这些协议旨在了解人类中性粒细胞如何与细菌生物膜相互作用并杀死细菌生物膜。目标是更好地理解这一点，并限制从测定到测定的变异性，了解人类中性粒细胞在供体之间存在固有的问题。此处列出的技术已经过优化，允许用户以最小的可变性进行实验，特别是对于松散附着的生物膜。
此外，这些方案还可以用于研究可以形成生物膜的其他微生物。首先在营养丰富的琼脂平板（如胰蛋白酶大豆琼脂）上使用条纹平板技术从冷冻保存的原液中获得金黄色葡萄球菌的分离菌落。用在无菌水中稀释的100微升PLL涂覆96孔板的各个孔，并在室温下孵育30分钟。
使用真空辅助抽吸阱无菌吸出PLL溶液。让孔在室温下干燥过夜。通过在补充有 2% 葡萄糖的 MEM-α 中接种金黄色葡萄球菌菌落并在 37 摄氏度下以每分钟 200 转的速度孵育 16 至 18 小时来制备过夜培养物。
通过将50微升转移到补充有2%葡萄糖的5毫升新鲜MEM-α中来稀释过夜培养物。然后在 37 摄氏度下以每分钟 200 转的速度孵育它，直到达到中间对数阶段。使用 MEM-alpha 将中间对数培养物标准化为 OD 0.1。
将 150 微升标准化培养物转移到 PLL 处理的 96 孔板的每个孔中。将板在 37 摄氏度的加湿室中孵育 18 至 20 小时。吸出上清液以除去浮游细胞。
用150微升HBSS轻轻清洗剩余的生物质，以去除未附着的细胞。重复至少两次以去除所有浮游细胞。将100微升在HBSS中稀释的20%正常人血清滴加到洗涤的生物膜中，并在37摄氏度下孵育30分钟以调理生物膜。
吸出血清溶液并用150微升HBSS滴洗生物膜。吸出HBSS，留下带有调理生物膜的孔。将鲁米诺加入重悬于HBSS中的中性粒细胞中，以构成5微摩尔鲁米诺的终浓度。
该溶液可直接用于A组和C组，将与鲁米诺混合的中性粒细胞添加到具有调理生物膜的孔中。对于D组，在没有任何中性粒细胞的单独管中制备HBSS中的50微摩尔鲁米诺溶液，并将其添加到含有生物膜的孔中。将350微升中性粒细胞与鲁米诺混合，并以每毫升500纳克的终浓度加入PMA。
对于B组，将该混合物中的嗜中性粒细胞加入没有生物膜的孔中。这可以作为阳性对照。在 270 RCF 下以 4 摄氏度离心板 30 秒。
确保酶标仪设置为37摄氏度，发光和动力学读数60分钟，间隔3分钟。将板放入读板器中以测量中性粒细胞产生的ROS60分钟。使用表达GFP的金黄色葡萄球菌荧光菌株（如USA300）来简化显微镜成像。
将中性粒细胞与 100 微摩尔 BCD 在 37 摄氏度的摇臂中与 5% 大气二氧化碳一起孵育 30 分钟。确保样品在黑暗中孵育，并限制光照。要洗涤过量的BCD，请在270 RCF下离心中性粒细胞五分钟，然后吸出上清液。
将中性粒细胞重新悬浮在新鲜的HBSS中。然后将乙锭同源二聚体-1以终浓度为4微摩尔的BCD染色的中性粒细胞中加入，以监测中性粒细胞和细菌死亡。用HBSS洗涤生物膜，并向在微载玻片中生长的金黄色葡萄球菌生物膜中加入150微升中性粒细胞。
将微载玻片在加湿室中孵育30分钟。细菌细胞的数量将基于从18小时生物膜接种中获得的细胞计数。使用对应于荧光染料的荧光通道或蛋白质的激发和发射波长对中性粒细胞生物膜相互作用进行成像。
细菌生长培养基在孵育期30分钟后将中性粒细胞的活力降至约60%。然而，哺乳动物细胞培养基不影响中性粒细胞的活力，并且还可以支持金黄色葡萄球菌生物膜的生长。用PMA作为对照处理的中性粒细胞显示ROS产生增加。
在没有生物膜的情况下，用PMA处理的中性粒细胞显示出强大的ROS产生。在存在金黄色葡萄球菌生物膜的情况下，用PMA处理的中性粒细胞的总体ROS产生减少，而在没有PMA的情况下，中性粒细胞仅依靠它们与生物膜的相互作用，进一步减少了ROS的产生。宽场荧光显微镜显示，许多中性粒细胞局限于表面，而少数位于金黄色葡萄球菌生物膜内。
大多数与中性粒细胞相互作用的金黄色葡萄球菌细胞已经死亡，而少数通过LIVE/DEAD染色确定仍然活着。乙锭同源二聚体-1染色的生物膜揭示了生物膜中死亡的金黄色葡萄球菌种群的一小部分。孵育30分钟后洗涤生物膜和中性粒细胞以去除未粘附的中性粒细胞的效果显示，大约33%的死中性粒细胞仍然附着在生物膜上。
这里列出的协议也可用于进一步研究中性粒细胞的其他功能，例如吞噬作用，以及中性粒细胞遇到生物膜时中性粒细胞细胞外陷阱的形成。
