Name: collection and long-term maintenance of leaf-cutting ants (atta) in laboratory conditions
Uploaded: 2022-08-30T14:00:00
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Dédié à Mario Autuori (in memoriam) et Walter Hugo de Andrade Cunha qui ont grandement contribué aux études sur la coupe de feuilles. Nous reconnaissons le soutien de l’Université d’État de São Paulo et de l’Institut des biosciences. Cette étude a été financée en partie par le Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior-Brasil (CAPES) - Code financier 001, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq), Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP) et Fundação para o Desenvolvimento da UNESP (Fundunesp).

1. Collection de reines
<ol><li>Recherche dans la littérature pour la période de la saison de reproduction d’Atta dans la région d’intérêt. L’occurrence de la saison de reproduction, la fréquence et la durée diurne des vols nuptiaux varient selon les conditions climatiques régionales (tableau 1). Bien qu’elle ait généralement lieu au printemps, cette information doit être recueillie pour l’endroit où la collecte est prévue 37,38,39,40,41,42,43,44,45,46.<...

Le protocole décrit ici pour maintenir les colonies de fourmis coupeuses de feuilles a été développé et appliqué pendant plus de trois décennies de manière affirmée et reproductible. Il a permis le développement de recherches qui seraient limitées par les conditions sur le terrain. Ainsi, des fourmis et des colonies saines sont devenues disponibles pour la recherche dans plusieurs domaines tels que la morphologie comparative, la toxicologie 51,52, l’histologie53 et la microbiologie<su...

