Name: in vitro time-lapse live-cell imaging to explore cell migration toward the organ of corti
Uploaded: 2020-12-04T14:45:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about In vitro Time-lapse Live-Cell Imaging to Explore Cell Migration toward the Organ of Corti at JoVE.com

Ce travail a été soutenu par des subventions de recherche (NRF-2018-R1D1A1B07050175, HURF-2017-66) de la National Research Foundation (NRF) de Corée et du Hallym University Research Fund.

Tous les protocoles de recherche impliquant des souris de l’IC ont été approuvés par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux (IACUC) de l’Université Yonsei au Wonju College of Medicine. Les expériences ont été réalisées conformément au Code d’éthique de l’Association médicale mondiale. Dans ce protocole, des souris enceintes d’ICR ont été maintenues dans un cycle clair/foncé de 12/12 h avec l’accès libre à la nourriture et à l’eau.
1. Dis...

<ol>
	<li>Brown, C. S., Emmett, S. D., Robler, S. K., Tucci, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+hearing+loss+prevention.">Global hearing loss prevention.</a> Otolaryngologic Clinics of North America. 51 (3), 575-592 (2018).</li><li>Chamberlain, G., Fox, J., Ashton, B., Middleton, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Concise+review:+mesenchymal+stem+cells:+their+phenotype,+differentiation+capacity,+immunological+features,+and+potential+for+homing.">Concise review: mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing.</a> Stem Cells. 25 (11), 2739-2749 (2007).</li><li>Fu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mesenchymal+stem+cell+migration+and+tissue+repair.">Mesenchymal stem cell migration and tissue repair.</a> Cells. 8 (8), (2019).</li><li>Uder, C., Br&#252;ckner, S., Winkler, S., Tautenhahn, H. M., Christ, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mammalian+MSC+from+selected+species:+Features+and+applications.">Mammalian MSC from selected species: Features and applications.</a> Cytometry A. 93 (1), 32-49 (2018).</li><li>Rojewski, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Translation+of+a+standardized+manufacturing+protocol+for+mesenchymal+stromal+cells:+A+systematic+comparison+of+validation+and+manufacturing+data.">Translation of a standardized manufacturing protocol for mesenchymal stromal cells: A systematic comparison of validation and manufacturing data.</a> Cytotherapy. 21 (4), 468-482 (2019).</li><li>Ullah, M., Liu, D. D., Thakor, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mesenchymal+stromal+cell+homing:+Mechanisms+and+strategies+for+improvement.">Mesenchymal stromal cell homing: Mechanisms and strategies for improvement.</a> iScience. 15, 421-438 (2019).</li><li>Ahn, Y. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strategies+to+enhance+efficacy+of+SPION-labeled+stem+cell+homing+by+magnetic+attraction:+a+systemic+review+with+meta-analysis.">Strategies to enhance efficacy of SPION-labeled stem cell homing by magnetic attraction: a systemic review with meta-analysis.</a> International Journal of Nanomedicine. 14, 4849-4866 (2019).</li><li>Alon, R., Ley, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cells+on+the+run:+shear-regulated+integrin+activation+in+leukocyte+rolling+and+arrest+on+endothelial+cells.">Cells on the run: shear-regulated integrin activation in leukocyte rolling and arrest on endothelial cells.