Name: act1-cup1 assays determine the substrate-specific sensitivities of spliceosomal mutants in budding yeast
Uploaded: 2022-06-30T12:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about ACT1-CUP1 Assays Determine the Substrate-Specific Sensitivities of Spliceosomal Mutants in Budding Yeast at JoVE.com

그림 3-5 생성에 효모 균주와 장비를 사용한 위스콘신-매디슨 대학의 Aaron Hoskins와 Hoskins 실험실 구성원에게 감사드립니다. 원고에 대한 통찰력 있는 의견을 주신 Harpreet Kaur와 Xingyang Fu에게 감사드립니다. 이 논문을 작성, 편집 및 촬영하는 동안 Northwest University의 지원적인 학생, 교직원 및 교수진에게 감사드립니다. 이 방법을 촬영하는 데 도움을 준 Isabelle Marasigan에게 감사드립니다.

1. 효모 균주 건설
<ol><li>배경에 leu2 및 cup1Δ가 포함된 S. 세레비시아에 균주를 생성하거나 얻습니다. 이러한 배경을 생성하려면 리튬 아세테이트와 단일 가닥 DNA39를 사용하는 잘 확립된 효모 방법을 사용하십시오. 참고: 반수체 효모 균주는 CUP1 6,38의 사본 1개, 2개 또는 그 이상을 포함할 수 있습니다.<sup class="x...

ACT1-CUP1은 성장 분석법이며, 관찰된 성장 차이가 접합 결함에만 기인할 수 있도록 주의해야 합니다. 모든 균주는 유사한 길이와 유형의 성장 및 저장 조건을 갖는 것을 포함하여 도금 전에 유사한 방식으로 취급되어야 합니다. 온도에 민감한 균주를 사용하는 경우 ACT1-CUP1 분석은 해당 균주가 야생형과 비슷하게 자라는 조건에서만 수행해야 합니다. 이와 관련하여, QSP 성분의 경우, 결과의 해석을 ?...

