Name: a rat orthotopic renal transplantation model for renal allograft rejection
Uploaded: 2022-02-02T15:00:00
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Diese Arbeit wurde von der National Natural Science Foundation of China (81870304) an Jun Li und von der Else Kröner-Fresenius-Stiftung (Nr. 2017_A28) an Marcus Groettrup unterstützt.

Inzucht von 8-10 Wochen alten männlichen F344- und Lewis-Ratten (200 g bis 250 g) wurden kommerziell gewonnen. Die allogene linke Nierentransplantation wurde zwischen männlichen F344- und Lewis-Ratten durchgeführt. F344-Ratten wurden als Spender und syngene Empfänger verwendet, und Lewis-Ratten dienten als allogene Empfänger. Alle Tierhandhabungsverfahren wurden in Übereinstimmung mit den vom NIH veröffentlichten Richtlinien für die Pflege und Verwendung von Labortieren durchgeführt, und alle Tierversuchsprotoko...

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	<li>Cooper, J. E., Wiseman, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+immunosuppressive+agents+in+kidney+transplantation.">Novel immunosuppressive agents in kidney transplantation.</a> Clinical Nephrology. 73 (5), 333-343 (2010).</li><li>Colaneri, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+overview+of+transplant+immunosuppression--history,+principles,+and+current+practices+in+kidney+transplantation.">An overview of transplant immunosuppression--history, principles, and current practices in kidney transplantation.</a> Nephrology Nursing Journal. 41 (6), 549-560 (2014).</li><li>Colvin, R. B., Smith, R. 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F., Gonzalez, E., Wilchins, L. J., Nathan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kidney+transplantation+in+the+rat.">Kidney transplantation in the rat.</a> Nature. 194, 309-310 (1962).</li><li>Tillou, X., Howden, B. O., Kanellis, J., Nikolic-Paterson, D. J., Ma, F. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+in+renal+research:+kidney+transplantation+in+the+rat.">Methods in renal research: kidney transplantation in the rat.</a> Nephrology. 21 (6), 451-456 (2016).</li><li>Daniller, A., Buchholz, R., Chase, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Renal+transplantation+in+rats+with+the+use+of+microsurgical+techniques:+a+new+method.">Renal transplantation in rats with the use of microsurgical techniques: a new method.</a> Surgery. 63 (6), 956-961 (1968).</li><li>Ahmadi, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+rat+kidney+transplantation:+A+novel+and+simplified+surgical+approach.">Orthotopic rat kidney transplantation: A novel and simplified surgical approach.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (147), e59403 (2019).</li><li>G&#252;nther, E., Walter, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+major+histocompatibility+complex+of+the+rat+(Rattus+norvegicus).">The major histocompatibility complex of the rat (Rattus norvegicus).</a> Immunogenetics. 53 (7), 520-542 (2001).</li><li>Loupy, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Banff+2015+Kidney+Meeting+Report:+Current+challenges+in+rejection+classification+and+prospects+for+adopting+molecular+pathology.">The Banff 2015 Kidney Meeting Report: Current challenges in rejection classification and prospects for adopting molecular pathology.</a> American Journal of Transplantation. 17 (1), 28-41 (2017).</li><li>Fisher, B., Sun, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microvascular+surgical+techniques+in+research,+with+special+reference+to+renal+transplantation+in+the+rat.">Microvascular surgical techniques in research, with special reference to renal transplantation in the rat.</a> Surgery. 58 (5), 904-914 (1965).</li><li>Kamada, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+description+of+cuff+techniques+for+renal+transplantation+in+the+rat.+Use+in+studies+of+tolerance+induction+during+combined+liver+grafting.">A description of cuff techniques for renal transplantation in the rat. Use in studies of tolerance induction during combined liver grafting.</a> Transplantation. 39 (1), 93-95 (1985).</li><li>Grabner, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-invasive+imaging+of+acute+allograft+rejection+after+rat+renal+transplantation+using+18F-FDG+PET.">Non-invasive imaging of acute allograft rejection after rat renal transplantation using 18F-FDG PET.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (74), e4240 (2013).</li></ol>

Die Nierentransplantation bei der Ratte ist eine anspruchsvolle Arbeit, die ein hohes Maß an mikrochirurgischen Techniken erfordert, und die Operationstechniken wurden mehrmals optimiert. Von Anfang an implantierten Gonzalez et al. die Spenderniere in den Hals des Empfängers und anastomosierten den Spenderharnleiter auf die Haut9. Aufgrund der hohen Inzidenz von Harnwegsinfektionen und Stenosen des Spenderharnleiters wurde die Operation jedoch in kurzer Zeit abgebrochen. Anschließend wurde die ...

