Name: collection and long-term maintenance of leaf-cutting ants (atta) in laboratory conditions
Uploaded: 2022-08-30T14:00:00
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Dedicado a Mario Autuori (in memoriam) y Walter Hugo de Andrade Cunha que contribuyeron en gran medida a los estudios de hormigas cortadoras de hojas. Reconocemos el apoyo de la Universidad Estadual Paulista y del Instituto de Biociencias. Este estudio fue financiado en parte por la Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior-Brasil (CAPES) - Código de Finanzas 001, el Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq), la Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP) y la Fundação para o Desenvolvimento da UNESP (Fundunesp).

1. Colección de reinas
<ol><li>Buscar en la literatura el período de la temporada reproductiva de Atta en la región de interés. La ocurrencia de la temporada reproductiva, la frecuencia y el horario diurno de los vuelos nupciales, varía de acuerdo con las condiciones climáticas regionales (Tabla 1). Aunque generalmente se lleva a cabo en primavera, esta información debe recopilarse para el lugar donde se pretende que ocurra la recolección 37,38,39,40,41,42,43,44,45,46....

El protocolo descrito aquí para mantener colonias de hormigas cortadoras de hojas se ha desarrollado y aplicado durante más de tres décadas de manera asertiva y replicable. Permitió el desarrollo de investigaciones que estarían limitadas por las condiciones del campo. De este modo, las hormigas sanas y las colonias estuvieron disponibles para la investigación en varias áreas, como la morfología comparada, la toxicología 51,52, la histología53 y la microbiología54,55,56...