</a> Current Opinion in Cell Biology. 20 (5), 525-532 (2008).</li><li>Sykova, E., Jendelova, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+tracking+of+stem+cells+in+brain+and+spinal+cord+injury.">In vivo tracking of stem cells in brain and spinal cord injury.</a> Progress in Brain Research. 161, 367-383 (2007).</li><li>Landegger, L. D., Dilwali, S., Stankovic, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neonatal+murine+cochlear+explant+technique+as+an+in+vitro+screening+tool+in+hearing+research.">Neonatal murine cochlear explant technique as an in vitro screening tool in hearing research.</a> Journal of Visualized Experiments. (124), e55704 (2017).</li><li>Pijuan, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+cell+migration,+invasion,+and+adhesion+assays:+From+cell+imaging+to+data+analysis.">In vitro cell migration, invasion, and adhesion assays: From cell imaging to data analysis.</a> Frontiers in Cell and Developmental Biology. 7, 107 (2019).</li><li>Rask-Andersen, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+cochlea:+anatomical+characteristics+and+their+relevance+for+cochlear+implantation.">Human cochlea: anatomical characteristics and their relevance for cochlear implantation.</a> The Anatomical Record. 295 (11), 1791-1811 (2012).</li><li>Kamiya, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mesenchymal+stem+cell+transplantation+accelerates+hearing+recovery+through+the+repair+of+injured+cochlear+fibrocytes.">Mesenchymal stem cell transplantation accelerates hearing recovery through the repair of injured cochlear fibrocytes.</a> The American Journal of Pathology. 171 (1), 214-226 (2007).</li><li>Lee, H. S., Kim, W. J., Gong, J. S., Park, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+safety+and+efficacy+of+autologous+bone+marrow-derived+mesenchymal+stem+cell+transplantation+in+sensorineural+hearing+loss+patients.">Clinical safety and efficacy of autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cell transplantation in sensorineural hearing loss patients.</a> Journal of Audiology and Otology. 22 (2), 105-109 (2018).</li><li>Vanden Berg-Foels, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+situ+tissue+regeneration:+chemoattractants+for+endogenous+stem+cell+recruitment.">In situ tissue regeneration: chemoattractants for endogenous stem cell recruitment.</a> Tissue Engineering Part B: Reviews. 20 (1), 28-39 (2014).</li><li>Parker, M., Brugeaud, A., Edge, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primary+culture+and+plasmid+electroporation+of+the+murine+organ+of+Corti.">Primary culture and plasmid electroporation of the murine organ of Corti.</a> Journal of Visualized Experiments. (36), e1685 (2010).</li><li>Ogier, J. M., Burt, R. A., Drury, H. R., Lim, R., Nayagam, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Organotypic+culture+of+neonatal+murine+inner+ear+explants.">Organotypic culture of neonatal murine inner ear explants.</a> Frontiers in Cellular Neuroscience. 13, 170 (2019).</li><li>Oshima, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanosensitive+hair+cell-like+cells+from+embryonic+and+induced+pluripotent+stem+cells.">Mechanosensitive hair cell-like cells from embryonic and induced pluripotent stem cells.</a> Cell. 141 (4), 704-716 (2010).</li></ol>

