Name: ex vivo optogenetic interrogation of long-range synaptic transmission and plasticity from medial prefrontal cortex to lateral entorhinal cortex
Uploaded: 2022-02-25T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Ex Vivo Optogenetic Interrogation of Long-Range Synaptic Transmission and Plasticity from Medial Prefrontal Cortex to Lateral Entorhinal Cortex at JoVE.com

Dette arbejde støttes af Wellcome-bevillingen 206401/Z/17/Z. Vi vil gerne takke Zafar Bashir for hans ekspertmentorskab og Dr. Clair Booth for teknisk bistand og kommentarer til manuskriptet.

Alle dyreforsøg blev udført i overensstemmelse med United Kingdom Animals Scientific Procedures Act (1986) og tilhørende retningslinjer samt lokale institutionelle retningslinjer.
1. Stereotaxisk viral injektion
BEMÆRK: Den nuværende protokol kræver anatomisk, men ikke postsynaptisk celletype, specificitet.
<ol><li>Vælg det passende dyr. Mandlige vildtype Lister hætteklædte rotter blev brugt i denne protokol (300-350 g, ca. 3 måneder gam...

<ol>
	<li>Martin, S., Grimwood, P., Morris, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synaptic+plasticity+and+memory:+an+evaluation+of+the+hypothesis.">Synaptic plasticity and memory: an evaluation of the hypothesis.</a> Annual Review of Neuroscience. 23, 649-711 (2000).</li><li>Poorthuis, R. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Layer-specific+modulation+of+the+prefrontal+cortex+by+nicotinic+acetylcholine+receptors.">Layer-specific modulation of the prefrontal cortex by nicotinic acetylcholine receptors.</a> Cerebral Cortex. 23 (1), 148-161 (2013).</li><li>Scala, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Layer+4+of+mouse+neocortex+differs+in+cell+types+and+circuit+organization+between+sensory+areas.">Layer 4 of mouse neocortex differs in cell types and circuit organization between sensory areas.</a> Nature Communications. 10 (1), 4174 (2019).</li><li>Nassar, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diversity+and+overlap+of+parvalbumin+and+somatostatin+expressing+interneurons+in+mouse+presubiculum.">Diversity and overlap of parvalbumin and somatostatin expressing interneurons in mouse presubiculum.</a> Frontiers in Neural Circuits. 9, 20 (2015).</li><li>Dembrow, N. C., Chitwood, R. A., Johnston, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Projection-specific+neuromodulation+of+medial+prefrontal+cortex+neurons.">Projection-specific neuromodulation of medial prefrontal cortex neurons.</a> Journal of Neuroscience. 30 (50), 16922-16937 (2010).</li><li>Whitaker, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bidirectional+modulation+of+intrinsic+excitability+in+rat+prelimbic+cortex+neuronal+ensembles+and+non-ensembles+after+operant+learning.">Bidirectional modulation of intrinsic excitability in rat prelimbic cortex neuronal ensembles and non-ensembles after operant learning.</a> Journal of Neuroscience. 37 (36), 8845-8856 (2017).</li><li>Skrede, K. K., Westgaard, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+transverse+hippocampal+slice:+a+well-defined+cortical+structure+maintained+in+vitro.">The transverse hippocampal slice: a well-defined cortical structure maintained in vitro.</a> Brain Research. 35 (2), 589-593 (1971).</li><li>van Strien, N. M., Cappaert, N. L., Witter, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+anatomy+of+memory:+an+interactive+overview+of+the+parahippocampal-hippocampal+network.">The anatomy of memory: an interactive overview of the parahippocampal-hippocampal network.</a> Nature Reviews Neuroscience. 10 (4), 272-282 (2009).</li><li>Cruikshank, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thalamic+control+of+layer+1+circuits+in+prefrontal+cortex.">Thalamic control of layer 1 circuits in prefrontal cortex.</a> Journal of Neuroscience. 32 (49), 17813-17823 (2012).</li><li>Boyden, E. S., Zhang, F., Bamberg, E., Nagel, G., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Millisecond-timescale,+genetically+targeted+optical+control+of+neural+activity.">Millisecond-timescale, genetically targeted optical control of neural activity.</a> Nature Neuroscience. 8 (9), 1263-1268 (2005).</li><li>Nagel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Channelrhodopsin-2,+a+directly+light-gated+cation-selective+membrane+channel.">Channelrhodopsin-2, a directly light-gated cation-selective membrane channel.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (24), 13940-13945 (2003).</li><li>Berndt, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-efficiency+channelrhodopsins+for+fast+neuronal+stimulation+at+low+light+levels.">High-efficiency channelrhodopsins for fast neuronal stimulation at low light levels.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (18), 7595-7600 (2011).</li><li>Cetin, A., Komai, S., Eliava, M., Seeburg, P. H., Osten, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stereotaxic+gene+delivery+in+the+rodent+brain.">Stereotaxic gene delivery in the rodent brain.</a> Nature Protocols. 1 (6), 3166-3173 (2006).</li><li>Segev, A., Garcia-Oscos, F., Kourrich, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Whole-cell+patch-clamp+recordings+in+brain+slices.">Whole-cell patch-clamp recordings in brain slices.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (112), (2016).</li><li>Booker, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparing+acute+brain+slices+from+the+dorsal+pole+of+the+hippocampus+from+adult+rodents.">Preparing acute brain slices from the dorsal pole of the hippocampus from adult rodents.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (163), (2020).</li><li>Anderson, W. W., Collingridge, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Capabilities+of+the+WinLTP+data+acquisition+program+extending+beyond+basic+LTP+experimental+functions.">Capabilities of the WinLTP data acquisition program extending beyond basic LTP experimental functions.</a> Journal of Neuroscience Methods. 162 (1-2), 346-356 (2007).</li><li>Basu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gating+of+hippocampal+activity,+plasticity,+and+memory+by+entorhinal+cortex+long-range+inhibition.">Gating of hippocampal activity, plasticity, and memory by entorhinal cortex long-range inhibition.</a> Science. 351 (6269), (2016).</li><li>Zhang, Y. P., Oertner, T. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+induction+of+synaptic+plasticity+using+a+light-sensitive+channel.">Optical induction of synaptic plasticity using a light-sensitive channel.</a> Nature Methods. 4 (2), 139-141 (2007).</li><li>Banks, P. J., Warburton, E. C., Bashir, Z. