Name: sodium taurocholate induced severe acute pancreatitis in c57bl/6 mice
Uploaded: 2021-06-28T13:00:00
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Les auteurs grâce au programme de post-diplôme de la clinique médicale de l’Université de São Paulo; Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) et École de médecine de l’Université de São Paulo (FMUSP).

Ce protocole a été approuvé par le Comité d’éthique pour l’utilisation des animaux de l’USP Medicine School, Num. Projet: 1343/2019-CEUA: FMUSP. Pour ce protocole, des souris C57BL/6, âgées de 6 semaines, pesant 20 ± 2 g ont été utilisées (n = 9/groupe).
1. Laparotomie
<ol><li>Anesthésier les animaux avec de la xylazine (10 mg/kg) et une solution de kétamine (80 mg/kg), par voie sous-cutanée (0,1 mL/10 g de poids corporel) à l’aide d’une seringue de 1 mL et d’une a...

<ol>
	<li>Li, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Significantly+different+clinical+features+between+hypertriglyceridemia+and+biliary+acute+pancreatitis:+A+retrospective+study+of+730+patients+from+a+tertiary+center.">Significantly different clinical features between hypertriglyceridemia and biliary acute pancreatitis: A retrospective study of 730 patients from a tertiary center.</a> BMC Gastroenterology. 18 (1), 1-8 (2018).</li><li>Rechreche, H., Abbes, A., Iovanna, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+antioxidant+mechanisms+in+lung+during+experimental+pancreatitis+in+rats.">Induction of antioxidant mechanisms in lung during experimental pancreatitis in rats.</a> Indian Journal of Experimental Biology. 58 (5), 297-305 (2020).</li><li>T, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraductal+infusion+of+taurocholate+followed+by+distal+common+bile+duct+ligation+leads+to+a+severe+necrotic+model+of+pancreatitis+in+mice.">Intraductal infusion of taurocholate followed by distal common bile duct ligation leads to a severe necrotic model of pancreatitis in mice.</a> Pancreas. 44 (3), (2015).</li><li>Botoi, G., Andercou, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interleukin+17-prognostic+marker+of+severe+acute+pancreatitis.">Interleukin 17-prognostic marker of severe acute pancreatitis.</a> Chirurgia. 104 (4), 431-438 (2009).</li><li>Li, D., Li, J., Wang, L., Zhang, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Association+between+IL-1beta,+IL-8,+and+IL-10+polymorphisms+and+risk+of+acute+pancreatitis.">Association between IL-1beta, IL-8, and IL-10 polymorphisms and risk of acute pancreatitis.</a> Genetics and Molecular Research. 14 (2), 6635-6641 (2015).</li><li>Feng, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+peritoneal+lavage+with+ulinastatin+on+the+expression+of+NF-kappaB+and+TNF-alpha+in+multiple+organs+of+rats+with+severe+acute+pancreatitis.">Effect of peritoneal lavage with ulinastatin on the expression of NF-kappaB and TNF-alpha in multiple organs of rats with severe acute pancreatitis.</a> Experimental and Therapeutic Medicine. 10 (6), 2029-2034 (2015).</li><li>Fang, D. Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+sildenafil+on+inflammatory+injury+of+the+lung+in+sodium+taurocholate-induced+severe+acute+pancreatitis+rats.">Effects of sildenafil on inflammatory injury of the lung in sodium taurocholate-induced severe acute pancreatitis rats.</a> International Immunopharmacology. 80, (2020).</li><li>Ceranowicz, P., Cieszkowski, J., Warzecha, Z., Dembinski, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+models+of+acute+pancreatitis.">Experimental models of acute pancreatitis.</a> Post&#281;py Higieny i Medycyny Do&#347;wiadczalnej(Online). 69, 264-269 (2015).</li><li>Wan, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Review+of+experimental+animal+models+of+biliary+acute+pancreatitis+and+recent+advances+in+basic+research.">Review of experimental animal models of biliary acute pancreatitis and recent advances in basic research.</a> HPB (Oxford). 14 (2), 73-81 (2012).</li><li>Mayerle, J., Sendler, M., Lerch, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Secretagogue+(Caerulein)+induced+pancreatitis+in+rodents.">Secretagogue (Caerulein) induced pancreatitis in rodents.</a> Pancreapedia: The Exocrine Pancreas Knowledge Base. (1), (2013).</li><li>Wang, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Resveratrol+protects+against+L-arginine-induced+acute+necrotizing+pancreatitis+in+mice+by+enhancing+SIRT1-mediated+deacetylation+of+p53+and+heat+shock+factor+1.">Resveratrol protects against L-arginine-induced acute necrotizing pancreatitis in mice by enhancing SIRT1-mediated deacetylation of p53 and heat shock factor 1.</a> International Journal of Molecular Medicine. 40 (2), 427-437 (2017).</li><li>Ma, Z. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+resveratrol+on+peritoneal+macrophages+in+rats+with+severe+acute+pancreatitis.">Effect of resveratrol on peritoneal macrophages in rats with severe acute pancreatitis.</a> Inflammation Research. 54 (12), 522-527 (2005).</li><li>Souza, L. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anti-inflammatory+effects+of+peritoneal+lavage+in+acute+pancreatitis.">Anti-inflammatory effects of peritoneal lavage in acute pancreatitis.</a> Pancreas. 39 (8), 1180-1184 (2010).</li><li>Perides, G., Acker, G. J. v., Laukkarinen, J. M., Steer, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+acute+biliary+pancreatitis+induced+by+retrograde+infusion+of+bile+acids+into+the+mouse+pancreatic+duct.">Experimental acute biliary pancreatitis induced by retrograde infusion of bile acids into the mouse pancreatic duct.</a> Nature Protocols. 5 (2), 335-341 (2010).</li><li>Wittel, U. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Taurocholate-induced+pancreatitis:+a+model+of+severe+necrotizing+pancreatitis+in+mice.">Taurocholate-induced pancreatitis: a model of severe necrotizing pancreatitis in mice.</a> Pancreas. 36 (2), 9-21 (2008).</li><li>Tao, L., Reese, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Making+mouse+models+that+reflect+human+immune+responses.">Making mouse models that reflect human immune responses.</a> Trends Immunology. 38 (3), 181-193 (2017).</li><li>Vandamme, T. 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L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Resveratrol+improves+the+therapeutic+efficacy+of+bone+marrow-derived+mesenchymal+stem+cells+in+rats+with+severe+acute+pancreatitis.">Resveratrol improves the therapeutic efficacy of bone marrow-derived mesenchymal stem cells in rats with severe acute pancreatitis.</a> International Immunopharmacology. 80, 106128 (2020).</li><li>Yang, X. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chaiqin+chengqi+decoction+alleviates+severe+acute+pancreatitis+associated+acute+kidney+injury+by+inhibiting+endoplasmic+reticulum+stress+and+subsequent+apoptosis.">Chaiqin chengqi decoction alleviates severe acute pancreatitis associated acute kidney injury by inhibiting endoplasmic reticulum stress and subsequent apoptosis.</a> Biomedicine &amp; Pharmacotherapy. 125 (12), 110024 (2020).</li><li>Yang, X. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chaiqin+chengqi+decoction+alleviates+severe+acute+pancreatitis+associated+acute+kidney+injury+by+inhibiting+endoplasmic+reticulum+stress+and+subsequent+apoptosis.">Chaiqin chengqi decoction alleviates severe acute pancreatitis associated acute kidney injury by inhibiting endoplasmic reticulum stress and subsequent apoptosis.</a> Biomedicine &amp; Pharmacotherapy. 125, 110024 (2020).</li><li>Venglovecz, V., Z, R., Hegyi, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+bile+acids+on+pancreatic+ductal+cells.">The effects of bile acids on pancreatic ductal cells.</a> Pancreapedia: The Exocrine Pancreas Knowledge Base. (1), (2019).</li><li>Roberts, S. E., Akbari, A., Thorne, K., Atkinson, M., Evans, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+incidence+of+acute+pancreatitis:+impact+of+social+deprivation,+alcohol+consumption,+seasonal+and+demographic+factors.">The incidence of acute pancreatitis: impact of social deprivation, alcohol consumption, seasonal and demographic factors.</a> Alimentary Pharmacology and Therapeutics. 38 (5), 539-548 (2013).</li><li>Lerch, M. M., Gorelick, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Models+of+acute+and+chronic+pancreatitis.">Models of acute and chronic pancreatitis.</a> Gastroenterology. 144 (6), 1180-1193 (2013).</li><li>Nakamura, K., Fukatsu, K., Sasayama, A., Yamaji, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+immune-modulating+formula+comprising+whey+peptides+and+fermented+milk+improves+inflammation-related+remote+organ+injuries+in+diet-induced+acute+pancreatitis+in+mice.">An immune-modulating formula comprising whey peptides and fermented milk improves inflammation-related remote organ injuries in diet-induced acute pancreatitis in mice.</a> Biosci Microbiota Food Health. 37 (1), 1-8 (2018).</li><li>Kui, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+insights+into+the+methodolgy+of+L-Arginine-induced+acute+pancreatitis.">New insights into the methodolgy of L-Arginine-induced acute pancreatitis.</a> PLoS One. 10 (2), 011758 (2015).</li><li>Xue, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alternatively+activated+macrophages+promote+pancreatic+fibrosis+in+chronic+pancreatitis.">Alternatively activated macrophages promote pancreatic fibrosis in chronic pancreatitis.</a> Nature Communication. 6, 7158 (2015).</li><li>Lesina, M., Wormann, S. M., Neuhofer, P., Song, L., Algul, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interleukin-6+in+inflammatory+and+malignant+diseases+of+the+pancreas.">Interleukin-6 in inflammatory and malignant diseases of the pancreas.</a> Seminars in Immunology. 26 (1), 80-87 (2014).</li><li>Rao, S. A., Kunte, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interleukin-6:+An+early+predictive+marker+for+severity+of+acute+pancreatitis.">Interleukin-6: An early predictive marker for severity of acute pancreatitis.</a> Indian Journal of Critical Care Medicine. 21 (7), 424-428 (2017).</li></ol>

