Name: intracranial pressure monitoring in nontraumatic intraventricular hemorrhage rodent model
Uploaded: 2022-02-08T14:45:00
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Este trabajo fue financiado por la subvención del NINDS: K08NS105914

Todos los métodos de investigación y cuidado / mantenimiento de animales se realizaron de acuerdo con las pautas institucionales de la Universidad de California, Davis. El Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad de California, Davis, aprobó todos los protocolos de uso de animales y procedimientos experimentales (protocolo IACUC # 21874).
1. Alojamiento de animales
<ol><li>Obtenga ratas Sprague-Dawley de 8-10 meses de edad. Antes de cua...

<ol>
	<li>Gates, P. C., Barnett, H. J. M., Vinters, H. V., Simonsen, R. L., Siu, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primary+intraventricular+hemorrhage+in+adults.">Primary intraventricular hemorrhage in adults.</a> Stroke. 17, 872-877 (1986).</li><li>Strajle, J., Garton, H. J. L., Maher, C. O., Muraszko, K., Keep, R. F., Xi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanisms+of+hydrocephalus+after+neonatal+and+adult+intraventricular+hemorrhage.">Mechanisms of hydrocephalus after neonatal and adult intraventricular hemorrhage.</a> Translational Stroke Research. 3, 25-38 (2012).</li><li>Murao, K., Rossi, C., Cordonnier, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracerebral+hemorrhage+and+cognitive+decline.">Intracerebral hemorrhage and cognitive decline.</a> Revue Neurologique. 169, 772-778 (2013).</li><li>Al-Khindi, T., Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cognitive+and+functional+outcome+after+aneurysmal+subarachnoid+hemorrhage.">Cognitive and functional outcome after aneurysmal subarachnoid hemorrhage.</a> Stroke. 41, 519-536 (2010).</li><li>Kreiter, K. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Predictors+of+cognitive+dysfunction+after+subarachnoid+hemorrhage.">Predictors of cognitive dysfunction after subarachnoid hemorrhage.</a> Stroke. 33, 200-208 (2002).</li><li>Zanaty, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraventricular+extension+of+an+aneurysmal+subarachnoid+hemorrhage+is+an+independent+predictor+of+a+worse+functional+outcome.">Intraventricular extension of an aneurysmal subarachnoid hemorrhage is an independent predictor of a worse functional outcome.</a> Clinical Neurology and Neurosurgery. 170, 67-72 (2018).</li><li>Gabrielian, L., Willshire, L. W., Helps, S. C., vanden Heuvel, C., Mathias, J., Vink, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracranial+pressure+changes+following+traumatic+brain+injury+in+rats:+lack+of+significant+change+in+the+absence+of+mass+lesions+or+hypoxia.">Intracranial pressure changes following traumatic brain injury in rats: lack of significant change in the absence of mass lesions or hypoxia.</a> Journal of Neurotrauma. 28, 2103-2111 (2011).</li><li>Kolar, M., Nohejlova, K., Duska, F., Mares, J., Pachl, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+of+cortical+perfusion+in+the+early+phase+of+subarachnoid+bleeding+in+a+rat+model+and+the+role+of+intracranial+hypertension.">Changes of cortical perfusion in the early phase of subarachnoid bleeding in a rat model and the role of intracranial hypertension.</a> Physiological Research. 66, 545-551 (2017).</li><li>Ariesen, M. J., Claus, S. P., Rinkel, G. J. E., Algra, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Risk+factors+for+intracerebral+hemorrhage+in+the+general+population.+A+systematic+review.">Risk factors for intracerebral hemorrhage in the general population. A systematic review.</a> Stroke. 34, 2060-2066 (2003).</li><li>MacLellan, C. L., Paquette, R., Colbourne, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+critical+appraisal+of+experimental+intracerebral+hemorrhage+research.">A critical appraisal of experimental intracerebral hemorrhage research.</a> Journal of Cerebral Blood Flow &amp; Metabolism. 32, 612-627 (2012).</li><li>Hartman, R., Lekic, T., Rojas, H., Tang, J., Zhang, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+functional+outcomes+following+intracerebral+hemorrhage+in+rats.">Assessing functional outcomes following intracerebral hemorrhage in rats.</a> Brain Research. 1280, 148-157 (2009).</li></ol>

Este estudio investigó los mecanismos para medir los PIC, PAM y CPP en un modelo animal de rata con Hiv no traumática. Los resultados se registraron en los siguientes grupos: animales simulados, VH 200 μL y control del vehículo (inyección intraventricular de líquido cefalorraquídeo artificial). Este diseño experimental se eligió para investigar cómo se pueden monitorear los PIC durante la inyección de Hiv, ya que planteamos la hipótesis de que el aumento en los PIC puede contribuir a la lesión cerebral secun...