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasticity+in+prefrontal+cortex+induced+by+coordinated+synaptic+transmission+arising+from+reuniens/rhomboid+nuclei+and+hippocampus.">Plasticity in prefrontal cortex induced by coordinated synaptic transmission arising from reuniens/rhomboid nuclei and hippocampus.</a> Cerebral Cortex Communications. 2 (2), (2021).</li><li>Petreanu, L., Mao, T., Sternson, S. M., Svoboda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+subcellular+organization+of+neocortical+excitatory+connections.">The subcellular organization of neocortical excitatory connections.</a> Nature. 457 (7233), 1142-1145 (2009).</li><li>Swietek, B., Gupta, A., Proddutur, A., Santhakumar, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunostaining+of+biocytin-filled+and+processed+sections+for+neurochemical+markers.">Immunostaining of biocytin-filled and processed sections for neurochemical markers.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (118), (2016).</li><li>Jones, B. F., Witter, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cingulate+cortex+projections+to+the+parahippocampal+region+and+hippocampal+formation+in+the+rat.">Cingulate cortex projections to the parahippocampal region and hippocampal formation in the rat.</a> Hippocampus. 17 (10), 957-976 (2007).</li><li>Anastasiades, P. G., Collins, D. P., Carter, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mediodorsal+and+ventromedial+thalamus+engage+distinct+L1+circuits+in+the+prefrontal+cortex.">Mediodorsal and ventromedial thalamus engage distinct L1 circuits in the prefrontal cortex.</a> Neuron. 109 (2), 314-330 (2021).</li><li>Prakash, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two-photon+optogenetic+toolbox+for+fast+inhibition,+excitation+and+bistable+modulation.">Two-photon optogenetic toolbox for fast inhibition, excitation and bistable modulation.</a> Nature Methods. 9 (12), 1171-1179 (2012).</li><li>Mattis, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Principles+for+applying+optogenetic+tools+derived+from+direct+comparative+analysis+of+microbial+opsins.">Principles for applying optogenetic tools derived from direct comparative analysis of microbial opsins.</a> Nature Methods. 9 (2), 159-172 (2011).</li><li>Klapoetke, N. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Independent+optical+excitation+of+distinct+neural+populations.">Independent optical excitation of distinct neural populations.</a> Nature Methods. 11 (3), 338-346 (2014).</li><li>Hochbaum, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=All-optical+electrophysiology+in+mammalian+neurons+using+engineered+microbial+rhodopsins.">All-optical electrophysiology in mammalian neurons using engineered microbial rhodopsins.</a> Nature Methods. 11 (8), 825-833 (2014).</li><li>Ting, J. T., Daigle, T. L., Chen, Q., Feng, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+brain+slice+methods+for+adult+and+aging+animals:+application+of+targeted+patch+clamp+analysis+and+optogenetics.">Acute brain slice methods for adult and aging animals: application of targeted patch clamp analysis and optogenetics.</a> Methods in Molecular Biology. 1183, 221-242 (2014).</li><li>Marshel, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+layer-specific+critical+dynamics+triggering+perception.">Cortical layer-specific critical dynamics triggering perception.</a> Science. 365 (6453), (2019).</li><li>Castle, M. J., Gershenson, Z. T., Giles, A. R., Holzbaur, E. L., Wolfe, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adeno-associated+virus+serotypes+1,+8,+and+9+share+conserved+mechanisms+for+anterograde+and+retrograde+axonal+transport.">Adeno-associated virus serotypes 1, 8, and 9 share conserved mechanisms for anterograde and retrograde axonal transport.</a> Human Gene Therapy. 25 (8), 705-720 (2014).</li><li>Aschauer, D. F., Kreuz, S., Rumpel, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+transduction+efficiency,+tropism+and+axonal+transport+of+AAV+serotypes+1,+2,+5,+6,+8+and+9+in+the+mouse+brain.">Analysis of transduction efficiency, tropism and axonal transport of AAV serotypes 1, 2, 5, 6, 8 and 9 in the mouse brain.</a> PLoS One. 8 (9), 76310 (2013).</li><li>Nathanson, J. L., Yanagawa, Y., Obata, K., Callaway, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preferential+labeling+of+inhibitory+and+excitatory+cortical+neurons+by+endogenous+tropism+of+adeno-associated+virus+and+lentivirus+vectors.">Preferential labeling of inhibitory and excitatory cortical neurons by endogenous tropism of adeno-associated virus and lentivirus vectors.</a> Neuroscience. 161 (2), 441-450 (2009).</li><li>Dimidschstein, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+viral+strategy+for+targeting+and+manipulating+interneurons+across+vertebrate+species.">A viral strategy for targeting and manipulating interneurons across vertebrate species.</a> Nature Neuroscience. 19 (12), 1743-1749 (2016).</li><li>Lavin, T. K., Jin, L., Lea, N. E., Wickersham, I. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monosynaptic+tracing+success+depends+critically+on+helper+virus+concentrations.">Monosynaptic tracing success depends critically on helper virus concentrations.</a> Frontiers in Synaptic Neuroscience. 12, 6 (2020).</li><li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. 7th edn. , (2013).</li><li>Paxinos, G., Franklin, K. B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Paxinos and Franklin's the Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates, Compact. 5th edn. , (2019).</li><li>Nabavi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+a+memory+with+LTD+and+LTP.">Engineering a memory with LTD and LTP.</a> Nature. 511 (7509), 348-352 (2014).</li><li>Jackman, S. L., Beneduce, B. M., Drew, I. R., Regehr, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Achieving+high-frequency+optical+control+of+synaptic+transmission.">Achieving high-frequency optical control of synaptic transmission.</a> Journal of Neuroscience. 34 (22), 7704-7714 (2014).</li><li>Xia, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+and+Thalamic+Interaction+with+Amygdala-to-Accumbens+Synapses.">Cortical and Thalamic Interaction with Amygdala-to-Accumbens Synapses.</a> Journal of Neuroscience. 40 (37), 7119-7132 (2020).</li><li>Anisimova, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spike-timing-dependent+plasticity+rewards+synchrony+rather+than+causality.">Spike-timing-dependent plasticity rewards synchrony rather than causality.</a> BioRxiv. , (2021).</li><li>Takeuchi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Locus+coeruleus+and+dopaminergic+consolidation+of+everyday+memory.">Locus coeruleus and dopaminergic consolidation of everyday memory.</a> Nature. 537 (7620), 357-362 (2016).</li></ol>