Las hormigas componen un grupo diverso de individuos que ejercen una influencia en la mayoría de los ambientes terrestres1. Actúan como dispersores eficientes 2,3,4, depredadores5 e ingenieros de ecosistemas 6,7,8,9,10, destacando su importancia y éxito ecológico en los ecosistemas naturales. Todas las especies de hormigas se clasifican como insectos eusociales; Sin embargo, su organización social varía mucho entre los diferentes grupos de especies, es decir, los sistemas de división del trabajo, los grupos funcionales, la comunicación entre individuos, la organización del forraje, la fundación de colonias y el proceso de reproducción11. Como grupo altamente diversificado, recurren a varios recursos alimenticios y comportamientos de alimentación especializados. De hecho, la agricultura no solo fue un gran paso para la civilización humana, sino también para las especies de hormigas. Hace aproximadamente 55 a 65 Ma12, las hormigas attine comenzaron a cultivar hongos e incorporarlos a una dieta casi exclusiva. Se especializaron tanto que desarrollaron interacciones estrictas, dependientes y obligatorias clasificadas como simbiosis, donde un individuo no sobrevive sin el otro.
Las hormigas productoras de hongos inferiores recolectan y procesan materia orgánica muerta, como fragmentos de hojas podridas, para cultivar su hongo mutualista; mientras que las hormigas productoras de hongos más altas cosechan material vegetal fresco, componiendo uno de los sistemas naturales simbióticos más exitosos13. Esta técnica agrícola altamente especializada les permitió aprovechar un nuevo nicho. Las hormigas attine más altas comprenden las hormigas cortadoras de hojas, un grupo monofilético que despierta entre 19 Ma (15-24 Ma) y 18 Ma (14-22 Ma)14,15,16 que consiste en cuatro géneros válidos: Atta Fabricius, Acromyrmex Mayr, Amoimyrmex Cristiano y Pseudoatta Gallardo. El sistema de agricultura cortadora de hojas realizado por las hormigas cortadoras de hojas, evolucionó a partir de sistemas agrícolas derivados17. La mayoría de estas especies explotan exclusivamente la especie de hongo mutualista Leucoagaricus gongylophorus Singer 18 (también llamada Leucocoprinus gongylophorus Heim19), marcando una transición evolutiva significativa11. Los cultivares fúngicos se transmiten verticalmente, desde los nidos originales hasta las crías, lo que sugiere que se propagan clonalmente20.
Sorprendentemente, las sociedades Atta desarrollaron una estructura organizativa compleja de enorme importancia en su entorno y de gran interés para los mirmecólogos. Su población puede estar compuesta por millones de individuos, la mayoría de ellos trabajadoras estériles que muestran un polimorfismo acentuado, es decir, tamaño y morfología anatómica distintos. La población se distingue por castas según edad, estado fisiológico, tipo morfológico, comportamientos y actividades especializadas en la colonia21. Los trabajadores pueden ser discriminados en jardineros y enfermeras, generalistas dentro del nido, recolectores y excavadores, y defensores o soldados21. Esta organización permite la realización de tareas en cooperación y un sistema de autoorganización que puede producir comportamientos colectivos altamente estructurados, permitiéndoles responder eficientemente a las perturbaciones ambientales22.
El papel de renovación de la población es desempeñado por una sola reina (es decir, monógina), mientras viva, constituyendo la casta reproductiva permanente22. Se sabe que las reinas Atta viven más de 20 años, poniendo huevos a lo largo de su vida23. Como la reina es insustituible, su resistencia es crucial para la supervivencia de la colonia 13,20,23,24. Sin embargo, miles de hembras y machos reproductores alados se pueden encontrar en el nido durante las temporadas de reproducción, pero ninguno permanece en el nido original, formando una casta temporal22. En las colonias de Atta sexdens, se producen cerca de 3.000 hembras reproductoras y 14.000 machos reproductivos25. Ocurre cuando una colonia alcanza la madurez sexual, aproximadamente 38 meses desde su implementación, y se repite anualmente desde entonces hasta que se extingue23,25. Las nuevas colonias de Atta se establecen a través de la haplometrosis, donde una reina comienza un nuevo nido.
Cuando las condiciones ambientales son favorables, los reproductores abandonan el nido subterráneo para comenzar el vuelo nupcial. El período de su ocurrencia difiere según la región, variando a lo largo del año en todo el territorio brasileño dependiendo de la especie. Sin embargo, el evento parece estar precedido por lluvias y humedad elevación26, que puede estar relacionada con la facilitación de la excavación debido a la humedad del suelo22. Con frecuencia, 1-5 semanas antes del vuelo nupcial, las entradas y los canales de los nidos se ensanchan para facilitar la salida de los individuos reproductivos. Antes de abandonar sus colonias madre, las hembras aladas recogen y almacenan, en una cavidad infrabucal, una porción del hongo mutualista20,27. Se realizan cópulas múltiples en pleno vuelo, y se calcula que una reina puede ser inseminada por tres a ocho machos (es decir, poliandria) en algunas especies28, asegurando la variabilidad genética29. Después, las reinas proceden al suelo, dando preferencia a lugares con poca o ninguna vegetación25, donde quitan sus alas y excavan su primera cámara de anidación. Este es el único período en el que se pueden ver reinas fuera del nido. A pesar de que individuos de la casta temporal fueron vistos en nidos artificiales, se desconoce si alguna cópula exitosa (es decir, vuelo nupcial) fue realizada en condiciones de laboratorio24.
