Name: partial heterotopic hindlimb transplantation model in rats
Uploaded: 2021-06-09T14:45:00
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Diese Arbeit wurde vom Büro des stellvertretenden Verteidigungsministers für Gesundheitsangelegenheiten durch das Congressionally Directed Medical Research Program unter der Award-Nr. W81XWH-17-1-0680. Meinungen, Interpretationen, Schlussfolgerungen und Empfehlungen sind die der Autoren und werden nicht unbedingt vom Verteidigungsministerium unterstützt.

Alle Tiere erhielten eine humane Pflege gemäß dem NIH-Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren. Das Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC-Protokoll 2017N000184) und das Animal Care and Use Review Office (ACURO) genehmigten alle Tierprotokolle. Inzucht männliche Lewis-Ratten (250-400 g) wurden für alle Experimente verwendet.
1. Chirurgie
<ol><li>Betäuben Sie die Lewis-Ratten mit Isofluran-Inhalation. Induzieren Sie die Anästhesie mit 5% Isofluran in der Indu...

<ol>
	<li>Lanteiri, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feasibility,+reproducibility,+risks+and+benefits+of+face+transplantation:+a+prospective+study+of+outcomes.">Feasibility, reproducibility, risks and benefits of face transplantation: a prospective study of outcomes.</a> American Journal of Transplantation. 11 (2), 367-378 (2011).</li><li>Park, S. H., Eun, S. C., Kwon, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hand+transplantation:+current+status+and+immunologic+obstacles.">Hand transplantation: current status and immunologic obstacles.</a> Experimental and Clinical Transplantation. 17 (1), 97-104 (2019).</li><li>Cetrulo, C. 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J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolution+and+limitations+of+conventional+autologous+reconstruction+of+the+head+and+neck.">Evolution and limitations of conventional autologous reconstruction of the head and neck.</a> Journal of Craniofacial Surgery. 24 (1), 99-107 (2013).</li><li>Lipson, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascularized+limb+transplantation+in+the+rat.+I.+Results+with+syngeneic+grafts.">Vascularized limb transplantation in the rat. I. Results with syngeneic grafts.</a> Transplantation. 35 (4), 293-299 (1983).</li><li>Lipson, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascularized+limb+transplantation+in+the+rat.+II.+Results+with+allogeneic+grafts.">Vascularized limb transplantation in the rat. II. Results with allogeneic grafts.</a> Transplantation. 35 (4), 300-304 (1983).</li><li>Adamson, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+modified+model+of+hindlimb+osteomyocutaneous+flap+for+the+study+of+tolerance+to+composite+tissue+allografts.">A modified model of hindlimb osteomyocutaneous flap for the study of tolerance to composite tissue allografts.</a> Microsurgery. 27 (7), 630-636 (2007).</li><li>Arav, A., Friedman, O., Natan, Y., Gur, E., Shani, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rat+hindlimb+cryopreservation+and+transplantation:+a+step+toward+"organ+banking".">Rat hindlimb cryopreservation and transplantation: a step toward "organ banking".</a> American Journal of Transplantation. 17 (11), 2820-2828 (2017).</li><li>Gok, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+an+ex-situ+limb+perfusion+system+for+a+rodent+model.">Development of an ex-situ limb perfusion system for a rodent model.</a> ASAIO Journal. 65 (2), 167-172 (2019).</li><li>Gok, E., Rojas-Pena, A., Bartlett, R. H., Ozer, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rodent+skeletal+muscle+metabolomic+changes+associated+with+static+cold+storage.">Rodent skeletal muscle metabolomic changes associated with static cold storage.</a> Transplantation Proceedings. 51 (3), 979-986 (2019).</li><li>Brandacher, G., Grahammer, J., Sucher, R., Lee, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+for+basic+and+translational+research+in+reconstructive+transplantation.">Animal models for basic and translational research in reconstructive transplantation.</a> Birth Defects Research. Part C, Embryo Today. 96 (1), 39-50 (2012).</li><li>Fleissig, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modified+heterotopic+hindlimb+osteomyocutaneous+flap+model+in+the+rat+for+translational+vascularized+composite+allotransplantation+research.">Modified heterotopic hindlimb osteomyocutaneous flap model in the rat for translational vascularized composite allotransplantation research.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (146), e59458 (2019).</li><li>Ulusal, A. E., Ulusal, B. G., Hung, L. M., Wei, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterotopic+hindlimb+allotransplantation+in+rats:+an+alternative+model+for+immunological+research+in+composite-tissue+allotransplantation.">Heterotopic hindlimb allotransplantation in rats: an alternative model for immunological research in composite-tissue allotransplantation.</a> Microsurgery. 25 (5), 410-414 (2005).</li><li>Jang, Y., Park, Y. E., Yun, C. W., Kim, D. 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(41), e2022 (2010).</li><li>Fleissig, Y. Y., Beare, J. E., LeBlanc, A. J., Kaufman, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolution+of+the+rat+hind+limb+transplant+as+an+experimental+model+of+vascularized+composite+allotransplantation:+Approaches+and+advantages.">Evolution of the rat hind limb transplant as an experimental model of vascularized composite allotransplantation: Approaches and advantages.</a> SAGE Open Medicine. 8, 2050312120968721 (2020).</li><li>Lindboe, C. F., Presthus, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+denervation,+immobilization+and+cachexia+on+fibre+size+in+the+anterior+tibial+muscle+of+the+rat.">Effects of denervation, immobilization and cachexia on fibre size in the anterior tibial muscle of the rat.</a> Acta Neuropathologica. 66 (1), 42-51 (1985).</li><li>Nazzal, J. A., Johnson, T. S., Gordon, C. R., Randolph, M. A., Lee, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterotopic+limb+allotransplantation+model+to+study+skin+rejection+in+the+rat.">Heterotopic limb allotransplantation model to study skin rejection in the rat.</a> Microsurgery. 24 (6), 448-453 (2004).</li></ol>