Protokollen, der præsenteres her, beskriver en metode til at udforske meget specifikke langtrækkende synaptiske fremskrivninger ved hjælp af en kombination af stereotaxisk kirurgi til at levere AAV'er, der koder for optogenetiske konstruktioner og elektrofysiologi i akutte hjerneskiver (figur 1). Sammen tilbyder disse teknikker værktøjer til at karakterisere fysiologien og plasticiteten af hjernekredsløb med høj præcision i langtrækkende og anatomisk diffuse veje, der tidligere var ...

At forstå synapsernes fysiologi og hvordan de gennemgår plastiske ændringer er grundlæggende for at forstå, hvordan hjernenetværk fungerer i den sunde hjerne1, og hvordan de fungerer i hjernesygdomme. Brugen af akutte ex vivo hjerneskiver gør det muligt at registrere den elektriske aktivitet af synapser fra enkelte neuroner med et højt signal-støj-forhold ved hjælp af helcelle-patch-clamp-optagelser. Kontrol af membranpotentiale og ligetil farmakologisk manipulation tillader isolering af receptorundertyper. Disse optagelser kan foretages med udsøgt specificitet for at identificere det postsynaptiske neuron, herunder laminær og subregional position2, cellulær morfologi3, tilstedeværelse af molekylære markører4, dets afferente fremskrivninger5, eller endda hvis det for nylig var aktivt6.
At opnå specificitet af præsynaptiske input er dog noget mere udfordrende. Den konventionelle metode har brugt stimuleringselektroder til at ophidse axonerne, der løber i en bestemt lamina. Et eksempel på dette er i hippocampus, hvor lokal stimulering i stratum radiatum aktiverer synapser, der projicerer fra CA3 til CA1-underfeltet7. I dette tilfælde opnås præsynaptisk specificitet, da CA3-input repræsenterer det eneste excitatoriske input placeret inden for stratum radiatum, der projicerer til CA1 pyramideceller8. Denne høje grad af inputspecificitet, der kan opnås med konventionel elektrisk præsynaptisk aktivering af CA3-CA1-axoner, er imidlertid en undtagelse, der afspejles i den intense undersøgelse, som denne synapse har været udsat for. I andre hjerneområder eksisterer axoner fra flere afferente veje sammen i den samme lamina, for eksempel i lag 1 af neocortex9, hvilket gør inputspecifik præsynaptisk stimulering umulig med konventionelle stimulerende elektroder. Dette er problematisk, da forskellige synaptiske input kan have divergerende fysiologiske egenskaber; Derfor kan deres co-stimulering føre til fejlkarakterisering af synaptisk fysiologi.
Fremkomsten af optogenetik, den genetiske kodning af lysfølsomme membranproteiner (opsiner) såsom channelrhodopsin-2 (ChR2), har muliggjort en enorm udvidelse af mulighederne for at studere isolerede synaptiske fremskrivninger mellem hjerneområder10,11. Her beskriver vi en generaliserbar og billig løsning til at studere langtrækkende synaptisk fysiologi og plasticitet. De optogenetiske konstruktioner leveres på en meget specifik måde ved hjælp af virale vektorer, der giver mulighed for ekstremt præcis kontrol af det præsynaptiske område af interesse. Efferente fremskrivninger vil udtrykke den lysaktiverede kanal, der muliggør aktivering af disse fibre i en målregion. Således kan langtrækkende, anatomisk diffuse veje, der ikke kan aktiveres uafhængigt af traditionel, ikke-specifik, elektrisk stimulering, studeres.
Vi beskriver, som et eksempel vej, transduktion af mediale præfrontale cortex (mPFC) med adeno-associerede vira (AAV'er), der koder for excitatoriske kation-kanal opsiner. Vi beskriver derefter forberedelsen af akutte skiver fra lateral entorhinal cortex (LEC), patch-clamp-optagelser fra lag 5 LEC pyramidale neuroner og let fremkaldt aktivering af glutamatergiske mPFC-LEC-fremskrivninger (figur 1). Vi beskriver også den histologiske vurdering af injektionsstedet for at bekræfte placeringen af det præsynaptiske område af interesse og identifikation af postsynaptisk cellemorfologi.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.2 mL tube</td>
			<td>Fisher Scientific Ltd</td>
			<td>12134102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 &#181;L pipette</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>FD10001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24 well plate</td>
			<td>SARSTEDT</td>
			<td>83.3922</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3 way luer valve</td>
			<td>Cole-Parmer</td>
			<td>WZ-30600-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3,3&#8242;-Diaminobenzidine (DAB) substrate</td>
			<td>Vector Laboratories</td>
			<td>SK-4105</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>40x objective</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>LUMPLFLN40XW</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-aminopyridine</td>
			<td>Hello Bio</td>
			<td>HB1073</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4x objective</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>PLN4X/0.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AAV9-CaMKiia-hChR2(E123T/T159C)-mCherry</td>
			<td>Addgene</td>
			<td>35512</td>
			<td>Viral titre: 3.3x1013 GC/ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Achromatic lens</td>
			<td>Edmund Optics</td>
			<td>49363</td>
			<td>Focusses visual spectrum and near-IR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Benchtop microcentrifuge</td>
			<td>Benchmark Scientific</td>
			<td>C1005*</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Biocytin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>B4261</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Borosillicate glass capillary</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>G150F-6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Burr</td>
			<td>Fine science tools</td>
			<td>19008-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CaCl2</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C5670</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Camera - Qimaging Retiga Electro</td>
			<td>Photometrics</td>
			<td>01-ELECTRO-M-14-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carbachol</td>
			<td>Tocris</td>
			<td>2810</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chlorhexidine surgical scrub</td>
			<td>Vetasept</td>
			<td>XHG008</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clippers</td>
			<td>Andis</td>
			<td>22445</td>
			<td>AGC Super 2-Speed Detachable Blade Clipper</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collimation condenser lens</td>
			<td>ThorLabs</td>
			<td>ACL2520-A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslips</td>
			<td>Fisher Scientific Ltd</td>
			<td>10011913</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cryostat</td>
			<td>Leica</td>
			<td>CM3050 S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CsMeSO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C1426</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cyanoacrylate glue</td>
			<td>Rapid Electronics Ltd</td>
			<td>84-4557</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Data acquisition device</td>
			<td>National Instruments</td>
			<td>USB-6341 BNC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-glucose</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G8270</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dichroic mirror 500 nm long-pass</td>
			<td>Edmund Optics</td>