Die Nierentransplantation hat sich zum effektivsten therapeutischen Ansatz für Patienten mit Nierenfunktionsstörungen im Endstadium entwickelt. T-Zell-vermittelte akute Abstoßung und alloantikörpervermittelte humorale Immunabstoßung führen jedoch zur pathologischen Schädigung von Nierenallotransplantaten und begrenzen das Kurz- und Langzeitüberleben von Patienten nach Nierentransplantation 1,2,3. Leider fehlen immer noch die wirksamen Arzneimittel, die die Abstoßung von Nierenallotransplantaten verhindern, da die genauen Mechanismen der immunen und pathologischen Abstoßung von Nierenallotransplantaten nicht klar sind. Folglich tragen die präklinischen Studien, die die Mechanismen der immunen und pathologischen Abstoßung von Nierenallotransplantaten aufklären, dazu bei, neue Ziele zu finden und relevante wirksame Arzneimittel zu entwickeln, um die Abstoßung von Nierenallotransplantaten zu verhindern und schließlich das Überleben der Patienten zu verlängern.
Viele potenzielle immunologische und pathophysiologische Mechanismen der renalen Allotransplantatabstoßung wurden kürzlich in Rattenmodellstudien zur orthotopen Nierentransplantation 4,5,6,7,8 vorgeschlagen. Diese Ergebnisse schlagen mehrere neuartige Ziele und relevante Störansätze als vielversprechende Therapeutika zur Unterdrückung der renalen Allotransplantatabstoßung vor, wie z.B. komplementäre regulatorische Faktoren und Anti-CD59-Antikörper6, Immunproteasom und Epoxyketon-Inhibitoren 7,8. Daher ist die orthotope Nierentransplantation bei Ratten ein ideales präklinisches Modell, um die Mechanismen der Immunabstoßung und der pathologischen Schädigung von Nierenallotransplantaten nach Nierentransplantationen zu untersuchen.
Die Nierentransplantation von Ratten hat sich allmählich von der heterotopen Implantation der Nieren des Spenders9 zur orthotopen renalen Implantation mit End-to-Side-Anastomose der Gefäße oder mit End-to-End-Anastomose des Harnleiters unter Verwendung einer Manschettenmethode10,11,12 verlagert. Die vorliegende Studie beschreibt detaillierte Protokolle der orthotopen Nierentransplantation zwischen Ratten unter Verwendung der End-to-End-Anastomose der Nierenarterie und der Nierenvene der Empfänger sowie eine End-to-Side-"Tunnel" -Methode der Harnleiter-Blasen-Anastomose, die die Ischämie des Unterkörpers und die Thrombose der unteren Hohlvene vermeidet und den postoperativen Urinverlust und die Verdrehung des Harnleiters reduziert.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>&#160;10-0 Polyamide Monofilament suture</td>
			<td>B.Braun Medical Inc.</td>
			<td>G0090781</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;4-0 Polyamide Monofilament suture</td>
			<td>B.Braun Medical Inc.</td>
			<td>C1048451</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;8-0 Polyamide Monofilament suture</td>
			<td>B.Braun Medical Inc.</td>
			<td>C2090880</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine</td>
			<td>US Biological life Sciences</td>
			<td>352004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrocoagulator</td>
			<td>Electrocoagulator</td>
			<td>ZJ1099</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>F344 and Lewis rats</td>
			<td>Center of Experimental Animals (Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, China)</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze</td>
			<td>Henan piaoan group Co., LTD</td>
			<td>10210402</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating pad</td>
			<td>Guangzhou Dewei Biological Technology Co., LTD</td>
			<td>DK0032</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin</td>
			<td>North China Pharmaceutical Co., LTD</td>
			<td>2101131-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Injection syringe (1 ml and 10 ml)</td>
			<td>Shandong weigao group medical polymer Co., LTD</td>
			<td>20211001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>RWD Life Science Co., LTD</td>
			<td>21070201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin G Sodium</td>
			<td>Wuhan HongDe Yuexin pharmatech co.,Ltd</td>
			<td>69-57-8</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalp needle (24 G)</td>
			<td>Hongyu Medical Group</td>
			<td>20183150210</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shaver</td>
			<td>Beyotime</td>
			<td>FS600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small animal anesthesia machine</td>
			<td>RWD Life Science</td>
			<td>R500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Animal Surgery Kit</td>
			<td>Beyotime</td>
			<td>FS500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium chloride injection</td>
			<td>Southwest pharmaceutical Co., LTD</td>
			<td>H50021610</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical operation microscope</td>
			<td>Tiannuoxiang Scientific Instrument Co. , Ltd, Beijing, China</td>
			<td>SZX-6745</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Swab</td>
			<td>Yubei Medical Materials Co., LTD</td>
			<td>21080274</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tape</td>
			<td>Minnesota Mining Manufacturing Medical Equipment (Shanghai) Co., LTD</td>
			<td>1911N68</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UW solution</td>
			<td>Bristol-Myers Squibb Company</td>
			<td>17HB0002</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rat orthotopic renal transplantation model for renal allograft rejection