Orthotopische Gliedmaßentransplantationsmodelle bei Nagetieren wurden in der Literatur15,16,17beschrieben ; Sie erfordern jedoch eine Nervenreparatur, Muskelanhaftung und eine perfekte Osteosynthese des Femurs, was ein sehr schwieriger Schritt sein kann. Diese Modelle sind auch mit einer höheren Morbiditäts- und Mortalitätsrate bei Nagetierenverbunden 14,insbesondere in der kurzfristigen Nachbeobachtu...

In den letzten zwei Jahrzehnten hat sich VCA zu einer revolutionären Behandlung für Patienten entwickelt, die schwere Entstellungen erleiden, einschließlichGesichts-1-und Oberschenkelamputationen2,Penis3und anderer komplexer Gewebedefekte4,5. Die Folgen einer lebenslangen Immunsuppression behindern jedoch immer noch eine breitere Anwendung dieser komplexen rekonstruktiven Operationen. Grundlagenforschung ist entscheidend, um Anti-Ablehnungsstrategien zu verbessern. Die Erhöhung der VCA-Konservierungszeit ist auch wichtig, um die Transplantationslogistik zu verbessern und den Spenderpool zu vergrößern (da VCA-Spender mehr Kriterien erfüllen müssen als feste Organspender, einschließlich Hautton, anatomische Größe, Geschlecht). In diesem Zusammenhang werden Gliedmaßentransplantationen bei Ratten häufig in Studien zur Immunabstoßung von Allotransplantaten6,7, neuartigen Toleranzinduktionsprotokollen8und Konservierungsstudien9,10,11verwendet. Daher sind diese VCA-Modelle ein Schlüsselelement, das es für die translationale VCA-Forschung zu beherrschen gilt.
Osteomyokutane Klappen wurden in der Literatur als zuverlässige Modelle zur Untersuchung von VCA bei Ratten8,12,13,14beschrieben. Obwohl orthotope Ganzgliedmaßentransplantationen eine langfristige Beurteilung der Transplantatfunktion ermöglichen, ist dies ein zeitaufwendiges Verfahren, das mit höheren postoperativen Morbiditäts- und Mortalitätsraten verbunden ist14. Im Gegensatz dazu sind heterotope Gliedmaßentransplantationsmodelle nicht funktionsfähig, ermöglichen aber reproduzierbare Studien zu VCA. Postoperative Ergebnisse können vor Beginn einer VCA-Transplantationsstudie an Ratten zuverlässig antizipiert werden. Diese Studie berichtet über ein partielles heterotopes osteomykutanes Lappentransplantationsmodell bei der Ratte, das häufige mögliche Ergebnisse und Komplikationen beinhaltet, die intraoperativ und postoperativ während einer Nachbeobachtungszeit von drei Wochen auftreten können.

