Name: partial heterotopic hindlimb transplantation model in rats
Uploaded: 2021-06-09T14:45:00
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Ce travail a été soutenu par le Bureau du Secrétaire adjoint à la Défense pour les affaires de santé par le biais du Programme de recherche médicale dirigé par le Congrès sous le numéro de bourse. W81XWH-17-1-0680. Les opinions, interprétations, conclusions et recommandations sont celles des auteurs et ne sont pas nécessairement approuvées par le ministère de la Défense.

Tous les animaux ont reçu des soins sans frais conformément au Guide des NIH pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire. Le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux (protocole IACUC 2017N000184) et le Bureau d’examen des soins et de l’utilisation des animaux (ACURO) ont approuvé tous les protocoles pour animaux. Des rats Lewis mâles consanguins (250-400 g) ont été utilisés pour toutes les expériences.
1. Chirurgie
<ol><li>Anesthésier les rat...

<ol>
	<li>Lanteiri, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feasibility,+reproducibility,+risks+and+benefits+of+face+transplantation:+a+prospective+study+of+outcomes.">Feasibility, reproducibility, risks and benefits of face transplantation: a prospective study of outcomes.</a> American Journal of Transplantation. 11 (2), 367-378 (2011).</li><li>Park, S. H., Eun, S. C., Kwon, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hand+transplantation:+current+status+and+immunologic+obstacles.">Hand transplantation: current status and immunologic obstacles.</a> Experimental and Clinical Transplantation. 17 (1), 97-104 (2019).</li><li>Cetrulo, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Penis+transplantation:+first+US+experience.">Penis transplantation: first US experience.</a> Annals of Surgery. 267 (5), 983-988 (2018).</li><li>Grajek, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=First+complex+allotransplantation+of+neck+organs:+larynx,+trachea,+pharynx,+esophagus,+thyroid,+parathyroid+glands,+and+anterior+cervical+wall:+a+case+report.">First complex allotransplantation of neck organs: larynx, trachea, pharynx, esophagus, thyroid, parathyroid glands, and anterior cervical wall: a case report.</a> Annals of Surgery. 266 (2), 19-24 (2017).</li><li>Pribaz, J. J., Caterson, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolution+and+limitations+of+conventional+autologous+reconstruction+of+the+head+and+neck.">Evolution and limitations of conventional autologous reconstruction of the head and neck.</a> Journal of Craniofacial Surgery. 24 (1), 99-107 (2013).</li><li>Lipson, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascularized+limb+transplantation+in+the+rat.+I.+Results+with+syngeneic+grafts.">Vascularized limb transplantation in the rat. I. Results with syngeneic grafts.</a> Transplantation. 35 (4), 293-299 (1983).</li><li>Lipson, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascularized+limb+transplantation+in+the+rat.+II.+Results+with+allogeneic+grafts.">Vascularized limb transplantation in the rat. II. Results with allogeneic grafts.</a> Transplantation. 35 (4), 300-304 (1983).</li><li>Adamson, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+modified+model+of+hindlimb+osteomyocutaneous+flap+for+the+study+of+tolerance+to+composite+tissue+allografts.">A modified model of hindlimb osteomyocutaneous flap for the study of tolerance to composite tissue allografts.</a> Microsurgery. 27 (7), 630-636 (2007).</li><li>Arav, A., Friedman, O., Natan, Y., Gur, E., Shani, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rat+hindlimb+cryopreservation+and+transplantation:+a+step+toward+"organ+banking".">Rat hindlimb cryopreservation and transplantation: a step toward "organ banking".</a> American Journal of Transplantation. 17 (11), 2820-2828 (2017).</li><li>Gok, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+an+ex-situ+limb+perfusion+system+for+a+rodent+model.">Development of an ex-situ limb perfusion system for a rodent model.</a> ASAIO Journal. 65 (2), 167-172 (2019).