Die Abstoßung des renalen Allotransplantats begrenzt das Langzeitüberleben der Patienten nach einer Nierentransplantation. Die orthotope Nierentransplantation von Ratten ist ein wesentliches Modell zur Untersuchung des Mechanismus der renalen Allotransplantatabstoßung in präklinischen Studien und könnte bei der Entwicklung neuartiger Ansätze zur Verbesserung des Langzeitüberlebens von renalen Allotransplantaten helfen. Die Implantation der Spenderniere bei der orthotopen Nierentransplantation von Ratten wird üblicherweise durch End-to-Side-Anastomose an der Aorta der Empfänger und der unteren Hohlvene durchgeführt. In diesem Modell wurde die Niere des Spenders mittels End-to-End-Anastomose in die Nierenarterie und Nierenvene des Empfängers implantiert. Der Harnleiter des Spenders wurde in einer End-to-Side-Tunnelmethode an der Blase des Empfängers anastomosiert. Dieses Modell trägt zu einer besseren Heilung der Harnleiter-Blasen-Anastomose bei und erhöht das Überleben der Empfänger, indem es Störungen der Blutversorgung und venösen Reflux des Unterkörpers vermeidet. Mit diesem Modell können die Mechanismen der akuten und chronischen Immun- und pathologischen Abstoßung von Nierenallotransplantaten untersucht werden. Hier beschreibt die Studie die detaillierten Protokolle dieser orthotopen Nierentransplantation zwischen Ratten.

In diesem orthotopen Nierentransplantationsmodell der Ratte bewegen sich die Empfängerratten nach der Operation normal. Um die chronische Abstoßung des renalen Allotransplantats zu beobachten, werden Empfängerratten für 10 Wochen nach der Transplantation aufgezogen, und die Gesamtüberlebensrate der Empfängerratten beträgt zu diesem Zeitpunkt etwa 90%. Die Haupttodesursachen sind Blutungen und Austreten von Urin nach der Operation. Zu den anderen Hauptkomplikationen gehören Blutungen während der Operation, Thromb...

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A Rat Orthotopic Renal Transplantation Model for Renal Allograft Rejection

Das orthotope Nierentransplantationsmodell der Ratte trägt dazu bei, den Mechanismus der renalen Allotransplantatabstoßung zu untersuchen. Das aktuelle Modell erhöht das Überleben der Empfänger ohne Beeinträchtigung der Blutversorgung und venösen Reflux des Unterkörpers unter Verwendung einer End-to-End-Anastomose der Nierenimplantation und einer End-to-Side-"Tunnel" -Methode der Harnleiter-Blasen-Anastomose.

Ein orthotopes Nierentransplantationsmodell für die renale Allotransplantatabstoßung

Renal allograft rejection limits the long-term survival of patients after renal transplantation. Rat orthotopic renal transplantation is an essential ...

