Name: intracranial pressure monitoring in nontraumatic intraventricular hemorrhage rodent model
Uploaded: 2022-02-08T14:45:00
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Questo lavoro è stato finanziato dalla sovvenzione NINDS: K08NS105914

Tutti i metodi di ricerca e la cura / manutenzione degli animali sono stati eseguiti in conformità con le linee guida istituzionali dell'Università della California, Davis. L'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) dell'Università della California, Davis, ha approvato tutti i protocolli di utilizzo degli animali e le procedure sperimentali (protocollo IACUC #21874).
1. Ricovero per animali
<ol><li>Ottenere ratti Sprague-Dawley di età 8-10 mesi. Prima di quals...

<ol>
	<li>Gates, P. C., Barnett, H. J. M., Vinters, H. V., Simonsen, R. L., Siu, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primary+intraventricular+hemorrhage+in+adults.">Primary intraventricular hemorrhage in adults.</a> Stroke. 17, 872-877 (1986).</li><li>Strajle, J., Garton, H. J. L., Maher, C. O., Muraszko, K., Keep, R. F., Xi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanisms+of+hydrocephalus+after+neonatal+and+adult+intraventricular+hemorrhage.">Mechanisms of hydrocephalus after neonatal and adult intraventricular hemorrhage.</a> Translational Stroke Research. 3, 25-38 (2012).</li><li>Murao, K., Rossi, C., Cordonnier, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracerebral+hemorrhage+and+cognitive+decline.">Intracerebral hemorrhage and cognitive decline.</a> Revue Neurologique. 169, 772-778 (2013).</li><li>Al-Khindi, T., Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cognitive+and+functional+outcome+after+aneurysmal+subarachnoid+hemorrhage.">Cognitive and functional outcome after aneurysmal subarachnoid hemorrhage.</a> Stroke. 41, 519-536 (2010).</li><li>Kreiter, K. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Predictors+of+cognitive+dysfunction+after+subarachnoid+hemorrhage.">Predictors of cognitive dysfunction after subarachnoid hemorrhage.</a> Stroke. 33, 200-208 (2002).</li><li>Zanaty, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraventricular+extension+of+an+aneurysmal+subarachnoid+hemorrhage+is+an+independent+predictor+of+a+worse+functional+outcome.">Intraventricular extension of an aneurysmal subarachnoid hemorrhage is an independent predictor of a worse functional outcome.</a> Clinical Neurology and Neurosurgery. 170, 67-72 (2018).</li><li>Gabrielian, L., Willshire, L. W., Helps, S. C., vanden Heuvel, C., Mathias, J., Vink, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracranial+pressure+changes+following+traumatic+brain+injury+in+rats:+lack+of+significant+change+in+the+absence+of+mass+lesions+or+hypoxia.">Intracranial pressure changes following traumatic brain injury in rats: lack of significant change in the absence of mass lesions or hypoxia.</a> Journal of Neurotrauma. 28, 2103-2111 (2011).</li><li>Kolar, M., Nohejlova, K., Duska, F., Mares, J., Pachl, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+of+cortical+perfusion+in+the+early+phase+of+subarachnoid+bleeding+in+a+rat+model+and+the+role+of+intracranial+hypertension.">Changes of cortical perfusion in the early phase of subarachnoid bleeding in a rat model and the role of intracranial hypertension.</a> Physiological Research. 66, 545-551 (2017).</li><li>Ariesen, M. J., Claus, S. P., Rinkel, G. J. E., Algra, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Risk+factors+for+intracerebral+hemorrhage+in+the+general+population.+A+systematic+review.">Risk factors for intracerebral hemorrhage in the general population. A systematic review.</a> Stroke. 34, 2060-2066 (2003).</li><li>MacLellan, C. L., Paquette, R., Colbourne, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+critical+appraisal+of+experimental+intracerebral+hemorrhage+research.">A critical appraisal of experimental intracerebral hemorrhage research.</a> Journal of Cerebral Blood Flow &amp; Metabolism. 32, 612-627 (2012).</li><li>Hartman, R., Lekic, T., Rojas, H., Tang, J., Zhang, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+functional+outcomes+following+intracerebral+hemorrhage+in+rats.">Assessing functional outcomes following intracerebral hemorrhage in rats.</a> Brain Research. 1280, 148-157 (2009).</li></ol>

Questo studio ha studiato i meccanismi per misurare ICP, MAP e CPP in un modello animale di ratto IVH non traumatico. I risultati sono stati registrati dai seguenti gruppi: sham, VH 200 μL e animali di controllo del veicolo (iniezione intraventricolare di liquido cerebrospinale artificiale). Questo disegno sperimentale è stato scelto per studiare come le ICP possono essere monitorate durante l'iniezione IVH poiché abbiamo ipotizzato che il picco di ICP possa contribuire alla lesione cerebrale secondaria più significa...