La hemorragia intraventricular (hemorragia intraventricular), un tipo de hemorragia intracraneal (HIC), es una enfermedad devastadora que conlleva una mortalidad y morbilidad significativas. La hemorragia intraventricular se caracteriza por la acumulación de productos sanguíneos dentro de los ventrículos intracraneales. La Hiv aislada es poco frecuente y ocurre típicamente en adultos1. Puede estar asociado con hemorragia hipertensiva, rotura de aneurisma intracraneal u otra malformación vascular, tumores o traumatismo1. La hemorragia intraventricular conduce a una lesión cerebral secundaria, así como al desarrollo de hidrocefalia2. Los sobrevivientes de hemorragia intraventricular a menudo quedan con deficiencias funcionales, de memoria y cognitivas significativas después de su lesión. Estos déficits cognitivos y de memoria a largo plazo se reportan en hasta el 44% de los sobrevivientes de ICH3. En la hemorragia subaracnoidea (HAS), otro tipo de HIC, es bien sabido que aproximadamente la mitad de los sobrevivientes tendrán déficits de memoria, y para aquellos que tienen Hiv además de HSA, los resultados tienden a ser significativamente peores 4,5,6.
Los mecanismos subyacentes de la disfunción de la memoria después de la hemorragia intraventricular aún no se han dilucidado. La investigación in vivo utilizando modelos animales de HVI no traumática con disfunción funcional y de memoria es esencial para descubrir posibles objetivos terapéuticos para dichos pacientes. Los modelos animales con memoria más severa y disfunción funcional después de la hemorragia intraventricular serían los mejores para estudiar estos cambios. El laboratorio del autor principal también ha estado investigando específicamente el papel de la alta presión intracraneal (PIC) en el desarrollo de déficits de memoria en modelos de ratas IVH. Por lo tanto, fue importante investigar los métodos para medir con precisión los PIC durante la hemorragia intraventricular. Aquí, informamos sobre los métodos para medir con precisión los PIC en un modelo de rata IVH. Aunque la monitorización de la PIC ha sido utilizada previamente en modelos animales de hemorragia traumática y subaracnoidea, la monitorización de la PIC en modelos de roedores con Hiv espontánea no es tan comúnmente reportada en la literatura 7,8. Por lo tanto, el diseño experimental presentado aquí incluyó tres grupos de ratas Sprague Dawley: simulada, hemorragia intraventricular estándar de 200 μl y control del vehículo. Para el grupo de Hiv, se utilizó un modelo de inyección de sangre intraventricular autóloga. Para los animales control del vehículo, se utilizó la inyección intraventricular de solución estéril de Ringer lactato. Las PIC, las presiones arteriales medias (PAM) y las presiones de perfusión cerebral (PPC) se registraron intraoperatoriamente, y los resultados se informan aquí.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.25% bupivacaine</td>
			<td>Hospira, Inc.</td>
			<td>409115901</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mL syringe</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>60734</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% providine iodine solution</td>
			<td>Aplicare</td>
			<td>MSD093947</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 mL syringe</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>8881520657</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>22 G needles</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>305155</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>28 G intraventricular needles</td>
			<td>P technologies</td>
			<td>8IC313ISPCXC</td>
			<td>C313I/SPC 28-Gneedles to fit 22-G guide cannula with 6 mm projection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 silk suture</td>
			<td>Henry Schein, Inc.</td>
			<td>SP116</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-way-stopcock</td>
			<td>Merti Medical Systems</td>
			<td>M3SNC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>30525-89-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AnyMaze software</td>
			<td>Any-Maze behavioral tracking software</td>
			<td></td>
			<td>Stoelting CO, USA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Artificial ointment</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>48272</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blood collection vials with EDTA</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>367856</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bone wax</td>
			<td>CP Medical, Inc.</td>
			<td>CPB31A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carprofen</td>
			<td>Zoetis, Inc.</td>
			<td>54771-8507-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>Beckman</td>
			<td>BE-GS6R</td>
			<td>Model GS-6R</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton tip applicators</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>71214</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill</td>
			<td>Dremel</td>
			<td>1600A011JA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fiberoptic pressure sensors with readout units</td>
			<td>Opsens Medical</td>
			<td>OPP-M200-X-80SC- 2.0PTFE-XN-100PIT-P1 and LIS-P1-N-62SC</td>
			<td>Opp-M200 packaged pressure sensors with LifeSens system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td></td>
			<td>11923-13, 11064-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>71043</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Guillotine</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>51330</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating pad with rectal thermometer</td>
			<td>CWE, Inc.</td>
			<td>08-13000 ,08-13014</td>
			<td>TC1000 Temperature controller</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemostats</td>
			<td></td>
			<td>&#160;13013-14,&#160; 13008-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>29405</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lactated ringers</td>
			<td>Baxter Healthcare Corp.</td>
			<td>Y345583</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laryngoscope</td>
			<td>American Diagnostic Corporation</td>
			<td>4080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Metal clip</td>
			<td>Fine Scientic Tools</td>
			<td>18056-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro scissors</td>
			<td>Fine Scientic Tools</td>
			<td>15007-08</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>model L2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle driver</td>
			<td></td>
			<td>12003-15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylene tubing</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>14-170-12B</td>
			<td>PE-50 tubing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rats</td>
			<td>Envigo</td>
			<td></td>
			<td>Sprague Dawley rats 8&#8211;10 months old</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel</td>
			<td></td>
			<td>&#160;10010-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td></td>
			<td>14090-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic instrument</td>
			<td>Kopf instruments</td>
			<td></td>
			<td>Model 940 with ear bars</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe pump</td>
			<td>KD Scientific</td>
			<td>780100</td>
			<td>Model 100 series</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Touhy Borst</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>23242</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ventilator</td>
			<td>Harvard rodent ventilator</td>
			<td>55-0000</td>
			<td>Model 683</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

