Name: in vivo assessment of microtubule dynamics and orientation in caenorhabditis elegans neurons
Uploaded: 2021-11-20T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about In vivo Assessment of Microtubule Dynamics and Orientation in Caenorhabditis elegans Neurons at JoVE.com

نشكر يشي جين وأندرو تشيشولم على الدعم الأولي والإجهاد المستخدم في الدراسة. تم الاستفادة من سلالة البكتيريا OP50 تجاريا من مركز علم الوراثة Caenorhabditis (CGC) بتمويل من مكتب المعاهد القومية للصحة لبرامج البنية التحتية للبحوث (P40 OD010440). كما نشكر دارميندرا بوري على توحيد الإجراءات التجريبية. يتم تمويل الدراسة من المنحة الأساسية للمركز الوطني لأبحاث الدماغ (بدعم من إدارة التكنولوجيا الحيوية، الحكومة الهندية)، DBT/Wellcome Trust India Alliance في وقت مبكر منحة مهنية (منحة # IA/E/18/1/504331) إلى S.D.، ويلكوم ترست-DBT الهند التحالف منحة وسيطة (منحة # IA/I/13/1/500874) إلى A.G.-R ومنحة من مجلس البحوث العلمية والهندسية (الصربية: CRG/2019/002194) إلى A.G.R.

1. مراسل سلالة: الثقافة والصيانة
ملاحظة: لقياس ديناميات microtubule والتوجه في الخلايا العصبية PLM, استخدمنا سلالة دودة التعبير EBP-2::GFP تحت لمسة الخلايا العصبية محددة المروج mec-4 (juIs338 أليل)18,25,26. نحن ?...

كان فهم ديناميكيات الميكروتبول محور تركيز رئيسي في مجال أبحاث الهيكل الخلوي على مر السنين. Microtubules الخضوع للنوى وكارثة جنبا إلى جنب مع عملية مستمرة من عدم الاستقرار الديناميكي44،45،46،47. وقد تم الحصول على ?...

