Name: serial block-face scanning electron microscopy (sbf-sem) of biological tissue samples
Uploaded: 2021-03-26T14:30:00
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샘 핸런 박사, 에블린 브라운, 마가렛 곤도 박사의 뛰어난 기술 지원에 감사드립니다. 이 연구는 국립 보건원 (NIH) R01 EY-018239 및 P30 EY007551 (국립 안과 연구소)에 의해 부분적으로 지원되었으며, 부분적으로 NIH 1R15 HD084262-01 (국립 아동 건강 및 인간 발달 연구소)에 의해 지원되었습니다.

모든 동물은 비전과 안과 연구에서 동물의 사용을위한 비전 및 안과 성명서와 휴스턴 대학 의 안과 동물 취급 지침에 따라 연구 협회에 설명 된 지침에 따라 처리되었습니다. 모든 동물 절차는 처리된 기관에 의해 승인되었습니다: 마우스, 쥐, 토끼, 기니 피그 및 비인간 영장류 절차는 휴스턴 동물 관리 및 사용 위원회의 대학에 의해 승인되었습니다, 제브라피시 절차는 DePauw 대학 동물 관리 및 사...

이 방법 논문의 목적은 우리의 실험실이 안정적으로 고해상도 직렬 전자 현미경 이미지를 캡처 할 수 있도록 조직 준비 및 이미징 방법론을 강조하고, SBF-SEM 이미징을 수행 할 때 발생할 수있는 잠재적 인 함정뿐만 아니라이 결과로 이어지는 중요한 단계를 지적하는 것입니다. 이 프로토콜을 사용하여 성공하려면 조직의 적절한 고정, 시료에 중금속의 함침, 충전을 줄이기 위한 포함 수지수정, 이?...