La méthode d’induction de la pancréatite aiguë par perfusion rétrograde de taurocholate de sodium a déjà été démontrée chez le rat22,23,24. Trois ouvrages similaires, publiés en 2008, 2010 et 2015, ont servi de référence pour le protocole3,14,15. Dans ce travail, nous énumérons toutes les étapes critiques pour reprodui...

Chez l’homme, la présence de calculs biliaires est la cause la plus fréquente de pancréatite due à l’obstruction de la partie terminale du cholédochal, interrompant le flux des sécrétions pancréatiques et provoquant un processus inflammatoire intense dans le pancréas, avec une augmentation de la concentration d’enzymes digestives dans le sérum et les médiateurs inflammatoires1,2.
Deux théories différentes ont été proposées pour expliquer le développement de la pancréatite aiguë (PA). La théorie du « canal commun » suggère que les calculs présents dans la vésicule biliaire obstruent le système des voies biliaires communes distales, permettant à la sécrétion biliaire de s’écouler rétrograde dans le canal pancréatique. La deuxième théorie (la théorie de « l’obstruction des canaux ») suggère que l’obstruction du canal pancréatique par un excès de calculs biliaires provoque un blocage de l’écoulement de la sécrétion pancréatique vers le duodénum, provoquant une hypertension canalaire3. Bien que les mécanismes qui conduisent à la pancréatite biliaire aiguë ne soient pas entièrement compris, le résultat est un processus inflammatoire intense. L’éruption des enzymes digestives et l’auto-digestion du pancréas entraînent des changements histopathologiques, une augmentation des cytokines inflammatoires (IL-1β, IL-6, TNF-α) dans le liquide ascitique et le sérum, et une augmentation des protéines de phase aiguë4,5,6.
La pancréatite aiguë sévère est une affection qui mérite une attention clinique en raison de l’implication de plusieurs organes et d’un risque de mortalité élevé. Les modèles animaux pour la reproduction de la pancréatite aiguë (PA) sont importants car ils expliquent les mécanismes physiopathologiques de la maladie et aident à surveiller l’évolution des événements inflammatoires, à partir des stades initiaux de la maladie. Cela n’est généralement pas possible dans les cliniques2,7. En outre, l’accès aux tissus pancréatiques est facile dans les études précliniques, favorisant l’élucidation des changements liés aux conditions cliniques8 ainsi que la possibilité de travailler avec des espèces isogéniques, éliminant les variables indésirables et reflétant la similitude clinique avec les résultats observés dans la condition humaine9.
Les modèles biliaires et non biliaires pour l’induction de la pancréatite aiguë chez les espèces de rats et de souris ont été fréquemment étudiés dans la littérature scientifique. Les méthodes non biliaires d’induction comprennent l’administration de doses supramaximales stimulantes du sécrétagogue de la cholécystokinine ou de son analogue cérulérine10; administration de doses presque létales de L-arginine; ou l’administration d’un régime alimentaire déficient en choline complété par de l’éthionine11. Bien que ces méthodes soient faciles à reproduire et entraînent une inflammation pancréatique, elles ne répliquent pas les mécanismes qui, en théorie, déclenchent l’AP (c’est-à-dire le reflux de la sécrétion biliaire dans le canal pancréatique). La technique qui aborde le modèle biliaire est basée sur l’infusion rétrograde d’acides biliaires dans le canal pancréatique et nécessite des chercheurs bien formés pour réaliser ce protocole. Plusieurs études ont été publiées utilisant cette méthode chez le rat (apparemment pour des raisons techniques puisque ces expériences impliquent des interventions chirurgicales)12,13. Cependant, l’approche chez la souris peut offrir des résultats plus intéressants dans l’étude de l’inflammation3,14,15. Dans cette étude, nous montrerons une liste de contrôle des étapes à suivre pour la reproduction de la pancréatite aiguë sévère par perfusion de taurocholate de sodium chez des souris anesthésiées en C57BL/6.