</li><li>Gok, E., Rojas-Pena, A., Bartlett, R. H., Ozer, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rodent+skeletal+muscle+metabolomic+changes+associated+with+static+cold+storage.">Rodent skeletal muscle metabolomic changes associated with static cold storage.</a> Transplantation Proceedings. 51 (3), 979-986 (2019).</li><li>Brandacher, G., Grahammer, J., Sucher, R., Lee, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+for+basic+and+translational+research+in+reconstructive+transplantation.">Animal models for basic and translational research in reconstructive transplantation.</a> Birth Defects Research. Part C, Embryo Today. 96 (1), 39-50 (2012).</li><li>Fleissig, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modified+heterotopic+hindlimb+osteomyocutaneous+flap+model+in+the+rat+for+translational+vascularized+composite+allotransplantation+research.">Modified heterotopic hindlimb osteomyocutaneous flap model in the rat for translational vascularized composite allotransplantation research.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (146), e59458 (2019).</li><li>Ulusal, A. E., Ulusal, B. G., Hung, L. M., Wei, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterotopic+hindlimb+allotransplantation+in+rats:+an+alternative+model+for+immunological+research+in+composite-tissue+allotransplantation.">Heterotopic hindlimb allotransplantation in rats: an alternative model for immunological research in composite-tissue allotransplantation.</a> Microsurgery. 25 (5), 410-414 (2005).</li><li>Jang, Y., Park, Y. E., Yun, C. W., Kim, D. H., Chung, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+vest-collar+as+a+rodent+collar+to+prevent+licking+and+scratching+during+experiments.">The vest-collar as a rodent collar to prevent licking and scratching during experiments.</a> Lab Anim. 50 (4), 296-304 (2016).</li><li>Kern, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+rodent+orthotopic+forelimb+transplantation+model+that+allows+for+reliable+assessment+of+functional+recovery+resulting+from+nerve+regeneration.">A novel rodent orthotopic forelimb transplantation model that allows for reliable assessment of functional recovery resulting from nerve regeneration.</a> American Journal of Transplantation. 17 (3), 622-634 (2017).</li><li>Perez-Abadia, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Low-dose+immunosuppression+in+a+rat+hind-limb+transplantation+model.">Low-dose immunosuppression in a rat hind-limb transplantation model.</a> Transplant International. 16 (12), 835-842 (2003).</li><li>Sucher, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+hind-limb+transplantation+in+rats.">Orthotopic hind-limb transplantation in rats.</a> Journal of Visualized Experiments. (41), e2022 (2010).</li><li>Fleissig, Y. Y., Beare, J. E., LeBlanc, A. J., Kaufman, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolution+of+the+rat+hind+limb+transplant+as+an+experimental+model+of+vascularized+composite+allotransplantation:+Approaches+and+advantages.">Evolution of the rat hind limb transplant as an experimental model of vascularized composite allotransplantation: Approaches and advantages.</a> SAGE Open Medicine. 8, 2050312120968721 (2020).</li><li>Lindboe, C. F., Presthus, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+denervation,+immobilization+and+cachexia+on+fibre+size+in+the+anterior+tibial+muscle+of+the+rat.">Effects of denervation, immobilization and cachexia on fibre size in the anterior tibial muscle of the rat.</a> Acta Neuropathologica. 66 (1), 42-51 (1985).</li><li>Nazzal, J. A., Johnson, T. S., Gordon, C. R., Randolph, M. A., Lee, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterotopic+limb+allotransplantation+model+to+study+skin+rejection+in+the+rat.">Heterotopic limb allotransplantation model to study skin rejection in the rat.</a> Microsurgery. 24 (6), 448-453 (2004).</li></ol>

Des modèles de transplantation de membres orthotopiques chez des rongeurs ont été décrits dans la littérature15,16,17; cependant, ils nécessitent une réparation nerveuse, une rattachement musculaire et une ostéosynthèse parfaite du fémur, ce qui peut être une étape très difficile. Ces modèles sont également associés à un taux de morbidité et de mortalité plus élevé chez les rongeurs14,</sup...