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	<tbody>
		<tr>
			<td>24 GA angiocatheter</td>
			<td>BD Insyte Autoguard</td>
			<td>381412</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-0 suture Black monofilament non absorbable suture</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>1667</td>
			<td>Used to suture the E-collar to the back of the neck</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-0 suture Coated Vicryl Plus Antibacterial</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>VCP496</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adson Tissue Forceps, 11 cm, 1 x 2 Teeth with Tying Platform</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.ATK26426</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar cords</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>228000C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Black Polyamide Monofilament USP 10-0, 4 mm 3/8c</td>
			<td>AROSurgical</td>
			<td>T04A10N07-13</td>
			<td>Used to perform the microvascular anastomoses</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine HCl</td>
			<td>Pharmaceutical, Inc</td>
			<td>42023-179-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dilating Forceps</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>18131-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting Scissors 15 cm, Round Handle 8 mm diameter, Straight Slender Tapered Blade 7 mm, Lipshultz Pattern</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.SAS15RVL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Double Micro Clamps 5.5 x 1.5 mm</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>18040-22</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Elizabethan collar</td>
			<td>Braintree Scientific</td>
			<td>EC-R1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps 13.5 cm long, Flat Handle, 9 mm wide Straight Tips 0.1 mm diameter (x2)</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.JFL31</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halsey Micro Needle Holder</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>12500-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin Lock Flush Solution, USP, 100 units/mL</td>
			<td>BD PosiFlush</td>
			<td>306424</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Patterson Veterinary</td>
			<td>14043-704-06</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jewelers Bipolar Forceps Non Stick 11 cm, straight pointed tip, 0.25 mm tip diameter</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.BPNS11223</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lone Star Elastic Stays</td>
			<td>CooperSurgical</td>
			<td>3314-8G</td>
			<td>Used to retract the inguinal ligament for femoral vessels dissection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lone Star Self-Retaining Retractors</td>
			<td>CooperSurgical</td>
			<td>3301G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro-Mosquito Hemostats</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>13010-12</td>
			<td>Used to retract the inguinal fat pad distally</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holder, 15 cm Round Handle, 8 mm diameter, Superfine Curved Jaw 0.2 mm tip diameter, without lock</td>
			<td>ASSI</td>
			<td>ASSI.B1582</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nylon Suture Black Monolfilament 8-0, 6.5 mm 3/8c</td>
			<td>Ethilon</td>
			<td>2808G</td>
			<td>Used to ligate collateral branches on the femoral vessels</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Offset Bone Nippers</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>16101-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S&#38;T Vascular Clamps 5.5 x 1.5 mm</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>00398-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Walton scissors</td>
			<td>Fine science tools (FST)</td>
			<td>14077-09</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