Pour les travaux qui impliquent la nécessité d’expériences avec des anticorps et l’analyse de l’expression des gènes et des protéines, l’utilisation de souris est préférable en raison de l’arsenal plus important de matériaux pour ces animaux et de la possibilité de travailler avec des espèces isogéniques et knock-out, entre autres qui peuvent être utilisées en rapport avec des études16. Souris C57BL/6 est une souche consanguine de souris développée à l’origine pour l’étude de l’activité antitumorale et de l’immunologie. Cette souche est de plus en plus préférée par les chercheurs pour être isogénique, ce qui permet une plus grande reproductibilité des résultats, ce qui peut impliquer l’utilisation d’un plus petit nombre d’animaux dans une expérience et moins de variabilité des résultats entre le même groupe17,18.
Perides et coll. (2010)14 ont publié un protocole pour l’induction de l’AP chez la souris par perfusion de taurocholate de sodium. Ici, nous mettons à jour ce modèle en utilisant une concentration plus élevée de taurocholate de sodium (2,5%) chez les souris C57BL / 6, avec un volume et une vitesse de perfusion définis (Figure 1). Le niveau maximal de gravité est atteint dans les 12 heures suivant l’induction chez la souris. L’élévation de la concentration d’IL-6 à la fois dans le sérum et dans la cavité péritonéale est corrélée à la progression de l’AP. Avec la pratique, le temps total estimé entre l’induction de l’anesthésie et la fin de la perfusion est de 25 min par animal. Il est essentiel qu’un chercheur qualifié mène cette expérience. Pour vous assurer que la solution est correctement injectée dans le canal biliaire commun, effectuez plusieurs séances de formation pilote en utilisant du bleu de méthylène au lieu du taurocholate de sodium.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.4 mm needle</td>
			<td>INTRAG MEDICAL TECH</td>
			<td>90183210</td>
			<td>30G</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;0.54 mm polyethylene tube</td>
			<td>Tygon</td>
			<td>730010</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Styrofoam block</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>masking tape for mounting the mouse</td>
			<td>Missner</td>
			<td>1236</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusion pump scheduled to 10&#181;L / min.</td>
			<td>Havard aparatus-Peristaltic Pump Series</td>
			<td>MA1 55-7766</td>
			<td>&#160;Model 66 Small Peristaltic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors and forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Antiseptic providine iodine</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>12086OR</td>
			<td>antisepsis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>70% ethanol</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>459836</td>
			<td>Mix 700 mL 100% ethanol with 300 mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Razor blade</td>
			<td>Lord</td>
			<td>bdk9a1ghk6</td>
			<td>For trichotomy</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium taurocholate</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>86339- 1G</td>
			<td>CAS NUMBER- 345909-26-4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microvessel clip</td>
			<td>Medicon Surgical</td>
			<td>56.87.35</td>
			<td>Approximator, opening 4.0 mm, closing pressure 30 -&#160;40 g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-0 prolene</td>
			<td>Bioline</td>
			<td>5162</td>
			<td>Suture line</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamin NP (cloridrato de dextrocetamina) 50mg/mL</td>
			<td>Crist&#225;lia</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xilazine 2%</td>
			<td>Syntec</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile saline solution (0.9% (wt/vol) saline)</td>
			<td>Farmace</td>
			<td>105851</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methyl Blue</td>
			<td>Sigma-Aldrich Chemicals</td>
			<td>M5528</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MILLIPLEX&#160;MAP&#160;Mouse Cytokine/Chemokine Magnetic Bead Panel - Immunology Multiplex Assay</td>
			<td>MERCK</td>
			<td>MCYTOMAG-70K</td>
			<td>Simultaneously analyze multiple cytokine and chemokine biomarkers with Bead-Based Multiplex Assays using the Luminex technology, in mouse serum, plasma and cell culture samples.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amylase Assay</td>
			<td>Labtest</td>
			<td>11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Desmarres retractor 13-mm 
			width</td>
			<td>ROBOZ</td>
			<td>RS-6672</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

