Name: isolation of viable adipocytes and stromal vascular fraction from human visceral adipose tissue suitable for rna analysis and macrophage phenotyping
Uploaded: 2020-10-27T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Isolation of Viable Adipocytes and Stromal Vascular Fraction from Human Visceral Adipose Tissue Suitable for RNA Analysis and Macrophage Phenotyping at JoVE.c

이 연구는 Instituto Nacional de Perinatologia(보조금 번호: 3300-11402-01-575-17 및 212250-3210-21002-06-15) 및 CONACyT, Fondo Sectorial de Investigacion en Salud y Seguridad Social(FOSISS)(보조금 번호 2015-3-2-61661)의 지원을 받았습니다.

이 프로토콜은 Instituto Nacional de Perinatologia (212250-3210-21002-06-15)의 IRB에 의해 승인되었습니다. 참여는 자발적이었으며, 등록된 모든 여성들은 정보에 입각한 동의서에 서명했다.
1. 내장 지방 조직 수집
<ol><li>분만 없이 단태 임신을 한 건강한 성인 여성의 제왕절개 중 부분 자궁 절제술을 통해 VAT 생검을 받습니다.</li>
	<li>자궁을 폐쇄하고 지혈을 한 후, 더 큰 오멘텀을 확인하?...

VAT는 신진대사 조절과 염증에 중요한 역할을 합니다. 비만과 관련된 만성 염증에서 지방 세포와 면역 세포의 역할에 대한 관심이 증가함에 따라 AT에 존재하는 SVF와 지방 세포를 분리하는 다양한 기술이 개발되었습니다. 그러나 대부분의 기술에서는 단일 절차로 동일한 VAT 생검에서 다운스트림 응용 분야에 사용할 수 있는 이 두 가지 다른 세포 세트를 얻을 수 없으며, 이는 지방 세포와 SVF 세포 ?...