직렬 블록 얼굴 스캐닝 전자 현미경 검사 (SBF-SEM)는 1981 년 레이튼에 의해 처음 설명되었으며 수지에 내장 된 조직의 얇은 섹션을 절단하고 이미지 할 수있는 내장 된 마이크로 토메로 보강 된 스캐닝 전자 현미경을 만들었습니다. 불행하게도, 기술적 제한은 생물학적 조직과 같은 비전도성 샘플이 허용 할 수없는 수준의 충전 (조직 샘플 내의 전자 축적)을 축적함에 따라 전도성 샘플에 의한 사용을제한하였다. 증발된 탄소 감소 조직 충전으로 컷 사이에 블록 페이스를 코팅하는 동안, 이 크게 증가된 이미징 수집 시간과 이미지 저장은 당시 컴퓨터 기술이 장치에 의해 생성된 큰 파일 크기를 관리하기에 충분하지 못했기 때문에 문제가 남아 있었다. 이 방법론은 2004년 덴크와 호르스트만이 가변 압력 챔버2를장착한 SBF-SEM을 사용하여 재검토되었다. 이를 통해 시료 내의 충전을 줄이는 이미징 챔버에 수증기를 도입하여 이미지 해상도의 손실에도 불구하고 비전도성 시료의 이미징을 실현할 수 있었습니다. 조직 제제 및 이미징 방법의 추가 개선은 이제 높은 진공을 사용하여 이미징을 허용하고, SBF-SEM 이미징은 더 이상 충전3,4,5,6,7,8,9를방출하기 위해 수증기에 의존하지 않는다. SBF-SEM은 최근 몇 년 동안 사용이 기하급수적으로 증가하는 반면, 적절한 조직 준비 및 이미징 매개 변수와 같은 기술적 측면은 이 이미징 양식의 성공을 위해 가장 중요합니다.
SBF-SEM은 3-5 nm10,11의작은 평면 해상도로 수천 개의 연속 등록 전자 현미경 이미지의 자동화 된 컬렉션을 허용합니다. 중금속으로 함침되고 수지에 내장된 조직은 다이아몬드 나이프가 장착된 초미세토메를 함유한 주사 전자 현미경(SEM) 내에 배치됩니다. 평평한 표면은 다이아몬드 칼로 절단되고, 칼은 후퇴하고, 블록의 표면은 조직 울트라 구조의 이미지를 만들기 위해 전자 빔이있는 래스터 패턴으로 스캔됩니다. 그런 다음 블록은 z축에서 지정된 양(예: 100 nm)을 제기하고"z-step"이라고 하며 프로세스가 반복되기 전에 새 표면이 절단됩니다. 이러한 방식으로 조직의 절단으로 3차원(3D) 이미지 블록이 생성된다. 이 이미징 시스템은 장치의 자동화된 특성으로부터 더 많은 이점을 누릴 수 있으므로 이미징 프로세스 중에 현미경을 방치하고 하루 만에 수백 개의 이미지를 자동화하여 수집할 수 있습니다.
SBF-SEM 이미징은 주로 백산전자를 사용하여 블록 페이스의 이미지를 형성하지만, 이차 전자는 이미징프로세스(12)중에 생성된다. 이차 전자는 블록을 탈출하지 않는 백산및 1차 빔 전자와 함께 축적될 수 있으며 블록 페이스에서 국소화된 정전기장으로 이어질 수 있는 "조직 충전"을 생성할 수 있습니다. 이러한 전자 축적은 영상을 왜곡하거나 전자가 블록으로부터 배출되는 원인이 되며 백스캐터 검출기에 의해 수집된 신호에 기여하여 신호 대 잡음비(13)를감소시킬 수 있다. 조직 충전의 수준은 전자 빔 전압 또는 강도를 감소시켜 감소 할 수 있지만, 빔 거주 시간을 감소, 이 감소 신호 대 잡음 비율(14)발생. 저전압 또는 강도의 전자 빔이 사용되거나, 빔이 짧은 시간 동안 각 픽셀 공간 내에만 거주할 수 있는 경우, 백산전자가 조직에서 배출되어 전자 검출기에 의해 포획되어 신호가 약해진다. 덴크와 호르스트만은 챔버에 수증기를 도입하여 이 문제를 처리하여 심실과 블록 페이스의 전하를 이미지 해상도로 줄였습니다. 10-100 Pa의 챔버 압력으로, 전자 빔의 일부가 이미지 잡음 및 해상도 의 손실에 기여하는 산란되지만, 이것은 또한 샘플 블록2내의 전하를 중화시 챔버에서 이온을 생성한다. 시료 블록 내에서 전하를 중화하는 방법은 이미징 중에 블록 페이스에 질소의 초점 가스 주입을 사용하거나, SBF-SEM 단계에 음수 전압을 도입하여 프로브 빔-라딩 에너지를 감소시키고 수집된 신호수집 6,7,15를증가시킵니다. 블록 표면에 전하 축적을 감소시키기 위해 단계 바이어스, 챔버 압력 또는 국소화질소 주입을 도입하는 대신, 수지 믹스에 탄소를 도입하여 수지의 전도도를 높일 수 있어 더욱 공격적인 이미징설정(16)이가능하다. 다음 일반적인 프로토콜은 2010년에 발표된 Deerinck 외 프로토콜의 적응이며, 고해상도 이미지 수집3,17,18,19를 유지하면서 조직 충전을 최소화하는 데 유용하다고 판단한 조직 제제 및 이미징 방법론에 대한수정을다룹니다. 이전에 언급된 프로토콜은 조직 처리 및 중금속 함침에 초점을 맞추고 있지만, 이 프로토콜은 SBF-SEM 연구에 내재된 이미징, 데이터 분석 및 재구성 워크플로우에 대한 통찰력을 제공합니다. 우리의 실험실에서, 이 프로토콜은 성공적으로 및 각막 및 전방 세그먼트 구조를 포함하여 조직의 다양한에 성공적으로 재현적으로 적용되었습니다, 눈꺼풀, 홍엽 및 하심자 동맥, 망막 및 시신경, 심장, 폐 및 기도, 신장, 간, 크레마스터 근육, 대뇌 피질/수질, 마우스, 쥐, 토끼, 기니 피그, 물고기, 단층 및 계층화된 세포 배양, 돼지, 비인간 영장류, 인간20,21,23,23. 사소한 변화는 특정 조직 및 응용 프로그램에 가치가있을 수 있지만,이 일반적인 프로토콜은 우리의 핵심 이미징 시설의 맥락에서 매우 재현하고 유용 입증했다.