La transplantation de CSM dans des sites endommagés pour favoriser la régénération des cellules endommagées a été intensivement étudiée, et l’effet thérapeutique est évident. On a rapporté que la transplantation et la différenciation subséquente des CSM rétablissent l’audition chez les rats présentant une perte auditive induite par l’acide 3 nitropropionique13. Bien que Lee et coll. aient appliqué des CSM aux êtres humains de façon transcanadienne, ils n’ont pas obtenu d...

La perte auditive peut survenir congénitalement ou peut être causée progressivement par plusieurs facteurs, y compris le vieillissement, les médicaments et le bruit. La perte auditive est souvent difficile à traiter car il est très difficile de restaurer une fonction altérée une fois que les cellules ciliées responsables de l’audition sont endommagées1. Selon l’Organisation mondiale de la santé, on estime que 461 millions de personnes dans le monde souffrent de perte auditive, ce qui représente 6,1 % de la population mondiale. Parmi les personnes ayant une perte auditive, 93 % sont des adultes et 7 % sont des enfants.
Un certain nombre d’approches ont été tentées pour traiter la perte auditive; notamment, une approche de régénération utilisant des CSM est apparue comme un traitement prometteur. Lorsque les tissus sont endommagés, les CSM sont naturellement libérés dans le système circulatoire et migrent vers le site de la blessure où ils sécrètent diverses molécules pour former un microenvironnement qui favorise la régénération2. Par conséquent, il est important de développer une méthode pour traiter les tissus endommagés par la migration des CSM implantés de l’extérieur vers les organes cibles et leur sécrétion ultérieure de molécules qui provoquent une régulation immunitaire puissante, l’angiogenèse et l’anti-apoptose pour améliorer la restauration de la fonction cellulaire endommagée3,4,5.
Le processus de homing dans lequel les CSM migrent vers les tissus endommagés peut être l’obstacle le plus important à surmonter. Les CSM ont un mécanisme de homing systémique avec des étapes séquentielles d’attache/roulement, d’activation, d’arrêt, de transmigration/diapédèse et de migration6,7,8. À l’heure actuelle, des efforts sont en cours pour trouver des moyens d’améliorer ces étapes. Diverses stratégies, y compris la modification génétique, l’ingénierie de surface cellulaire, l’amorçage in vitro et le guidage magnétique, ont été testées6,7. En outre, plusieurs tentatives ont été faites pour promouvoir la protection et la régénération des cellules ciliées auditives en homing MSCs au site de la cochlée endommagée. Cependant, le suivi des CSM in vivo prend du temps et exige beaucoup de main-d’œuvre et nécessite des compétences hautement spécialisées9.
Pour résoudre ce problème, une méthode a été développée pour observer le homing des CSM dans la cochlée par microscopie confocale time-lapse qui photographie la migration des cellules sur plusieurs heures(Figure 1). Il a été développé au début du 20 e siècle et est récemment devenu un outil puissant pour étudier la migration de cellules spécifiques.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61947/61947fig01.jpg" style="font-size: 14px;"> Figure 1: Résumé graphique ( A) Après que l’organe disséqué de Corti est collé sur une lame de couverture en plastique à l’aide d’une pince, la lame de couverture est placée sur une parabole microscopique confocale à fond de verre de 35 mm, et(B)le cylindre de verre est positionné. (C) Après avoir rempli l’intérieur du cylindre de verre avec un milieu, (D) les CSM marqués GFP avec du milieu sont ajoutés soigneusement à l’extérieur du cylindre. (E) Après une nuit d’incubation, (F) le cylindre de verre est retiré et les images sont prises avec un microscope confocal. Abréviations : GFP = protéine fluorescente verte; CSM = cellules souches mésenchymateuses. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61947/61947fig01large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a>

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>10X PBS Buffer</td>
			<td>GenDEPOT</td>
			<td>P2100-104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% Formalin</td>
			<td>T&#38;I</td>
			<td>BPP-9004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ampicillin</td>
			<td>sigma&#160;</td>
			<td>A5354-10ml</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BSA</td>
			<td>sigma&#160;</td>
			<td>A4503-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>confocal dish</td>
			<td>SPL</td>
			<td>200350</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>confocal microscope&#160;</td>
			<td>ZEISS</td>
			<td>LSM800</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>coverslip</td>
			<td>SPL</td>
			<td>20009</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM/F12</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10565-018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum</td>
			<td>Thermo Fisher scientific</td>
			<td>16140071</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorsheild with DAPI</td>
			<td>sigma&#160;</td>
			<td>F6057</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forcep</td>
			<td>Dumont</td>
			<td>0508-L5-P0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HBSS</td>
			<td>Thermo Fisher scientific</td>
			<td>14065056</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES</td>
			<td>Thermo Fisher scientific</td>
			<td>15630080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N2 supplement</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17502-048</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phalloidin-iFluor 647 Reagent</td>
			<td>abcam</td>
			<td>ab176759</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stage Top Incubator</td>
			<td>TOKAI HIT</td>
			<td>WELSX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Strain C57BL/6 mouse messenchymal stem cells with GFP</td>
			<td>cyagen</td>
			<td>MUBMX-01101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>sigma&#160;</td>
			<td>T8787</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vitro time-lapse live-cell imaging to explore cell migration toward the organ of corti