La construcción inicial del nido corresponde al período más crucial de la colonia, que puede durar de 6 h a 8 h23,25. En este momento, la reina se enclaustra en la cámara inicial, y en cuestión de días, comienza la oviposición. Los primeros huevos se alimentan al micelio que la reina regurgita, marcando el inicio del jardín de hongos de la colonia. Las primeras larvas aparecen en aproximadamente 25 días22, y casi al final del primer mes, la colonia consiste en una estera de hongos proliferantes, donde se anidan los inmaduros (huevos, larvas y pupas), y la reina, que cría a su descendencia inicial en aislamiento23. Los huevos también son el recurso alimenticio de las primeras larvas y muy consumidos por la reina13. Además, la reina se sostiene con reservas corporales grasas y catabolizando los músculos de las alas que ya no son útiles13. El cultivo inicial de hongos no se consume ya que la supervivencia de la colonia depende de su desarrollo, y durante este período, la reina la fertiliza con líquido fecal13. Días después de emerger, las primeras obreras abren la entrada del nido y comienzan una actividad de forrajeo en el área inmediata del nido13. Incorporan el material recolectado como sustrato del jardín de hongos, que ahora está sirviendo como alimento para los trabajadores 13,22. Antes de ser agregado al cultivo de hongos, el material vegetal transportado por los trabajadores se corta en trozos pequeños y se humedece con líquido fecal13. Las hormigas manipulan el inóculo del hongo para aumentar y controlar su crecimiento, lo que servirá para dividir grandes cámaras excavadas de tierra, especializadas en acondicionar el jardín 13,22,25.
Aproximadamente 6 meses después del vuelo nupcial, los nidos de A. sexdens contienen una cámara de hongos y algunos canales. La gran especialización en la construcción de nidos de hormigas cortadoras de hojas funciona como un mecanismo de defensa contra enemigos naturales y factores ambientales desfavorables22. Se sabe que las hormigas cortadoras de hojas fragmentan el jardín de hongos y lo transponen a cámaras con alta humedad cuando las cámaras comienzan a secarse13. Así, a pesar de que la excavación del nido tiene un costo energético considerable, la energía invertida se invierte en beneficios para la propia colonia22. Con algunas excepciones, las especies de Atta también hacen cámaras especializadas para los desechos de la colonia, hechas principalmente de sustrato de hongo agotado y cuerpos de hormigas muertas, aislándola del resto del nido y estableciendo una importante estrategia de inmunidad social30. Además, un grupo distinto de trabajadores manipula la basura directamente, para evitar la contaminación de otros individuos. Las obreras se alimentan constantemente para nutrir el hongo, que es el principal recurso nutricional de la colonia. Sin embargo, también pueden alimentarse de la savia de la planta mientras cortan fragmentos. El material vegetal es cuidadosamente seleccionado para el mantenimiento del jardín de hongos e influenciado por muchos factores, como los rasgos de las hojas y las propiedades del ecosistema13.
La estrategia de forrajeo de las hormigas cortadoras de hojas para obtener material fresco es altamente compleja, y combinada con la alta demanda de cosecha de las colonias establecidas, resulta en una pérdida económica considerable para los productores agrícolas y pone en peligro las áreas de restauración forestal22,31. Por lo tanto, estas hormigas pueden clasificarse como plagas en la mayoría de las áreas donde se pueden encontrar, desde el sur de los Estados Unidos hasta el noreste de Argentina 11,13,22,32. La extinción de colonias problemáticas es un desafío debido a la serie de adaptaciones inherentes a la biología de estos insectos (es decir, organización social, búsqueda de alimento, cultivo de hongos, higiene y estructuras complejas de nidos)33. Así, las estrategias de control poblacional son distintas de las generalmente aplicadas a otras plagas de insectos, y recurren principalmente a atractivas ofertas de cebo contaminado33,34. Sin embargo, como estas hormigas pueden rechazar sustancias nocivas tanto para el hongo como para los individuos de la colonia, y comprometer los campos cultivados 33, constantemente se prueban nuevos compuestos naturales y alternativas de control33,35,36. Como los resultados de los experimentos difícilmente pueden ser monitoreados en colonias probadas en el campo, los ensayos preliminares se llevan a cabo en un ambiente controlado.
Por lo tanto, los protocolos experimentales deben adaptarse a los grupos de interés considerando el estilo de vida heterogéneo de las hormigas, apoyando estudios a nivel de especie y teniendo en cuenta las colonias como unidades operativas, donde una hormiga es un elemento de un superorganismo complejo11. Los informes recopilados hasta ahora sobre el género Atta permitieron recolectar y mantener con éxito colonias en condiciones de laboratorio y reconocer sus necesidades básicas y su funcionamiento general. A partir de sus procesos naturales como la reproducción, la fundación de colonias y los comportamientos de alimentación, se ha desarrollado una rutina de prácticas que permite el establecimiento a largo plazo de colonias en diferentes tipos de nidos. Aquí, se describe un protocolo de procedimiento para mantener a las hormigas cortadoras de hojas en el laboratorio y destaca la posible investigación general con distintos propósitos de experimentación y divulgación científica.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Entomologic forceps</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass tank</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Tempered glass, custom made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hose</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Transparent, PVC 1/2 Inch x 2,0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Latex gloves</td>
			<td>Descarpack</td>
			<td>550301</td>
			<td>N/A</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nitrile gloves</td>
			<td>Descarpack</td>
			<td>433301</td>
			<td>N/A</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Open arena</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Polypropylene crate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plaster pouder</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Plaster pouder used in construction, must be absorbant</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic Containers for collection</td>
			<td>Prafesta</td>
			<td>Natural C&#243;d.: 8231/Natural C&#243;d.: 8262</td>
			<td>Lidded, transparent , polypropylene</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic containers for nests</td>
			<td>Prafesta</td>
			<td>Discontinued</td>
			<td>Polystyrene, hermetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Teflon</td>
			<td>Dupont</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Polytetrafluoroethylene liquid (PTFE Dispertion 30)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

