Name: nonradioactive assay to measure polynucleotide phosphorylation of small nucleotide substrates
Uploaded: 2020-05-08T15:00:00
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Nous remercions le Dr Andrew Sikkema et Andrea Kaminski pour leur lecture critique de ce manuscrit. Ce travail a été soutenu par le National Institute of Health Intramural Research Program des États-Unis; US National Institute of Environmental Health Sciences (NIEHS; ZIA ES103247 à R.E.S) et les Instituts de recherche en santé du Canada (IRSC; 146626 à M.C.P).

1. Préparation
<ol><li>Préparer la mémoire tampon et les réactifs.<ol>
<li>Faire 1x Tampon de réaction en combinant 20 μL de 1 M Tris (pH = 8,0), 40 μL de chlorure de sodium de 5 M, 2,5 μL de chlorure de magnésium de 2 M, 100 μL de 50 % (v/v) de glycérol et 1 mL d’eau sans RNase.</li>
		<li>Faire du colorant de chargement d’urée en combinant 4,8 g d’urée, 200 μL de 1 M Tris (pH = 8,0), 20 μL de 0,5 M EDTA (pH = 8,0), 0,5 mL de 1% (w/v) bleu bromophénol, et rNase-free eau pour atteindre un volume t...

<ol>
	<li>Pillon, M. C., Stanley, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nuclease+integrated+kinase+super+assemblies+(NiKs)+and+their+role+in+RNA+processing.">Nuclease integrated kinase super assemblies (NiKs) and their role in RNA processing.</a> Current Genetics. 64 (1), 183-190 (2018).</li><li>Pillon, M. C., Sobhany, M., Borgnia, M. J., Williams, J. G., Stanley, R. 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K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+molecular+architecture+of+the+mammalian+DNA+repair+enzyme,+polynucleotide+kinase.">The molecular architecture of the mammalian DNA repair enzyme, polynucleotide kinase.</a> Molecular Cell. 17 (5), 657-670 (2005).</li><li>Rio, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=5'-end+labeling+of+RNA+with+[gamma-32P]ATP+and+T4+polynucleotide+kinase.">5'-end labeling of RNA with [gamma-32P]ATP and T4 polynucleotide kinase.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2014 (4), 441-443 (2014).</li><li>Paredes, E., Evans, M., Das, S. 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D., Shuman, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structure+and+mechanism+of+T4+polynucleotide+kinase:+an+RNA+repair+enzyme.">Structure and mechanism of T4 polynucleotide kinase: an RNA repair enzyme.</a> EMBO Journal. 21 (14), 3873-3880 (2002).</li><li>Zhang, Y., Zhao, J., Chen, S., Li, S., Zhao, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+microchip+electrophoresis+laser+induced+fluorescence+detection+method+for+the+assay+of+T4+polynucleotide+kinase+activity+and+inhibitors.">A novel microchip electrophoresis laser induced fluorescence detection method for the assay of T4 polynucleotide kinase activity and inhibitors.</a> Talanta. 202, 317-322 (2019).</li><li>Cui, L., Li, Y., Lu, M., Tang, B., Zhang, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+ultrasensitive+electrochemical+biosensor+for+polynucleotide+kinase+assay+based+on+gold+nanoparticle-mediated+lambda+exonuclease+cleavage-induced+signal+amplification.">An ultrasensitive electrochemical biosensor for polynucleotide kinase assay based on gold nanoparticle-mediated lambda exonuclease cleavage-induced signal amplification.</a> Biosensors and Bioelectronics. 99, 1-7 (2018).</li><li>Wang, L. J., Zhang, Q., Tang, B., Zhang, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-Molecule+Detection+of+Polynucleotide+Kinase+Based+on+Phosphorylation-Directed+Recovery+of+Fluorescence+Quenched+by+Au+Nanoparticles.">Single-Molecule Detection of Polynucleotide Kinase Based on Phosphorylation-Directed Recovery of Fluorescence Quenched by Au Nanoparticles.