sodium taurocholate induced severe acute pancreatitis in c57bl/6 mice

L’induction de la pancréatite aiguë biliaire par perfusion de taurocholate de sodium a été largement utilisée par la communauté scientifique en raison de la représentation de l’état clinique humain et de la reproduction des événements inflammatoires correspondant à l’apparition de la pancréatite biliaire clinique. La gravité des lésions pancréatiques peut être évaluée en mesurant la concentration, la vitesse et le volume de l’acide biliaire infusé. Cette étude fournit une liste de contrôle mise à jour des matériaux et des méthodes utilisés dans la reproduction du protocole et montre les principaux résultats de ce modèle de pancréatite aiguë (PA). La plupart des publications précédentes se sont limitées à reproduire ce modèle chez le rat. Nous avons appliqué cette méthode chez la souris, ce qui offre des avantages supplémentaires (c’est-à-dire la disponibilité d’un arsenal de réactifs et d’anticorps pour ces animaux ainsi que la possibilité de travailler avec des souches de souris génétiquement modifiées) qui peuvent être pertinents pour l’étude. Pour l’induction de la pancréatite aiguë chez la souris, nous présentons un protocole systématique, avec une dose définie de taurocholate de sodium à 2,5% à une vitesse de perfusion de 10 μL / min pendant 3 min chez les souris C57BL / 6 qui atteint son niveau maximal de gravité dans les 12 heures suivant l’induction et mettons en évidence les résultats avec des résultats qui valident la méthode. Avec la pratique et la technique, le temps total estimé, de l’induction de l’anesthésie à la fin de la perfusion, est de 25 min par animal.

La gravité de la pancréatite a été notée entre 0-3 selon l’échelle de Schmidt21 où zéro correspond à l’absence, 1 correspond à une présence légère (<25%), 2 correspond à une présence modérée (entre 25 et 50%) et 3 correspond à une présence intense (> 50%) (tableau 1). Les mesures effectuées étaient l’activité plasmatique de l’amylase, l’œdème pancréatique, la cellule acineuse, la lésion / nécrose, l’inflammati...

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Sodium Taurocholate Induced Severe Acute Pancreatitis in C57BL/6 Mice

Les modèles animaux pour la pancréatite aiguë sévère permettent l’étude des changements physiopathologiques au stade initial, facilitant l’observation de l’évolution des événements inflammatoires. Nous fournissons ici un protocole pour l’induction de la pancréatite biliaire aiguë sévère par perfusion rétrograde de taurocholate de sodium dans le canal pancréatique de souris C57BL/6 anesthésiées.

Pancréatite aiguë sévère induite par le taurocholate de sodium chez les souris C57BL/6

Biliary acute pancreatitis induction by sodium taurocholate infusion has been widely used by the scientific community due to the representation of the ...

