodos convencionales en el ahorro de tiempo y espacio9. Sin embargo, el protocolo que describieron continúa utilizando papel de filtro húmedo como superficie para la oviposición, lo que requiere desplegar cada papel individual para obtener recuentos, ya que los huevos a menudo se encuentran debajo o en pliegues. Su protocolo tampoco incluyó el uso de tecnologías de imágenes o un método para el conteo de larvas.
Se presenta un método mejorado para realizar ensayos de aptitud para el número de huevos (es decir, fecundidad) y la tasa de eclosión (es decir, fertilidad) utilizando agarosa como superficie de oviposición en un formato de placa de cultivo de tejido de 24 pozos para Ae. aegypti que oviposita en superficies húmedas. Estas placas fueron nombradas placas "EAgaL", de Egg, Agarose, y Larva. Estas placas de 24 pozos proporcionan a los mosquitos individuales una superficie mínima para poner huevos, simplificando y reduciendo drásticamente el tiempo y el esfuerzo necesarios para contar y mantener los huevos y las larvas eclosionadas durante unos días. La placa EAgaL utiliza agarosa translúcida para la superficie de oviposición, lo que elimina la necesidad de manipular papeles de huevo y encontrar los huevos y larvas cuando eclosionan; fotografiar cada pozo establece un registro archivado a largo plazo de los resultados y separa el proceso de conteo tanto en tiempo como en espacio del proceso de cría / manipulación, donde el tiempo a menudo es limitado.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>1.6 mm &#934; drill bit</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>alternatively heated nails can be used</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1000 &#956;L pipette tips (long)</td>
			<td>Olympus plastics</td>
			<td>24-165RL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24-well tissue culture plate</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>930186</td>
			<td>clear, flat-bottom with ringed lid plates</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agarose</td>
			<td>VWR</td>
			<td>0710-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Compact digital camera</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>TG-5/TG-6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Computer (Windows, Mac or Linux)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Deionized water</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fiji (imageJ) software</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>download from: https://fiji.sc/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Dumont</td>
			<td></td>
			<td>sharp forceps may break mosquito&#39;s body</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Petri dishes</td>
			<td>VWR</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Household bleach</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Household electric drill</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>illuminator for stereomicroscope (gooseneck)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>P-1000 pipette</td>
			<td>Gilson</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>paint brushes</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber bands</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SD card</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>to record digital camera images (DSHC, SDXC should be better)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spreadsheet software (Microsoft Excel)</td>
			<td>Microsoft</td>
			<td></td>
			<td>Any spreadsheet software works</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TetraMin fish food</td>
			<td>Tetra</td>
			<td></td>
			<td>ground with coffee grinder, blender or morter &#38; pestle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transfer pipetts</td>
			<td>VWR</td>
			<td>16011-188</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

improved fecundity and fertility assay for aedes aegypti using 24 well tissue culture plates (eagal plates)

Los mosquitos representan un importante problema de salud pública como vectores de diversos patógenos. Para aquellos estudios que requieren una evaluación de los parámetros de aptitud de los mosquitos, en particular la producción de huevos y las tasas de eclosión a nivel individual, los métodos convencionales han puesto una carga sustancial en los investigadores debido a la alta intensidad de mano de obra y los requisitos de espacio de laboratorio. Descrito es un método simple que utiliza la placa de cultivo de tejido de 24 pozos con agarosa en cada pozo y la proyección de imagen digital de cada pozo para determinar números del huevo y índices de la eclosión en un nivel individual con requisitos substancialmente reducidos del tiempo y del espacio.

Los mosquitos fueron inyectados con dsRNA apuntando a un transportador de hierro candidato (FeT) o gen de control (EGFP), alimentados con sangre, y medidos para la fecundidad y la producción de fertilidad utilizando el método de la placa EAgaL, siguiendo el procedimiento descrito anteriormente.
Los mosquitos en los que la expresión de FeT fue silenciada después de la inyección de dsRNA exhibieron una reducción significativa tanto en el número de huevos como en la tasa de eclosión (<str...

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Improved Fecundity and Fertility Assay for Aedes aegypti using 24 Well Tissue Culture Plates EAgaL Plates

Descrito es un método de ahorro de tiempo y espacio para contar los huevos y determinar las tasas de eclosión de mosquitos individuales utilizando 24 placas de cultivo de tejido de pozos, lo que puede aumentar sustancialmente la escala y la velocidad de los ensayos de fecundidad y fertilidad.

Ensayo mejorado de fecundidad y fertilidad para Aedes aegypti utilizando 24 placas de cultivo de tejidos de pozos (placas EAgaL)

Mosquitoes represent a significant public health problem as vectors of various pathogens. For those studies that require an assessment of mosquito fitness ...