</a> Analytical Chemistry. 89 (13), 7255-7261 (2017).</li><li>Liu, H., Ma, C., Wang, J., Chen, H., Wang, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Label-free+colorimetric+assay+for+T4+polynucleotide+kinase/phosphatase+activity+and+its+inhibitors+based+on+G-quadruplex/hemin+DNAzyme.">Label-free colorimetric assay for T4 polynucleotide kinase/phosphatase activity and its inhibitors based on G-quadruplex/hemin DNAzyme.</a> Analytical Biochemistry. 517, 18-21 (2017).</li><li>Du, J., Xu, Q., Lu, X., Zhang, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+label-free+bioluminescent+sensor+for+real-time+monitoring+polynucleotide+kinase+activity.">A label-free bioluminescent sensor for real-time monitoring polynucleotide kinase activity.</a> Analytical Chemistry. 86 (16), 8481-8488 (2014).</li><li>Jiang, C., Yan, C., Jiang, J., Yu, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Colorimetric+assay+for+T4+polynucleotide+kinase+activity+based+on+the+horseradish+peroxidase-mimicking+DNAzyme+combined+with+lambda+exonuclease+cleavage.">Colorimetric assay for T4 polynucleotide kinase activity based on the horseradish peroxidase-mimicking DNAzyme combined with lambda exonuclease cleavage.</a> Analytica Chimica Acta. 766, 88-93 (2013).</li><li>Castle, C. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Las1+interacts+with+Grc3+polynucleotide+kinase+and+is+required+for+ribosome+synthesis+in+Saccharomyces+cerevisiae.">Las1 interacts with Grc3 polynucleotide kinase and is required for ribosome synthesis in Saccharomyces cerevisiae.</a> Nucleic Acids Research. 41 (2), 1135-1150 (2013).</li><li>Pillon, M. C., Sobhany, M., Stanley, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+the+molecular+crosstalk+within+the+essential+Grc3/Las1+pre-rRNA+processing+complex.">Characterization of the molecular crosstalk within the essential Grc3/Las1 pre-rRNA processing complex.</a> RNA. 24 (5), 721-738 (2018).</li><li>Geerlings, T. H., Vos, J. C., Raue, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+final+step+in+the+formation+of+25S+rRNA+in+Saccharomyces+cerevisiae+is+performed+by+5'--&gt;3'+exonucleases.">The final step in the formation of 25S rRNA in Saccharomyces cerevisiae is performed by 5'--&gt;3' exonucleases.</a> RNA. 6 (12), 1698-1703 (2000).</li><li>Pillon, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cryo-EM+reveals+active+site+coordination+within+a+multienzyme+pre-rRNA+processing+complex.">Cryo-EM reveals active site coordination within a multienzyme pre-rRNA processing complex.</a> Nature Structural Molecular Biology. 26 (9), 830-839 (2019).</li><li>Solomatin, S., Herschlag, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+of+site-specific+labeling+of+RNA+with+fluorescent+dyes.">Methods of site-specific labeling of RNA with fluorescent dyes.</a> Methods in Enzymology. 469, 47-68 (2009).</li><li>Giusti, W. G., Adriano, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synthesis+and+characterization+of+5'-fluorescent-dye-labeled+oligonucleotides.">Synthesis and characterization of 5'-fluorescent-dye-labeled oligonucleotides.</a> PCR Methods Application. 2 (3), 223-227 (1993).</li><li>Petrov, A., Tsa, A., Puglisi, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+RNA+by+analytical+polyacrylamide+gel+electrophoresis.">Analysis of RNA by analytical polyacrylamide gel electrophoresis.</a> Methods in Enzymology. 530, 301-313 (2013).</li></ol>