L'emorragia intraventricolare (IVH), un tipo di emorragia intracranica (ICH), è una malattia devastante che comporta mortalità e morbilità significative. IVH è caratterizzato come l'accumulo di prodotti sanguigni all'interno dei ventricoli intracranici. L'IVH isolata non è comune e si verifica tipicamente negli adulti1. Può essere associata a emorragia ipertensiva, rottura di aneurisma intracranico o un'altra malformazione vascolare, tumori o traumi1. IVH porta a lesioni cerebrali secondarie e allo sviluppo di idrocefalo2. I sopravvissuti all'IVH sono spesso lasciati con significativi disturbi funzionali, di memoria e cognitivi dopo la loro lesione. Questi deficit cognitivi e di memoria a lungo termine sono riportati nel 44% dei sopravvissuti all'ICH3. Nell'emorragia subaracnoidea (SAH), un altro tipo di ICH, è ben noto che circa la metà dei sopravvissuti avrà deficit di memoria, e per coloro che hanno IVH oltre a SAH, i risultati tendono ad essere significativamente peggiori 4,5,6.
I meccanismi sottostanti della disfunzione della memoria dopo IVH rimangono da chiarire. La ricerca in vivo che utilizza modelli animali IVH non traumatici con disfunzione funzionale e della memoria è essenziale per scoprire potenziali bersagli terapeutici per tali pazienti. I modelli animali con memoria più grave e disfunzione funzionale dopo IVH sarebbero i migliori per studiare questi cambiamenti. Il laboratorio dell'autore senior ha anche studiato specificamente il ruolo dell'alta pressione intracranica (ICP) nello sviluppo di deficit di memoria in modelli di ratto IVH. Pertanto, i metodi per misurare con precisione i PIC durante l'IVH erano importanti da indagare. Qui riportiamo i metodi per misurare con precisione gli ICP in un modello di ratto IVH. Sebbene il monitoraggio ICP sia stato precedentemente utilizzato in modelli animali traumatici di ICH e di emorragia subaracnoidea, il monitoraggio ICP in modelli spontanei di roditori IVH non è come comunemente riportato in letteratura 7,8. Quindi, il disegno sperimentale qui presentato includeva tre gruppi di ratti Sprague Dawley: sham, emorragia intraventricolare standard da 200 μl e controllo del veicolo. Per il gruppo IVH, è stato utilizzato un modello di iniezione di sangue intraventricolare autologo. Per gli animali di controllo del veicolo, è stata utilizzata l'iniezione intraventricolare della soluzione sterile di Ringer lattato. ICP, pressioni arteriose medie (MAP) e pressioni di perfusione cerebrale (CPP) sono state registrate intraoperatoriamente e i risultati sono riportati nel presente documento.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.25% bupivacaine</td>
			<td>Hospira, Inc.</td>
			<td>409115901</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mL syringe</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>60734</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% providine iodine solution</td>
			<td>Aplicare</td>
			<td>MSD093947</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 mL syringe</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>8881520657</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>22 G needles</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>305155</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>28 G intraventricular needles</td>
			<td>P technologies</td>
			<td>8IC313ISPCXC</td>
			<td>C313I/SPC 28-Gneedles to fit 22-G guide cannula with 6 mm projection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 silk suture</td>
			<td>Henry Schein, Inc.</td>
			<td>SP116</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-way-stopcock</td>
			<td>Merti Medical Systems</td>
			<td>M3SNC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>30525-89-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AnyMaze software</td>
			<td>Any-Maze behavioral tracking software</td>
			<td></td>
			<td>Stoelting CO, USA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Artificial ointment</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>48272</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blood collection vials with EDTA</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>367856</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bone wax</td>
			<td>CP Medical, Inc.</td>
			<td>CPB31A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carprofen</td>
			<td>Zoetis, Inc.</td>
			<td>54771-8507-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>Beckman</td>
			<td>BE-GS6R</td>
			<td>Model GS-6R</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton tip applicators</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>71214</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill</td>
			<td>Dremel</td>
			<td>1600A011JA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fiberoptic pressure sensors with readout units</td>
			<td>Opsens Medical</td>
			<td>OPP-M200-X-80SC- 2.0PTFE-XN-100PIT-P1 and LIS-P1-N-62SC</td>
			<td>Opp-M200 packaged pressure sensors with LifeSens system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td></td>
			<td>11923-13, 11064-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>71043</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Guillotine</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>51330</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating pad with rectal thermometer</td>
			<td>CWE, Inc.</td>
			<td>08-13000 ,08-13014</td>
			<td>TC1000 Temperature controller</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemostats</td>
			<td></td>
			<td>&#160;13013-14,&#160; 13008-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>29405</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lactated ringers</td>
			<td>Baxter Healthcare Corp.</td>
			<td>Y345583</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laryngoscope</td>
			<td>American Diagnostic Corporation</td>
			<td>4080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Metal clip</td>
			<td>Fine Scientic Tools</td>
			<td>18056-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro scissors</td>
			<td>Fine Scientic Tools</td>
			<td>15007-08</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>model L2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle driver</td>
			<td></td>
			<td>12003-15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylene tubing</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>14-170-12B</td>
			<td>PE-50 tubing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rats</td>
			<td>Envigo</td>
			<td></td>
			<td>Sprague Dawley rats 8&#8211;10 months old</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel</td>
			<td></td>
			<td>&#160;10010-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td></td>
			<td>14090-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic instrument</td>
			<td>Kopf instruments</td>
			<td></td>
			<td>Model 940 with ear bars</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe pump</td>
			<td>KD Scientific</td>
			<td>780100</td>
			<td>Model 100 series</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Touhy Borst</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>23242</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ventilator</td>
			<td>Harvard rodent ventilator</td>
			<td>55-0000</td>
			<td>Model 683</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