الخلايا العصبية لديها بنية متقنة مع مقصورات متخصصة مثل التشعبات، والهيئات الخلية، محاور عصبية، ونقاط الاشتباك العصبي. هيكل الخلايا العصبية الخلوية تتكون من microtubules، microfilaments، و neurofilaments وتنظيمها متميزة تدعم مقصورات الخلايا العصبية هيكليا ووظيفيا1،2،3،4،5،6،7،8،9،10 . على مر السنين، تم تحديد منظمة microtubule كمحدد رئيسي للقطب العصبية وظيفة. كما الخلايا العصبية الخضوع لإعادة عرض الهيكلية أثناء التنمية أو التجديد, ديناميات microtubule والتوجه تحديد الهوية, استقطاب النقل, نمو, وتطوير مختلف مقصورات الخلايا العصبية7. ولذلك، فمن الضروري لتقييم ديناميات microtubule والتوجه في الجسم الحي لربط مع عملية إعادة عرض الخلايا العصبية.
وتتكون microtubules من protofilaments من α β توبولين heterodimers مع نهايات زائد ديناميكية ومستقرة نسبيا ناقص ينتهي11،12. وقد مكن اكتشاف مجمع تلميح زائد والبروتينات المرتبطة ملزمة نهاية منصة لتقييم منظمة microtubule13. نهاية ملزمة البروتينات (EBP) ترتبط عابر مع نهايات زائد المتزايد من microtubule وديناميات ارتباطها لنمو protofilaments microtubule14،15. بسبب الارتباط المتكرر والتفكك من مجمع تلميح زائد مع microtubule، وظيفة انتشار نقطة من EBP GFP الموسومة يظهر على أنه "المذنب" في فيلم الفاصل الزمني15،16. منذ الملاحظة الرائدة في الخلايا العصبية الثديية16، تم استخدام بروتينات الربط النهائي الموسومة بالبروتينات الفلورية لتحديد ديناميات microtubule عبر أنظمة نموذجية مختلفة وأنواع الخلايا العصبية17و18و19و20و21و22و23.
نظرا لنظامه العصبي البسيط وجسمه الشفاف ، أثبت C. elegans أنه نظام نموذجي ممتاز لدراسة إعادة عرض الخلايا العصبية أثناء التطوير والتجديد في الجسم الحي. هنا نحن وصف أساليب لتسمية, صورة, وتحليل ديناميات microtubule والنمو أثناء تطوير وتجديد الخلايا العصبية التي تعمل باللمس في C. elegans. باستخدام ترميز وراثيا EBP-2::GFP, صورنا microtubules في الخلايا العصبية PLM, مما سمح لنا لتحديد قطبية microtubules في اثنين من neurites مختلفة من هذه الخلايا العصبية24. تسمح هذه الطريقة بمراقبة المذنبات EBP وتحديد كميتها كمقياس لديناميكيات microtubule في سياقات خلوية مختلفة ، على سبيل المثال ، يمكن تقييم التغيرات المحلية في سلوك microtubule الذي يبدأ تجديد المحور بعد استئصال الاكستوم باستخدام بروتوكولنا. يمكن تكييف هذا المقايسة للتحقيق في تنظيم ديناميات microtubule في مختلف العمليات الخلوية في أنواع الخلايا المتنوعة والخلفيات الوراثية.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>CZ18975 worm strain</td>
			<td>Yishi Jin lab</td>
			<td>CZ18975</td>
			<td>Generated by Anindya Ghosh-Roy</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agarose</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A9539</td>
			<td>Mounting worms</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslip (18 mm x 18 mm)</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>474030-9010-000</td>
			<td>Mounting worms</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dry bath with heating block</td>
			<td>Neolab</td>
			<td></td>
			<td>Mounting worms</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass slides (35 mm x 25 mm)</td>
			<td>Blue Star</td>
			<td></td>
			<td>Mounting worms</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polystyrene bead solution (4.55 x 10^13 particles/ml in aqueous medium with minimal surfactant)</td>
			<td>Polysciences Inc.</td>
			<td>00876</td>
			<td>Mounting worms</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Test tubes</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Mounting worms</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OP50 bacterial strain</td>
			<td>Caenorhabditis Genetics Center (CGC)</td>
			<td>OP50</td>
			<td>Worm handling</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>60mm petri plates</td>
			<td>Praveen Scientific</td>
			<td>20440</td>
			<td>Worm handling</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aspirator/Capillary</td>
			<td>VWR</td>
			<td>53432-921</td>
			<td>Worm handling</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Incubator</td>
			<td>Panasonic</td>
			<td>MIR554E</td>
			<td>Worm handling</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Platinum wire</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Worm handling</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereomicroscope with fluorescence attachment</td>
			<td>Leica</td>
			<td>M165FC</td>
			<td>Worm handling</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.3% Sodium Chloride</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>71376</td>
			<td>Nematode Growth Medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.25% Peptone</td>
			<td>T M Media</td>
			<td>1506</td>
			<td>Nematode Growth Medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10mg/mL Cholesterol</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>C8667</td>
			<td>Nematode Growth Medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1mM Calcium chloride dihydrate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>223506</td>
			<td>Nematode Growth Medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1mM Magnesium sulphate heptahydrate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>M2773</td>
			<td>Nematode Growth Medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2% Agar</td>
			<td>T M Media</td>
			<td>1202</td>
			<td>Nematode Growth Medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>25mM Monobasic Potassium dihydrogen phosphate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P9791</td>
			<td>Nematode Growth Medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.1M Monobasic Potassium dihydrogen phosphate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P9791</td>
			<td>1X M9 buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.04M Sodium chloride</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>71376</td>
			<td>1X M9 buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.1M Ammonium chloride</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>21405</td>
			<td>1X M9 buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.2M Dibasic Disodium hydrogen phosphate heptahydrate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S9390</td>
			<td>1X M9 buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass bottles</td>
			<td>Borosil</td>
			<td></td>
			<td>Buffer storage</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>488 nm laser</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5X objective</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>63X objective</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Camera</td>
			<td>Photometrics</td>
			<td>Evolve 512 Delta</td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Computer system for Spinning Disk unit</td>
			<td>HP</td>
			<td>Intel &#174; Xeon CPU E5-2623 3.00GHz</td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Epifluorescence microscope</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>Observer.Z1</td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halogen lamp</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mercury Arc Lamp</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spinning Disk Unit</td>
			<td>Yokogawa</td>
			<td>CSU-X1</td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ZEN2 software</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td>Imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Image J (Fiji Version)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Image analysis and processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adobe Creative Cloud</td>
			<td>Adobe</td>
			<td></td>
			<td>Image analysis and processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Computer system for Image Analysis</td>
			<td>Dell</td>
			<td>Intel &#174; Core &#8482; i7-9700 CPU 3.00GHz</td>
			<td>Image processing/Representation</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vivo assessment of microtubule dynamics and orientation in caenorhabditis elegans neurons