Décrit est un test pour mesurer l’activité de kinase de Grc3 PNK sur les substrats nucléotides fluorescents. Ce protocole peut être appliqué pour caractériser d’autres enzymes PNK en adaptant le tampon de réaction et le substrat oligonucléotide. Par exemple, le protocole nécessite une trace d’EDTA. L’ajout d’EDTA est bénéfique pour deux raisons : premièrement, cette approche favorise le Grc3 lié au magnésium en empêchant l’enzyme de se lier à des quantités infimes de métaux contaminants dans...

Les kinases polynucléotides (PNK) jouent un rôle critique dans de nombreuses voies de traitement de l’ADN et de l’ARN, telles que la réparation de l’ADN et l’assemblage ribosome1,2,3,4,5. Ces enzymes fondamentales catalysent le transfert du monophosphate terminal (gamma) d’un triphosphate nucléoside (NTP, le plus souvent ATP) à l’extrémité hydroxyle de 5' d’un substrat nucléotide. L’un des PNK les plus bien caractérisés est le bactériophage T4 PNK, qui a une large spécificité de substrat et est fortement utilisé par les laboratoires de biologie moléculaire pour l’incorporation d’étiquettes d’isotopes radioactifs sur les 5 terminus d’un substrat d’ADN ou d’ARN6,7,8,9,10,11,12. Un autre exemple d’une enzyme PNK est CLP1, qui se trouve dans Eukarya, Eubactéries, et Archaea, et est impliqué dans plusieurs voies de traitement de l’ARN4,13,14,15.
Historiquement, la plupart des essais qui mesurent l’activité de la kinase polynucléotide dépendent de l’étiquetage des isotopes radioactifs et de l’autoradiographie subséquente5,16. Ces dernières années, un certain nombre d’essais supplémentaires ont été développés pour mesurer l’activité PNK, y compris les approches à molécule unique, électrophorèse micropuce, balises moléculaires, ainsi que colorimétrique et luminescence à base d’essais17,18,19,20,21,22. Bien que bon nombre de ces nouvelles approches offrent des limites de détection améliorées et évitent l’utilisation de la radioactivité, chacune présente des inconvénients, tels que le coût, la dépendance à l’égard de la résine immobilisée et des limitations dans le choix du substrat.
Grc3 est une kinase polynucléotide qui joue un rôle central dans le traitement de l’ARN pré-ribosomal2,3,23. Grc3 forme un complexe obligatoire avec l’endoribonuclease Las1, qui coupe l’Espaceur transcrit interne 2 (ITS2) de l’ARN pré-ribosomal3. Clivage de l’ITS2 par Las1 génère un produit abritant un hydroxyle de 5' qui est ensuite phosphorylé par la kinaseGrc3 3. Pour étudier la spécificité du nucléotide et du substrat de Grc3, un test peu coûteux qui a permis l’essai de différents substrats oligonucléotides a été nécessaire. Par conséquent, un test de phosphorylation PNK utilisant des substrats fluorescents étiquetés a été développé. Cet essai a été utilisé avec succès pour déterminer que Grc3 peut utiliser n’importe quel NTP pour l’activité de transfert de phosphoryl, mais favorise ATP24. Ce protocole adapte l’essai original pour mesurer l’activité PNK de Grc3 sur un omiétisme d’ARN de son substrat d’ARN pré-ribosomal (SC-ITS2, tableau 1). Un aspect difficile de cette approche basée sur la fluorescence est la dépendance sur les grands gels de polyacrylamide pour résoudre efficacement les substrats phosphorylés et non phosphorylés. Le protocole fournit des détails spécifiques sur la façon de verser ces grands gels et d’éviter les pièges communs lors de ce faire.
Travailler avec l’ARN nécessite un soin particulier parce qu’il est fortement sensible à la dégradation. Il existe des mesures préventives simples que l’on peut prendre pour limiter la contamination par la ribonucléase. Un poste de travail d’ARN séparé qui peut être facilement traité avec un agent nettoyant contenant des inhibiteurs de RNase est souvent utile. Il est nécessaire de porter toujours des gants lors de la manipulation d’échantillons et de l’utilisation de consommables certifiés sans RNase. Comme l’eau est une autre source commune de contamination, il est préférable d’utiliser de l’eau fraîchement purifiée et de stériliser toutes les solutions à l’aide d’un filtre de 0,22 μm.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.4 mm 34-well comb</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>1653848</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.4 mm spacer</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>1653812</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.5 M EDTA ph 8.0</td>
			<td>KD Medical</td>
			<td>RGF-3130</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1M Magnesium Chloride</td>
			<td>KD Medical</td>
			<td>CAC-5290</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1M Tris pH 8.0</td>
			<td>KD Medical</td>
			<td>RGF-3360</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>40% Acrylamide/Bis Solution 29:1</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>1610146</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5M Sodium Chloride</td>
			<td>KD Medical</td>
			<td>RGF-3720</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ammonium persulfate (APS)</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>161-0700</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ATP</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A2383-1G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>boric acid</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>B0394</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bromophenol blue sodium salt</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>B5525-5G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Plates</td>
			<td>Thomas Scientific</td>
			<td>1188K51</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hoefer SQ3 Sequencer</td>
			<td>Hoefer</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Image J Software</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td><a href="https://imagej.nih.gov/ij/" target="_blank">https://imagej.nih.gov/ij/</a></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Labeled RNA oligonucleotides</td>
			<td>IDT</td>
			<td>Custom Order</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pharmacia EPS 3500 Power Supply</td>
			<td>Pharmacia</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steriflip 0. 22 um Filter</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>5FCP00525</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TEMED</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>161-0800</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tris base</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>TRIS-RO</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Typhoon FLA 9500 gel imager</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultra Pure DEPC Water</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>750023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultra Pure Glycerol</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>19E1056865</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>urea</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>U15-500</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

nonradioactive assay to measure polynucleotide phosphorylation of small nucleotide substrates