Cette méthode peut être utilisée pour reproduire les événements inflammatoires qui se produisent dans la pancréatite biliaire aiguë. Il est possible d’étudier les changements dans le tissu pancréatique à ses débuts, ce qui n’est généralement pas possible en clinique. Les principaux avantages de cette technique sont qu’elle est rapide et facile à reproduire pour un chercheur qualifié, et qu’elle offre des résultats similaires à la pancréatite aiguë chez l’homme.La méthode peut être utilisée pour étudier les réponses immunitaires pharmacologiques des molécules de médicaments et d’autres interventions thérapeutiques, car elle permet l’étude des cellules à médiation inflammatoire dans le pancréas et les organes adjacents. Lors de la tentative de ce protocole, la localisation des organes et l’établissement de la région de canulation sont cruciaux. Mémorisez l’emplacement des organes et exercez d’abord l’application d’injection à l’aide d’une solution colorée telle que le bleu de méthylène.Après avoir vérifié la profondeur de l’anesthésie avec un pincement des orteils, nettoyez la région abdominale d’une souris anesthésiée avec une solution d’iode à 5% de povidone. À l’aide d’une tondeuse, enlevez les poils entre la poitrine et le bas-ventre et nettoyez une zone chirurgicale d’environ deux centimètres carrés avec 70% d’alcool. Immobilisez l’animal sur la planche chirurgicale et utilisez des ciseaux pour couper cinq millimètres de la peau horizontalement sur la partie supérieure de l’abdomen et un centimètre en dessous du processus xiphoïde.Répétez la coupure sur le péritoine pour effectuer la laparotomie avec une exposition minimale de la cavité. À l’aide d’un rétracteur, tirez le foie vers la tête à environ un centimètre de l’intestin et localisez la région du pancréas et du duodénum. À l’aide d’une pince, soulevez le foie vers la tête de l’animal.En tirant doucement la partie de l’intestin grêle, fixez les deux extrémités latérales avec une suture en polypropylène 6-0 pour une meilleure vue de la partie distale du canal biliaire commun. À l’aide d’un clip de micro-vaisseau, obstruer temporairement le canal biliaire commun proximal. Exposez l’organe hors de la cavité abdominale.Ensuite, faites une occlusion temporaire du canal biliaire commun distal avec un 8-0 suture. Pour accéder au canal biliaire commun, perforez la région périampullaire, qui apparaît comme une partie blanchâtre de la paroi de l’intestin grêle. Avec une aiguille de 0,4 millimètre reliée à un tube en polyéthylène de 0,54 millimètre, démarrez la pompe à perfusion pour une perfusion de solution de taurocholate de sodium à 2,5% à une vitesse constante de 10 microlitres pour 10 grammes de poids corporel pendant trois minutes.Après la perfusion, retirez le clip du micro-vaisseau, le 8-0 temporaire suture, et l’aiguille d’injection du canal biliaire pancréatique. Suturez l’abdomen avec une suture en polypropylène monofilament non absorbant 6-0. Le temps entre la laparotomie et la suture terminale ne doit pas dépasser 30 minutes.Après la chirurgie, hébergez les animaux dans des boîtes en polyéthylène bordées de copeaux de bois et d’eau et de nourriture ad libitum. Tenez doucement l’animal avec la peau tirée vers l’arrière, favorisant une légère saillie du globe oculaire, et positionnez l’animal avec l’œil tourné vers le haut. Instillez une goutte de pommade pour les yeux contenant un anesthésique local dans l’œil de l’animal.Placez l’extrémité d’un tube capillaire dans le coin médian de l’œil et insérez-la doucement sous le globe oculaire à un angle d’environ 30 à 45 degrés. Faites pivoter le tube capillaire jusqu’à ce que le flux sanguin commence. Une fois la collecte terminée, assurez-vous de l’homéostasie en gardant les paupières fermées avec une légère compression.Plus tard, à l’aide d’une aiguille de calibre 27, injectez quatre millilitres de PBS glacé dans la cavité péritonéale de la souris. Après l’injection, massez doucement le péritoine pendant 10 secondes pour éliminer les cellules adhérentes. À l’aide de ciseaux et de pinces à épiler, faites une petite coupe de 0,5 centimètre sur l’intérieur de la peau et la musculature pour exposer la cavité abdominale.Insérez une pipette à bulbe dans le péritoine et collectez autant de liquide que possible, en prenant soin de ne pas aspirer le tissu adipeux. Collectez une partie du pancréas de la région de la tête pour un traitement ultérieur. Déposez le liquide collecté dans des tubes conservés sur de la glace.Ensuite, centrifugez le liquide péritonéal à 250 fois G pendant cinq minutes et stockez le surnageant pour le dosage de l’interleukine-6. Pour obtenir du sérum, centrifuger les échantillons de sang prélevés à 700 fois G pendant 15 minutes et stocker le surnageant pour le dosage de l’amylase et de l’interleukine-6. L’analyse du tissu pancréatique 12 heures après l’induction de la pancréatite aiguë a montré une inflammation intense dans l’organe affecté par rapport aux échantillons de tissus du groupe simulé.Des résultats similaires ont été représentés par un examen histologique après coloration à l’hématoxyline éosine d’échantillons de tissus provenant de simulacre et d’APTA. L’analyse du sérum sanguin a présenté une augmentation significative de la concentration sérique d’amylase et d’interleukine-6 dans le groupe AP par rapport au groupe simulé. Dans le même temps, la concentration d’interleukine-6 était significativement plus élevée dans le liquide de la cavité péritonéale dans le groupe AP.La gravité de la pancréatite dans ce modèle dépend proportionnellement de la concentration, du volume et de la pression de la perfusion et du moment de l’induction de la pancréatite aiguë. Avec l’aide de cette technique, les effets du lavage péritonéal continu sur la pancréatite aiguë sévère peuvent être étudiés.

Research

JoVE Journal

Medicine

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Médecine

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