في الخلايا العصبية، كان التوجه microtubule مقيم رئيسي لتحديد المحاور التي لديها زائد نهاية من microtubules و dendrites التي لديها عموما اتجاه مختلط. هنا نحن وصف أساليب لتسمية, صورة, وتحليل ديناميات microtubule والنمو أثناء تطوير وتجديد الخلايا العصبية التي تعمل باللمس في C. elegans. باستخدام المراسلين الفلورسنت المشفرة وراثيا من نصائح microtubule، ونحن صورت microtubules أكسنال. يمكن قياس التغيرات المحلية في سلوك microtubule الذي يبدأ تجديد المحور بعد استئصال الاكستوم باستخدام هذا البروتوكول. هذا المقايسة قابلة للتكيف مع الخلايا العصبية والخلفيات الوراثية الأخرى للتحقيق في تنظيم ديناميات microtubule في مختلف العمليات الخلوية.

وكمثال تمثيلي، وصفنا في المراقبة الحية لمذنبات EBP في الحالة الثابتة وتجديد محاور عصبية لخلايا PLM العصبية. وتقع الخلايا العصبية PLM في منطقة الذيل من الدودة مع عملية طويلة الأمامية التي تشكل المشبك وعملية قصيرة الخلفي. تنمو الخلايا العصبية PLM في الاتجاه الأمامي الخلفي بالقرب من البشرة وهي مس...

Watch this Scientific Journal Video about In vivo Assessment of Microtubule Dynamics and Orientation in Caenorhabditis elegans Neurons at JoVE.com

In vivo Assessment of Microtubule Dynamics and Orientation in Caenorhabditis elegans Neurons

وقد تم تقديم بروتوكول لتصوير microtubules الحيوية في الجسم الحي باستخدام البروتين ملزمة نهاية المسمى fluorescently. وصفنا أساليب لتسمية, صورة, وتحليل microtubules الحيوية في الخلايا العصبية الميكروتبول الجانبي الخلفي (PLM) من C. elegans.

في الجسم الحي تقييم ديناميات Microtubule والتوجه في Caenorhabditis elegans الخلايا العصبية

In neurons, microtubule orientation has been a key assessor to identify axons that have plus-end out microtubules and dendrites that generally have mixed ...