partial heterotopic hindlimb transplantation model in rats

Vaskularisierte kompositative Allotransplantationen (VCA) stellen die fortschrittlichste Rekonstruktionsoption für Patienten ohne autologe Operationsmöglichkeiten nach einem komplexen Gewebedefekt dar. Gesichts- und Handtransplantationen haben das Leben entstellter Patienten verändert und ihnen ein neues ästhetisches und funktionelles soziales Organ gegeben. Trotz vielversprechender Ergebnisse ist VCA aufgrund lebenslanger Immunsuppressionskomorbiditäten und infektiöser Komplikationen immer noch unterdurchschnittlich. Die Ratte ist ein ideales Tiermodell für In-vivo-Studien, die immunologische Wege und Transplantatabstoßungsmechanismen untersuchen. Ratten werden auch häufig in neuartigen Techniken zur Konservierung von Kompositgewebetransplantaten eingesetzt, einschließlich Perfusions- und Kryokonservierungsstudien. Modelle, die für VCA bei Ratten verwendet werden, müssen reproduzierbar, zuverlässig und effizient mit geringer postoperativer Morbidität und Mortalität sein. Heterotope Gliedmaßentransplantationsverfahren erfüllen diese Kriterien und sind einfacher durchzuführen als orthotope Gliedmaßentransplantationen. Die Beherrschung mikrochirurgischer Nagetiermodelle erfordert solide Erfahrung in der Mikrochirurgie und Tierpflege. Hierin wird ein zuverlässiges und reproduzierbares Modell der partiellen heterotopen osteomyokutanen Lappentransplantation bei Ratten, die postoperativen Ergebnisse und die Mittel zur Vorbeugung potenzieller Komplikationen berichtet.

In dieser Einzeloperatorenstudie wurden 30 syngene heterotope partielle Gliedmaßentransplantationen durchgeführt. Erfolg wurde am postoperativen Tag 21 als das Fehlen von VCA-Versagen oder Komplikationen, die Eine Euthanasie erfordern, definiert. Die normale Entwicklung des Transplantats ist in Abbildung 3 dargestellt. Die mittlere Dauer für die partielle Gliedmaßenbeschaffung und den Transplantateintritt beim Empfänger beträgt 35 bzw. 105 Minuten; die mittlere Ischämiezeit betrug 105...

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Partial Heterotopic Hindlimb Transplantation Model in Rats

Dieser Artikel stellt ein partielles heterotopes osteomyokutanes Lappentransplantationsprotokoll bei Ratten und seine möglichen Ergebnisse in der mittelfristigen Nachbeobachtung vor.

Partielles heterotopes Hinterbeinein Transplantationsmodell bei Ratten

Vascularized composite allotransplantations (VCA) represent the most advanced reconstruction option for patients without autologous surgical possibilities ...