Les fourmis composent un groupe diversifié d’individus qui exercent une influence sur la plupart des environnements terrestres1. Ils agissent comme des disperseurs efficaces 2,3,4, prédateurs5 et ingénieurs écosystémiques 6,7,8,9,10, soulignant leur importance et leur succès écologique sur les écosystèmes naturels. Toutes les espèces de fourmis sont classées comme insectes eusociaux; Cependant, leur organisation sociale varie considérablement entre les différents groupes d’espèces, c’est-à-dire les systèmes de division du travail, les groupes fonctionnels, la communication entre les individus, l’organisation du fourrage, la fondation des colonies et le processusde reproduction 11. En tant que groupe très diversifié, ils ont recours à plusieurs ressources alimentaires et à des comportements alimentaires spécialisés. En fait, l’agriculture n’était pas seulement un grand pas pour la civilisation humaine, mais aussi pour les espèces de fourmis. Il y a environ 55 à 65 Ma12, les fourmis attinées ont commencé à cultiver des champignons et à les incorporer dans un régime alimentaire presque exclusif. Ils sont devenus si spécialisés qu’ils ont développé des interactions strictes, dépendantes et obligatoires classées comme symbiose, où un individu ne survit pas sans l’autre.
Les fourmis productrices de champignons inférieurs collectent et traitent les matières organiques mortes, telles que les fragments de feuilles en décomposition, pour faire pousser leur champignon mutualiste; tandis que les fourmis productrices de champignons supérieurs récoltent du matériel végétal frais, composant l’un des systèmes naturels symbiotiques les plus réussis13. Cette technique agricole hautement spécialisée leur a permis de s’emparer d’un nouveau créneau. Les fourmis attinées supérieures comprennent les fourmis coupeuses de feuilles, un groupe monophylétique qui suscite entre 19 Ma (15-24 Ma) et 18 Ma (14-22 Ma)14,15,16 composé de quatre genres valides: Atta Fabricius, Acromyrmex Mayr, Amoimyrmex Cristiano et Pseudoatta Gallardo. Le système agricole coupeur de feuilles réalisé par les fourmis coupeuses de feuilles a évolué à partir de systèmes agricoles dérivés17. La plupart de ces espèces exploitent exclusivement l’espèce de champignon mutualiste Leucoagaricus gongylophorus Singer 18 (également appelé Leucocoprinus gongylophorus Heim19), marquant une transition évolutive significative 11. Les cultivars fongiques sont transmis verticalement, des nids originaux aux descendants, ce qui suggère qu’ils sont multipliés clonalement20.
Remarquablement, les sociétés Atta ont développé une structure organisationnelle complexe d’une importance énorme dans leur environnement et d’un grand intérêt pour les myrmécologues. Leur population peut être composée de millions d’individus, la plupart d’entre eux des ouvrières stériles qui présentent un polymorphisme accentué, c’est-à-dire une taille et une morphologie anatomique distinctes. La population se distingue par castes selon l’âge, l’état physiologique, le type morphologique, les comportements et les activités spécialisées dans la colonie21. Les travailleurs peuvent être discriminés en jardiniers et infirmières, généralistes à l’intérieur du nid, butineurs et excavateurs, défenseurs ou soldats21. Cette organisation permet l’exécution de tâches en coopération et un système auto-organisé qui peut produire des comportements collectifs très structurés, leur permettant de répondre efficacement aux perturbations environnementales22.
Le rôle de renouvellement de la population est joué par une seule reine (c’est-à-dire monogyne), aussi longtemps qu’elle vit, constituant la caste reproductrice permanente22. Les reines Atta sont connues pour vivre plus de 20 ans, pondant des œufs tout au long de leur vie23. Comme la reine est irremplaçable, son endurance est cruciale pour la survie de la colonie 13,20,23,24. Pourtant, des milliers de femelles et de mâles reproducteurs ailés peuvent être trouvés dans le nid pendant les saisons de reproduction, mais aucun ne reste dans le nid d’origine, formant une caste temporaire22. Dans les colonies d’Atta sexdens, près de 3 000 femelles reproductrices et 14 000 mâles reproducteurs sont produits, 25. Il se produit lorsqu’une colonie atteint la maturité sexuelle, environ 38 mois après sa mise en œuvre, et est répété chaque année depuis jusqu’à ce qu’il soit éteint23,25. De nouvelles colonies d’Atta sont établies par l’haplométrose, où une reine commence un nouveau nid.
Lorsque les conditions environnementales sont favorables, les reproducteurs quittent le nid souterrain pour commencer le vol nuptial. La période de son apparition diffère selon les régions, allant tout au long de l’année sur tout le territoire brésilien en fonction de l’espèce. Cependant, l’événement semble être précédé par les précipitations et l’élévation de l’humidité26, ce qui peut être lié à la facilitation de l’excavation due à l’humidité du sol22. Fréquemment, 1 à 5 semaines avant le vol nuptial, les entrées et les canaux du nid sont élargis pour faciliter le départ des individus reproducteurs. Avant de quitter leurs colonies mères, les femelles ailées recueillent et stockent, dans une cavité infrabuccale, une partie du champignon mutualiste20,27. De multiples copulations sont effectuées en plein vol, et on calcule qu’une reine peut être inséminée par trois à huit mâles (c.-à-d. polyandrie) chez certaines espèces28, assurant la variabilité génétique29. Ensuite, les reines se dirigent vers le sol, privilégiant les endroits où il n’y a pas ou peu de végétation25, où elles enlèvent leurs ailes et creusent leur première chambre de nidification. C’est la seule période où les reines peuvent être vues à l’extérieur du nid. Bien que des individus de la caste temporaire aient été observés dans des nids artificiels, on ne sait pas si une copulation réussie (c.-à-d. vol nuptial) a été effectuée dans des conditions de laboratoire24.