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	<tbody>
		<tr>
			<td>1/16 x 3/8 Aluminum Rivets</td>
			<td>Industrial Rivet &#38; Fastener Co.</td>
			<td>6N37RFLAP/1100</td>
			<td>Used as specimen pins.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2.5mm Flathead Screwdriver</td>
			<td>Wiha Quality Tools</td>
			<td>27225</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetone</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>RT 10000</td>
			<td>Used to dilute silver paint.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aspartic Acid</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A8949</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calcium Chloride</td>
			<td>FisherScientific</td>
			<td>C79-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Conductive Silver Paint</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>16062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Denton Desk-II Vacuum Sputtering Device equipped with standard gold foil target</td>
			<td>Denton Vacuum</td>
			<td>N/A</td>
			<td>This is the gold-sputtering device used by the authors, alternates are acceptable.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Double-edged Razors</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>50-949-411</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Embed 812</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>14120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gatan 3View2 mounted in a Tescan Mira3 Field emission SEM</td>
			<td>Gatan &#38; Tescan</td>
			<td>N/A</td>
			<td>This is the SBF-SEM device used by the authors, alternates are acceptable.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Shell Vials, 0.5 DRAM (1.8 ml)</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>72630-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gluteraldehyde</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>16320</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gorilla Super Glue - Impact Tough</td>
			<td>NA</td>
			<td>NA</td>
			<td>Refered to as cyanoacrylate glue in text.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketjen Black</td>
			<td>HM Royal</td>
			<td>EC-600JD</td>
			<td>Refered to as carbon black in text.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KOH</td>
			<td>FisherScientific</td>
			<td>18-605-593</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lead Nitrate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>L62-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microwave</td>
			<td>Pelco</td>
			<td>BioWave Pro</td>
			<td>This is the microwave used by the authors, alternates are acceptable.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Osmium Tetroxide</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>201030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium Ferrocyanide</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P9387</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicone Embedding Mold</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>10504</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Cacodylate Trihydrate</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>12300</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Samco Transfer Pipette</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>202</td>
			<td>Used to make specimen pin storage tubes.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Swiss Pattern Needle Files</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>62115</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thiocarbohydrazide</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>223220</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Uranyl Acetate</td>
			<td>Polysciences, Inc.</td>
			<td>21447-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reconstruction Software</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amira Software</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Used to create the reconstructions found in figures 5-7 and 9.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fiji (Fiji is Just ImageJ)</td>
			<td>ImageJ.net</td>
			<td>N/A</td>
			<td>TrakEM2 can be added to Fiji to asist in manual segmentation.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscopy Image Browser (MIB)</td>
			<td>University of Helsinki, Institute of Biotechnology</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reconstuct Software</td>
			<td>Neural Systems Lab</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SuRVoS Workbench</td>
			<td>Diamond Light Source &#38; The University of Nottingham</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SyGlass</td>
			<td>IstoVisio, Inc.</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Allows for reconstruction in virtual reality and histogram-based reconstruction methods.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

serial block-face scanning electron microscopy (sbf-sem) of biological tissue samples