Au cours des deux dernières décennies, le VCA a évolué en tant que traitement révolutionnaire pour les patients qui souffrent de défiguration sévère, y compris le visage1,les amputations des membres supérieurs2,le pénis3et d’autres défauts tissulaires complexes4,5. Cependant, les conséquences de l’immunosuppression à vie entravent encore une application plus large de ces chirurgies reconstructives complexes. La recherche fondamentale est cruciale pour améliorer les stratégies anti-rejet. L’augmentation du temps de conservation du VCA est également essentielle pour améliorer la logistique de la transplantation et augmenter le bassin de donneurs (car les donneurs de VCA doivent remplir plus de critères que les donneurs d’organes solides, y compris le teint de la peau, la taille anatomique, le sexe). Dans ce contexte, les transplantations de membres de rat sont largement utilisées dans les études sur le rejet immunitaire des allogreffes6,7,les nouveaux protocoles d’induction de tolérance8et les études de préservation9,10,11. Par conséquent, ces modèles VCA sont un élément clé à maîtriser pour la recherche translationnelle VCA.
Les lambeaux ostéo-cutanés ont été décrits dans la littérature comme des modèles fiables pour étudier le VCA chez les rats8,12,13,14. Bien que les transplantations orthotopiques de membres entiers permettent une évaluation à long terme de la fonction du greffon, il s’agit d’une procédure longue associée à des taux de morbidité et de mortalité postopératoires plus élevés14. En revanche, les modèles de transplantation hétérotopique de membres ne sont pas fonctionnels, mais permettent des études reproductibles sur l’ACV. Les résultats postopératoires peuvent être anticipés de manière fiable avant le début d’une étude de transplantation de VCA chez le rat. Cette étude rapporte un modèle de transplantation de lambeau ostéocutané hétérotopique partiel chez le rat qui comprend des résultats et des complications possibles fréquents pouvant survenir en peropératoire et postopératoire au cours d’une période de suivi de trois semaines.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>24 GA angiocatheter</td>
			<td>BD Insyte Autoguard</td>
			<td>381412</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-0 suture Black monofilament non absorbable suture</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>1667</td>
			<td>Used to suture the E-collar to the back of the neck</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-0 suture Coated Vicryl Plus Antibacterial</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>VCP496</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adson Tissue Forceps, 11 cm, 1 x 2 Teeth with Tying Platform</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.ATK26426</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar cords</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>228000C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Black Polyamide Monofilament USP 10-0, 4 mm 3/8c</td>
			<td>AROSurgical</td>
			<td>T04A10N07-13</td>
			<td>Used to perform the microvascular anastomoses</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine HCl</td>
			<td>Pharmaceutical, Inc</td>
			<td>42023-179-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dilating Forceps</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>18131-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting Scissors 15 cm, Round Handle 8 mm diameter, Straight Slender Tapered Blade 7 mm, Lipshultz Pattern</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.SAS15RVL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Double Micro Clamps 5.5 x 1.5 mm</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>18040-22</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Elizabethan collar</td>
			<td>Braintree Scientific</td>
			<td>EC-R1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps 13.5 cm long, Flat Handle, 9 mm wide Straight Tips 0.1 mm diameter (x2)</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.JFL31</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halsey Micro Needle Holder</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>12500-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin Lock Flush Solution, USP, 100 units/mL</td>
			<td>BD PosiFlush</td>
			<td>306424</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Patterson Veterinary</td>
			<td>14043-704-06</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jewelers Bipolar Forceps Non Stick 11 cm, straight pointed tip, 0.25 mm tip diameter</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.BPNS11223</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lone Star Elastic Stays</td>
			<td>CooperSurgical</td>
			<td>3314-8G</td>
			<td>Used to retract the inguinal ligament for femoral vessels dissection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lone Star Self-Retaining Retractors</td>
			<td>CooperSurgical</td>
			<td>3301G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro-Mosquito Hemostats</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>13010-12</td>
			<td>Used to retract the inguinal fat pad distally</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holder, 15 cm Round Handle, 8 mm diameter, Superfine Curved Jaw 0.2 mm tip diameter, without lock</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.B1582</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nylon Suture Black Monolfilament 8-0, 6.5 mm 3/8c</td>
			<td>Ethilon</td>
			<td>2808G</td>
			<td>Used to ligate collateral branches on the femoral vessels</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Offset Bone Nippers</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>16101-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S&#38;T Vascular Clamps 5.5 x 1.5 mm</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>00398-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Walton scissors</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>14077-09</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