Die orthotope Nierentransplantation von Ratten ist ein wichtiges Modell zur Untersuchung des Mechanismus der renalen Allotransplantatabstoßung in präklinischen Studien und könnte bei der Entwicklung eines neuartigen Ansatzes zur Verbesserung des Langzeitüberlebens von renalen Allotransplantaten helfen. Die End-to-End-Anastomose der Nierengefäße bei dieser Operation vermeidet eine Ischämie des Unterkörpers und die Thrombose der Vena cava inferior, während die Anastomose des Harnleiters in einer End-to-Side-Tunnelmethode das postoperative Urinleck und die Verdrehung des Harnleiters reduziert. Diese Methode gibt Aufschluss über die Untersuchung der Mechanismen der Immunabstoßung und -verletzung von Nierenallotransplantaten nach Nierentransplantationen.Beginnen Sie mit dem Einschneiden des Abdomens mit einer chirurgischen Schere entlang der Mittellinie von der Symphyse pubis zum Subxiphoid. Öffnen Sie dann den Schnitt mit einem Retraktor. Nehmen Sie den Darm von der rechten Seite des Einschnitts und wickeln Sie ihn mit angefeuchteter Gaze ein, um ein Austrocknen zu verhindern.Legen Sie dann die linke Niere frei. Dissoziieren Sie die linke Nierenarterie und Vene mit Mikrozangen und Wattestäbchen unter 20-facher Vergrößerung. Ligatieren und transektieren Sie bei Bedarf die Nebennierenvene und die Genitalvene.Dissoziieren Sie den Harnleiter mit Hilfe von Mikropinzetten und erhalten Sie das periphere Bindegewebe, um die Blutversorgung des Harnleiters sicherzustellen. Dissoziation und Clip oder Ligate der Aorta etwa fünf Millimeter über der linken Nierenarterie mit einer Gefäßklemme oder 4-0 Polyamid-Monofilamentnaht. Dann transezieren Sie die linke Nierenvene distal zur Verbindung der linken Genitalvene und der Nebennierenvene.Mit einer 24-Gauge-Skalpellnadel spülen Sie die Niere von der Aorta unterhalb der linken Nierenarterie mit eiskalter UW-Lösung, ergänzt mit 100 Einheiten pro Milliliter Heparin, bis die Farbe des Blutes verblasst. Transsektieren Sie die linke Nierenarterie neben der Aorta, dann den Harnleiter neben der Blase und dissoziieren Sie die Niere mit Hilfe von Mikrozangen und Scheren. Bewahren Sie die linke Niere des Spenders in eiskalter UW-Lösung auf.Dissoziation der linken Nierenarterie und der Nierenvene der Empfängerratte unter 20-facher Vergrößerung mit Wattestäbchen und Mikropinzetten. Ligatieren Sie bei Bedarf die Nebennierenvene und die Vena genitalis. Schneiden Sie die linke Nierenarterie und die Nierenvene an der Wurzel mit mikrovaskulären Klemmen ab und durchbluten Sie dann die Nierenarterie und die Nierenvene drei Millimeter von der mikrovaskulären Klemme entfernt.Dissoziieren und lizieren Sie den linken Harnleiter etwa zwei bis drei Zentimeter unterhalb der Niere mit einem 8-0 Polyamid monofil nähen und transektieren es an der Ligatur. Sezieren Sie die native linke Niere des Empfängers, indem Sie die Niere mit Hilfe von Mikrozangen und Schere dissoziieren. Implantieren Sie die Spenderniere in die linke Nierengrube der Empfängerratte und legen Sie Eis um die implantierte Spenderniere.Wechseln Sie zur 45-fachen Vergrößerung und anastomosieren Sie dann die Nierenarterie und die Nierenvene des Spenders in einem End-to-End-Muster mit 10-0 Polyamid-Monofilamentnähten an die Nierenarterie und die Nierenvene des Empfängers. Um die Nierenarterie mit unterbrochenen Nähten zu anastomosieren, platzieren Sie die Haltenähte in 12- und sechs-Uhr-Positionen der Anastomose. Nähen Sie eine Seite der Anastomose zwischen den beiden Bleibähten mit zwei bis drei Stichen.Drehen Sie die Strebenähte um und nähen Sie die andere Seite der Anastomose zwischen den beiden Bleibähten mit zwei bis drei Stichen. Um die Nierenvene mit kontinuierlichen Nähten zu anastomosieren, platzieren Sie die Haltenähte an den Positionen sechs und 12 Uhr der Anastomose. Nähen Sie eine Seite der Anastomose aus der 12-Uhr-Position mit vier bis fünf Stichen mit den laufenden Nähten.Drehen Sie die Strebenähte um und nähen Sie die andere Seite der Anastomose aus der Sechs-Uhr-Position. Reperfusionieren Sie die Spendernieren, indem Sie die nicht-invasive mikrovaskuläre Klemme der Nierenvene lösen, identifizieren Sie die Blutungsstellen und machen Sie bei Bedarf zusätzliche Stiche. Als nächstes lösen Sie die nicht-invasive mikrovaskuläre Klemme der Nierenarterie, identifizieren Sie die Blutungsstellen und machen Sie bei Bedarf zusätzliche Stiche.Bei einer 20-fachen Vergrößerung ligaten oder nähen Sie das Ende des Spenderharnleiters mit einer 4-0-Polyamid-Monofilamentnaht als Schlepptau, um das Ende durch den Tunnel der Empfängerblase zu ziehen. Befestigen Sie den Spenderharnleiter mit der Blase des Empfängers, indem Sie die Adventitia des Spenderharnleiters mit der Muskelschicht der Empfängerblase außen an vier gleich weit entfernten Positionen mit einem 8-0 nähen Polyamid-Monofilament-Naht. Transektieren Sie anschließend das Ende des Spenderharnleiters mit der Naht außerhalb der Empfängerblase und lassen Sie den Spenderharnleiter wieder in die Blase des Empfängers schrumpfen.Legen Sie den Darm zurück in die Bauchhöhle und schließen Sie den Bauchschnitt mit kontinuierlichen Nähten in der Muskelschicht und dann die Hautschicht mit einer 4-0 Polyamid-Monofilamentnaht. Nach zehn Wochen nach der Transplantation zeigten Hämatoxylin- und Eosinfärbung und periodische Säureverschiebungsfärbung Glomerulärsklerose, interstitielle Fibrose, tubuläre Atrophie und interstitielle arterielle Sklerose im renalen Allotransplantat im Gegensatz zur Isotransplantatniere. Die Silberfärbung zeigte die Verdickung der glomerulären Basalmembran in der Allotransplantatniere im Vergleich zur Isotransplantatniere, was auf den Erfolg des orthotopen Nierentransplantationsmodells der Ratte hinweist.Da das Gefäßloch der Nieren sehr dünn ist, um die falsche Naht zu vermeiden, denken Sie daran, die Anastomose auf dem Feld mit hoher Vergrößerung durchzuführen.