직렬 블록-얼굴 스캐닝 전자 현미경 검사(SBF-SEM)는 수백~수천 개의 연속 등록 초구조 이미지를 수집하여 조직 미세 해부학의 전례 없는 3차원 뷰를 제공합니다. SBF-SEM은 최근 몇 년 동안 사용이 기하급수적으로 증가하는 반면, 적절한 조직 준비 및 이미징 매개 변수와 같은 기술적 측면은 이 이미징 양식의 성공을 위해 가장 중요합니다. 이 이미징 시스템은 장치의 자동화된 특성의 이점을 통해 이미징 프로세스 중에 현미경을 방치하고 하루에 수백 개의 이미지를 자동화하여 수집할 수 있습니다. 그러나, 적절 한 조직 준비 없이 세포 울트라 구조 잘못 되 거나 오해의 소지가 결론 그려질 수 있습니다 같은 방식으로 변경할 수 있습니다. 또한 수지 임베디드 생물학적 샘플의 블록 페이스를 스캔하여 이미지가 생성되며, 이는 종종 해결해야 할 과제와 고려 사항을 제시합니다. "조직 충전"으로 알려진 이미징 중 블록 내의 전자가 축적되면 대비가 상실되고 세포 구조를 감상할 수 없습니다. 더욱이, 전자 빔 강도/전압을 증가하거나 빔 스캐닝 속도가 감소하면 이미지 해상도를 높일 수 있지만, 이는 또한 수지 블록을 손상시키고 이미징 시리즈에서 후속 이미지를 왜곡하는 불행한 부작용을 가질 수 있다. 여기서 우리는 세포 초구조를 보존하고 조직 충전을 감소시키는 생물학적 조직 샘플의 준비를 위한 일상적인 프로토콜을 제시합니다. 또한 티슈 블록에 최소한의 손상을 입히면서 고품질 의 시리얼 이미지를 빠르게 획득하기 위한 이미징 고려 사항을 제공합니다.

마우스 각막 이 프로토콜은 마우스 각막에 광범위하게 적용되었습니다. SBF-SEM 이미징을 사용하여 엘라스틴이 없는 마이크로피브릴 번들(EFMBs)의 네트워크를 사용하여 성인용 마우스 각막 내에 존재하는 것으로 나타났다. 이전에는 이 네트워크가 배아와 조기 산후 발달 중에만 존재한다고 믿었습니다. SBF-SEM은 각막 전체에 걸쳐 광범위한 EFMB 네트워크를 공개했으며, 개별 섬유는 단?...

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Serial Block-Face Scanning Electron Microscopy SBF-SEM of Biological Tissue Samples

이 프로토콜은 강력한 3D 이미징 기술인 직렬 블록-페이스 스캐닝 전자 현미경 검사(SBF-SEM)를 사용하는 일상적인 방법을 간략하게 설명합니다. SBF-SEM의 성공적인 적용은 적절한 고정 및 조직 염색 기술뿐만 아니라 이미징 설정을 신중하게 고려합니다. 이 프로토콜에는 이 프로세스 전체에 대한 실용적인 고려 사항이 포함되어 있습니다.

생물학적 조직 샘플의 직렬 블록-얼굴 스캐닝 전자 현미경 검사(SBF-SEM)

Serial block-face scanning electron microscopy (SBF-SEM) allows for the collection of hundreds to thousands of serially-registered ultrastructural images, ...