Les kinases polynucléotides (PNK) sont des enzymes qui catalysent la phosphorylation de l’extrémité hydroxyle de 5' de l’ADN et des oligonucléotides d’ARN. L’activité des PNK peut être quantifiée à l’aide d’approches directes ou indirectes. Présenté ici est une approche directe et in vitro pour mesurer l’activité PNK qui repose sur un substrat oligonucléotide fluorescent et l’électrophorèse gel polyacrylamide. Cette approche permet de résoudre les produits phosphorylés tout en évitant l’utilisation de substrats radioétiquetés. Le protocole détaille comment configurer la réaction de phosphorylation, préparer et exécuter de grands gels de polyacrylamide, et quantifier les produits de réaction. La partie la plus techniquement difficile de cet essai est de verser et d’exécuter les grands gels de polyacrylamide; ainsi, des détails importants pour surmonter les difficultés communes sont fournis. Ce protocole a été optimisé pour Grc3, un PNK qui s’assemble en un complexe obligatoire de traitement de l’ARN pré-ribosomal avec son partenaire de liaison, la nucléase Las1. Cependant, ce protocole peut être adapté pour mesurer l’activité d’autres enzymes PNK. En outre, ce test peut également être modifié pour déterminer les effets de différents composants de la réaction, tels que le triphosphate nucléoside, les ions métalliques et les oligonucléotides.

Un gel de dénaturage représentatif réussi d’une titration de l’ATP avec une quantité fixe de complexe Las1-Grc3 est indiqué à la figure 1. L’addition de l’enzyme a eu comme conséquence le clivage d’ARN las1-médié du substrat d’ARN de SC-ITS2, menant à un fragment défini d’ARN (ARN de C2 de 5-OH). Lors de l’ajout de l’ATP, le fragment d’ARN C2 a été phosphorylé par Grc3 PNK (ARN C2 5-P). Dans les gels de dénaturés, l’ARN p...

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Nonradioactive Assay to Measure Polynucleotide Phosphorylation of Small Nucleotide Substrates

Ce protocole décrit un test non radioactif pour mesurer l’activité de kinase des kinases de polynucléotide (PNK) sur de petits substrats d’ADN et d’ARN.

Essai non radioactif pour mesurer la phosphorylation polynucléotide des petits substrats nucléotides

Polynucleotide kinases (PNKs) are enzymes that catalyze the phosphorylation of the 5&#39; hydroxyl end of DNA and RNA oligonucleotides. The activity of ...