백색 지방 조직은 지방 세포 또는 지방 세포뿐만 아니라 대식세포, 조절 T 세포(Tregs)와 같은 기타 면역 세포, 호산구, 지방세포, 섬유아세포로 구성된 이질적인 세포 집단을 포함하는 기질 혈관 분획(SVF)으로 알려진 비지방 세포 분획으로 구성되어 있으며 혈관 및 결합 조직으로 둘러싸여 있습니다 1,2. 지방 조직(AT)은 이제 다른 세포에서 생성되어 조직으로 방출되는 아디포카인, 사이토카인 및 마이크로RNA를 통해 대사 및 염증과 관련된 생리적 과정을 조절하는 기관으로 간주되며 자가분비, 파라크린 및 내분비 효과 3,4. 인간의 경우 백색 지방 조직은 피하 지방 조직(SAT)과 내장 지방 조직(VAT)으로 구성되며 중요한 해부학적, 분자적, 세포적, 생리학적 차이가 있습니다 2,5. SAT는 인간 AT의 최대 80%를 차지하는 반면, VAT는 주로 장간막과 난막에 있는 복강 내에 위치하며 신진대사가 더 활발하다6. 또한 VAT는 체중, 인슐린 감수성, 지질 대사 및 염증에 상당한 영향을 미치는 매개체를 분비하는 내분비 기관입니다. 결과적으로, 부가가치세 누적은 복부 비만과 제2형 당뇨병, 대사 증후군, 고혈압 및 심혈관 질환 위험과 같은 비만 관련 질병을 유발하며, 이는 비만 관련 사망률을 더 잘 예측할 수 있는 지표이다 6,7,8,9.
항상성 상태에서는 지방세포, 대식세포 및 기타 면역세포가 협력하여 항염증 매개체의 분비를 통해 VAT 대사를 유지한다10. 그러나 과도한 VAT 확장은 활성화된 T 세포, NK 세포 및 대식세포의 모집을 촉진합니다. 실제로, 희박한 VAT에서 대식세포의 비율은 5%인 반면, 비만에서는 이 비율이 50%까지 상승하며, 대식세포가 항염증제에서 전염증성 표현형으로 분극되어 만성 염증 환경을 생성합니다10,11.
비만 팬데믹의 결과로, 지방세포 생물학, 후성유전학, 염증, 내분비 특성, 세포외 소포체와 같은 신흥 부위 등 다양한 VAT 연구 주제를 다루는 보고서가 놀라울 정도로 많이 나왔습니다 8,10,12,13. 그러나 VAT 환경은 지방세포와 상주 또는 도착하는 대식세포 간의 혼선에 의해 정의되지만, 대부분의 연구는 하나의 세포 집단에만 초점을 맞추었으며 VAT에서 이러한 세포의 상호 작용과 병태생리학적 결과에 대한 정보는 부족합니다11,14. 더욱이, AT에서 지방세포-대식세포 상호작용을 다루는 가치 있는 연구는 in vivo 프라이밍 조건 11,14,15가 결여된 세포주를 사용하여 수행되었다. VAT에서 이러한 세포의 상호 작용 또는 특정 기여도를 해부하기 위한 적절한 전략은 VAT 대사를 조절하는 생체 내 특성을 최대한 유사하게 반영하는 in vitro 분석을 수행하기 위해 동일한 지방 생검에서 두 세포 유형을 분리해야 합니다.
AT를 파괴하기 위한 기계적 힘에 기반한 비효소적 해리 방법은 최소한의 조작을 보장하지만, 이러한 방법은 효소 방법에 비해 세포 회수 효율이 낮고 세포 생존율이 낮고 더 많은 양의 조직이 필요하기 때문에 SVF 세포를 연구하는 것이 목적인 경우 사용할 수 없습니다16,17. 콜라겐분해효소를 이용한 효소 분해는 WAT18과 같은 섬유조직의 콜라겐 및 세포외 기질 단백질을 적절하게 소화할 수 있는 부드러운 방법이며, 트립신이 효과가 없거나 손상을 줄 때 자주 사용된다19. 이 프로토콜은 콜라겐분해효소 효소 분해 기술을 사용하여 단일 공정에서 인간 VAT 생검에서 생존 가능한 성숙 지방세포 및 SVF 세포를 효율적으로 분리하기 위한 근본적인 문제 해결 지침을 제공하며, 다운스트림 발현 애플리케이션을 위해 microRNA를 포함한 성숙한 지방세포에서 총 RNA의 높은 수율(양, 순도 및 무결성)을 보장하기 위한 정보를 제공합니다. 동시에, 프로토콜은 유세포 분석법(20)에 의한 추가 분석을 위해 여러 막 결합 마커의 염색을 통해 SVF 세포에서 대식세포 하위 집합을 식별하도록 최적화되어 있습니다.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.2 mL PCR tubes</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>PCR-02-C</td>
			<td>RNase, DNase free and nonpyrogenic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.5 mL microcentrifuge tubes</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>MCT-150-C</td>
			<td>RNase, DNase free and nonpyrogenic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 mL serological pipettes</td>
			<td>Corning</td>
			<td>CLS4101-50EA</td>
			<td>Individually plastic wrapped</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 &#181;L universal pipet tip</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>T-300-L-R</td>
			<td>RNase, DNase free and nonpyrogenic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 &#181;L universal pipet tip</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>T-300-R-S</td>
			<td>RNase, DNase free and nonpyrogenic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1000 &#181;L universal pipet tip</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>T-1000-B-R</td>
			<td>RNase, DNase free and nonpyrogenic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2.0 mL microcentrifuge tube</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>MCT-200-C</td>
			<td>RNase, DNase free and nonpyrogenic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>200 &#181;L universal pipet tip</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>T-200-Y-R</td>
			<td>RNase, DNase free and nonpyrogenic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2100 Bioanalyzer Instrument</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>G2939BA</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2101 Bioanalyzer PC</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>G2953CA</td>
			<td>2100 Expert Software pre-installed in PC</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 ml Round Bottom Polystyrene Test Tube</td>
			<td>Corning</td>
			<td>352003&#160;</td>
			<td>Snap cap, sterile</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL centrifuge tubes</td>
			<td>Corning</td>
			<td>CLS430828-100EA</td>
			<td>Polipropilene, conical bottom and sterile</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acid-guanidinium-phenol based reagent</td>
			<td>Zymo Research</td>
			<td>R2050-1-200</td>
			<td>TRI Reagent or similar</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agilent RNA 6000 Nano Kit</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>5067-1511</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agilent Small RNA Kit</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>5067-1548</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>APC/Cy7 anti-human CD14 Antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>325620</td>
			<td>0.4 mg/106 cells, present on monocytes/macrophages, clone HCD14</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Baker</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>250 ml, non sterile</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine serum albumin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A3912-100G</td>
			<td>Heat shock fraction, pH 5.2, &#8805;96%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chip priming station</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>5065-9951</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase type II</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17101-015</td>
			<td>Powder</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-(+)-Glucose</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G8270-100G</td>
			<td>Powder</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Direct-zol RNA Miniprep</td>
			<td>Zymo Research</td>
			<td>R2051</td>
			<td>Supplied with 50 mL TRI reagen</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting forceps</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>Steel, serrated jaws and round ends</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissection tray</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>Stainless steel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethyl alcohol</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>E7023-500ML</td>
			<td>200&#160;proof, for molecular biology</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FACS Flow Sheath Fluid</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>342003</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FACS Lysing Solution</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>349202</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FACSAria III Flow Cytometer/Cell Sorter</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>648282</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FASCDiva Software</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>642868</td>
			<td>Software v6.0 pre-installed</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemacytometer</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>Z359629-1EA</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Manual cell counter</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mayo dissecting scisors</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>Stainless steel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microcentrifuge</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>Adjustable temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nanodrop spectrophotometer</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>ND2000LAPTOP</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Orbital shaker</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>Adjustable temperature and speed</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>P10&#160;variable volume&#160;micropipette&#160;</td>
			<td>Thermo Scientific-Finnpipette</td>
			<td>4642040</td>
			<td>1 to 10 &#956;L</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>P1000&#160;variable volume&#160;micropipette&#160;</td>
			<td>Thermo Scientific-Finnpipette</td>
			<td>4642090</td>
			<td>100 to 1000 &#956;L</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>P2&#160;variable volume&#160;micropipette&#160;</td>
			<td>Thermo Scientific-Finnpipette</td>
			<td>4642010</td>
			<td>0.2 to 2 &#956;L</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>P200&#160;variable volume&#160;micropipette&#160;</td>
			<td>Thermo Scientific-Finnpipette</td>
			<td>4642080</td>
			<td>20 to 200 &#956;L</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PCR tube storage rack</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>R96PCRFSP</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE/Cy5 anti-human HLA-DR Antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>307608</td>
			<td>0.0625 mg/106 cells, present on macrophages, clone L243</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE/Cy7 anti-human CD45 Antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>304016</td>
			<td>0.1 mg/106 cells, present on leukocytes, clone H130</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P3813-10PAK</td>
			<td>Powder, pH 7.4, for preparing 1 L solutions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette controller</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Red Blood Cells Lysis Buffer</td>
			<td>Roche</td>
			<td>11 814 389 001</td>
			<td>For preferential lysis of red blood cells from human whole blood</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Refrigerated centrifuge</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>Whit adapter for 50 mL conical tubes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Specimen container</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transfer pipette</td>
			<td>Thermo Scientific-Samco</td>
			<td>204-1S</td>
			<td>Sterile</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan Blue</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15250-061</td>
			<td>0.4% Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tube racks</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>For different tube sizes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vortex Mini Shaker</td>
			<td>Cientifica SENNA</td>
			<td>BV101</td>
			<td>-</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation of viable adipocytes and stromal vascular fraction from human visceral adipose tissue suitable for rna analysis and macrophage phenotyping