Pour étudier les effets des cellules souches mésenchymateuses (CSM) sur la régénération et le traitement cellulaires, cette méthode suit la migration msc et les changements morphologiques après co-culture avec l’épithélium cochléaire. L’organe de Corti a été immobilisé sur une lame de couverture en plastique en appuyant sur une partie du Reissner' membrane de s générée pendant la dissection. Les CSM confinés par un cylindre de verre ont migré vers l’épithélium cochléaire lorsque le cylindre a été retiré. Leur localisation prédominante a été observée dans le modiolus de l’organe de Corti, aligné dans une direction similaire à celle des fibres nerveuses. Cependant, quelques CSM ont été localisés dans le secteur de limbus et ont montré une forme horizontalement allongée. En outre, la migration dans le secteur de cellules ciliées a été augmentée, et la morphologie des CSM a changé à de diverses formes après traitement de kanamycin. En conclusion, les résultats de cette étude indiquent que la coculture des CSM avec l’épithélium cochléaire sera utile pour le développement de la thérapeutique par l’intermédiaire de la transplantation cellulaire et pour des études de régénération cellulaire qui peuvent examiner diverses conditions et facteurs.

La migration in vitro des CSM en mode tridimensionnel a été évaluée par un système Transwell ou par la méthode traditionnelle de cicatrisation des plaies pour observer la migration en mode bidimensionnel (2D)11. L’organe de Corti est une structure complexe composée de diverses cellules telles que les cellules de Boettcher, les cellules de Claudius, les cellules de Deiters, les cellules piliers, les cellules de Hensen, les cellules ciliées externes, les ce...

Watch this Scientific Journal Video about In vitro Time-lapse Live-Cell Imaging to Explore Cell Migration toward the Organ of Corti at JoVE.com

In vitro Time-lapse Live-Cell Imaging to Explore Cell Migration toward the Organ of Corti

Dans cette étude, nous présentons une méthode d’imagerie en temps réel utilisant la microscopie confocale pour observer les cellules se déplaçant vers le tissu endommagé par incubation ex vivo avec l’épithélium cochléaire contenant l’organe de Corti.

Imagerie in vitro de cellules vivantes en accéléré pour explorer la migration cellulaire vers l’organe de Corti

To study the effects of mesenchymal stem cells (MSCs) on cell regeneration and treatment, this method tracks MSC migration and morphological changes after ...