intracranial pressure monitoring in nontraumatic intraventricular hemorrhage rodent model

Los sobrevivientes de hemorragia intraventricular a menudo quedan con un deterioro significativo de la memoria a largo plazo; Por lo tanto, la investigación que utiliza modelos animales de hemorragia intraventricular es esencial. En este estudio, buscamos formas de medir la presión intracraneal, la presión arterial media y la presión de perfusión cerebral durante la hemorragia intraventricular no traumática en ratas. El diseño experimental incluyó tres grupos de Sprague Dawley: simulado, hemorragia intraventricular estándar de 200 μl y grupos de control de vehículos. Mediante la introducción de un sensor de presión de fibra óptica intraparenquimatoso, se obtuvieron mediciones precisas de la presión intracraneal en todos los grupos. Las presiones de perfusión cerebral se calcularon con el conocimiento de la presión intracraneal y los valores medios de presión arterial. Como era de esperar, los grupos de hemorragia intraventricular y control vehicular experimentaron un aumento en la presión intracraneal y una disminución posterior en la presión de perfusión cerebral durante la inyección intraventricular de sangre autóloga y líquido cefalorraquídeo artificial, respectivamente. La adición de un sensor de presión de fibra óptica intraparenquimatoso es beneficiosa para monitorear cambios precisos de presión intracraneal.

Presiones intracraneales, arteriales medias y de perfusión cerebral Tanto los PIC como los PAM se monitorizaron intraoperatoriamente en todos los animales (Figura 1). Las ratas tenían entre 8 y 10 meses de edad con un peso medio de 495 ± 17 g. También se recogieron gráficos ICP en tiempo real (Figura 2). Excluyendo el grupo simulado, los PIC aumentaron significativamente durante la inyección intraventricular en la Hiv, así com...

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Intracranial Pressure Monitoring In Nontraumatic Intraventricular Hemorrhage Rodent Model

La monitorización de la presión intracraneal en modelos roedores de hemorragia intraventricular no traumática no es común en la literatura actual. En este documento, demostramos una técnica para medir la presión intracraneal, la presión arterial media y la presión de perfusión cerebral durante la hemorragia intraventricular en un modelo animal de rata.