내장 지방 조직(VAT)은 주로 성숙한 지방 세포와 기질 혈관 분획(SVF) 세포로 구성된 활성 대사 기관으로, 대사, 호르몬 및 면역 과정을 조절하는 다양한 생체 활성 분자를 방출합니다. 현재로서는 이러한 과정이 지방 조직 내에서 어떻게 조절되는지는 불분명합니다. 따라서 지방 조직의 병태생리학에 대한 각 세포 집단의 기여도를 평가하는 방법의 개발이 중요합니다. 이 프로토콜은 분리 단계를 설명하고 콜라겐분해효소 효소 분해 기술을 사용하여 단일 공정에서 인간 VAT 생검에서 생존 가능한 성숙 지방세포 및 SVF를 효율적으로 분리하는 데 필요한 문제 해결 지침을 제공합니다. 또한, 이 프로토콜은 대식세포 서브세트를 식별하고 유전자 발현 연구를 위한 성숙한 지방 세포 RNA 분리를 수행하도록 최적화되어 있어 이러한 세포 집단 간의 상호 작용을 해부하는 연구를 수행할 수 있습니다. 간단히 말해서, VAT 생검은 세척하고, 기계적으로 다지고, 소화되어 단일 세포 현탁액을 생성합니다. 원심분리 후, 성숙한 지방세포는 SVF 펠릿에서 부유선광에 의해 분리됩니다. RNA 추출 프로토콜은 다운스트림 발현 분석을 위해 지방세포에서 총 RNA(miRNA 포함)의 높은 수율을 보장합니다. 동시에 SVF 세포는 유세포 분석을 통해 대식세포 하위 집합(전염증 및 항염증 표현형)을 특성화하는 데 사용됩니다.