intracranial pressure monitoring in nontraumatic intraventricular hemorrhage rodent model

I sopravvissuti all'emorragia intraventricolare sono spesso lasciati con una significativa compromissione della memoria a lungo termine; Pertanto, la ricerca che utilizza modelli animali di emorragia intraventricolare è essenziale. In questo studio, abbiamo cercato modi per misurare la pressione intracranica, la pressione arteriosa media e la pressione di perfusione cerebrale durante l'emorragia intraventricolare non traumatica nei ratti. Il progetto sperimentale includeva tre gruppi di Sprague Dawley: sham, emorragia intraventricolare standard da 200 μl e gruppi di controllo del veicolo. Con l'introduzione di un sensore di pressione intraparenchimale a fibre ottiche, sono state ottenute misurazioni precise della pressione intracranica in tutti i gruppi. Le pressioni di perfusione cerebrale sono state calcolate con la conoscenza della pressione intracranica e dei valori medi della pressione arteriosa. Come previsto, i gruppi di emorragia intraventricolare e di controllo del veicolo hanno entrambi sperimentato un aumento della pressione intracranica e un conseguente calo della pressione di perfusione cerebrale durante l'iniezione intraventricolare di sangue autologo e liquido cerebrospinale artificiale, rispettivamente. L'aggiunta di un sensore di pressione a fibre ottiche intraparenchimali è utile per monitorare precise variazioni della pressione intracranica.

Pressioni di perfusione intracranica, arteriosa media e cerebrale Sia i PIC che i MAP sono stati monitorati intraoperatoriamente in tutti gli animali (figura 1). I ratti avevano 8-10 mesi con un peso medio di 495 ± 17 g. Sono stati raccolti anche grafici ICP in tempo reale (Figura 2). Escludendo il gruppo fittizio, gli ICP sono aumentati significativamente durante l'iniezione intraventricolare nell'IVH e nei gruppi di controllo del ...

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Intracranial Pressure Monitoring In Nontraumatic Intraventricular Hemorrhage Rodent Model

Il monitoraggio della pressione intracranica nei modelli di roditori di emorragia intraventricolare non traumatica non è comune nella letteratura corrente. Qui, dimostriamo una tecnica per misurare la pressione intracranica, la pressione arteriosa media e la pressione di perfusione cerebrale durante l'emorragia intraventricolare in un modello animale di ratto.