والهدف من هذا الإجراء هو تقييم تنظيم microtubule والديناميات في الجسم الحي. الخلايا العصبية هي خلايا مستقطبة مع مقصورات عصبية وdendritic ومتشابكة متميزة ، يتم الحفاظ عليها من خلال الهيكل الخلوي الأساسي. تشكل الخلايا الدقيقة غالبية الهيكل الخلوي العصبي ، وتحدد الديناميكيات والتوجه الأحداث الرئيسية أثناء تطور الخلايا العصبية ونضجها.تتكون الأنابيب الدقيقة من، ألفا وبيتا توبولين heterodimers، ومستقطبة بطبيعتها مع نهايات زائد ديناميكية للغاية ومستقرة ناقص نهايات. خلال البلمرة في الغايات الزائدة ، وهو مجمع متعدد الجزيئيات من البروتينات ملزمة نهاية ، والمنتسبين عابرة مع protofilaments وتعزيز تجميع الدرنات dimers. هذه التقنية ستساعدنا على تصور الميكروبات العصبية في الجسم الحي.باستخدام هذه التقنية، يمكن للمرء تحديد اتجاه والمعلمات الأخرى من microtubules الحيوية أثناء تطوير وتجديد الخلايا العصبية C.elegans. نحن عادة استخدام هذا المراسل لتصور ديناميات microtubule في الخلايا العصبية الحسية. ومع ذلك، يمكن للمرء أن يعبر عن هذا المراسل في أنواع الخلايا الأخرى مثل العضلات والجلد لتصور microtubules ديناميكية في هذه الخلايا.Fluorescently المسمى نهاية ملزمة البروتينات مثل EBP إلى GFP هنا ، تظهر كمذنبات. وقد ارتبطت ديناميات هذه المذنبات بالنمو المصاحب للميكروبات، ومؤشر رئيسي لقياس ديناميات الميكروتبول واتجاهه. من أجل مراقبة هذه المذنبات في نوع معين من الخلايا، يتم التعبير عن المتحولين جنسيا مع الحمض النووي من EBP-2 و GFP تحت مروج معين.للتعبير في الخلايا العصبية PLM، يتم التعبير عن هذا المتحول تحت جعل للمروج. يمكن مشاهدة هذه الديدان المعدلة وراثيا تحت مجهر ستيريو ، مع إعداد الفلورسينس قبل الفرز أو التركيب. لتركيب الديدان لتصوير المذنبات EBP، ونحن جعل 10٪ أرغوس في المخزن المؤقت M9.ووضع قطرة على شريحة زجاجية. يتم استخدام شريحة أخرى للضغط على قطرة في فيلم أن يتماسك في لوحة. نحن نستخدم 0.1 ميكرون، حبات البوليسترين كوسيلة تصاعد، يتم انتقاؤها عدد قليل من الديدان وإعادة تعليقها في حل حبة.يتم صيد زلة غطاء لشل حركة الديدان وتؤخذ للتصوير. يمكن تصوير تلك المثبتة على أي مجهر مضان مع كاميرا للتصوير عالي الدقة. تم تجهيز الإعداد مع وحدة القرص الغزل للحصول على أسرع وتقليل تبييض الصور وسمية الصورة.يتم الاحتفاظ الشريحة على خشبة المسرح ومجال الديدان تركز وتتركز باستخدام الإضاءة مشرق الميدان. يمكن استخدام هدف التكبير المنخفض مثل 5X أو 10X لهذا الغرض. يمكن إعادة تركيز الديدان على هدف تكبير عالي مثل 63X باستخدام نفس الإضاءة.ويوفر هذا الهدف دقة مكانية مثالية لتصوير المذنبات. يتم توسيط ثابت للخلية العصبية PLM تحت الإضاءة الفلورية لمنع التعرض للضوء لا مبرر له وتبييض الصورة من prum. للحصول على صورة نستخدم إرسال البرامج من المواقع.باستخدام تكوين التصوير الحي في قناة brightfield ، نركز منطقة ذيل الدودة ونركزها في حقل العرض. ويتبع ذلك تركيز الخلايا العصبية PNM باستخدام تكوين التصوير الضوئي مع ضوء الإثارة 488 نانومتر. بالنسبة لاكتساب الفاصل الزمني، يتم إنشاء إعداد تجريبي حيث يحدد وقت التعرض ومدة الفاصل الزمني والفاصل الزمني بين الإطارات المهارات الزمنية للتصوير.