La construction initiale du nid correspond à la période la plus cruciale de la colonie, qui peut durer de 6 h à 8 h23,25. À ce moment, la reine cloître elle-même dans la chambre initiale et, en quelques jours, la ponte commence. Les premiers œufs sont donnés au mycélien que la reine régurgite, marquant le début du jardin de champignons de la colonie. Les premières larves apparaissent dans environ 25 jours22, et presque à la fin du premier mois, la colonie se compose d’un tapis de champignons proliférants, où les immatures (œufs, larves et nymphes) sont nichés, et la reine, qui élève sa progéniture initiale dans l’isolement23. Les œufs sont également la ressource alimentaire des premières larves et sont très consommés par la reine13. De plus, la reine se nourrit de réserves graisseuses et de muscles de l’aile catabolisant qui ne sont plus utiles13. La culture initiale du champignon n’est pas consommée car la survie de la colonie dépend de son développement, et pendant cette période, la reine la fertilise avec du liquide fécal13. Quelques jours après l’émergence, les premiers ouvrières ouvrent l’entrée du nid et commencent une activité de recherche de nourriture dans les environs immédiats du nid13. Ils incorporent le matériel recueilli comme substrat du jardin de champignons, qui sert maintenant de nourriture aux travailleurs13,22. Avant d’être ajouté à la culture de champignons, le matériel végétal transporté par les travailleurs est coupé en petits morceaux et humidifié avec du liquide fécal13. Les fourmis manipulent l’inoculum du champignon pour augmenter et contrôler sa croissance, qui servira à cloisonner les grandes chambres creusées en terre, spécialisées dans le conditionnement du jardin 13,22,25.
Environ 6 mois après le vol nuptial, les nids d’A. sexdens contiennent une chambre fongique et quelques canaux. La grande spécialisation dans la construction de nids de fourmis coupant les feuilles fonctionne comme un mécanisme de défense contre les ennemis naturels et les facteurs environnementaux défavorables22. Les fourmis coupeuses de feuilles sont connues pour fragmenter le jardin de champignons et le transposer dans des chambres très humides lorsque les chambres commencent à sécher13. Ainsi, bien que l’excavation du nid ait un coût énergétique considérable, l’énergie investie est inversée en bénéfices pour la colonieelle-même22. À quelques exceptions près, les espèces d’Atta fabriquent également des chambres spécialisées pour les déchets de la colonie, constituées principalement de substrat de champignons appauvri et de corps de fourmis mortes, les isolant du reste du nid et établissant une importante stratégie d’immunité sociale30. De plus, un groupe distinct de travailleurs manipule directement les ordures pour éviter la contamination d’autres personnes. Les ouvrières cherchent constamment à nourrir le champignon, qui est la principale ressource nutritionnelle de la colonie. Cependant, ils peuvent également se nourrir de la sève des plantes tout en coupant des fragments. Le matériel végétal est soigneusement sélectionné pour l’entretien du jardin de champignons et influencé par de nombreux facteurs tels que les caractéristiques des feuilles et les propriétés de l’écosystème13.
La stratégie de recherche de nourriture des fourmis coupeuses de feuilles pour obtenir du matériel frais est très complexe et, combinée à la forte demande de récolte des colonies établies, entraîne des pertes économiques considérables pour les producteurs agricoles et met en péril les zones de restauration forestière22,31. Par conséquent, ces fourmis peuvent être classées comme nuisibles dans la plupart des régions où elles peuvent être rencontrées, allant du sud des États-Unis au nord-est de l’Argentine 11,13,22,32. L’extinction des colonies problématiques est difficile en raison de la série d’adaptations inhérentes à la biologie de ces insectes (c.-à-d. organisation sociale, recherche de nourriture, culture de champignons, hygiène et structures de nidification complexes)33. Par conséquent, les stratégies de contrôle de la population sont distinctes de celles généralement appliquées à d’autres insectes nuisibles et ont principalement recours à des appâts contaminés attrayants33,34. Cependant, comme ces fourmis peuvent rejeter des substances nocives pour le champignon et les individus de la colonie, et compromettre les champs cultivés 33, de nouveaux composés naturels et des alternatives de contrôle sont constamment testés33,35,36. Comme les résultats des expériences peuvent difficilement être surveillés sur des colonies testées sur le terrain, les essais préliminaires sont menés dans un environnement contrôlé.
Ainsi, les protocoles expérimentaux doivent être adaptés aux groupes d’intérêt en tenant compte du mode de vie hétérogène des fourmis, en soutenant les études au niveau de l’espèce et en tenant compte des colonies en tant qu’unités opérationnelles, où une fourmi est un élément d’un superorganisme complexe11. Les rapports recueillis jusqu’à présent concernant le genre Atta ont permis de collecter et de maintenir avec succès des colonies dans des conditions de laboratoire et de reconnaître leurs besoins fondamentaux et leur fonctionnement général. Sur la base de leurs processus naturels tels que la reproduction, la fondation de colonies et les comportements alimentaires, une routine de pratiques a été développée qui permet l’établissement à long terme de colonies dans différents types de nids. Ici, un protocole procédural pour maintenir les fourmis coupeuses de feuilles dans le laboratoire est décrit et met en évidence les recherches générales possibles avec des objectifs d’expérimentation et de vulgarisation scientifique distincts.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Entomologic forceps</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass tank</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Tempered glass, custom made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hose</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Transparent, PVC 1/2 Inch x 2,0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Latex gloves</td>
			<td>Descarpack</td>
			<td>550301</td>
			<td>N/A</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nitrile gloves</td>
			<td>Descarpack</td>
			<td>433301</td>
			<td>N/A</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Open arena</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Polypropylene crate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plaster pouder</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Plaster pouder used in construction, must be absorbant</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic Containers for collection</td>
			<td>Prafesta</td>
			<td>Natural C&#243;d.: 8231/Natural C&#243;d.: 8262</td>
			<td>Lidded, transparent , polypropylene</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic containers for nests</td>
			<td>Prafesta</td>
			<td>Discontinued</td>
			<td>Polystyrene, hermetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Teflon</td>
			<td>Dupont</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Polytetrafluoroethylene liquid (PTFE Dispertion 30)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