이 프로토콜은 부분 자궁 절제술 후 건강한 임산부로부터 얻은 VAT 생검에서 단일 공정으로 생존 가능한 성숙 지방 세포 및 SVF 세포를 분리하기 위해 콜라겐분해효소 분해 후 차등 원심분리를 사용하는 효소 방법을 설명합니다. 이 경우 RNA 추출을 위해 지방세포를 사용하고 대식세포 표현형을 위해 SVF를 사용합니다.
RNA 추출 프로토콜을 통해 적절한 순도의 RNA와 성숙한 지방 ?...

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Isolation of Viable Adipocytes and Stromal Vascular Fraction from Human Visceral Adipose Tissue Suitable for RNA Analysis and Macrophage Phenotyping

이 프로토콜은 유세포 분석을 위한 여러 막 결합 마커의 염색을 통해 지방 세포에서 고품질 RNA를 얻는 방법론과 SVF-대식세포의 표현형을 포함하여 단일 공정에서 인간 내장 지방에서 생존 가능한 지방 세포 및 기질 혈관 분획-SVF 세포를 분리하기 위한 효율적인 콜라겐분해효소 분해 방법을 제공합니다.

RNA 분석 및 대식세포 표현형에 적합한 인간 내장 지방 조직에서 생존 가능한 지방 세포 및 기질 혈관 분획 분리

Visceral adipose tissue (VAT) is an active metabolic organ composed mainly of mature adipocytes and stromal vascular fraction (SVF) cells, which release ...

This protocol allows for isolation and study of viable adipocytes and stromal vascular fraction SVF cells from human visceral fat. Enzymatic digestion using collagenase ensures high yields of total RNA from mature adipocytes, including microRNAs suitable for expression analysis. Simultaneously, the method is optimized to identify macrophages by flow cytometry.This protocol provides fundamental troubleshooting guidelines for easy and efficient isolation of viable mature adipocytes and SVF cells from human VAT biopsies in a single process. After the uterine closure and hemostasis, identify greater omentum and extend it on a wet compress. Identify an avascular zone and use Kelly forceps to drill the outer side of visceral adipose tissue, or VAT.Use Ochsner forceps to clamp the proximal and distal side in the zone where VAT was drilled, and used Metzenbaum scissors to cut the tissue. Tie the greater omentum with black silk number one, then remove the Ochsner forceps and evaluate the hemostasis. To perform enzymatic digestion, cut four grams of VAT and use scissors to mince the tissue into small pieces in a dissection tray.Transfer the pieces to a new sterile 50-milliliter centrifuge tube and add 25 milliliters of digestion solution. Incubate the tube at 37 degrees Celsius for 60 minutes in an orbital shaker at 125 RPM. Then filter the digested tissue through three layers of gauze into a new sterile 50-milliliter centrifuge tube.Centrifuge the tube at 200 G for five minutes at four degrees Celsius. After centrifugation, two phases should be visible. The upper phase corresponds to mature adipocytes while SVF cells remain in the pellet.Transfer the mature adipocytes to a tube. Lyse cells by adding 1000 microliters of acid-guanidinium-phenol-based reagent and mix thoroughly with a P1000 micropipette to homogenize. Incubate the mixture for five minutes at room temperature to boost dissociation of nucleo-protein complexes.Centrifuge the cell lysate for five minutes at 12, 000 G to obtain three phases, an upper yellow phase corresponding to adipocyte lipids, a middle pink phase corresponding to nucleic acids, and a pellet with cellular debris. Carefully remove the lipid layer with a P200 micro pipette. Then transfer the middle phase into a new two-milliliter tube, taking care not to disturb the other phases.After purifying the RNA and measuring the concentration with a UV visible spectrophotometer, use an RNA integrity kit to determine the RNA integrity number. Then use the small RNA kit to determine the concentration and percent of microRNAs. Place the clip into a bioanalyzer.Dilute 10 microliters of SVF cell suspension into 90 microliters of 0.4%trypan blue solution, and apply 10 microliters to a standard hemocytometer. Count the viable cells carefully, excluding the dead cells, in four squares at the corner of the counting chamber. Transfer a total of 1 million SVF cells per milliliter to a five-milliliter round-bottom polypropylene test tube for flow cytometry and pellet the cells by centrifugation at 800 G for five minutes at four degrees Celsius.Vortex carefully to loosen the pellet and resuspend the cells in 100 microliters of PBS. Add the pre-titrated optimal concentration of each fluorochrome-conjugated monoclonal antibody specific for a cell surface antigen and mix gently, then incubate the cells for 15 minutes in the dark. Add an excess of cold PBS.And centrifuge the SVF at 400 G for five minutes at four degrees Celsius. Decant the supernatant, taking care to not disturb the pellet. Resuspend the pellet in five milliliters of sheath fluid.Then filter the cells through three layers of gauze into a new five-milliliter round-bottom polypropylene test tube. Vortex each tube briefly before analysis and count a minimum of 10, 000 events for flow analysis. This RNA extraction protocol was used to obtain adequate purity and high integrity RNA and microRNAs from mature adipocytes.The RNA integrity was assessed by an RNA quality control analyzer. Approximately 2.8 times 10 to the six nucleated cells were present per gram of visceral adipose tissue. The stromal vascular fraction cells were labeled with fluorophore-conjugated primary antibodies to identify and characterize 18 macrophages by fluorescence-activated cell-sorting analysis.Cell aggregates were eliminated from analysis by plotting the forward scatter area versus forward scatter height. Then cellular debris was excluded by gating the cells, based on the correct size and complexity, using forward scatter area and the side scatter area. To analyze macrophages, the monocyte and macrophage lineage cells were selected using CD45 and CD14 markers.Subsequently, the CD45-CD14 double positive cells were separated based on macrophage marker HLA-DR expression. Two subsets of macrophages were identified. In addition to identifying new cell phenotypes, this protocol makes it possible to use purified cell populations for future analyses, such as DNA methylation, post-translational modifications, and signaling pathways.