Monitoraggio della pressione intracranica nel modello di roditore emorragia intraventricolare non traumatico

Survivors of intraventricular hemorrhage are often left with significant long-term memory impairment; thus, research utilizing intraventricular hemorrhage ...

Questo protocollo descrive un metodo per misurare la pressione intracranica, la pressione arteriosa media e la pressione di perfusione cerebrale a seguito di emorragia intraventricolare non traumatica nei roditori. Le pressioni arteriose intracraniche e medie possono essere misurate in modo accurato e affidabile con un sensore a fibre ottiche inserito rispettivamente nella corteccia e nell'arteria femorale del ratto. Le tecniche qui descritte sono tradotte in ambito clinico quando i pazienti con emorragia intraventricolare richiedono un monitoraggio invasivo della pressione intracranica.Gli obiettivi di questo studio erano di stabilire un modello animale IVH con monitoraggio obiettivo di ICP, MAP e CCP dopo IVH intraventricolare, in modo che gli autori possano applicarlo ulteriormente in esperimenti futuri che si concentreranno sugli effetti delle ICP indotte da IVH sulla successiva disfunzione della memoria. Le principali difficoltà possono includere la precisione, poiché i sensori in fibra ottica sono piccoli. La dissezione dell'arteria femorale potrebbe anche rappresentare una sfida per alcuni, in particolare quelli non utilizzati nelle abilità microchirurgiche.Dopo aver anestetizzato il ratto, inserire il termometro rettale per monitorare continuamente la temperatura. Tagliare i capelli sulla testa e sulla regione femorale e preparare la pelle con tre scrub alternati di Betadine e alcol al 70% prima dell'intervento chirurgico. Aspirare le secrezioni respiratorie accumulate rimuovendo temporaneamente il ratto dal ventilatore e aspirando le secrezioni con tubi PE-50 collegati a una siringa da 10 millilitri.Proteggi gli occhi con lacrime artificiali sterili unguento per gli occhi. Prima dell'incisione del cuoio capelluto, iniettare bupivacaina locale nella pelle e nei tessuti sottocutanei. Posizionare il ratto in posizione prona su una cornice stereotassica e sbarrarlo all'orecchio.Fai un'incisione del cuoio capelluto di 1,5 centimetri lungo la linea mediana con un bisturi a 15 lame. Applicare una leggera pressione con una garza per l'emostasi. Utilizzando un applicatore sterile di cotone, separare il periostio dal cranio fino a quando il punto di riferimento del bregma è visibile.Individuare e contrassegnare il bregma usando stereotassi, e segnare la posizione di due fori bilaterali di bava di 1,4 millimetri laterali e negativi di 0,9 millimetri posteriori al bregma. Utilizzando un trapano portatile, creare questi due piccoli fori di bava cranica negli emisferi destro e sinistro. Irrigare eventuali frammenti ossei in eccesso con la soluzione sterile di Ringer lattato.Nell'emisfero destro, posizionare una cannula guida di calibro 22 a livello del foro di bava per inserire l'ago di calibro 28 attraverso la cannula fino alla profondità del ventricolo laterale destro per creare emorragia intraventricolare. Collegare il sensore di pressione in fibra ottica all'unità di lettura. Accendere l'unità di lettura e assicurarsi che le unità selezionate siano espresse in millimetri di mercurio.Quindi innescare il sensore immergendo la sua punta in un piccolo becher con la soluzione di Ringer lattato fino a quando l'unità di lettura legge zero ed è pronta per l'uso. Nell'emisfero sinistro, inserire delicatamente il sensore di pressione a due o tre millimetri di profondità nella corteccia per il monitoraggio in tempo reale dell'ICP. Dopo l'inserimento del monitor ICP, ruotare il tronco inferiore del ratto per un facile accesso alla coscia sinistra e alla zona inguinale.Dopo la preparazione sterile e la somministrazione locale di bupivacaina, praticare un'incisione cutanea di 1,5 centimetri sull'arto posteriore con un bisturi a 15 lame. Sezionare superficialmente l'arteria femorale sinistra con un emostato e poi strati più profondi usando una pinza con punte sottili al microscopio. Identificare la vena femorale blu profondo per aiutare a localizzare l'arteria adiacente.Legare l'arteria femorale distale usando una sutura di seta 3-0 e posizionare una clip metallica temporanea sulla porzione