Research

JoVE Journal

Medicine

Orthotopic Aortic Transplantation: A Rat Model to Study the Development of Chronic Vasculopathy

Orthotopen Aorten-Transplantation: Ein Rattenmodell die Entwicklung von chronischen Vaskulopathie Study

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant ...

Forschung

Medizin

Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

Nicht-invasive Bildgebung des akuten Abstoßung nach Nierentransplantation mit Rat<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG PET

The number of patients with end-stage renal  disease, and the number of kidney allograft recipients continuously increases.  Episodes of acute cellular ...

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Chirurgische Verfahren für eine Ratte Modell Teilweise Lebertransplantation mit arteriellen Rekonstruktion

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

Renal Ischaemia Reperfusion Injury: A Mouse Model of Injury and Regeneration

Renale Ischämie Reperfusionsschaden: Ein Maus-Modell der Schädigung und Regeneration

Renal ischaemia reperfusion injury (IRI) is a common cause of acute kidney injury (AKI) in patients and occlusion of renal blood flow is unavoidable ...

Mouse Kidney Transplantation: Models of Allograft Rejection

Maus Nierentransplantation: Modelle der Transplantatabstoßung

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely ...

Murine Kidney Transplant Technique

Murine Nierentransplantations Technik

The first mouse kidney transplant technique was published in 19731 by the Russell laboratory. Although it took some years for other labs to become ...

Heterotopic Renal Autotransplantation in a Porcine Model: A Step-by-Step Protocol

Heterotope Renal Autotransplantation in einem Schweine-Modell: Eine Schritt-für-Schritt-Protokoll

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A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

Einem Rattenmodell der orthotopen Lebertransplantation mit einer neuartigen magnetischen Anastomose-Technik für Suprahepatic Vena Cava Wiederaufbau

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An Efficient Sieving Method to Isolate Intact Glomeruli from Adult Rat Kidney

Eine effiziente Methode der Absiebung, intakten Glomeruli von Erwachsenen Ratte Niere zu isolieren

Preservation of glomerular structure and function is pivotal in the prevention of glomerulonephritis, a category of kidney disease characterized by ...

Incorporation of a Survivable Liver Biopsy Procedure in Mice to Assess Non-alcoholic Steatohepatitis (NASH) Resolution

Incorporation of a Survivable Liver Biopsy Procedure in Mice to Assess Non-alcoholic Steatohepatitis NASH Resolution

Gründung einer Survivable Leberbiopsie Prozedur bei Mäusen zu beurteilen, nicht-alkoholische Steatohepatitis (NASH) Auflösung

Clinical trials assessing therapies for the treatment of non-alcoholic steatohepatitis (NASH) involve a baseline and end of study liver biopsy, and ...