Wir präsentieren ein zuverlässiges und reproduzierbares operationsmodell der heterotopen Hinterbeinemtransplantation bei Ratten. Diese Technik ist ideal für Kurzzeitstudien zur Konservierung oder Immunabstoßung bei VCA. Die Schritt-für-Schritt-Beschreibung ermöglicht es den Auszubildenden, die Operation schnell zu meistern.Machen Sie zunächst einen umlaufenden Schnitt auf der Haut oberhalb des Knöchels am distalen Drittel des Beins. Skelettieren und kauterisieren Sie die Arteria saphenöses arterie und den terminalen Ast der Arteria poplitea mit einer bipolaren Pinzette. Kauterisieren und schneiden Sie die Muskeln Gastrocnemius, Soleus, Tibialis anterior und Bizeps femoris, bis der Tibiaknochen freigelegt ist.Machen Sie einen 2,5 Zentimeter einschnitt an der rechten Leistenfalte und sezieren Sie das Leistenfettpolster. Verwenden Sie einen Angelhakenretraktor, um das Leistenband zu greifen. Halten Sie das Leistenfettpolster distal mit einer Klemmzange und ziehen Sie das Fettpolster zurück, um die Oberschenkelgefäße freizulegen.Sezieren Sie die Oberschenkelgefäße, individualisieren Sie die Murphy-Äste und ligatieren Sie mit 8/0 Nylonbindern. Heparinisieren Sie die Spenderratte, indem Sie das Heparin mit einer 27,5-Gauge-Nadel in die Penisvene injizieren. Vervollständigen Sie den Hautschnitt um die Hüfte.Verwenden Sie die bipolare Pinzette, um die Muskeln Bizeps femoris und Gluteus superficialis zu kauterisieren, dann kauterisieren und schneiden Sie den Ischiasnerv in mittlerer Femurlänge. Legen Sie den Femur proximal auf Höhe des hinteren Oberschenkelkamms frei und ligaieren Sie die Oberschenkelgefäße mit Nylonbindern auf Höhe des Leistenbandes. Führen Sie eine Arteriotomie an der Oberschenkelarterie direkt unterhalb der Ligatur durch und erweitern Sie sich, um den 24-Gauge-Angiokatheter einzuführen.Kauterisieren und schneiden Sie den verbleibenden Muskel unter dem Pedikel, um die vordere Seite des Femurs freizulegen. Verwenden Sie den Knochenschneider, um die Tibia proximal zu schneiden und den Femur so distal wie möglich zu schneiden. Spülen Sie die partielle Hinterbeine mit zwei Millilitern Heparinsalzlösung, um einen klaren venösen Abfluss zu erhalten.Legen Sie die Hinterbeine bis zum mikrovaskulären Transfer in eine sterile Gaze auf Eis. Sezieren Sie das Leistenfettpolster und lehnen Sie das Leistenfettpolster distal zurück, um die Femurgefäße freizulegen. Verwenden Sie einen Haken, um das Leistenband und eine Klemmzange zurückzuziehen, um das Leistenfettpolster distal zu halten.Sezieren Sie die Oberschenkelgefäße, individualisieren Sie die Murphy-Äste und ligatieren Sie mit Nylonbindern, wie gezeigt. Ligatieren Sie beide Gefäße über den epigastrischen Gefäßen mit Nylonbindern. Setzen Sie die Approximatorklemmen proximal ein, erweitern Sie die Gefäßlinse und spülen Sie sie mit Heparin-Kochsalzlösung ab.Machen Sie einen Schnitt an der linken Flanke oberhalb der Hüfte und erstellen Sie eine subkutane Tasche mit einem subkutanen Tunnel zur Leistenfalte. Legen Sie den proximalen Teil der partiellen Extremität und das Leistenfettpolster durch den subkutanen Tunnel für den mikrovaskulären Transfer. Führen Sie die venösen und arteriellen Anastomosen mit Nylonnähten durch.Entfernen Sie beide Approximatorklemmen und beobachten Sie die Revaskularisierung der Extremität. Führen Sie einen Melktest an beiden Gefäßen durch, um die Durchgängigkeit jeder Anastomose zu beurteilen. Machen Sie einen Längsschnitt auf der medialen Seite der transplantierten Extremität und führen Sie das Transplantat ein.Entfernen Sie die überschüssige Haut des Transplantats und schließen Sie die Wunde mit separaten Nähten und einer laufenden Naht mit resorbierbaren 4/0-Nähten. Nähen Sie die Leistenfettpolster der transplantierten Extremität und des Empfängers mit zwei separaten resorbierbaren Nähten zusammen und schließen Sie die Leistenfalte nach der letzten Untersuchung der mikrovaskulären Anastomose. Die Entwicklung des heterotopen Hinterbeinemodells wurde bis zum Ende der Studie beobachtet.Das Nachwachsen der Haare wurde während der ersten postoperativen Woche beobachtet, und der kutane Rückzug trat nach zwei Wochen auf. Vaskularisierte zusammengesetzte Allotransplantationsversagen kann in der ersten postoperativen Woche aufgrund einer mikrovaskulären Thrombose auftreten. Venenthrombosen waren in 20% der Fälle die Ursache für die frühe Euthanasie, die alle vor dem fünften Tag der Postoperativen auftraten.Die Haut erschien blau und wurde jeden Tag dunkler. Selbstverstümmelung ist ein ernstes Problem bei unsinnigen Transplantaten und tritt oft zwischen dem zweiten und siebten Tag der Postoperativen auf. Wenn sie auf weniger als ein Drittel der Transplantatoberfläche beschränkt sind und nur die Haut betreffen, können chirurgisches Debridement und Naht mit nicht resorbierbaren Nähten mit dem Tierarzt besprochen werden.Die Verhinderung der Selbstverstümmelung beruht auf der Verwendung eines E-Kragens, der bis zum siebten Tag der Postoperation am Hals genäht ist, und der Reinigung von Blut oder Kruste an den chirurgischen Wunden des Tieres. Schwere Autophagie mehrerer Schichten des Transplantats führt zur Euthanasie des Tieres. Dermale Zysten traten nach dem postoperativen Tag 14 auf, manchmal mit einem kutanen nekrotischen Zentrum vor der Fistel.Es ist wichtig sicherzustellen, dass die Platzierung des Transplantats das Tier nicht daran hindert, ambulant zu sein, und dass der Pedikel während des Transplantateinsatzes nicht geknickt oder fest ist. Unser Team führte konservierungsstudien an den beschafften Gliedmaßen vor der Transplantation durch. Die Auswirkungen unterschiedlicher Dauer der statischen Kühllagerung wurden ebenso bewertet wie verschiedene Perfusionsprotokolle für Gliedmaßen.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Murine Model of CD40-activation of B cells