Monitorización de la presión intracraneal en un modelo de roedor con hemorragia intraventricular no traumática

Survivors of intraventricular hemorrhage are often left with significant long-term memory impairment; thus, research utilizing intraventricular hemorrhage ...

Este protocolo describe un método para medir la presión intracraneal, la presión arterial media y la presión de perfusión cerebral después de una hemorragia intraventricular no traumática en roedores. Las presiones intracraneales y arteriales medias se pueden medir de manera precisa y confiable con un sensor de fibra óptica insertado en la corteza y la arteria femoral de la rata, respectivamente. Las técnicas descritas aquí se traducen en el ámbito clínico cuando los pacientes con hemorragia intraventricular requieren una monitorización invasiva de la presión intracraneal.Los objetivos de este estudio fueron establecer un modelo animal de HVI con monitoreo objetivo de PIC, PAM y CCP después de la Hiv intraventricular, para que los autores puedan aplicar esto aún más en futuros experimentos que se centrarán en los efectos de los PIC inducidos por la Hiv en la disfunción posterior de la memoria. Las principales luchas pueden incluir precisión, ya que los sensores de fibra óptica son pequeños. La disección de la arteria femoral también podría representar un desafío para algunos, particularmente aquellos que no se utilizan en habilidades microquirúrgicas.Después de anestesiar a la rata, inserte el termómetro rectal para controlar la temperatura continuamente. Corta el vello de la cabeza y la región femoral, y prepara la piel con tres exfoliantes alternos de Betadine y alcohol al 70% antes de la cirugía. Aspire cualquier secreción respiratoria acumulada retirando temporalmente a la rata del ventilador y aspirando las secreciones con un tubo PE-50 conectado a una jeringa de 10 mililitros.Proteja los ojos con ungüento estéril para lágrimas artificiales. Antes de la incisión del cuero cabelludo, inyecte bupivacaína local en la piel y los tejidos subcutáneos. Coloque la rata en una posición prona en un marco estereotáctico y la orejera.Haga una incisión de cuero cabelludo de 1,5 centímetros a lo largo de la línea media con un bisturí de 15 cuchillas. Aplique una presión suave con una gasa para la hemostasia. Usando un aplicador de punta de algodón estéril, separe el periostio del cráneo hasta que el punto de referencia bregma sea visible.Localice y marque bregma usando estereotaxis, y marque la ubicación de dos orificios de rebabas bilaterales de 1,4 milímetros laterales y 0,9 milímetros negativos posteriores al bregma. Usando un taladro de mano, cree estos dos pequeños orificios craneales en los hemisferios derecho e izquierdo. Irrigar cualquier exceso de astillas óseas con solución estéril de Ringer lactato.En el hemisferio derecho, coloque una cánula guía de calibre 22 al nivel del orificio de rebabas para insertar la aguja de calibre 28 a través de la cánula hasta la profundidad del ventrículo lateral derecho para crear hemorragia intraventricular. Conecte el sensor de presión de fibra óptica a la unidad de lectura. Encienda la unidad de lectura y asegúrese de que las unidades seleccionadas estén en milímetros de mercurio.Luego, prepare el sensor sumergiendo su punta en un vaso pequeño con solución de Ringer lactato hasta que la unidad de lectura lea cero y esté lista para usar. En el hemisferio izquierdo, inserte suavemente el sensor de presión a una profundidad de dos a tres milímetros en la corteza para el monitoreo en tiempo real de ICP. Después de insertar el monitor ICP, gire la parte inferior del tronco de la rata para facilitar el acceso al muslo izquierdo y al área de la ingle.Después de la preparación estéril y la administración local de bupivacaína, haga una incisión cutánea de 1,5 centímetros sobre la extremidad posterior con un bisturí de 15 hojas. Diseccionar la arteria femoral izquierda superficialmente con un hemostático y luego capas más profundas usando fórceps con puntas finas bajo un microscopio. Identifique la vena femoral azul profundo para ayudar a localizar la arteria adyacente.Ate la arteria femoral distal con una sutura de seda 3-0 y coloque un clip de metal temporal en la porción proximal de la arteria femoral. Tenga un segundo sensor de presión de fibra óptica conectado a la unidad de lectura ya cebado. Inserte el sensor de presión en el tubo PE-50, que se inserta en un Tuohy Borst que luego se cierra.Conecte el Tuohy Borst a una llave de paso de tres vías conectada a una jeringa de un milímetro en un extremo y una aguja de calibre 22 con tubo PE-50 en el otro extremo. Bajo el microscopio, haga una arteriotomía femoral de dos milímetros con microtijeras y cannula con un tubo PE-50 conectado al resto de la configuración. Aspire 500 microlitros de sangre con una jeringa de un milímetro y gire la llave de paso de tres vías para que el sensor de presión lea MAP.Prepare la aguja intraventricular de calibre 28 conectada al tubo PE-50 con la sangre aspirada para animales de HVI y Ringer lactato para los animales de control del vehículo. Luego inserte esta aguja en la cánula guía hasta la profundidad del ventrículo lateral derecho. Usando una tasa de 100 microlitros por minuto, inyecte la sangre, o 200 microlitros de solución de Ringer lactato estéril en el ventrículo lateral derecho bombeando la jeringa de un milímetro con el pulgar.Controle y registre la PIC, la presión arterial y la temperatura rectal. Supervise y registre los valores ICP y MAP posteriores a la inyección. Después de completar la inyección intraventricular, retire el tubo PE-50 que contiene el sensor de presión insertado en la arteria femoral y aplique el clip temporal a la arteria femoral para prevenir el sangrado.Ate la porción proximal de la arteria femoral usando la sutura de seda 3-0 y cierre la incisión femoral de manera interrumpida usando seda 3-0. Retire la cánula guía con la aguja intraventricular en el monitor ICP. Selle los orificios de rebabas con cera ósea.Y cierre la incisión craneal con sutura de seda 3-0 interrumpidamente. Aplique bupivacaína tópica en la incisión e inyecte 0.5 miligramos por kilogramo de carprofeno. No deje a los animales desatendidos hasta que hayan recuperado la conciencia suficiente para mantener la decúbito esternal.Permita que las ratas se recuperen completamente después de la cirugía bajo supervisión y devuélvalas a sus jaulas domésticas con acceso gratuito a alimentos y agua después de la recuperación. Excluyendo el grupo simulado, los PIC aumentaron significativamente durante la inyección intraventricular en los grupos de HVI y control del vehículo. Los PIC fueron mayores en el grupo de Hiv en comparación con el control del vehículo.Luego, los PIC disminuyeron rápidamente y se normalizaron dentro de los cinco minutos posteriores a la inyección intraventricular en esos grupos de animales. Se observó que las PAM se mantuvieron similares durante todo el procedimiento, mientras que las PPC disminuyeron durante la inyección intraventricular de sangre o solución de Ringer lactato. Los pasos vitales de la cirugía incluyen la ubicación correcta y la perforación de orificios de rebabas y arteriotomía femoral.Los pasos mencionados anteriormente deben seguirse de cerca para garantizar que los sensores realicen su trabajo al leer los cambios de presión con precisión.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Autologous Blood Injection to Model Spontaneous Intracerebral Hemorrhage in Mice