스플라이세오솜은 전구체 메신저 RNA(pre-mRNA)1,2에서 비코딩 영역인 인트론의 제거를 촉매하는 대형 생물학적 기계입니다. 거의 100 개의 단백질 중 1 개와 5 개의 비 코딩 RNA에서 단일 점 돌연변이의 효과를 특성화하는 것은 단백질 또는 RNA를 분리 할 때 종종 모호합니다. 돌연변이된 구성 요소의 기능 변화는 완전히 기능하는 스플라이세오솜의 맥락에서 생체 내에서 가장 잘 평가될 수 있습니다.
여기에 설명된 구리 성장 분석은 사카로마이세스 세레비시아에 또는 신진 효모의 접합 효율에 대한 빠른 척도입니다. C.F. Lesser와 C. Guthrie가 개발하고 1993년에 발표한 이 분석은 간단한 모델 유기체로 작업하는 용이성과 세포생존율의 간단한 판독을 결합합니다3. 생존력은 이들 세포의 스플라이세오좀이 리포터 전사체를 얼마나 잘 인식하고 접합할 수 있는지와 상관관계가 있다.
이 구리 성장 분석은 더 일반적으로 ACT1-CUP1 분석이라고 합니다. ACT1-CUP1이라는 이름은 접합 효율의 리포터를 만들기 위해 융합된 두 유전자에서 유래했습니다. ACT1은 효모의 액틴 유전자로 발현이 높고 효율적으로 접합된 인트론 4,5를 가지고 있습니다. Cup1p는 규칙적인 세포 기능 6,7,8에 대한 간섭을 방지하기 위해 세포에서 구리를 격리하는 구리 킬레이터입니다. ACT1-CUP1 리포터는 ACT1 인트론의 pre-mRNA 스플라이싱이 발생하는 경우에만 CUP1이 적절한 판독 프레임에 있도록 이러한 유전자를 순서대로 포함합니다(그림 1). 생성 된 융합 단백질은 액틴의 처음 21 개 아미노산과 구리가 풍부한 환경에서 효모 생존력을 증가시키는 전장 Cup1p 단백질을 함유한다3. 따라서 리포터의 접합량이 증가하면 Cup1p 농도가 높아지고 구리 저항이 높아집니다(그림 1). 다른 리포터 유전자와 비교하여 CUP1은 낮은 수준에서도 세포 생존율에 영향을 미치고 민감도 범위가 넓으며 스플라이싱 돌연변이 3,6,7을 직접 선택하는 데 사용할 수 있습니다. 또한 CUP1은 표준 효모 성장에 필수적이지 않으므로 이 분석을 설정하는 동안 세포 항상성이 영향을 받지 않습니다. 결실 또는 온도 성장 분석을 보완하는 ACT1-CUP1은 최적의 효모 성장 조건에서 접합에 미치는 영향에 대한 정보를 제공합니다.
스플라이세오솜은 3개의 인트론 서열, 즉 5' 스플라이스 부위(5' SS), 분기 부위(BS) 및 3' 스플라이스 부위(3' SS)를 통해 기판을 인식합니다. 이러한 사이트에서 합의되지 않은 시퀀스를 포함하는 수많은 ACT1-CUP1 리포터가 생성되었습니다. 가장 일반적인 ACT1-CUP1 리포터의 선택은 그림 1 및 표 1에 나와 있습니다. 스플라이세오솜이 스플라이싱 주기의 다른 지점에서 각 스플라이스 부위와 고유하게 상호 작용하기 때문에 스플라이세오솜의 견고성은 비합의 리포터가 사용되는 단계에 따라 다른 단계에서 테스트할 수 있습니다. 합의되지 않은 기자는 인트론 내의 돌연변이된 위치와 그것이 돌연변이된 베이스에 따라 명명됩니다. 예를 들어, A3c는 5' SS, 구체적으로 컨센서스 아데노신에서 시토신으로의 위치 3에 돌연변이를 갖는 리포터이다. 이 리포터는 5' SS 선택 및 사용에 영향을 미치는 스플라이세오솜 돌연변이와 강하게 상호작용할 것이다. 초기 연구에서 Lesser와 Guthrie는 어떤 5' SS 돌연변이가 접합3을 억제하는지 결정했습니다. 같은 해 말, 세 개의 스플 라이스 사이트 모두에서 합의되지 않은 기자들이 ATPase Prp16p9의 돌연변이 억제 스크린에서 Burgess와 Guthrie에 의해 출판되었습니다. 합의를 비합의 보고자와 비교하는 ACT1-CUP1 분석은 효모 스플라이세오솜의 견고성과 선택성을 이해하고 다른 진핵생물의 스플라이세오솜의 기능을 추론하는 데 중요한 열쇠였습니다.
합의되지 않은 ACT1-CUP1 리포터가 스플라이세오솜을 추가 섭동에 민감하게 반응함에 따라 단일 스플라이싱 인자 돌연변이의 영향은 리포터를 통해 긍정적이거나 부정적인 영향을 미치는 것으로 특성화할 수 있습니다. 이것은 다양한 방식으로 연구 질문을 접합하는 데 적용되었습니다. 첫째, ACT1-CUP1 분석은 스플라이싱 인자의 돌연변이에 대한 유전자 스크리닝으로 사용될 수 있고 사용되어 왔다. 예를 들어, 가장 큰 스플라이싱 단백질인 Prp8p는 스플라이세오솜의 RNA 코어가 스플라이싱 반응을 촉매하는 플랫폼 역할을 합니다. 이는 부분적으로 Prp8p 돌연변이체가 상이한 ACT1-CUP1 리포터 10,11,12,13,14,15,16,17의 스플라이싱을 개선하거나 감소시키는 방법을 통해 추론되었다. 스플라이세오솜의 다른 단백질 성분은 또한 Hsh155p, Cwc2p, Cef1p 및 Ecm2p 18,19,20,21,22,23,24,25를 포함하는 ACT1-CUP1을 사용하여 조사되었다. Prp16p 및 스플라이세오솜 전이와 관련된 4개의 다른 ATPase에 대한 에너지 역치도 이 분석 9,26,27,28,29,30으로 연구되었습니다. 소형 핵 RNA (snRNA)는 또한 ACT1-CUP1을 사용하여 광범위하게 연구되어 이들이 조정하는 pre-mRNA 서열과 snRNA가 3,31,32,33,34,35,36,37을 접합하는 동안 겪는 2 차 구조의 변화를 식별합니다.
ACT1-CUP1 분석에는 CUP1 유전자의 모든 사본이 녹아웃된 효모 균주가 필요합니다. CUP1은 높은 카피 번호 6,38을 가질 수 있으므로 전체 녹아웃 변형을 준비하려면 여러 라운드 또는 광범위한 스크리닝이 필요할 수 있습니다. 결과적으로 cup1Δ 효모 균주는 종종 기자와 마찬가지로 실험실 간에 공유되었습니다.