collection and long-term maintenance of leaf-cutting ants (atta) in laboratory conditions

Les fourmis sont l’un des groupes d’animaux les plus riches en biodiversité de la planète et habitent différents environnements. Le maintien des colonies de fourmis dans des environnements contrôlés permet une compréhension enrichie de leur biologie qui peut contribuer à la recherche appliquée. Cette pratique est généralement utilisée dans les études de contrôle des populations d’espèces qui causent des pertes économiques, telles que les fourmis atta . Pour cultiver leur champignon mutualiste, ces fourmis coupeuses de feuilles collectent des feuilles et sont considérées comme des ravageurs agricoles largement répandus sur tout le continent américain. Ils sont très organisés socialement et habitent des nids souterrains élaborés composés d’une variété de chambres. Leur maintien dans un environnement contrôlé dépend d’une routine quotidienne de plusieurs procédures et de soins fréquents qui sont décrits ici. Cela commence par la collecte des reines pendant la saison de reproduction (c’est-à-dire le vol nuptial), qui sont ensuite transférées individuellement dans des récipients en plastique. En raison du taux de mortalité élevé des reines, une deuxième collecte peut être effectuée environ 6 mois après le vol nuptial, lorsque des nids naissants avec une liasse de champignons développée sont excavés, cueillis à la main et placés dans des récipients en plastique. En laboratoire, les feuilles sont fournies quotidiennement aux colonies établies, et les déchets produits par les fourmis sont enlevés chaque semaine avec le matériel végétal sec restant. Au fur et à mesure que le jardin de champignons continue de croître, les colonies sont transférées dans différents types de conteneurs en fonction du but expérimental. Les colonies de fourmis coupeuses de feuilles sont placées dans des conteneurs interconnectés, représentant le système organisationnel avec des chambres fonctionnelles construites par ces insectes dans la nature. Cette configuration est idéale pour surveiller des facteurs tels que la quantité de déchets, la santé des champignons et le comportement des travailleurs et de la reine. La collecte de données facilitée et des observations plus détaillées sont considérées comme le plus grand avantage de maintenir les colonies de fourmis dans des conditions contrôlées.

Un organigramme illustrant le processus de collecte des fourmis est illustré à la figure 6. Ici, certains résultats obtenus en utilisant le protocole de collecte, d’entretien et de configuration des nids décrit ci-dessus sont présentés.
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64154/64154fig6v2.jpg"> Figure 6 : Organigramme pour la collecte des colonies de...

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Collection and Long-Term Maintenance of Leaf-Cutting Ants Atta in Laboratory Conditions

Ici, un protocole est décrit pour collecter et maintenir avec succès des colonies de fourmis Atta (Hymenoptera: Formicidae) en bonne santé dans des conditions de laboratoire. De plus, différents types et configurations de nids sont détaillés ainsi que des procédures expérimentales possibles.

Collecte et entretien à long terme des fourmis coupeuses de feuilles (Atta) dans des conditions de laboratoire

Ants are one of the most biodiverse groups of animals on the planet and inhabit different environments. The maintenance of ant colonies in controlled ...