Research

JoVE Journal

Medicine

Isolation of Human Islets from Partially Pancreatectomized Patients

부분 Pancreatectomized 환자에서 인간 아일 레츠의 분리

Investigations into the pathogenesis of type 2 diabetes and islets of Langerhans malfunction 1 have been hampered by the limited availability of type 2 ...

연구

의학

Experimental Generation of Carcinoma-Associated Fibroblasts (CAFs) from Human Mammary Fibroblasts

Experimental Generation of Carcinoma-Associated Fibroblasts CAFs from Human Mammary Fibroblasts

인간 Mammary 섬유아 세포에서 암종 - 관련 섬유아 세포의 실험 세대 (CAFs)

Carcinomas are complex tissues comprised of neoplastic cells and a non-cancerous compartment referred to as the 'stroma'. The stroma consists of ...

Encapsulation Thermogenic Preadipocytes for Transplantation into Adipose Tissue Depots

지방 조직의 종점에 이식 캡슐화 열 발생 Preadipocytes

Cell encapsulation was developed to entrap viable cells within semi-permeable membranes. The engrafted encapsulated cells can exchange low molecular ...

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Minipigs의 활액과 골수 유래 중간 엽 줄기 세포의 분리 및 세포 표현형

Mesenchymal stem cells (MSCs) have been established after isolation from various tissue sources, including bone marrow and synovial fluid. Recently, ...

Stromal Vascular Fraction-enriched Fat Grafting for the Treatment of Symptomatic End-neuromata

Stromal 혈관 분수 농축 지방 이식 증상 끝-neuromata의 치료에 대 한

The purpose of this study was to methodically illustrate and highlight the crucial steps of stromal vascular fraction (SVF)-enriched fat grafting as a ...

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인간 지방 조직 Microvascular 함수 Videomicroscopy를 사용 하 여 평가

While obesity is closely linked to the development of metabolic and cardiovascular disease, little is known about mechanisms that govern these processes. ...

Clinical Protocol of Producing Adipose Tissue-Derived Stromal Vascular Fraction for Potential Cartilage Regeneration

지방 조직 유래 Stromal 혈관 분수 잠재적인 연골 재생을 위한 생산의 임상 프로토콜

Osteoarthritis (OA) is one of the most common debilitating disorders.&#160;Recently, numerous attempts have been made to improve the functions of the ...

Isolation of Adipose Derived Regenerative Cells for the Treatment of Erectile Dysfunction Following Radical Prostatectomy

급진적 인 전립선 절제술에 따른 발기 부전의 치료를위한 지방 유래 재생 세포의 분리

Stem cells are used in many research areas within regenerative medicine in part because these treatments can be curative rather than symptomatic. Stem ...

Technique for Obtaining Mesenchymal Stem Cell from Adipose Tissue and Stromal Vascular Fraction Characterization in Long-Term Cryopreservation

지방 조직에서 중간엽 줄기세포를 얻는 기술 및 장기 냉동 보존에서 기질 혈관 분획 특성 분석

Human mesenchymal stem cells derived from adipose tissue have become increasingly attractive as they show appropriate features and are an accessible ...

Isolation and Culture of Human Adipose-Derived Stem Cells With an Innovative Xenogeneic-Free Method for Human Therapy

인간 지방 유래 줄기 세포의 분리 및 배양 (Isolation and culture of human adipose-derived stem cells with an innovative Xenogeneic-free method for human therapy)

Considering the increasing impact of stem cell therapy, biosafety concerns have been raised regarding potential contamination or infection transmission ...