			<td>69899</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dichroic mirror 600 nm long-pass</td>
			<td>Edmund Optics</td>
			<td>69901</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dichroic mirror cube</td>
			<td>ThorLabs</td>
			<td>CM1-DCH/M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EGTA</td>
			<td>Millpore</td>
			<td>324626</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrode holder with side port</td>
			<td>HEKA</td>
			<td>895150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Emission filter</td>
			<td>Chroma</td>
			<td>59022m</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Excitation filter</td>
			<td>Chroma</td>
			<td>ET570/20x</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye gel</td>
			<td>Dechra</td>
			<td>Lubrithal</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine paint brush</td>
			<td>Scientific Laboratory Supplies</td>
			<td>BRU2052</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Guillotine</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>DCAP</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>H3375</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrogen peroxide solution</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>H1009</td>
			<td>30% (w/w)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Henry Schein</td>
			<td>988-3245</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopentane</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M32631</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KCl</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P3911</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>k-gluconate</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G4500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kinematic fluorescence filter cube</td>
			<td>ThorLabs</td>
			<td>DFM1T1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LED driver</td>
			<td>ThorLabs</td>
			<td>LEDD1B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lidocaine ointment</td>
			<td>Teva</td>
			<td>80007150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgATP</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A9187</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgCl</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M2670</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgSO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M7506</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro drill</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td>75-1887</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microelectrode puller</td>
			<td>Sutter instruments</td>
			<td>P-87</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microinjection syringe</td>
			<td>Hamilton</td>
			<td>7634-01/00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microinjection syringe needle</td>
			<td>Hamilton</td>
			<td>7803-05</td>
			<td>Custom specification: gauge 33, length 15mm, point style 4 - 12&#176;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microinjection syringe pump</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>UMP3T-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mounted blue LED</td>
			<td>ThorLabs</td>
			<td>M470L5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mounted green LED</td>
			<td>ThorLabs</td>
			<td>M565L3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Na2HPO4.7H2O</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S9390</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S9888</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaGTP</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G8877</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaH2PO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S0751</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaH2PO4.H2O</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S9638</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaHCO3</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S5761</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NIR LED</td>
			<td>OSRAM</td>
			<td>SFH4550</td>
			<td>Used for refracted IR imaging of slice, differential interference contrast (DIC) optics is another commonly used method</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OCT medium</td>
			<td>VWR International</td>
			<td>RAYLLAMB/OCT</td>
			<td>Optimal cutting temperature medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>158127</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P6148</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Patch clamp amplifier</td>
			<td>Molecular Devices</td>
			<td>700A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peristaltic pump</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>Ministar</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Poly-L-lysine coated microscope slides</td>
			<td>Fisher Scientific Ltd</td>
			<td>23-769-310</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recording chamber</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>RC-26G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel blade</td>
			<td>Swann Morton</td>
			<td>#24</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slice anchor</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>SHD-26-GH/15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic frame</td>
			<td>Kopf</td>
			<td>Model 902</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic holder for micro drill</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td>75-1874</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sucrose</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S0389</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Microscope</td>
			<td>Carl Zeiss</td>
			<td>OPMI 1 FR pro</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>W577H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe filter for intracellular recording solution</td>
			<td>Thermo Scientific Nalgene</td>
			<td>171-0020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetrodotoxin citrate</td>
			<td>Hello Bio</td>
			<td>HB1035</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transfer pipettes</td>
			<td>Fisher Scientific Ltd</td>
			<td>10458842</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>X100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Upright fluorescence microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>DM6 B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VECTASHIELD Antifade Mounting Medium with DAPI</td>
			<td>Vector Laboratories</td>
			<td>H-1200-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VECTASTAIN ABC-HRP kit</td>
			<td>Vector Laboratories</td>
			<td>PK-4000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vibratome</td>
			<td>Campden Instruments</td>
			<td>7000smz-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>WinLTP</td>
			<td>https://www.winltp.com/</td>
			<td>Version 2.32</td>
			<td>Data acquisition software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>aCSF</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sucrose cutting solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PFA</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intracellular?</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