Inyección de sangre autóloga al modelo hemorragia intracerebral espontánea en ratones

Investigation of the pathophysiology of injury after intracerebral
hemorrhage (ICH) requires a reproducible animal model.  While ICH
accounts for 10-15% ...

Investigación

Neurociencias

Direct Intraventricular Delivery of Drugs to the Rodent Central Nervous System

Entrega intraventricular directa de medicamentos al roedor Sistema Nervioso Central

Due to an inability to cross the blood brain barrier, certain drugs need to be directly delivered into the central nervous system (CNS). Our lab focuses ...

Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System

A largo plazo Monitoreo EEG continua en Modelos pequeño roedor de las enfermedades humanas Uso del Sistema Transmisor inalámbrico Epoch

Many progressive neurologic diseases in humans, such as epilepsy, require pre-clinical animal models that slowly develop the disease in order to test ...

A Volumetric Method for Quantification of Cerebral Vasospasm in a Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

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Doble inyección directa de sangre en la Cisterna Magna como modelo de hemorragia subaracnoidea

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Analysis of Cerebral Vasospasm in a Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage with High Frequency Transcranial Duplex Ultrasound

Análisis Del Vasospasmo Cerebral En Un Modelo Murino De Hemorragia Subaracnoidea Con Ultrasonido Dúplex Transcraneal De Alta Frecuencia

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