직렬 블록-얼굴 스캐닝 전자 현미경 검사는 3차원 조직 울트라 구조의 전례없는 보기를 제공하고, 이전에 불가능하거나 추구하기가 매우 어려운 질문의 호스트에 응답 할 수 있습니다. 이 기술을 통해 최소한의 조직 충전 및 아티팩트를 사용하여 3차원 데이터 집합을 빠르고 재현가능한 생산할 수 있습니다. 그리고 중요한 것은 매일 수천 개의 이미지를 자동으로 캡처 할 수 있습니다.표준 전송 전자 현미경 검사법은 우수한 세포 울트라 구조를 제공합니다. 그러나 이러한 이미지는 3차원 컨텍스트가 부족하며 해석하기가 어려울 수 있습니다. 직렬 블록-얼굴 스캐닝 전자 현미경 검사는 복잡한 프로세스의 해석을 허용하는 3차원 컨텍스트를 제공합니다.이 프로토콜은 신뢰할 수 있고 재현 가능하지만 특정 단계는 정밀도가 필요하며 이 방법론의 성공에 매우 중요합니다. 이 비디오에서는 이러한 중요한 단계를 자세히 보여 줍니다. 0.1 의 어금니 나트륨 cacodylate 버퍼에 샘플을 고정 한 후, 포함 2.5% 글루타랄데히드, 2 밀리몰라 칼슘 염화 칼슘, 샘플은 2 밀리미터 큐브보다 큰 블록으로 절단하고, 2 밀리알라 칼슘 클로라이드를 포함하는 0.1 어금니 질화 완충제로 세척한다.조직은 오스뮴 페로시아니드, 티오카르보히드라지드 및 오스뮴 테트리옥사이드로 순차적으로 염색됩니다. 오스뮴 테트산화물 인큐베이션 후, 하룻밤 사이에 섭씨 4도에서 1%수성 우라골 아세테이트로 조직을 치료하십시오. 다음날 아침, 0.066 그램의 납 질산용액을 0.03 의 아파르트 산 용액의 10 밀리리터에 녹이고, 월튼의 납 아스파트액의 pH를 5.5로 조정하기 위해 하나의 정상 수산화 칼륨을 사용합니다.오븐에서 용액을 데운 후, 실온, 이중 증류수에서 세척당 3분 동안 티슈를 5회 세척한 후, 조직을 60°C로 옮기고 월튼의 납 인산액을 섭씨 60도에서 30분 동안 데워버링합니다. 인큐베이션이 끝나면 조직을 씻고 차가운 아세톤 시리즈에서 탈수한 다음 실온 아세톤에서 10분 동안 배양합니다. 그런 다음 회전 플랫폼에 4시간 동안 아세톤에 하드 혼합 수지의 1:3 비율로 조직을 배치한 다음 회전 플랫폼에서 아세톤 용액에 대한 수지의 1:1 비율로 8시간 또는 하룻밤 사이에 침투한 다음, 회전 플랫폼에서 3:1 비율로 재톤을 아세톤에 침투합니다.다음 아침, 새로운 100%수지에서 4-8시간, 하룻밤 1회, 회전하는 플랫폼의 실온에서 4시간 동안 침투합니다. 다음 아침, 수지가 분말로 포화 될 때까지 소량의 수지와 탄소 검은 색 분말을 혼합하기 위해 나무 막대기를 사용하지만 여전히 유체이며 거칠지 않습니다. 레지던스는 두꺼운 잉크를 닮아야하며, 눈에 보이는 덩어리없이 천천히 물방울이 실리콘 고무 금형에 조직 샘플을 배치하고 수지 블록 내의 샘플 방향을 나중에 참조하기위한 이미지를 캡처 할 수 있어야합니다.시료가 제자리에 있을 때, 실리콘 몰드 의 끝에 있는 탄소 흑색 포화 수지의 조직을 커버하고, 수지의 반대쪽 끝에 곰팡이에 실험 및 조직 세부 사항을 나타내는 라벨을 부착한다. 그런 다음 금형을 섭씨 65도 오븐에 약 1시간 동안 경사로 놓습니다. 탄소 검정 주입 된 수지가 충분히 경화되면 오븐에서 금형을 제거하고 빈 우물로 시작하여 금형의 나머지 부분을 투명 수지로 채우고 라벨이 그대로 유지되는 것을 주의하십시오.시료가 투명한 수지로 덮여있을 때 실리콘 몰드을 경사가 아닌 섭씨 65도 오븐에 다시 넣고 48 시간 동안 금형을 제거하십시오. 이미징을 위해 블록을 준비하려면 수지 임베디드 시편을 미세토메 척에 놓고 테이퍼 엔드가 척에서 약 5~6밀리미터 튀어나와 놓습니다. 시편을 세트 나사로 제자리에 고정하고 시편을 열램프 아래에 놓습니다.