스플라이싱 인자의 돌연변이가 플라스미드 사본에서 평가되는 경우 이 인자에 대한 야생형 유전자를 녹아웃해야 합니다. 또한, 효모 배경은 적어도 두 개의 플라스미드를 선택할 수 있어야 하는데, 하나는 역사적으로 류신 영양소 선택 플라스미드에 ACT1-CUP1 리포터를 포함하고, 다른 하나는 연구될 스플라이싱 기계에서 돌연변이 또는 섭동을 포함합니다(그림 2). 일반적으로 단일 분석에서 각각 쿼리 접합 섭동(QSP)과 다른 리포터를 운반하는 여러 효모 균주가 질의가 접합에 미치는 영향을 테스트합니다.
ACT1-CUP1 분석의 독립 변수를 통해 연구자는 QSP의 심각도를 평가할 수 있습니다. 이러한 독립 변수는 구리의 농도와 여러 비합의 접합 보고자의 선택입니다. 첫째, 효모 균주가 다양한 구리 농도를 포함하는 플레이트에서 성장함에 따라(그림 2), 분석 설정에는 사용된 농도의 구배를 선택하는 것이 포함됩니다. 연구는 코스 구리 농도 구배를 활용하여 생존력의 초기 판독값을 얻은 다음 미세한 구배로 분석을 반복하여 미묘한 생존력 차이를 식별할 수 있습니다. 두 번째 변수는 테스트할 수 있는 광범위한 ACT1-CUP1 리포터입니다(그림 1 및 표 1). QSP가 비합의 리포터 대 야생형의 존재 하에 효모 생존율에 다르게 영향을 미치는 경우, QSP가 인트론의 해당 영역을 인식하거나 처리하는 동안 중요한 스플라이세오솜의 단계 또는 스플라이세오솜의 영역에 영향을 미친다는 결론을 내릴 수 있습니다.
효모 도구 상자는 광범위하며 ACT1-CUP1 분석은 접합 연구의 필수적인 부분입니다. ACT1-CUP1 분석은 종종 QSP의 영향에 대한 보다 심층적인 유전적, 구조적 및/또는 생화학적 분석과 함께 수행됩니다. 이러한 보다 상세한 연구는 일반적으로 더 긴 절차 및/또는 더 높은 가격표를 가지고 있기 때문에 빈번한 접근 방식은 먼저 ACT1-CUP1을 가진 흥미로운 돌연변이를 스크리닝하는 것입니다.
여기에는 동판 준비를 포함한 ACT1-CUP1 분석 프로토콜이 제공됩니다. 이 분석은 연구자에게 접합에 대한 QSP의 영향과 섭동의 영향을 가장 많이 받는 인트로닉 영역에 대한 초기 답변을 제공합니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>1.5 mL sterile microcentrifuge tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>05-408-129</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 mL sterile microcentrifuge tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>05-408-138</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL sterile centrifuge tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>07-201-332</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>96-well round bottom microplate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>07-200-760</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>190 proof ethanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>22-032-600</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>500 mL Filter System (0.22 &#181;m)</td>
			<td>CellTreat Scientific Products</td>
			<td>229707</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agar</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP1423-500</td>
			<td>Any molecular grade agar will work.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Autoclave</td>
			<td>Tuttnauer</td>
			<td>3870EA</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bunsen burner</td>
			<td>Humboldt</td>
			<td>PN6200.1</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell Density Meter</td>
			<td>VWR</td>
			<td>490005-906</td>
			<td>Or other spectral device that can measure absorbance at 595 nm.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Copper sulfate Pentahydrate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>LC134051</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital imaging system</td>