ex vivo optogenetic interrogation of long-range synaptic transmission and plasticity from medial prefrontal cortex to lateral entorhinal cortex

At studere de fysiologiske egenskaber ved specifikke synapser i hjernen, og hvordan de gennemgår plastiske ændringer, er en central udfordring i moderne neurovidenskab. Traditionelle in vitro elektrofysiologiske teknikker bruger elektrisk stimulering til at fremkalde synaptisk transmission. En stor ulempe ved denne metode er dens uspecifikke karakter; Alle axoner i området af den stimulerende elektrode aktiveres, hvilket gør det vanskeligt at tildele en effekt til en bestemt afferent forbindelse. Dette problem kan løses ved at erstatte elektrisk stimulering med optogenetisk baseret stimulering. Vi beskriver en metode til at kombinere optogenetik med in vitro patch-clamp optagelser. Dette er et kraftfuldt værktøj til undersøgelse af både basal synaptisk transmission og synaptisk plasticitet af præcise anatomisk definerede synaptiske forbindelser og gælder for næsten enhver vej i hjernen. Her beskriver vi forberedelsen og håndteringen af et viralt vektorkodningskanalrhodopsinprotein til kirurgisk injektion i et præsynaptisk interesseområde (medial præfrontal cortex) i gnaverhjernen og fremstilling af akutte skiver af nedstrøms målregioner (lateral entorhinal cortex). En detaljeret procedure til kombination af patch-clamp-optagelser med synaptisk aktivering ved lysstimulering for at studere kort- og langsigtet synaptisk plasticitet præsenteres også. Vi diskuterer eksempler på eksperimenter, der opnår vej- og cellespecificitet ved at kombinere optogenetik og Cre-afhængig cellemærkning. Endelig beskrives histologisk bekræftelse af det præsynaptiske område af interesse sammen med biocytinmærkning af den postsynaptiske celle for at muliggøre yderligere identifikation af den nøjagtige placering og celletype.