몇 분 후, 척을 스테레오 현미경 홀더에 넣고, 조직이 보일 때까지 블록 면에 평행하게 얇은 섹션을 만들기 위해 새로운 양날면도날을 사용하여 조직이 없는 수지의 부분에 비해 반사가 적고 과립이 됩니다. 트리밍 핀 홀더에 알루미늄 시편 핀을 고정하고 핀 의 얼굴에 여러 개의 깊고 교차 스크래치를 만들어 시편을 제자리에 고정하는 데 사용되는 접착제에 대한 더 큰 표면적을 제공합니다. 시편을 열램프 아래에 놓고 면도기를 1~2밀리미터 아래로 밀어 서 두 번째, 블록에 동등한 깊이의 수직 절단을 하기 전에, 블록이 높이에서 직경 이 약 3밀리미터되도록 조직 샘플에서 초과 수지를 다듬는다.이 초기 트리밍 후, 다시 열 램프 아래 블록을 따뜻하게하고, 하나의 부드러운 컷에서 트리밍 부분 아래 약 1 밀리미터 수지 블록의 상단을 잘라 새로운 양날 면도날을 사용합니다. 절단 알루미늄 핀을 포함하는 트리밍 핀 홀더를 스테레오현미경 리셉터클에 넣고, 눈에 보이는 반월 상연을 형성하지 않고 핀을 완전히 덮도록 핀 면에 얇은 층의 시아노아크라일트 접착제를 적용합니다. 집게를 사용하여 트리밍된 조직 블록을 시편 핀 면 중앙에 몇 초 동안 누르고 접착제가 몇 분 동안 설정되도록 합니다.접착제가 철저히 건조되면 수지 블록의 제기 된 부분에 조직을 찾아 내고 양날 면도기를 사용하여 조직 샘플을 포함하는 수지의 제기 된 부분을 1 평방 밀리미터 이하의 영역으로 다듬습니다. 천천히 조심스럽게, 가능한 한 많은 과잉 수지를 제거하고 블록을 한 차원으로 약간 더 길게 두고, 최종 금속 파일을 사용하여 핀의 가장자리를 향해 조직 샘플을 포함하는 제기 된 부분의 외부 영역에서 과도한 수지를 각도로 합니다. 준비된 시료에서 수지 입자와 먼지를 제거한 후 얇은 은페인트와 금스퍼터링을 전체 시료 블록 표면에 적용합니다.코팅 후 블록 페이스 표면에서 여분의 실버 페인트를 다듬고, 적절한 라벨이 부착된 맞춤형 전송 파이펫 튜브의 구근 끝에 장착및 트리밍 블록을 배치합니다. SBF-SEM 이미징을 사용하여 성인 마우스 각막 내에서 엘라스틴이 없는 마이크로피브릴 번들 네트워크가 확인되었습니다. 이 네트워크는 각질 세포와 밀접하게 연관된 섬유와 함께 뚜렷한 층으로 구성되며, 심지어 각질 세포 표면의 얕은 질 내에 누워 있습니다.이 프로토콜의 응용 프로그램은 기질 상피 국경에서 기저 상피 세포와 융합 중앙 각막 신경의 이전에 알려지지 않은 인구의 발견으로 이어졌다. 중앙 각막의 SBF-SEM 이미징은 3D 재건을 위해 수동으로 분할될 수 있는 사지 혈관, 신경 번들 및 관련 세포의 존재를 보여줍니다. 이 이미징 절차의 일부 함정에는 너무 긴 픽셀 거주 시간을 사용하여 후속 이미지가 물결 모양과 왜곡될 수 있으며, 블록 면에서 전자의 작은 방전이 발생하여 선의 급격한 대비 변화, 칼 의 가장자리에 손상된 칼 또는 파편이 축적되어 블록 면에 칼 스크래치가 급격히 변하는 것을 포함합니다. , 확장전자빔으로부터의 유물은 샘플이 이미징 챔버에 남아 있는 동안 블록 면에 초점을 맞추고, 부적절한 조직 고정, 세포 구조 및 결합 조직의 분리로 이어지는, 조직 또는 수지 블록 내에서 다량의 충전의 결과로 영상 건너뛰기.조직 블록을 절단 할 때, 조직이 블록 내에 어디에 있는지 잘 이해하는 것이 중요합니다, 그래서 실수로 어떤 중요한 샘플 영역을 손질하지 않도록. 특정 세포 구조 또는 상호 작용의 높은 해상도 이미지가 원하는 경우, 이미징을 중단 할 수 있습니다, 현미경에서 제거 블록, 그들은 전송 전자 현미경 직렬 블록 얼굴 스캔 전자 현미경 검사전자 현미경 검사에서 볼 수있는 초미세 토메에 절단 섹션생물학적 조직의 전적으로 독특한 보기를 할 수 있습니다. 이 프로토콜을 사용하여 품질 데이터 집합을 신속하게 획득하고 탐색할 수 있는 조직의 범위를 확장할 수 있었습니다.