Este procedimiento permite a los investigadores de mosquitos abordar fácilmente la aptitud reproductiva de sus mosquitos a nivel individual. En comparación con los métodos convencionales, este protocolo reduce significativamente el tiempo, el espacio y el trabajo necesarios para probar la fecundidad y fertilidad de los mosquitos a nivel individual. Comience preparando placas para el experimento de oviposición.Perfore de cuatro a seis agujeros por pozo en la tapa de una placa de cultivo de 24 pozos utilizando un taladro doméstico con una broca de 1,6 milímetros. Un día antes del experimento, lave y enjuague los platos y remoje en 1% a 5% de lejía durante 30 a 60 minutos a temperatura ambiente. Luego, enjuague bien las placas con agua desionizada corriente y séquelas.Derrita 2% de agarosa en agua desionizada e inmediatamente agregue 500 microlitros de la agarosa fundida a cada pozo de una placa de 24 pozos. Deje las placas en el banco de laboratorio durante la noche para secar cualquier condensación. Al menos 16 horas antes de la alimentación con sangre, retire cualquier fuente de agua o azúcar de los mosquitos hembra.El día de la alimentación, calentar un circulador de agua a 37 grados centígrados y alimentar a los mosquitos con sangre de vertebrados colocados en comederos artificiales durante 15 a 30 minutos. Luego, transfiera los mosquitos a un plato de vidrio sobre hielo. Seleccione los que están llenos de sangre y colóelos en un recipiente con agua de sacarosa al 30%.Deje al menos 72 horas para que las hembras terminen la excreción y el desarrollo del huevo. Aproximadamente una hora antes de transferir los mosquitos a la placa de 24 pozos, use una pipeta de transferencia para agregar de dos a tres gotas de agua en cada pozo. Derriba los mosquitos con dióxido de carbono y transfiéntelos a un plato de vidrio sobre hielo.Luego, coloque individualmente cada mosquito en una tapa invertida de la placa de 24 pozos. Una vez que se hayan colocado los 24 mosquitos, cubra la tapa con un fondo de placa invertido, asegure con una nueva banda elástica fresca y colótela en una cámara ambiental hasta que los mosquitos se recuperen. Luego, gire la placa hacia arriba.Deje que los mosquitos hembra se ovipositar durante 24 a 48 horas. Luego, retire las hembras liberándolas de las placas en una jaula grande. Antes de contar los huevos, revise cada pozo para ver si hay huevos que están en las paredes del pozo y en el margen de la superficie de la agarosa y el plástico donde son difíciles de resolver en las fotografías.Use un pincel húmedo para mover estos huevos a la superficie plana para que todos los huevos estén en un plano uniforme y no se superpongan entre sí. Use pórceps para eliminar las patas rotas, las alas y otras partículas en los pozos que puedan interferir con los huevos de diagnóstico por imágenes. Configure una cámara digital compacta en modo microscopio, lo que permite al usuario enfocar objetos tan cercanos a un centímetro y tomar una imagen de cada pozo.Después de fotografiar cada pozo de una placa, tome una imagen de toda la placa. Utilice una etiqueta de orden de imágenes para distinguir cada placa más adelante. Agregue unas cinco gotas de agua a cada pozo para evitar que su tapón de agarosa y los huevos se sequen e inducir el desarrollo y la eclosión del embrión.Transfiera las imágenes a una computadora y cambie el nombre de los archivos con la placa y los identificadores de pozo para una organización más fácil. Abra las imágenes con ImageJ y use la herramienta multipunto para marcar cada huevo, acercando o alejando para contar los grupos de huevos. Después de marcar todos los huevos, haga doble clic en el icono Multipunto para mostrar el número de marcas y registrar los resultados en una hoja de cálculo.Comience a agregar alimento a los pozos que contienen larvas eclosionadas tan pronto como aparezcan. Aproximadamente cinco a ocho días después, anestesiar las larvas cubriendo la placa con hielo triturado durante 15 a 20 minutos. Inserte un material negro debajo de la placa para mejorar el contraste y tome imágenes de cada pozo mientras mantiene las placas en el hielo.Después de fotografiar cada pozo, tome una imagen de toda la placa con una etiqueta de orden de imágenes. Abra imágenes con ImageJ y use la herramienta multipunto para contar las larvas. Las larvas pueden variar en forma, ángulo y enfoque.Excluya las cutículas de la vertiente, que parecen larvas de cabeza solamente con un poco de cuerpo, o larvas encogidas. Registre los resultados en la hoja de cálculo. Los mosquitos fueron inyectados con arn de doble cadena dirigido a un transportador de hierro candidato, FeT, o un gen de control, EGFP.Luego, fueron alimentados con sangre y medidos para la fecundidad y la producción de fertilidad utilizando el método de la placa de águila. Los mosquitos en los que se silenció la expresión del transportador de hierro exhibieron una reducción significativa tanto en el número de huevos como en la tasa de eclosión. Los mosquitos silenciados por FeT también exhibieron excreción retardada y huevos pequeños y de colores claros.Tomar buenas fotos es un paso crítico para este método porque la calidad de las imágenes y la cantidad de huevos o larvas individuales afectan directamente la calidad de los resultados.