Cette méthode peut répondre à des questions clés sur la phosphorylation de l’extrémité à cinq premiers des molécules d’ADN ou d’ARN par une classe spéciale d’enzymes connues sous le nom de kinase polynucléotide. Le principal avantage de cette technique est qu’elle a la résolution de détecter de très petits changements dans les substrats d’ADN et d’ARN. Commencez par préparer les réactions de kinase d’enzyme d’ARN.Pour chaque réaction, combinez un microlitre de substrat d’ARN nanomolaire de 500 nanomolaires. 8,3 microlitres de 130 nanomolaires dernier, GRC trois et 0,2 microlitres de cinq millimolaires EDTA. Réglez le bloc de chaleur à 37 degrés Celsius.Mélanger ensuite 0,5 microlitres d’un sous-stock ATP de la série de concentration avec un mélange d’enzymes ARN et placer la réaction sur le bloc thermique. Continuer à mélanger les réactions et les placer sur le bloc thermique à intervalles de dix secondes. Après une incubation de 60 minutes sur le bloc thermique, étanchez chaque réaction en la piquant avec 10 microlitres de colorant de chargement d’urée.Effectuez immédiatement une analyse en aval ou stockez les réactions à 20 degrés Celsius négatifs à analyser à une date ultérieure. Pour préparer une solution de gel acrylamide de 15 %, combinez 22,5 millilitres de solution pré-mélangée de 40%29 à une solution d’acrylamide/bis acrylamide. Six millilitres de dix x TBE.28,8 grammes d’urée. Et l’eau gratuite RNase à un volume total de 59 millilitres. Puis remuer doucement la solution.Chauffer la solution au micro-ondes pendant 20 secondes. Remuer et le remettre immédiatement au micro-ondes pendant encore 20 secondes. Remuer délicatement la solution jusqu’à ce que l’urée soit complètement dissoute.Placez le bécher en verre dans un bain d’eau peu profonde, contenant de l’eau froide pendant cinq minutes, en vous assurant que le niveau d’eau froide entourant le bécher en verre est au-dessus du niveau de solution à l’intérieur du bécher en verre. Lorsque la solution est fraîche, filtrez-la et dé-gazez-la à l’aide d’une unité de filtration jetable de 0,2 micromètre pour éliminer les particules et les bulles d’air microscopiques. Laver une plaque de verre courte et longue avec du savon et de l’eau, puis vaporiser chaque assiette avec 95% d’éthanol et essuyer le verre pour éliminer toute humidité.Elevez la longue plaque du dessus du banc en la plaçant sur le dessus d’une boîte. Puis placez des espaceurs de 0,4 millimètre le long des longs bords de la plaque. Déposer la plaque courte sur la longue plaque, en s’assurant que les bords de la plaque courte, la plaque longue et les entretentrêteurs sont alignés.Puis pincez chaque côté avec trois pinces métalliques uniformément espacées. Ajouter 24 microlitres de TEMED à la solution d’acrylamide et mélanger. Ajouter ensuite 600 microlitres de 10% APS et verser immédiatement la solution entre les plaques de verre.Verser la solution d’acrylamide entre le sandwich à la plaque de verre peut être très difficile. Pour éviter les bulles d’air, appuyez sur le sandwich à la plaque de verre pendant que vous versez votre solution. Ajouter délicatement un peigne propre de 32 puits sur le dessus du sandwich à la plaque de verre.Et laisser l’acrylamide polymériser pendant 30 minutes. Pour faire fonctionner le gel, réglez le bloc thermique à 75 degrés Celsius. Retirer les pinces métalliques.Et bien laver et sécher le sandwich plaque de verre. Placez le sandwich à l’assiette et l’appareil de gel avec la plaque courte orientée vers l’avant et préparez 0,5 X TBE tampon de fonctionnement en combinant 100 millilitres de 10 X TBE avec 1,9 litres d’eau libre RNase. Ajouter 600 millilitres de la mémoire tampon en cours d’exécution aux chambres supérieures et inférieures de l’appareil.Retirer délicatement le peigne du gel et bien rincer les puits à l’aide d’une seringue. Pré-faire fonctionner le gel à 50 Watts pendant 30 minutes. Rincez ensuite les puits à nouveau.Après faire tourner les réactions de désaltérer et les incuber à 75 degrés Celsius pendant trois minutes. Répétez la rotation des impulsions et chargez immédiatement 10 microlitres de chaque échantillon sur le gel. Ensuite, faire fonctionner le gel pendant trois heures à 50 Watts.Lorsque la course est terminée, éteignez l’alimentation électrique et videz la chambre haute de l’appareil. Laver et sécher le côté extérieur du sandwich à la plaque de verre. Couvrez-le ensuite de papier d’aluminium et transférez-le à un scanner laser pour l’imagerie.Montez le sandwich à plaque de verre sur la scène du scanner laser. Réglez les longueurs d’onde d’excitation et d’émission pour le plancher désiré et l’image du gel. Montré ici est un représentant réussi dénaturant gel d’une titration de l’ATP avec une quantité fixe de la grc dernière trois complexe.L’addition de l’enzyme a eu comme conséquence le dernier clivage 2mété d’ARN du cerevisiae de Saccharomyces ITS deux substrat d’ARN, menant à un fragment défini d’ARN. Lors de l’ajout de l’ATP, le fragment d’ARN C2 a été phosphorylaté par GrC3 PNK. Pour visualiser la phosphorylation du fragment d’ARN C2, la quantité relative d’ARN C2 non phosphorylaté et phosphorylaté a été tracée contre la concentration d’ATP.Notre représentant gel de dénaturation infructueuse est montré ici. Le substrat d’ARN de 21 nucléotides contenait des produits de dégradation, qui se chevauchaient avec le produit phosphorylaté et rendaient impossible la quantification précise de la phosphorylation. En revanche, le produit de dégradation de l’ARN le plus court a pu être analysé avec succès parce que cette zone du gel ne contenait aucune espèce d’ARN supplémentaire qui empêchait la quantification précise de son homologue phosphorylaté.La chose la plus importante à retenir lors de la tentative de ce protocole est de rincer les puits du gel pour assurer même le chargement de votre échantillon. Suite à cette procédure, une expérience de rotation de l’ARN pourrait être effectuée. Pour mesurer les taux de dégradation de l’ARN, la phosphorylation signale souvent l’initiation de la dégradation de l’ARN.Cette technique ouvre la voie à la réponse à des questions détaillées sur la spécificité des activités et la cinétique des kinases polynucléotides.

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