I denne protokol beskriver vi, hvordan man studerer langtrækkende synaptisk fysiologi og plasticitet ved hjælp af viral levering af optogenetiske konstruktioner. Protokollen kan meget let tilpasses til at studere næsten enhver langdistanceforbindelse i hjernen. Som et eksempel beskriver vi injektion af AAV'er, der koder for en opsin i rotte mPFC, fremstilling af akutte skiver fra LEC, patch-clamp-optagelser fra lag 5 LEC pyramidale neuroner og let fremkaldt aktivering af mPFC-terminaler i LEC (fig...

Watch this Scientific Journal Video about Ex Vivo Optogenetic Interrogation of Long-Range Synaptic Transmission and Plasticity from Medial Prefrontal Cortex to Lateral Entorhinal Cortex at JoVE.com

Ex Vivo Optogenetic Interrogation of Long-Range Synaptic Transmission and Plasticity from Medial Prefrontal Cortex to Lateral Entorhinal Cortex

Her præsenterer vi en protokol, der beskriver viral transduktion af diskrete hjerneområder med optogenetiske konstruktioner for at muliggøre synapsespecifik elektrofysiologisk karakterisering i akutte gnaverhjerneskiver.

Ex Vivo Optogenetisk forhør af langtrækkende synaptisk transmission og plasticitet fra medial præfrontal cortex til lateral entorhinal cortex

Studying the physiological properties of specific synapses in the brain, and how they undergo plastic changes, is a key challenge in modern neuroscience. ...