			<td>Cytiva</td>
			<td>29399481</td>
			<td>ImageQuant 4000 (used for Figure 3),&#160; Amersham ImageQuant 800, or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dropout mix (-Leu)</td>
			<td>USBiological Life Sciences</td>
			<td>D9525</td>
			<td>Use the appropriate drop out mix for your experiment. It is possible you will be using a yeast nutrient marker for your query perturbation also. In that case, the drop out mix should be for that marker and Leu</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-Glucose</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AAA1682836</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gel band quantifying software</td>
			<td>Cytiva</td>
			<td>29-0006-05</td>
			<td>ImageQuant TL v8.1 (used for figure 5A) or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hand held camera</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>D3500</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Near infra-red gel imaging device</td>
			<td>Cytiva</td>
			<td>29238583</td>
			<td>Amersham Typhoon NIR (used for Figure 5a) or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laboratory grade clamp</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>05-769-7Q</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laboratory grade stand and clamp</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-000-101</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnetic stir bars</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-513-51</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pin replicator</td>
			<td>VP Scientific</td>
			<td>VP 407AH</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Semi-micro disposable cuvettes</td>
			<td>VWR</td>
			<td>97000-590</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shaker</td>
			<td>JEIO Tech</td>
			<td>IST-3075</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spectrophotometer</td>
			<td>Biowave</td>
			<td>80-3000-45</td>
			<td>Or any spectophotometer that can measure the absorbance at 600 nm.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Square plates</td>
			<td>VWR</td>
			<td>102091-156</td>
			<td>Circular plates may also be used though are more challenging if using a pin replicator.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stir plate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>11-520-16S</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Yeast nitrogen base</td>
			<td>USBiological Life Sciences</td>
			<td>Y2025</td>
			<td>Or comparable item from a different manufacturer.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