collection and long-term maintenance of leaf-cutting ants (atta) in laboratory conditions

Las hormigas son uno de los grupos de animales con mayor biodiversidad del planeta y habitan en diferentes entornos. El mantenimiento de colonias de hormigas en ambientes controlados permite una comprensión enriquecida de su biología que puede contribuir a la investigación aplicada. Esta práctica se emplea generalmente en estudios de control de poblaciones de especies que causan pérdidas económicas, como las hormigas Atta . Para cultivar su hongo mutualista, estas hormigas cortadoras de hojas recolectan hojas y para ello se consideran plagas agrícolas ampliamente distribuidas por todo el continente americano. Están altamente organizados socialmente y habitan nidos subterráneos elaborados compuestos por una variedad de cámaras. Su mantenimiento en un ambiente controlado depende de una rutina diaria de varios procedimientos y cuidados frecuentes que se describen aquí. Comienza con la recolección de reinas durante la temporada reproductiva (es decir, el vuelo nupcial), que luego se transfieren individualmente a recipientes de plástico. Debido a la alta tasa de mortalidad de las reinas, se puede realizar una segunda recolección unos 6 meses después del vuelo nupcial, cuando los nidos incipientes con fajo de hongos desarrollados se excavan, se recogen a mano y se colocan en recipientes de plástico. En el laboratorio, las hojas se proporcionan diariamente a las colonias establecidas, y los desechos producidos por hormigas se eliminan semanalmente junto con el material vegetal seco restante. A medida que el jardín de hongos sigue creciendo, las colonias se transfieren a diferentes tipos de contenedores de acuerdo con el propósito experimental. Las colonias de hormigas cortadoras de hojas se colocan en contenedores interconectados, que representan el sistema organizativo con cámaras funcionales construidas por esos insectos en la naturaleza. Esta configuración es ideal para monitorear factores como la cantidad de desechos, la salud del jardín de hongos y el comportamiento de las obreras y la reina. La recopilación de datos facilitada y las observaciones más detalladas se consideran la mayor ventaja de mantener las colonias de hormigas en condiciones controladas.

En la Figura 6 se muestra un diagrama de flujo que representa el proceso de recolección de hormigas. Aquí se muestran algunos resultados obtenidos empleando el protocolo de recolección, mantenimiento y configuraciones de anidación descritas anteriormente.
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64154/64154fig6v2.jpg"> Figura 6: Diagrama de flujo para la recol...

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Collection and Long-Term Maintenance of Leaf-Cutting Ants Atta in Laboratory Conditions

Aquí, se describe un protocolo para recolectar y mantener con éxito colonias sanas de hormigas Atta (Hymenoptera: Formicidae) en condiciones de laboratorio. Además, se detallan diferentes tipos y configuraciones de nidos junto con posibles procedimientos experimentales.

Recolección y mantenimiento a largo plazo de hormigas cortadoras de hojas (Atta) en condiciones de laboratorio

Ants are one of the most biodiverse groups of animals on the planet and inhabit different environments. The maintenance of ant colonies in controlled ...