Mausmodell der CD40-Aktivierung von B-Zellen

Research on B cells has shown that CD40 activation improves their antigen presentation capacity. When stimulated with interleukin-4 and CD40 ligand ...

Forschung

Immunologie und Infektion

Orthotopic Hind-Limb Transplantation in Rats

Orthotopen Hind-Limb Transplantation in Ratten

Composite tissue allotransplantation (CTA) now represents a valid therapeutic option after the loss of a hand, forearm or digits and has become a novel ...

In vivo Imaging Method to Distinguish Acute and Chronic Inflammation

In vivo Imaging Method to Distinguish Acute and Chronic Inflammation

In-vivo-Imaging-Methode zu unterscheiden, akuten und chronischen Entzündungen

Inflammation is a fundamental aspect of many human diseases. In this video report, we demonstrate non-invasive bioluminescence imaging techniques that ...

Long Term Chronic Pseudomonas aeruginosa Airway Infection in Mice

Long Term Chronic Pseudomonas aeruginosa Airway Infection in Mice

Langzeitchronik<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; Airway-Infektion bei Mäusen

A mouse model of chronic airway infection is a key asset in cystic fibrosis (CF) research, although there are a number of concerns regarding the model ...

In Vitro and In Vivo Assessment of T, B and Myeloid Cells Suppressive Activity and Humoral Responses from Transplant Recipients

In Vitro and In Vivo Assessment of T, B and Myeloid Cells Suppressive Activity and Humoral Responses from Transplant Recipients

In Vitro und In Vivo Beurteilung der T, B und myeloische Zellen Suppressive Aktivität und humorale Reaktionen von Transplantationspatienten

The main concern in transplantation is to achieve specific tolerance through induction of regulatory cells. The understanding of tolerance mechanisms ...

A Recovery Cardiopulmonary Bypass Model Without Transfusion or Inotropic Agents in Rats

Ein Wiederherstellungsmodell kardiopulmonalen Bypass ohne Transfusion oder inotrope Substanzen bei Ratten

Cardiopulmonary bypass (CPB) is indispensable in cardiovascular surgery. Despite the dramatic refinement of CPB technique and devices, multi-organ ...

An Immunological Model for Heterotopic Heart and Cardiac Muscle Cell Transplantation in Rats

Ein immunologisches Modell für heterotopische Herz- und Herzmuskelzelltransplantation bei Ratten

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Optimization of the Cuff Technique for Murine Heart Transplantation

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Knochenmarktransplantationsverfahren bei Mäusen zur Untersuchung der klonalen Hämatopoese

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Purification and Expansion of Mouse Invariant Natural Killer T Cells for in vitro and in vivo Studies

Aufreinigung und Expansion von mausinvarianten natürlichen Killer-T-Zellen für in vitro und in vivo Studien

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