Research

JoVE Journal

Biology

Improved Fecundity and Fertility Assay for Aedes aegypti using 24 Well Tissue Culture Plates (EAgaL Plates)

Measuring Caenorhabditis elegans Life Span in 96 Well Microtiter Plates

Measuring Caenorhabditis elegans Life Span in 96 Well Microtiter Plates

Medición Caenorhabditis elegans Duración de la vida en 96 placas de microtitulación Bueno

Lifespan is a biological process regulated by several genetic pathways. One strategy to investigate the biology of aging is to study animals that harbor ...

Investigación

Biología

Ice-Cap: A Method for Growing Arabidopsis and Tomato Plants in 96-well Plates for High-Throughput Genotyping

Ice-Cap: A Method for Growing Arabidopsis and Tomato Plants in 96-well Plates for High-Throughput Genotyping

Capa de hielo: Un método para el cultivo Arabidopsis Y plantas de tomate en las placas de 96 pocillos de alto rendimiento para genotipado

It is becoming common for plant scientists to develop projects that require the genotyping of large numbers of plants. The first step in any genotyping ...

RNAi-mediated Gene Knockdown and In Vivo Diuresis Assay in Adult Female Aedes aegypti Mosquitoes

RNAi-mediated Gene Knockdown and In Vivo Diuresis Assay in Adult Female Aedes aegypti Mosquitoes

RNAi mediada por Gene y Derribo<em&gt; En Vivo</em&gt; Ensayo de diuresis en Mujeres Adultas<em&gt; Aedes aegypti</em&gt; Los mosquitos

This video protocol demonstrates an effective technique to knockdown a particular gene in an insect and conduct a novel bioassay to measure excretion ...

Physiological Recordings and RNA Sequencing of the Gustatory Appendages of the Yellow-fever Mosquito Aedes aegypti

Physiological Recordings and RNA Sequencing of the Gustatory Appendages of the Yellow-fever Mosquito Aedes aegypti

Fisiológicos Grabaciones y RNA Secuenciación de los apéndices gustativas del mosquito de la fiebre amarilla<em&gt; Aedes aegypti</em

Electrophysiological recording of action potentials from sensory neurons of mosquitoes provides investigators a glimpse into the chemical perception of ...

Measuring Oxidative Stress Resistance of Caenorhabditis elegans in 96-well Microtiter Plates

Measuring Oxidative Stress Resistance of Caenorhabditis elegans in 96-well Microtiter Plates

Medición de la resistencia de estrés oxidativo<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; 96 pocillos en placas de microtitulación

Oxidative stress, which is the result of an imbalance between production and detoxification of reactive oxygen species, is a major contributor to chronic ...

Improved Swiss-rolling Technique for Intestinal Tissue Preparation for Immunohistochemical and Immunofluorescent Analyses

Mejora Técnica Swiss-laminación para la preparación del tejido intestinal para inmunohistoquímica y análisis de inmunofluorescencia

Understanding the role of factors that regulate intestinal epithelial homeostasis and response to injury and regeneration is important. The current ...

Fat Body Organ Culture System in Aedes Aegypti, a Vector of Zika Virus

Fat Body Organ Culture System in Aedes Aegypti, a Vector of Zika Virus

Sistema de cultivo de órganos de grasa corporal en Aedes Aegypti, Vector del Virus Zika

The insect fat body plays a central role in insect metabolism and nutrient storage, mirroring functions of the liver and fat tissue in vertebrates. Insect ...

Maintaining Aedes aegypti Mosquitoes Infected with Wolbachia

Maintaining Aedes aegypti Mosquitoes Infected with Wolbachia

Mantener los mosquitos Aedes aegypti infectados con Wolbachia

Aedes aegypti mosquitoes experimentally infected with Wolbachia are being utilized in programs to control the spread of arboviruses such as dengue, ...

Modified Methods for Loading of High-Throughput DNA Extraction Plates Reduce Potential for Contamination

Los métodos modificados para la carga de placas de extracción de ADN de alto rendimiento reducen el potencial de contaminación

High-throughput DNA sequencing techniques have contributed substantially to advances in our understanding of relationships among microbial communities, ...

Preparing Irradiated and Marked Male Aedes aegypti Mosquitoes for Release in an Operational Sterile Insect Technique Program

Preparing Irradiated and Marked Male Aedes aegypti Mosquitoes for Release in an Operational Sterile Insect Technique Program

Preparación de mosquitos Aedes aegypti machos irradiados y marcados para su liberación en un programa operativo de técnica de insectos estériles

The control of such human diseases as dengue, Zika, and chikungunya relies on the control of their vector, the Aedes aegypti mosquito, because there is no ...