prossimale dell'arteria femorale. Avere un secondo sensore di pressione in fibra ottica collegato all'unità di lettura già innescato. Inserire il sensore di pressione nel tubo PE-50, che viene inserito in un Tuohy Borst che viene quindi chiuso.Collegare il Tuohy Borst a un rubinetto a tre vie collegato a una siringa da un millimetro a un'estremità e un ago calibro 22 con tubo PE-50 all'altra estremità. Sotto il microscopio, eseguire un'arteriotomia femorale di due millimetri con micro forbici e incannularla con tubi PE-50 collegati al resto della configurazione. Aspirare 500 microlitri di sangue utilizzando una siringa da un millimetro e ruotare il rubinetto a tre vie per far sì che il sensore di pressione legga MAP.Innescare l'ago intraventricolare calibro 28 collegato al tubo PE-50 con il sangue aspirato per gli animali IVH e Ringer lattato per gli animali di controllo del veicolo. Quindi inserire questo ago nella cannula guida fino alla profondità del ventricolo laterale destro. Utilizzando una frequenza di 100 microlitri al minuto, iniettare il sangue o 200 microlitri di soluzione sterile di Ringer nel ventricolo laterale destro pompando la siringa da un millimetro con il pollice.Monitorare e registrare ICP, pressione arteriosa e temperatura rettale. Monitorare e registrare i valori ICP e MAP post-iniezione. Dopo aver completato l'iniezione intraventricolare, prelevare il tubo PE-50 contenente il sensore di pressione inserito nell'arteria femorale e applicare la clip temporanea all'arteria femorale per prevenire il sanguinamento.Legare la porzione prossimale dell'arteria femorale usando la sutura di seta 3-0 e chiudere l'incisione femorale in modo interrotto usando la seta 3-0. Rimuovere la cannula guida con l'ago intraventricolare nel monitor ICP. Sigillare i fori di bava con cera ossea.E chiudere l'incisione cranica con sutura di seta 3-0 interrottamente. Applicare bupivacaina topica all'incisione e iniettare 0,5 milligrammi per chilogrammo di carprofene. Non lasciare gli animali incustoditi fino a quando non hanno riacquistato sufficiente coscienza per mantenere la recumenza sternale.Consentire ai ratti di riprendersi completamente dopo l'intervento chirurgico sotto supervisione e riportarli nelle loro gabbie di casa con libero accesso al cibo e all'acqua dopo il recupero. Escludendo il gruppo sham, le ICP sono aumentate significativamente durante l'iniezione intraventricolare nei gruppi IVH e di controllo del veicolo. I PIC erano più elevati nel gruppo IVH rispetto al controllo del veicolo.Gli ICP sono poi diminuiti rapidamente e normalizzati entro cinque minuti dall'iniezione intraventricolare in quei gruppi animali. È stato osservato che le MAP sono rimaste simili durante tutta la procedura, mentre le CPP sono diminuite durante l'iniezione intraventricolare di sangue o della soluzione di Ringer lattato. I passaggi vitali dell'intervento chirurgico includono la corretta localizzazione e la perforazione dei fori di bava e dell'arteriotomia femorale.I passaggi sopra menzionati devono essere seguiti attentamente per garantire che i sensori svolgano il loro lavoro nella lettura accurata delle variazioni di pressione.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Autologous Blood Injection to Model Spontaneous Intracerebral Hemorrhage in Mice

Iniezione di sangue autologo Modello spontanea emorragia intracerebrale in topi

Investigation of the pathophysiology of injury after intracerebral
hemorrhage (ICH) requires a reproducible animal model.  While ICH
accounts for 10-15% ...

Ricerca

Neuroscienze

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A lungo termine EEG monitoraggio continuo in piccolo roditore modelli di malattie umane Utilizzo del Sistema Epoch Trasmettitore Wireless

Many progressive neurologic diseases in humans, such as epilepsy, require pre-clinical animal models that slowly develop the disease in order to test ...

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Subarachnoid hemorrhage (SAH) is a subtype of hemorrhagic stroke. Cerebral vasospasm that occurs in the aftermath of the bleeding is an important factor ...

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Evacuazione endoscopica endoscopica minimamente invasiva dell'emorragia intracerebrale

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