partial heterotopic hindlimb transplantation model in rats

Les allotransplantations composites vascularisées (VCA) représentent l’option de reconstruction la plus avancée pour les patients sans possibilités chirurgicales autologues après un défaut tissulaire complexe. Les transplantations faciales et faciales ont changé la vie des patients défigurés, leur donnant un nouvel organe social esthétique et fonctionnel. Malgré des résultats prometteurs, le VCA est toujours sous-performant en raison de comorbidités d’immunosuppression à vie et de complications infectieuses. Le rat est un modèle animal idéal pour les études in vivo portant sur les voies immunologiques et les mécanismes de rejet du greffon. Les rats sont également largement utilisés dans de nouvelles techniques de préservation de greffes de tissus composites, y compris les études de perfusion et de cryoconservation. Les modèles utilisés pour l’ACV chez le rat doivent être reproductibles, fiables et efficaces avec une morbidité et une mortalité postopératoires faibles. Les procédures de transplantation de membres hétérotopiques répondent à ces critères et sont plus faciles à effectuer que les greffes de membres orthotopiques. La maîtrise des modèles microchirurgicaux des rongeurs nécessite une solide expérience en microchirurgie et en soins aux animaux. Il est rapporté ici un modèle fiable et reproductible de transplantation partielle hétérotopique de lambeaux ostéocutanés chez le rat, les résultats postopératoires et les moyens de prévention des complications potentielles.

Dans cette étude mono-opérateur, 30 greffes partielles hétérotopiques syngéniques de membres ont été réalisées. Le succès a été défini au jour 21 postopératoire comme l’absence d’échec du VCA ou de complications nécessitant une euthanasie. L’évolution normale du greffon est représentée à la figure 3. La durée moyenne de l’obtention partielle des membres et de l’encart du greffon chez le receveur était de 35 et 105 minutes, respectivement; le temps moyen d’is...

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Partial Heterotopic Hindlimb Transplantation Model in Rats

Cet article présente un protocole de transplantation de lambeau ostéocutané hétérotopique partiel chez le rat et ses résultats potentiels dans le suivi à moyen terme.

Modèle de transplantation de membres postérieurs hétérotopiques partiels chez le rat

Vascularized composite allotransplantations (VCA) represent the most advanced reconstruction option for patients without autologous surgical possibilities ...