Existing in vitro method to investigate migration of MSCs include Transwell or wound healing protocols. The method described here can be used to track migration of MSCs to explant in real time. In terms of culture of explant, the advantage of this method compared to others is that it achieves a reduction in time and cost, as well as a simplification of experimental steps.This technique can be used to observe stem cell homing to target in real time leading to development of models with optimized homing efficiency. Removal of tectorial membrane is difficult for unexperienced researchers. Depending on the development stage, understanding the right time to remove the tectorial membrane is important for the success of this protocol.Demonstrating the procedure will be Dr.Jeong-Eun Park and Dr.Su Hoon Lee, researcher professors from my lab. Begin by sterilizing the laminar flow tissue culture hood by turning on the ultraviolet light for approximately 30 minutes. Spray all surfaces with 70%ethanol prior to use and allow them to dry.Place dissection instruments in 70%ethanol for 10 minutes, then dry them before using. After decapitating a three to four-day-old mouse, soak the ahead in 70%ethanol and place it under a serial microscope in the laminar flow hood. Quickly soak the tissue in tissue dissection solution to remove the ethanol.Cut the center line of the skull with the surgical blade, then expose the skull by pulling down the skin anteriorly and cutting the external auditory canal of the ear. Cut from the anterior to the posterior part of the cranium across the eye line, then open the skull and remove the forebrain, cerebellum, and brainstem with blunt forceps. Using microforceps, separate the cochlea from the temporal bone and transfer it to a Petri dish containing tissue dissection solution.Carefully dissect all of the cochlear otic capsule leaving only the internal cochlear soft tissue. Hold the modiolus of the cochlea with forceps and the cochlear duct with another pair of forceps, then slowly separate the two tissues. Remove the stria vascularis and tectorial membrane by gently peeling them away.Place a sterilized plastic coverslip in new tissue dissection solution, then place the organ of Corti on the coverslip making sure that the basilar membrane faces downward. Immobilize the tissue by pressing the Reissner's membrane and the remaining modiolus tissue onto the coverslip with forceps. Transfer the coverslip with the embedded tissue to the center of a 35 millimeter confocal dish.Place the glass cloning cylinder on the dish with the cochlear explant positioned in the center of the dish and add 100 microliters of explant culture medium into the cylinder. Place 5, 000 bone marrow derived GFP-tagged mesenchymal stem cells or MSCs in two milliliters of culture medium outside the glass cylinder and put the dish in the incubator. After culturing the cells as described in the text manuscript, aspirate all medium inside and outside the cylinder and remove the glass cylinder from the confocal dish.Add two milliliters of fresh culture medium to the dish. Place it in a humidified incubator until ready for analysis. Use a confocal microscopy system with a stage top incubator.Turn on the confocal microscope, fluorescent light and computer. Set the conditions of the stage top incubator to 37 degrees Celsius and 5%carbon dioxide atmosphere. Place the sample dish on the dish fixing vessel, cover it with the dish fixing lid and close the chamber with the top heater lid.Adjust the zoom and focus to localize the organ of Corti and MSCs in the field of view. Open the image processing software. Under the locate option, select a 20X plan-apochromat objective or numerical aperture 0.8 and a 0.5X crop area.Under acquisition, click on smart setup and select EGFP. Open the channel tab under acquisition and set the laser power to 0.2%the pinhole to 44 micrometers, the master gain to 750 volts, and the digital gain to 1.0. Click on ESID under imaging setup and set the ESID gain to four and the digital gain to 7.5.Click on tiles and stake to produce 210 tiles. Open focus strategy and select the focus mode. Under time series, set the duration to 24 hours and the interval to 10 minutes.Under acquisition, set the frame size to 512 by 512 pixels, scan speed to eight, the direction to bidirectional, the averaging to 4X, and the bits per pixel to 16. Click on start experiment to begin the experiment. The two-dimensional path of mesenchymal stem cells or MSCs was tracked in a wound healing method by using a glass cylinder as a barrier between the MSCs and the organ of Corti.When the organ of Corti was cultured, fibroblasts grew very quickly outward from the outer hair cells in the outermost layer. Most GFP-labeled MSCs were pushed out by fast-growing fibroblasts. Nonetheless, some penetrated the layer of fibroblasts and successfully migrated to the organ of Corti.The results from 72 hours of incubation showed that MSCs migrated to the organ of Corti and were mainly localized in the modiolus and the area with the cochlear nerve fibers separated from the modiolus. The morphology of the MSCs was altered to a radial shape similar to that of nerve fibers. The cells were transformed into a linear shape along the limbus line, rather than the hair cell area.The MSCs were able to migrate and grow in the nerve fiber collection area by penetrating the various cell layers and physical barriers. When damage to hair cells was induced by a 16-hour treatment with kanamycin and cells were cultured for a further 72 hours after the removal of kanamycin, MSCs were localized not only in the modiolus, but also in the outer hair cells. Immobilizing the tissue is an important step in this protocol was the organ of Corti is attached.It does not fall off easily. This is a trivial, but helpful tip for successful explant culture. This method may be adapted to study the efficacy of exosomes secreted from MSCs.