La collecte et le maintien réussis de colonies dans différents types de nids dans des conditions de laboratoire permettent le développement de la recherche générale et peuvent promouvoir la vulgarisation scientifique. Étant donné que les colonies testées par dossier sont difficiles à surveiller, ce protocole permet des conditions expérimentales préliminaires dans un environnement contrôlé, en utilisant des colonies entières comme unités opérationnelles. Ce protocole peut être adapté à d’autres groupes d’intérêt en considérant les modes de vie hétérogènes des espèces de fourmis, telles que les fourmis particulières du genre Acromimix.Une personne qui n’a jamais pratiqué cette technique peut considérer l’incertitude des événements et la routine complexe des soins quotidiens comme des difficultés. Une première collecte devrait avoir lieu juste après le vol nuptial dans lequel les reines qui ont enlevé leurs ailes et commencé l’excavation sont placées dans de petits récipients avec une base en plâtre. Une deuxième collecte devrait avoir lieu six mois après le vol nuptial au cours duquel les colonies développées par les reines qui ont commencé avec succès la fondation des colonies sont collectées.Après le développement des colonies, ils sont transférés dans des conteneurs plus grands et éventuellement dans différentes configurations de nidification. Préparez les récipients à couvercle en plastique avec une couche inférieure de plâtre pour retenir les reines individuellement. Pendant la saison de reproduction, identifiez les nids d’Atta dans les zones d’occurrence des fourmis coupeuses de feuilles et recherchez les caractéristiques externes qui indiquent le départ prochain des fourmis reproductrices ailées.Les caractéristiques du nid comprennent des entrées de tunnel élargies, des fourmis reproductrices ailées apparaissant à l’entrée des tunnels et un flux accru de travailleurs montrant un comportement plus agressif envers les prédateurs possibles. Après le vol nuptial, lorsque les femelles reproduisent retournent au sol, enlevez leurs ailes et commencez l’excavation du nid. Commencez la collection des reines.Placez-les soigneusement individuellement dans des récipients en plastique préparés avec une couche de plâtre. Placez les reines dans un environnement contrôlé et ne les manipulez pas ou ne les déplacez pas pendant environ trois jours pour éviter le stress. Percez soigneusement les couvercles et versez 2,5 millilitres d’eau avec une seringue aiguilletée sur la couche de plâtre du récipient tous les deux jours.Tant que le jardin de champignons présente un aspect sec avec absence d’eau, irriguez la couche de plâtre. Vérifiez si les reines ont régurgité le champignon deux semaines après la collecte. S’il n’y a pas de champignon, collectez deux grammes du jardin de champignons des colonies saines et établies et transférez-les dans les conteneurs des reines.Effectuez cette étape même si le champignon ne se développe pas. Après l’apparition des premiers ouvriers, commencez à offrir régulièrement des fragments de feuilles jeunes et minces en fonction de l’activité coupée de la colonie et retirez les déchets de la colonie et les fragments de feuilles sèches. Suivez le développement de la colonie et, lorsque le jardin de champignons atteint au moins la moitié du volume du conteneur, transférez la colonie dans un nid artificiel et durable.Six mois après le dernier vol nuptial, identifier des monticules indicatifs en forme de tour avec des particules de sol granulées de naissants atteints sur les lieux d’apparition des fourmis coupeuses de feuilles. On estime que les nids des jeunes colonies se trouvent jusqu’à un mètre de profondeur dans le sol après six mois de vol nuptial. À ce moment, creusez l’entrée du nid jusqu’à ce que vous atteigniez la chambre contenant la jeune colonie avec une houe de jardin.Ramassez la reine, le jardin de champignons, les immatures et les jeunes travailleurs et placez-les dans un récipient en plastique d’environ 500 millilitres. Déplacer les contenants à couvercle en plastique contenant les colonies vers l’environnement contrôlé désigné. Ne manipulez pas ou ne déplacez pas les colonies pendant environ trois jours pour éviter le stress.Commencez à offrir des feuilles. Lorsque vous offrez de nouvelles feuilles, enlevez les feuilles sèches et les déchets de colonie. Retirez les restes de terre de la collection à l’aide d’une cuillère.Suivez le développement des colonies et, lorsque le jardin de champignons atteint au moins la moitié du volume du conteneur, transférez les colonies dans des nids artificiels et durables, un nid vertical cloîtré, un nid horizontal cloîtré et un nid d’arène ouvert. Préparez des nids artificiels et durables avec la configuration la plus appropriée nid vertical cloîtré, nid horizontal cloîtré et nid d’arène ouvert. Préparez une configuration de nid vertical cloîtré avec une chambre de recherche de nourriture, une chambre à déchets et une chambre de jardin de champignons.Ensuite, préparez une configuration de nidification horizontale cloîtrée avec une chambre de recherche de nourriture, une chambre à déchets et une chambre de jardin de champignons. Ensuite, préparez une configuration de nid d’arène ouverte avec une chambre de recherche de nourriture et de déchets et une chambre de jardin de champignons connectée. L’arène peut également