للقياسات الكمية بعض الأفلام من المذنبات EBP هي التي يتعين تحليلها على صورة J، وهو برنامج مفتوح المصدر. يفتح الفاصل الزمني المكتسب كخيط متعدد الصور ، يمكن معاينته كفيلم. في هذه الفاصل الزمني خاصة، يمكن رؤية المذنبات في جسم الخلية، عملية الأمامي والخلفي من الخلايا العصبية PLM.المذنبات التي تبتعد عن جسم الخلية تصنف على أنها زائد نهاية التدريجي، وتلك التي تتحرك نحو جسم الخلية تصنف على أنها ناقص نهاية التدريجي. لبدء التحليل يتم رسم خط مجزأة على المنطقة ذات الاهتمام، والتي في هذه الحالة هي العملية الداخلية للخلية العصبية PLM. يتم تحويل هذا الجزء الخط إلى kymograph باستخدام وظيفة إعادة تشريح الصور.وkymograph هو صورة الوقت المسافة مع التجاعيد قطري تمثل المذنبات تتحرك. يمكن رسم شرائح الخط المستقيم على هذه الآثار ويمكن تعيين معلمات القياس باستخدام قائمة التحليل. يمكن تحويل هذه المعلمات إلى كميات ووحدات قياسية قابلة للقياس في برنامج تحليل البيانات مثل Excel.عرض التتبع يتوافق مع طول النمو. يمثل hight مدة النمو ، وزاوية التجعد تعطي اتجاه المذنبات. ويمكن تصنيف هذه المذنبات كذلك إلى زائد نهاية التدريجي وناقص نهاية التدريجي، للعثور على التوجه النسبي لل microtubules.يمكن تكييف التعبير المعدل وراثيا عن EBTA GFP لمراقبة ديناميكيات microtubule في سياق خلوي مختلف ، مثل التجديد الجديد. لمراقبة ديناميات microtubule في المنطقة تصنيف المحاور، وأصيب المحور باستخدام ليزر femtosecond، والتي يمكن أن تقطع المحور على وجه التحديد دون التسبب في أضرار جانبية هائلة. بعد الإصابة ، يمكن استرداد الديدان على لوحات المحرك المصنفة للملاحظات اللاحقة.تظهر الخلايا العصبية PLM تجديدا قويا للكفر ، والذي يمكن ملاحظته في وقت مبكر بعد ست ساعات من الإصابة. لمنع السمية الضوئية لتجديد حقوق جديدة ، يتم إجراء التصوير الحي في مجهر قرص الغزل. ويمكن فيما بعد تحويل عمليات اقتناء المحاور المتجددة إلى كيموغراف لتحليل المذنبات.ويمكن بعد ذلك تفسير مدة واتجاه المسافة للمذنبات من حيث اتجاه وديناميات microtubule. توجهي الحرج وديناميات هي العوامل الرئيسية للعمليات الخلوية المدنية مثل تقسيم الخلية والهجرة وصيانة العمارة الخلوية. على الرغم من أن هناك العديد من الأدوات المتاحة لقياس ديناميات microtubule في قياس الجسم الحي يمكن أن يكون تحديا.Autoflorescence، سمية الصورة، على قطعة أثرية التعبير، وكثافة متغير المبلغ عنها هي بعض الصعوبات التي واجهتها أثناء المراقبة الحية للبروتينات ملزمة نهاية، لتقييم ديناميات microtubule. باستخدام معدل وراثيا متكامل مع تركيز منخفض من الحمض النووي المرحل والتصوير الإضاءة المنخفضة، وقد تناولت هذه الدراسة أساليب للتخفيف من بعض هذه التحديات. يمكن توسيع وحدات التصوير والتحليل الموصوفة هنا لتشمل المراسلين الآخرين القائمين على microtubule ونقل البروتين.هذا لا ينطبق فقط على الخلايا العصبية C.elegance، ولكن يمكن تطبيقها على أنواع الخلايا الأخرى وأنظمة النموذج.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