Research

JoVE Journal

Medicine

Evaluation of Cancer Stem Cell Migration Using Compartmentalizing Microfluidic Devices and Live Cell Imaging

Évaluation de la migration des cellules souches du cancer utilisant compartimenter dispositifs microfluidiques et imagerie des cellules vivantes

In the last 40 years, the United States invested over 200 billion dollars on cancer research, resulting in only a 5% decrease in death rate. A major ...

Recherche

Médecine

MAME Models for 4D Live-cell Imaging of Tumor: Microenvironment Interactions that Impact Malignant Progression

Modèles de MAME pour 4D imagerie des cellules vivantes de la tumeur: Interactions microenvironnement Progression impact malin

We have developed 3D coculture models, which we term MAME (mammary architecture and microenvironment engineering), and used them for live-cell imaging in ...

The Use of Pharmacological-challenge fMRI in Pre-clinical Research: Application to the 5-HT System

L&#39;utilisation de l&#39;IRMf pharmacologique-défi en recherche pré-clinique: Application à la System 5-HT

Pharmacological MRI (phMRI) is a new and promising method to study the effects of substances on brain function that can ultimately be used to unravel ...

Time-lapse Imaging of Primary Preneoplastic Mammary Epithelial Cells Derived from Genetically Engineered Mouse Models of Breast Cancer

Imagerie time-lapse de primaires prénéoplasiques cellules épithéliales mammaires issues de modèles de souris génétiquement modifiées de cancer du sein

Time-lapse  imaging can be used to compare behavior of cultured primary preneoplastic  mammary epithelial cells derived from different genetically ...

The Use of Reverse Phase Protein Arrays (RPPA) to Explore Protein Expression Variation within Individual Renal Cell Cancers

The Use of Reverse Phase Protein Arrays RPPA to Explore Protein Expression Variation within Individual Renal Cell Cancers

L&#39;utilisation des puces à protéines de phase inversée (RPPA) Variation à explorer l&#39;expression des protéines dans les cancers à cellules rénales individuels

Currently there is no curative treatment for metastatic clear cell renal cell cancer, the commonest variant of the disease. A key factor in this treatment ...

Confocal Time Lapse Imaging as an Efficient Method for the Cytocompatibility Evaluation of Dental Composites

Confocale Accéléré Imaging comme une méthode efficace pour l&#39;évaluation cytocompatibilité de composites dentaires

It is generally accepted that in vitro cell material interaction is a useful criterion in the evaluation of dental material biocompatibility. The ...

Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect

Cathétérisme cardiaque chez la souris pour mesurer le volume de pression Relation: Étudier les effets Bowditch

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these ...

Leprdb Mouse Model of Type 2 Diabetes: Pancreatic Islet Isolation and Live-cell 2-Photon Imaging Of Intact Islets

Leprdb Mouse Model of Type 2 Diabetes: Pancreatic Islet Isolation and Live-cell 2-Photon Imaging Of Intact Islets

Lepr<sup&gt; Db</sup&gt; Modèle de souris de diabète de type 2: pancréatique isolement des îlots et des cellules vivantes 2-Photon Imaging d&#39;îlots intacts

Type 2 diabetes is a chronic disease affecting 382 million people in 2013, and is expected to rise to 592 million by 2035 1. During the past 2 decades, ...

Through the Looking Glass: Time-lapse Microscopy and Longitudinal Tracking of Single Cells to Study Anti-cancer Therapeutics

Through the Looking Glass: Time-lapse Microscopie et le suivi longitudinal des cellules individuelles pour l&#39;étude Therapeutics Anti-cancer

The response of single cells to anti-cancer drugs contributes significantly in determining the population response, and therefore is a major contributing ...

Extended Time-lapse Intravital Imaging of Real-time Multicellular Dynamics in the Tumor Microenvironment

Time-lapse Extended Imagerie intravitale du temps réel multicellulaire Dynamics dans le microenvironnement de la tumeur

In the tumor microenvironment, host stromal cells interact with tumor cells to promote tumor progression, angiogenesis, tumor cell dissemination and ...