contenir la chambre des champignons.Appliquez une couche de liquide de polytétrafluoroéthylène en un seul mouvement sur la bordure de l’arène pour contenir les fourmis. Utilisez du coton imbibé de gants liquides et en nitrile. Offrez au moins une grande feuille par jour dans la chambre d’alimentation par colonie avec un litre du volume du jardin de champignons.La fréquence d’offre dépend de l’agilité avec laquelle les travailleurs incorporent le matériel végétal sur le champignon. Si l’activité de coupe des fourmis est intense, augmentez le nombre de feuilles. Dans les nids cloîtrés, effectuez l’offrande rapidement pour éviter que les fourmis ne s’échappent de la chambre de butinage.D’autres types de ressources peuvent également être offerts. Dans les nids d’aréna ouverts, offrez des feuilles en fonction du nombre de litres de champignon et loin des déchets. Enlevez tout le contenu de la chambre à déchets toutes les deux semaines de toutes les colonies et des nids durables et des ouvrières à des fins de contrôle de la population.Si la quantité de déchets éliminés est élevée ou s’il est trop humide, retirez-les une fois par semaine. Si les ouvrières transfèrent le champignon sain dans la chambre à déchets, assurez-vous que la reine n’y est pas et retirez-le. Retirez le matériel non pris par les fourmis de la chambre de recherche de nourriture chaque fois que vous en offrez de nouveaux, et assurez-vous qu’il est toujours propre.Si les travailleurs transfèrent le champignon sain dans la chambre d’alimentation, dérangez-le, laissez le couvercle du récipient ouvert et appliquez de la poudre de talc neutre sur la surface du bord de la chambre. De cette façon, les travailleurs transféreront le champignon dans le conteneur sans le perdre ni le perdre immature. Si plus de jardin de champignons est souhaité, ajoutez un autre récipient plâtré et déplacez-y une partie de l’éponge de champignons.La croissance du jardin de champignons devrait se faire progressivement, sans compromettre l’équilibre de la colonie. Si un conteneur plus grand est souhaité, assurez-vous de laisser le champignon occuper tout l’espace des plus petits récipients avant de le transférer. Les déchets de la colonie ne doivent pas s’accumuler dans la chambre du jardin des champignons.En collectant des reines à différents moments de leur début de vie, comme décrit dans le protocole, et en introduisant un fil de nylon dans le gaster des individus, il a été possible d’évaluer et de comparer la résistance immunitaire individuelle entre les reines vierges, les reines récemment accouplées et les reines accouplées pendant six mois. Les niveaux d’encapsulation ont été évalués à l’aide de la valeur moyenne de gris à partir d’images des filaments de nylon insérés dans le gaster des individus. Les fils les plus sombres étaient considérés comme représentant une défense cellulaire efficace.Les reines récemment accouplées d’Atta laevigata ont montré le niveau d’encapsulation le plus élevé, d’où une défense immunitaire individuelle efficace. Pour améliorer les méthodes de contrôle des populations, les colonies recueillies dans le cadre du protocole ont été soumises à des tests d’attractivité Bates. Tout au long de l’expérience, cinq répétitions ont été effectuées avec cinq colonies de chaque espèce, Atta laevigata et Atta Sextens.Les appâts non toxiques formulés avec différents sous-produits ont été diversement disposés dans les répétitions. Le pourcentage moyen de charge des travailleurs d’Atta laevigata et d’Atta sexdens est indiqué ici. Les traitements de pulpe citrique, de soja et de soja plus pulpe citrique étaient les plus chargés pour les deux espèces.Cependant, le dernier traitement chargé pour les sexdens d’Atta était chargé à 60% par les travailleurs d’Atta laevigata. Au cours des années 2016 à 2019, environ 2 020 élèves d’environ 34 écoles ont pu visiter le laboratoire des fourmis coupeuses de feuilles pour observer les colonies de fourmis collectées et entretenues selon les protocoles décrits précédemment. Il est possible de voir une augmentation de l’intérêt des organisations éducatives pour la réalisation d’expositions d’insectes vivants tels que les fourmis qui permettent une observation attentive par les étudiants.Les visites avaient des objectifs différents, allant de la biologie générale à l’apprentissage du comportement social en fonction du niveau d’éducation des élèves. Certaines étapes critiques de cette technique sont associées à la promotion de la croissance du jardin de champignons, au maintien des nids propres et à la prévention des évasions possibles. Le protocole peut être appliqué à d’autres espèces d’intérêt scientifique pour comprendre le développement précoce des colonies et la recherche sur les interactions avec les appâts toxiques, par exemple.Cette technique est utilisée depuis 22 ans par des chercheurs de plusieurs domaines tels que la morphologie comparée, l’histologie, la toxicologie et la microbiologie, à l’échelle individuelle et coloniale.

Research

JoVE Journal

Biology

Collection and Long-Term Maintenance of Leaf-Cutting Ants (Atta) in Laboratory Conditions

Long-term Imaging Mammalian Cells using Wide-Field Microscopy

Cellules d&#39;imagerie à long terme des mammifères en utilisant la microscopie à champ large

Recherche

Biologie

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