act1-cup1 assays determine the substrate-specific sensitivities of spliceosomal mutants in budding yeast

스플라이세오솜 또는 그 기질에 도입된 돌연변이는 스플라이세오솜 기능의 복잡성에 대한 우리의 이해에 크게 기여했습니다. 질병과 관련이 있든 기능적으로 선택되었든, 이러한 돌연변이의 대부분은 모델 유기체 사카로마이세스 세레비시아에 (효모)에서 성장 분석을 사용하여 연구되었습니다. 접합 특이적 구리 성장 분석법 또는 ACT1-CUP1 분석은 표현형 수준에서 돌연변이에 대한 포괄적인 분석을 제공합니다. ACT1-CUP1 분석은 올바르게 접합될 때 구리 내성을 부여하는 리포터를 활용합니다. 따라서, 구리의 존재하에서, 효모 생존율의 변화는 스 플라이 싱을 통한 mRNA 생산의 변화와 관련이있다. 전형적인 실험에서, 효모 스플라이세오솜은 스플라이싱에 대한 상승적 또는 반대적 영향을 검출하기 위해 상이한 비합의 스플라이싱 리포터 및 관심 있는 스플라이싱 인자 돌연변이에 도전한다. 여기에서는 동판 준비, 효모 세포 도금 및 데이터 평가에 대한 전체 설명이 제공됩니다. ACT1-CUP1 리포터의 다양성을 강조하는 다양한 무료 실험이 설명됩니다. ACT1-CUP1 분석은 돌연변이 효과의 직접적인 판독과 현장에서의 지속적인 사용으로 인한 비교 가능성 덕분에 접합 도구 상자에서 편리한 도구입니다.

ACT1-CUP1과 같은 성장 분석에는 여러 콜로니에 대한 시각적 비교 평가가 필요합니다. 여기서, 각각의 균주를 밤새 포화 상태로 성장시키고, 0.5의OD600 으로 희석하고, 0 mM 내지 1.1 mMCuSO4 의 구리 농도 범위를 함유하는 20개의 플레이트에 도말하였다(도 3). 이 범위는 아래에 사용 및 설명된 QSP 및 ACT1-CUP1 보고자의 영향을 완전히 평가할 수 있으므로 프로토콜에 나?...