Virally leverede optogenetiske konstruktioner tillader detaljeret elektrofysiologisk karakterisering af fysiologien og plasticiteten af specifikke synapser i akutte hjerneskiver. De primære fordele ved at aktivere synapser optogenetisk er evnen til at studere langtrækkende veje og selektiv stimulering af axoner, der ikke er anatomisk adskilt. Demonstrerer proceduren vil være Dr.Lisa Kinnavane, en forskningsassistent fra vores laboratorium.Til at begynde med skal du lægge en Hamilton-sprøjte i en mikroinjektionssprøjtepumpe, der er fastgjort til en bevægelig arm monteret på en stereotaxisk ramme. Placer derefter en fem-mikroliter aliquot af virussen i en mikrocentrifuge. Drej røret i et par sekunder, og pipetter to mikroliter af det virale præparat ind i rørets låg.For at fylde sprøjten med det virale præparat skal du se nålespidsen med et kirurgisk mikroskop. Placer derefter virusets bolus manuelt ved spidsen af nålen, og træk sprøjtestemplet ud ved hjælp af pumpekontrollerne. Indstil pumpeindsprøjtningsvolumen til 300 nanoliter og strømningshastigheden til 100 nanoliter pr. Minut.Kør pumpen og bekræft korrekt strømning ved at observere virusets dråbe ved nålespidsen. Absorber virussen på en bomuldsknop, og rengør nålen med 70% ethanol. Brug derefter justeringsskruerne på den stereotaxiske ramme til at navigere nålespidsen til bregmaen og notere de stereotaxiske målinger, der observeres på de tre vernierskalaer på rammen.Tilføj eller træk disse afstande fra bregma-koordinater. Lav et burrhul ved kraniets overflade ved hjælp af en mikroboremaskine monteret på den stereotaxiske arm. Indsæt nålen i hjernen ved den forudbestemte dorsoventrale koordinat, og infunder et forudbestemt volumen af det virale præparat.Efter infusion skal du lade nålen stå på stedet i 10 minutter for at muliggøre diffusion af bolus. Fjern derefter nålen, og kør pumpen for at sikre, at nålen ikke er blokeret. To uger efter den virale injektion skal du aflive rotten, hurtigt dissekere hele hjernen og overføre den til saccharoseskæringsopløsningen.Brug en metal teskefuld til at samle hjernen op, kassere den overskydende opløsning og læg den på et filterpapir. Brug en skalpel til at fjerne cerebellum og skære cerebrum i koronaplanet cirka halvvejs langs dens længde. Den bageste halvdel er LEC-vævsblokken.Sæt vævsblokken og den resterende hjerne tilbage i saccharoseskæringsopløsningen. Placer derefter en dråbe cyanoacrylatlim på et vibratomtrin, og spred det i et tyndt lag. Brug derefter en teskefuld, vælg LEC-vævsblokken, og overfør den til limplasteret, således at det forreste koronale snit har klæbet.Installer scenen i vibratomvævskammeret, og hæld hurtigt tilstrækkelig saccharoseskæringsopløsning til at nedsænke vævet. Efter at have orienteret vævsblokkens ventrale overflade mod bladet, skal du skære 350 mikrometer tykke skiver fra ventral til dorsal ved hjælp af en langsom bladfremskridtshastighed. Typisk kan der opnås syv skiver pr. Halvkugle.Overfør skiverne til skiveopsamlingskammeret. Anbring derefter opsamlingskammeret i et 34 grader Celsius vandbad i en time, før det vender tilbage til stuetemperatur. Placer resten af hjernen i paraformaldehyd i 48 timer.For målcelleidentifikation skal du placere skiven i optagekammeret og immobilisere den ved hjælp af et skiveanker. Under lav forstørrelse, ved hjælp af infrarød belysning, naviger til LEC lag fem. Skift derefter til målet om nedsænkning af vand med høj forstørrelse, og identificer pyramideneuronerne.Marker cellens position på skærmen med tape. For at danne en hel celleplasterklemme skal du derefter fremstille en borosilikatglasmikropipette og fylde den med intracellulær optagelsesopløsning. Placer den fyldte mikropipette i elektrodeholderen, og påfør positivt tryk ved at blæse hårdt ind i et mundstykke, der er forbundet med elektrodeholderens sideport.Hæv mikroskopmålet, så der dannes en menisk, og indsæt elektroden i menisken, indtil den kan ses på mikroskopet. Åbn vinduet Seal Test, og find ud af, om pipettemodstanden er tre til fem megaohm. Rør derefter ved den identificerede celle med en pipettespids, hvilket resulterer i en fordybning i cellemembranen.Påfør derefter undertryk ved sugning ved mundstykket, hvilket øger pipettemodstanden. Fortsæt med at anvende undertryk gradvist, indtil cellemembranen brister, hvilket resulterer i hele cellekapacitanstransienter. For at komme ind i den aktuelle klemmekonfiguration skal du bruge en monteret LED rettet mod mikroskoplysbanen med filterterninger og passende optik og anvende lysimpulser på skiven via 40X-målet.Lever tog med flere lysimpulser ved fem hertz, 10 hertz og 20 hertz for at undersøge de presynaptiske frigivelsesegenskaber. For at tillade biocytin at fylde neuronen skal du vente i mindst 15 minutter efter indtastning af hele cellekonfigurationen. I spændingskamp skal du overvåge membrankapacitansen og indgangsmodstanden.Træk derefter pipetten langsomt langs indflyvningsvinklen væk fra cellens soma, idet man observerer den langsomme forsvinden af kapacitanstransienter og membranstrøm, hvilket indikerer genforsegling af cellemembranen og dannelse af et udvendigt plaster ved pipettespidsen. Læg skiven i paraformaldehyd i en 24-brønds plade og inkuber natten over. Brug OCT-medium til at fastgøre en vævsblok til kryostatprøveskiven.For at fryse vævet skal du placere isopentan i en passende beholder og nedsænke prøveskiven, hvilket sikrer, at vævet er over isopentans niveau. Sænk derefter beholderen med isopentan i flydende nitrogen, og lad vævet fryse. Når vævet er helt frosset, skal du lade vævsblokken stå i kryostatkammeret ved minus 20 grader Celsius i 30 minutter for at lade blokkens temperatur balancere.Efter ligevægt skæres 40 mikrometer tykke sektioner i kryostaten, og brug en fin pensel til at lede sektionerne af bladet. Fastgør disse frosne sektioner til et poly-L-lysinbelagt glasmikroskopglas ved stuetemperatur ved at røre diaset til sektionerne. Når du har tilføjet 150 mikroliter monteringsmedium til hvert dias, skal du påføre dækslipdet og fjerne eventuelle luftbobler ved forsigtigt at trykke på dækslip.Dæk diasene for at beskytte mod fotoblegning, og lad dem lufttørre i 12 timer. Brug derefter et fluorescensmikroskop til at undersøge placeringen af det virale injektionssted. Til biocytinfarvning inkuberes skiverne i 3% hydrogenperoxid i PBS i 30 minutter for at blokere enhver endogen peroxidaseaktivitet.Vask derefter hjerneskiverne med PBS, indtil der ikke er yderligere iltbobler synlige. Derefter inkuberes skiverne i tre timer i 1% avidin-biotinyleret HRP-kompleks opløsning i PBS indeholdende 0,1% Triton X-100. Efter seks PBS-vasker inkuberes hver skive i DAB-opløsning, indtil biocytinfarvningen af neuronale strukturer bliver synlig.Stop reaktionen ved at overføre skiverne i kold PBS. Monter derefter skiverne på glasmikroskopglassene ved hjælp af en børste. Efter fjernelse af overskydende PBS tilsættes monteringsmedium.Dæk skiverne ved hjælp af dæksedler, og lad dem lufttørre, som vist tidligere. En sund pyramidecelle blev lokaliseret og lappet. Hvis postsynaptisk celleidentifikation er påkrævet, skal en celle, der udtrykker den fluorescerende markør, lokaliseres ved hjælp af widefield-optik.Enkeltlysimpulser på to millisekunder resulterede i enkle bølgeformsoptogenetiske excitatoriske postsynaptiske potentialer. Kortsigtet plasticitet af synapsen undersøges ved at anvende fem, 10 og 20 hertz tog af lysstimulering. Mens man undersøgte langsigtet plasticitet, forårsagede tilsætning af kolinerg agonist carbachol til den cirkulerende aCSF i 10 minutter en langvarig depression, der stadig var tydelig 40 minutter efter fjernelse af liganden.Længden af injektionsstedet blev undersøgt histologisk. Den fluorescerende reporter mCherry var lokaliseret til de dybere lag af den prælimbiske og infralimbiske cortex. Endvidere bekræftede farvning af en biocytinfyldt celle dens placering og morfologi.De kritiske trin i denne protokol er nøjagtig transduktion af den afferente hjerneregion, som kan verificeres post hoc, og hurtig dissektion af hjernen, når der tilberedes akutte skiver. Denne procedure kombineres let med fluorescerende mærkning af en individuel celletype, såsom en bestemt interneuron-underklasse. For at gøre dette ville vi bruge et transgent dyr, der udtrykker en rekombinase i den pågældende celletype.Virally leverede optogenetiske konstruktioner har muliggjort hurtige fremskridt inden for systemer og kredsløbsneurovidenskab.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Ex Vivo Optogenetic Interrogation of Long-Range Synaptic Transmission and Plasticity from Medial Prefrontal Cortex to Lateral Entorhinal Cortex