Nous présentons un modèle chirurgical fiable et reproductible de transplantation hétérotopique de membres postérieurs chez le rat. Cette technique est idéale pour les études à court terme sur la préservation ou le rejet immunitaire dans le VCA. La description étape par étape permettra aux stagiaires de maîtriser rapidement la chirurgie.Pour commencer, faites une incision circonférentielle sur la peau au-dessus de la cheville au tiers distal de la jambe. Squelettiser et cautériser l’artère saphène et la branche terminale de l’artère poplitée à l’aide de pinces bipolaires. Cautériser et couper les muscles gastrocnémiens, soléaires, tibialis antérieurs et biceps fémoraux jusqu’à ce que l’os tibial soit exposé.Faites une incision de 2,5 centimètres au pli inguinal droit et disséquez le coussinet de graisse inguinale. Utilisez un rétracteur à hameçon pour saisir le ligament inguinal. Tenez le coussinet adipeux inguinal de façon distue avec une pince à pince et rétractez le coussinet adipeux pour exposer les vaisseaux fémoraux.Disséquez les vaisseaux fémoraux, individualisez les branches de Murphy et ligatez avec des attaches en nylon 8/0. Hépariniser le rat donneur en injectant l’héparine dans la veine dorsale du pénis à l’aide d’une aiguille de calibre 27,5. Complétez l’incision cutanée autour de la hanche.Utilisez la pince bipolaire pour cautériser les muscles fémoraux du biceps et du fessier superficiel, puis cautériser et couper le nerf sciatique à mi-longueur du fémur. Exposez le fémur par voie proximale au niveau de la crête fémorale postérieure et ligaturez les vaisseaux fémoraux avec des attaches en nylon au niveau du ligament inguinal. Effectuez une artériotomie sur l’artère fémorale juste en dessous de la ligature et dilatez pour insérer l’angiocathéter de calibre 24.Cautériser et couper le muscle restant sous le pédicule pour exposer la face antérieure du fémur. Utilisez le coupe-os pour couper le tibia par voie proximale et couper le fémur aussi distentairement que possible. Rincer le membre postérieur partiel avec deux millilitres de solution saline d’héparine pour obtenir un écoulement veineux clair.Placez le membre postérieur sur la glace dans une gaze stérile jusqu’au transfert microvasculaire. Disséquez le coussinet adipeux inguinal et inclinez le coussinet adipeux inguinal distalement pour exposer les vaisseaux fémoraux. Utilisez un crochet pour rétracter le ligament inguinal et une pince de serrage pour maintenir le coussinet de graisse inguinale de manière distue.Disséquez les vaisseaux fémoraux, individualisez les branches de Murphy et ligatez avec des attaches en nylon comme démontré. Ligaturez les deux vaisseaux au-dessus des vaisseaux épigastriques à l’aide de liens en nylon. Placez les pinces de l’approximateur par voie proximale, dilatez la lentille du vaisseau et rincez avec une solution saline à l’héparine.Faites une incision sur le flanc gauche au-dessus de la hanche et créez une poche sous-cutanée avec un tunnel sous-cutané jusqu’au pli inguinal. Placez la partie proximale du membre partiel et le coussinet adipeux inguinal à travers le tunnel sous-cutané pour le transfert microvasculaire. Effectuer les anastomoses veineuses et artérielles à l’aide de sutures en nylon.Retirez les deux pinces d’approximation et observez la revascularisation du membre. Effectuer un test de traite sur les deux vaisseaux pour évaluer la perméabilité de chaque anastomose. Faites une incision cutanée longitudinale sur le côté médial du membre transplanté et insérez le greffon.Retirez l’excès de peau de la greffe et fermez la plaie avec des sutures séparées et une suture courante à l’aide de sutures résorbables 4/0. Suturer ensemble les coussinets graisseux inguinaux du membre transplanté et du receveur à l’aide de deux sutures résorbables séparées et fermer le pli inguinal après le dernier examen de l’anastomose microvasculaire. L’évolution du modèle hétérotopique des membres postérieurs a été suivie jusqu’à la fin de l’étude.La repousse des cheveux a été observée au cours de la première semaine postopératoire et la rétraction cutanée est apparue après deux semaines. L’échec de l’allotransplantation composite vascularisée peut survenir au cours de la première semaine postopératoire en raison d’une thrombose microvasculaire. La thrombose veineuse était la cause d’une euthanasie précoce dans 20% des cas, qui se sont tous produits avant le cinquième jour postopératoire.La peau apparaissait bleue et devenait plus foncée chaque jour. L’automutilation est une préoccupation sérieuse dans les greffes absurdes et survient souvent entre le deuxième et le septième jour postopératoire. S’ils sont limités à moins d’un tiers de la surface du greffon et ne concernent que la peau, le débridement chirurgical et la suture à l’aide de sutures non résorbables peuvent être discutés avec le vétérinaire du personnel.La prévention de l’automutilation repose sur l’utilisation d’un collier électronique cousu au cou jusqu’au septième jour postopératoire et le nettoyage du sang ou de la croûte sur les plaies chirurgicales de l’animal. L’autophagie sévère de plusieurs couches du greffon conduit à l’euthanasie de l’animal. Les kystes cutanés sont apparus après le 14e jour postopératoire, parfois avec un centre nécrotique cutané avant la fistule.Il est essentiel de s’assurer que le placement du greffon n’empêchera pas l’animal d’être ambulatoire et que le pédicule n’est pas plié ou serré pendant l’encart du greffon. Notre équipe a effectué des études de préservation dans les membres obtenus avant la transplantation. Les effets de différentes durées d’entreposage frigorifique statique ont été évalués ainsi que différents protocoles de perfusion des membres.

Research

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