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ACT1-CUP1 Assays Determine the Substrate-Specific Sensitivities of Spliceosomal Mutants in Budding Yeast

구리 성장 분석인 ACT1-CUP1 분석은 전구체 메신저 RNA(pre-mRNA) 스플라이싱과 돌연변이 스플라이싱 인자가 스플라이세오솜 기능에 미치는 영향에 대한 빠른 판독을 제공합니다. 이 연구는 프로토콜을 제공하고 관심 있는 접합 문제를 해결하기 위해 가능한 사용자 정의를 강조합니다.

ACT1-CUP1 분석은 신진 효모에서 스플라이세오솜 돌연변이체의 기질 특이적 민감도를 결정합니다.

Mutations introduced in the spliceosome or its substrate have significantly contributed to our understanding of the intricacies of spliceosomal function. ...

ACT1-CUP1 분석은 돌연변이가 전령 RNA 스플라이싱에 영향을 미치는지 확인하고 어떤 스플라이싱 단계가 가장 큰 영향을 받는지 나타낼 수 있습니다. ACT1-CUP1 분석은 접합 인자 돌연변이를 복잡한 접합 과정에 미치는 영향과 연결합니다. 성장 표현형의 간단한 판독을 활용하며 넓은 감도 범위를 가지고 있습니다.ACT1-CUP1 분석을 수행할 때는 시간을 효율적으로 사용하는 것이 중요합니다. 스트레스로 인한 성장 이상을 최소화하기 위해 5-10 개의 균주에 대한 분석으로 시작하십시오. 이 과정을 시연하는 것은 저와 제 실험실의 학부 연구원 인 Isabelle Marasigan이 될 것입니다.시작하려면 각 병에 790mg의 한천과 교반 막대를 추가하십시오. 큰 비커에서 부을 모든 동판에 대한 류신 드롭아웃 성장 배지를 준비합니다. 여기에는 효모 질소 염기 265mg, 드롭아웃 믹스 64mg, 류신 제외 및 부을 각 플레이트에 대한 탈이온수 34밀리리터가 포함됩니다.저어 녹인 다음, 준비된 각 100 밀리리터 병에 류신 드롭아웃 성장 배지 용액 34 밀리리터를 첨가하고, 알루미늄 호일로 캡을 씌운다. 다음으로, 오토 클레이브에 권장되는 액체 사이클을 사용하여 한천을 살균하고 용해시키는 오토 클레이브. 오토 클레이브 후 가능한 한 빨리 각 병에 20 % 포도당 4 밀리리터를 첨가하십시오.그런 다음 튜브 라벨을 병 라벨과 일치시켜 각각 2밀리리터의 황산구리 희석액을 의도한 병에 추가합니다. 교반 플레이트를 사용하여 약 30초 동안 혼합하고 거품을 피하면서 라벨이 부착된 플레이트에 35ml를 붓거나 피펫팅합니다. 효모 균주 당 9 밀리리터의 류신 드롭 아웃 성장 배지와 1 밀리리터의 20 % 포도당을 멸균 된 50 밀리리터 원추형 튜브에 첨가하십시오.멸균 스틱 또는 피펫 팁을 사용하여 효모의 작은 견본을 수집하고 배지를 접종합니다. 그런 다음 밤새 배양된 모든 배양물을 180RPM 및 섭씨 30도에서 흔듭니다. 다음으로, 균주 당 900 마이크로 리터의 물을 포함하는 큐벳에 100 마이크로 리터의 배양 물을 첨가하십시오.그 후, 분광 광도계로 광학 밀도를 측정하고 2 밀리리터의 최종 부피에서 0.5의 광학 밀도에 필요한 희석을 계산하십시오. 그 후, 각 균주를 10%글리세롤에서 광학밀도 0.5로 희석하고 광학밀도를 재측정하여 세포 밀도가 원하는 범위 내에 있는지 확인하였다. 멸균 작업 장소를 설정 한 후 분젠 버너에 불을 붙입니다.48핀 복제기의 경우, 희석된 각 균주 200마이크로리터를 96웰 플레이트의 별도의 웰에 피펫팅하고 6x8 그리드의 빈 공간을 200마이크로리터의 10% 글리세롤로 채웁니다. 그런 다음 복제기를 95 % 에탄올과 화염의 얕은 접시에 담그고 살균합니다. 세포에 충격을 가하는 열을 피하기 위해 화염이 꺼진 후 최소 2분 동안 식히십시오.버너 근처에 4 개의 판을 놓고 뚜껑을 제거하십시오. 복제기를 96웰 플레이트에 담그고 한 번의 빠른 동작으로 들어 올립니다. 그런 다음 접시에 부드럽게 놓고 좋은 이동을 용이하게하기 위해 앞뒤로 가볍게 흔 듭니다.한 번의 빠른 동작으로 들어 올려 96웰 플레이트에 정확히 같은 방향으로 놓습니다. 플레이트를 도금 한 후 측면으로 부드럽게 움직이되 여전히 화염의 살균 우산 내에서 움직입니다. 뚜껑을 덮기 전에 접시를 완전히 말리십시오(보통 3-5분).그런 다음 플레이트를 섭씨 30도에서 3 일 동안 배양합니다. 인큐베이터에서 플레이트를 제거한 후 육안으로 검사하십시오. 성장 분석은 구리 농도가 증가함에 따라 접합이 낮은 균주가 구리 농도가 치명적일 정도로 컨플루언스가 감소한다는 것을 보여주었습니다.효모 배경에는 파괴된 ADE2 유전자가 포함되어 있어 콜로니가 다양한 빨간색 음영을 띠게 됩니다. 그리고 성숙한 식민지는 짙은 붉은 색이었습니다. 플레이팅하는 동안 복제기를 왼쪽 또는 오른쪽으로 이동하면서 들어 올리거나 비스듬히 가져 오거나 플레이트 위에서 흔들면 타원형의 콜로니 또는 작은 세포 용액 방울로부터 마이크로 콜로니를 만들 수 있습니다.A3c 리포터를 사용한 효모는 0.15 밀리몰 구리까지 생존한 반면, 야생형 리포터 세포는 시험된 구리 농도 범위의 끝까지 생존력을 유지하였다. 분석 결과는 U6 snRNA 위치 57의 상이한 염기가 5 프라임 또는 분지 부위 돌연변이와 결합하여 스플라이세오솜에 독특한 영향을 미친다는 것을 보여주었다. U57c는 A3c 및 분기 사이트 G 리포터와 함께 구리 내성을 감소시키는 부가 돌연변이입니다.대조적으로, U57a는 두 번째 단계로의 진행을 촉진하기 때문에 구리 내성을 증가시킵니다. ACT1-CUP1을 통해 스플라이싱 섭동이 확인된 후 연구는 프라이머 확장 및 EMSA 및 효소 프로빙을 통한 중단된 분자 상호 작용 식별과 같은 보다 정량적인 방법으로 이동할 수 있습니다. ACT1-CUP1은 효모 스플라이세오솜의 견고성과 선택성에 대한 이해를 구축하는 기초 분석법이었습니다.그리고 그것은 spliceosomal 기능에 대한 우리의 이해를 계속 확장합니다.

Research

JoVE Journal

Genetics

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유전학

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온도에 민감한 치명적인 돌연변이의 높은 처리량 로봇 보조 절연에<em&gt; 클라 미도 모나스의 reinhardtii에서</em

Systematic identification and characterization of genetic perturbations have proven useful to decipher gene function and cellular pathways. However, the ...

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접합에 참여 전송 단백질의 서열 별 분석을위한 공역 결합 분석 실험

The transfer of genetic material by bacterial conjugation is a process that takes place via complexes formed by specific transfer proteins. In Escherichia ...

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Measuring mRNA Levels Over Time During the Yeast S. cerevisiae Hypoxic Response

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효 모 S. cerevisiae Hypoxic 응답 하는 동안 시간이 지남에 mRNA 수준 측정

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