Vibrodissociation of Neurons from Rodent Brain Slices to Study Synaptic Transmission and Image Presynaptic Terminals

Mechanical dissociation of neurons from the central nervous system has the advantage that presynaptic boutons remain attached to the isolated neuron of ...

Correlating Behavioral Responses to fMRI Signals from Human Prefrontal Cortex: Examining Cognitive Processes Using Task Analysis

Korrelere adfærdsmæssige reaktioner på fMRI Signaler fra Menneskelig præfrontale cortex: Undersøgelse Kognitive processer ved hjælp af Task Analysis

The aim of this methods paper is to describe how to implement a neuroimaging technique to examine complementary brain processes engaged by two similar ...

Methods for Study of Neuronal Morphogenesis: Ex vivo RNAi Electroporation in Embryonic Murine Cerebral Cortex

Methods for Study of Neuronal Morphogenesis: Ex vivo RNAi Electroporation in Embryonic Murine Cerebral Cortex

Metoder til Undersøgelse af Neuronal morfogenese:<em&gt; Ex vivo</em&gt; RNAi Elektroporation i embryoniske murin Cerebral Cortex

The cerebral cortex directs higher cognitive functions. This six layered structure is generated in an inside-first, outside-last manner, in which the ...

Lateral Diffusion and Exocytosis of Membrane Proteins in Cultured Neurons Assessed using Fluorescence Recovery and Fluorescence-loss Photobleaching

Lateral Diffusion og exocytose af membranproteiner i dyrkede neuroner vurderes ved hjælp af Fluorescens Recovery og Fluorescens-tab fotoblegning

Membrane proteins such as receptors and ion channels undergo active trafficking in neurons, which are highly polarised and morphologically complex. This ...

Preparation of Parasagittal Slices for the Investigation of Dorsal-ventral Organization of the Rodent Medial Entorhinal Cortex

Udarbejdelse af parasagittal skiver til undersøgelse af Dorsal-ventrale Organization of the Rodent Medial entorhinal cortex

Computation in the brain relies on neurons responding appropriately to their synaptic inputs. Neurons differ in their complement and distribution of ...

Simultaneous Electroencephalography, Real-time Measurement of Lactate Concentration and Optogenetic Manipulation of Neuronal Activity in the Rodent Cerebral Cortex

Samtidig Elektroencefalografi, Real-time måling af laktat Koncentration og Optogenetic Manipulation af neuronale aktivitet i Rodent Cerebral Cortex

Although the brain represents less than 5% of the body  by mass, it utilizes approximately one quarter of the glucose used by the body  at rest1. The ...

Simultaneous Two-photon In Vivo Imaging of Synaptic Inputs and Postsynaptic Targets in the Mouse Retrosplenial Cortex

Simultaneous Two-photon In Vivo Imaging of Synaptic Inputs and Postsynaptic Targets in the Mouse Retrosplenial Cortex

Samtidig To-foton<em&gt; In vivo</em&gt; Imaging af synaptisk indgange og Postsynaptiske Mål i Mouse retrospenialis Cortex

This video shows the craniotomy procedure that allows chronic imaging of neurons in the mouse retrosplenial cortex (RSC) using in vivo two-photon ...

Ex Vivo Optogenetic Dissection of Fear Circuits in Brain Slices

Ex Vivo Optogenetic Dissection of Fear Circuits in Brain Slices

Ex Vivo optogenetic Dissektion af Frygt Kredsløb i Brain Skiver

Optogenetic approaches are now widely used to study the function of neural populations and circuits by combining targeted expression of light-activated ...

Pentylenetetrazole-Induced Kindling Mouse Model

Pentylenetetrazole-induceret Kindling musemodel

Pentylenetetrazole (PTZ) is a GABA-A receptor antagonist. An intraperitoneal injection of PTZ into an animal induces an acute, severe seizure at a high ...

Combined Transcranial Magnetic Stimulation and Electroencephalography of the Dorsolateral Prefrontal Cortex

Kombinerede transkranial magnetisk Stimulation og electroencefalografi i den Dorsolateral præfrontale Cortex

Transcranial magnetic stimulation (TMS) is a non-invasive method that produces neural excitation in the cortex by means of brief, time-varying magnetic ...