In vivo Assessment of Microtubule Dynamics and Orientation in Caenorhabditis elegans Neurons

Dissection and Culture of Commissural Neurons from Embryonic Spinal Cord

تشريح والثقافة من الخلايا العصبية من النخاع الشوكي صواري الجنينية

Commissural neurons have been widely used to investigate the mechanisms underlying axon guidance during embryonic spinal cord development. The cell bodies ...

In vivo Laser Axotomy in C. elegans

In vivo Laser Axotomy in C. elegans

في Axotomy الليزر المجراة في C. ايليجانس

Neurons communicate with other cells via axons and dendrites, slender membrane extensions that contain pre- or post-synaptic specializations. If a neuron ...

Retrograde Fluorescent Labeling Allows for Targeted Extracellular Single-unit Recording from Identified Neurons In vivo

Retrograde Fluorescent Labeling Allows for Targeted Extracellular Single-unit Recording from Identified Neurons In vivo

الفلورسنت وصفها الوراء يسمح لخارج الخلية المستهدفة واحدة وحدة التسجيل من الخلايا العصبية التي تم تحديدها<em&gt; في الجسم الحي</em

The overall goal of this method is to record single-unit responses from an identified population of neurons. In vivo electrophysiological recordings from ...

Functional Neuroimaging Using Ultrasonic Blood-brain Barrier Disruption and Manganese-enhanced MRI

تصوير الأعصاب وظيفية عن طريق الموجات فوق الصوتية تعطيل حاجز الدم في الدماغ والتصوير بالرنين المغناطيسي المنغنيز معززة لل

Although mice are the dominant model system for studying the genetic and molecular underpinnings of neuroscience, functional neuroimaging in mice remains ...

In vivo Neuronal Calcium Imaging in C. elegans

In vivo Neuronal Calcium Imaging in C. elegans

الكالسيوم في الجسم الحي التصوير الخلايا العصبية في C. ايليجانس

The nematode worm C. elegans is an ideal model organism  for relatively simple, low cost neuronal imaging in vivo. Its small transparent body and simple, ...

Brain Slice Biotinylation: An Ex Vivo Approach to Measure Region-specific Plasma Membrane Protein Trafficking in Adult Neurons

Brain Slice Biotinylation: An Ex Vivo Approach to Measure Region-specific Plasma Membrane Protein Trafficking in Adult Neurons

الدماغ شريحة Biotinylation: و<em&gt; فيفو السابقين</em&gt; النهج لقياس منطقة محددة بلازما بروتين غشاء الاتجار الكبار الخلايا العصبية

Regulated endocytic trafficking is the central mechanism facilitating a variety of neuromodulatory events, by dynamically controlling receptor, ion ...

Simultaneous ex vivo Functional Testing of Two Retinas by in vivo Electroretinogram System

Simultaneous ex vivo Functional Testing of Two Retinas by in vivo Electroretinogram System

متزامنة<em&gt; فيفو السابقين</em&gt; اختبار وظيفي اثنين من شبكية العين من قبل<em&gt; في الجسم الحي</em&gt; نظام مخطط كهربية

An In vivo electroretinogram (ERG) signal is composed of several overlapping components originating from different retinal cell types, as well as noise ...

Ratiometric Calcium Imaging of Individual Neurons in Behaving Caenorhabditis Elegans

Ratiometric Calcium Imaging of Individual Neurons in Behaving Caenorhabditis Elegans

تصوير راتيوميتريك الكالسيوم من الخلايا العصبية الفردية في التصرف ايليجانس كاينورهابديتيس

It has become increasingly clear that neural circuit activity in behaving animals differs substantially from that seen in anesthetized or immobilized ...

Preparations and Protocols for Whole Cell Patch Clamp Recording of Xenopus laevis Tectal Neurons

Preparations and Protocols for Whole Cell Patch Clamp Recording of Xenopus laevis Tectal Neurons

الأعمال التحضيرية وبروتوكولات "كل خلية التصحيح المشبك تسجيل" ليفيس النمو تيكتال الخلايا العصبية

The Xenopus tadpole retinotectal circuit, comprised of the retinal ganglion cells (RGCs) in the eye which form synapses directly onto neurons in the optic ...

Ballistic Labeling of Pyramidal Neurons in Brain Slices and in Primary Cell Culture

وضع العلامات البالستية للخلايا العصبية الهرمية في شرائح الدماغ وفي ثقافة الخلايا الأولية

It has been reported that the size and shape of dendritic spines is related to their structural plasticity. To identify the morphological structure of ...