Research

JoVE Journal

Biology

Serial Block-Face Scanning Electron Microscopy (SBF-SEM) of Biological Tissue Samples

Fundamental Technical Elements of Freeze-fracture/Freeze-etch in Biological Electron Microscopy

생물 전자 현미경에서 동결 골절 / 동결 에칭의 기본 기술 요소

Freeze-fracture/freeze-etch describes a process whereby specimens, typically biological or nanomaterial in nature, are frozen, fractured, and replicated ...

연구

생물학

Scanning Electron Microscopy of Macerated Tissue to Visualize the Extracellular Matrix

침연 (macerated) 조직의 전자 현미경을 스캔하면 세포 외 매트릭스를 시각화하기

Fibrosis is a component of all forms of heart disease regardless of etiology, and while much progress has been made in the field of cardiac matrix ...

Studying the Supramolecular Organization of Photosynthetic Membranes within Freeze-fractured Leaf Tissues by Cryo-scanning Electron Microscopy

알아내는 주사 전자 현미경에 의해 동결 골절 잎 조직 내에서 광합성 멤브레인의 초분자 조직을 공부

Cryo-scanning electron microscopy (SEM) of freeze-fractured samples allows investigation of biological structures at near native conditions. Here, we ...

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Scanning Electron Microscopy SEM Protocols for Problematic Plant, Oomycete, and Fungal Samples

문제있는 공장, 난균 강 및 곰팡이 샘플에 대한 전자 현미경 (SEM) 프로토콜을 스캔

Common problems in the processing of biological samples for observations with the scanning electron microscope (SEM) include cell collapse, treatment of ...

Preparation and Observation of Thick Biological Samples by Scanning Transmission Electron Tomography

주사 투과 전자 단층 촬영에 의해 준비 및 두꺼운 생물 샘플의 관측

This report describes a protocol for preparing thick biological specimens for further observation using a scanning transmission electron microscope. It ...

Preparation of Prokaryotic and Eukaryotic Organisms Using Chemical Drying for Morphological Analysis in Scanning Electron Microscopy (SEM)

Preparation of Prokaryotic and Eukaryotic Organisms Using Chemical Drying for Morphological Analysis in Scanning Electron Microscopy SEM

스캐닝 전자 현미경 (SEM)에서 형태소 분석에 대 한 화학 건조를 사용 하 여 간결한 진 핵 유기 체의 준비

Scanning electron microscopy (SEM) is a widely available technique that has been applied to study biological specimens ranging from individual proteins to ...

Biological Sample Preparation by High-pressure Freezing, Microwave-assisted Contrast Enhancement, and Minimal Resin Embedding for Volume Imaging

고압 냉동, 전자 레인지를 이용한 콘트라스트 향상, 그리고 볼륨 이미지에 대 한 포함 하는 최소한의 수 지에 의해 생물학 견본 준비

The described sample preparation technique is designed to combine the best quality of ultrastructural preservation with the most suitable contrast for the ...

Targeted Studies Using Serial Block Face and Focused Ion Beam Scan Electron Microscopy

직렬 블록 얼굴 및 집중된 이온 빔 검사 전자 현미경 검사법을 사용하여 표적으로 한 연구 결과

This protocol allows for the efficient and effective imaging of cell or tissue samples in three dimensions at the resolution level of electron microscopy. ...

Array Tomography Workflow for the Targeted Acquisition of Volume Information using Scanning Electron Microscopy

스캐닝 전자 현미경 을 사용하여 대량 정보의 표적 수집을위한 배열 단층 학워크

Electron microscopy is applied in biology and medicine for imaging of cellular and structural details at nanometer resolution. Historically, Transmission ...