La recolección y el mantenimiento exitosos de colonias en diferentes tipos de nidos en condiciones de laboratorio permite el desarrollo de la investigación general y puede promover la divulgación científica. Dado que las colonias probadas en archivos son difíciles de monitorear, este protocolo permite condiciones experimentales preliminares en un entorno controlado, utilizando colonias enteras como unidades operativas. Este protocolo se puede adaptar a otros grupos de interés al considerar los estilos de vida heterogéneos de las especies de hormigas, como las peculiares hormigas del género Acromimix.Un individuo que nunca ha realizado esta técnica puede considerar la incertidumbre de los eventos y la compleja rutina diaria de cuidado como dificultades. Una primera recolección debe tener lugar justo después del vuelo nupcial en el que las reinas que han quitado sus alas e iniciado la excavación se colocan en pequeños recipientes con una base de yeso. Una segunda recolección debe ocurrir seis meses después del vuelo nupcial en el que se recolectan las colonias desarrolladas por las reinas que comenzaron con éxito la fundación de la colonia.Después del desarrollo de las colonias, se transfieren a contenedores más grandes y, opcionalmente, a diferentes configuraciones de nidos. Prepare los recipientes con tapa de plástico con una capa inferior de yeso para retener a las reinas individualmente. En la temporada reproductiva, identifique los nidos de Atta en áreas de ocurrencia de hormigas cortadoras de hojas y busque las características externas que indican la próxima partida de las hormigas reproductivas aladas.Las características del nido incluyen entradas de túneles ensanchadas, hormigas reproductoras aladas que aparecen en las entradas de los túneles y un mayor flujo de obreras que muestran un comportamiento más agresivo hacia posibles depredadores. Después del vuelo nupcial, cuando las hembras reproductoras regresen al suelo, retiren sus alas y comiencen la excavación del nido. Comienza la colección de reinas.Colóquelos cuidadosamente individualmente en recipientes de plástico preparados con una capa de yeso. Coloque a las reinas en un ambiente controlado, y no las manipule ni mueva durante aproximadamente tres días para evitar el estrés. Perfore cuidadosamente las tapas y vierta 2,5 mililitros de agua con una jeringa con agujas en la capa de yeso del recipiente cada dos días.Mientras el jardín de hongos exhiba un aspecto seco con ausencia de agua, riegue la capa de yeso. Compruebe si las reinas han regurgitado el hongo dos semanas después de la recolección. Si no hay hongos, recoja dos gramos del jardín de hongos de colonias sanas y establecidas y transfiéralos a los contenedores de las reinas.Realice este paso incluso si el hongo no se desarrolla. Después de la aparición de las primeras obreras, comience a ofrecer fragmentos de hojas jóvenes y delgadas regularmente de acuerdo con la actividad de corte de la colonia y elimine los desechos de la colonia y los fragmentos de hojas secas. Siga el desarrollo de la colonia, y cuando el jardín de hongos alcance al menos la mitad del volumen del contenedor, transfiera la colonia a un nido artificial y perdurable.Seis meses después del último vuelo nupcial, identifique montículos indicativos en forma de torre con partículas de suelo granuladas de ataduras incipientes en las ubicaciones de la aparición de hormigas cortadoras de hojas. Se estima que los nidos de colonias jóvenes tienen hasta un metro de profundidad en el suelo después de seis meses del vuelo nupcial. En este momento, excava la entrada del nido hasta llegar a la cámara que sostiene a la joven colonia con una azada de jardín.Recoja la reina, el jardín de hongos, los trabajadores inmaduros y jóvenes y colóquelos en un recipiente de plástico de aproximadamente 500 mililitros. Mueva los recipientes con tapa de plástico que contienen las colonias al entorno controlado designado. No manipule ni mueva las colonias durante aproximadamente tres días para evitar el estrés.Comience a ofrecer hojas. Cuando ofrezca hojas nuevas, elimine las hojas secas y los desechos de la colonia. Retire los restos de tierra de la colección con la ayuda de una cuchara.Siga el desarrollo de las colonias, y cuando el jardín de hongos alcance al menos la mitad del volumen del contenedor, transfiera las colonias a nidos artificiales y perdurables, nido vertical enclaustrado, nido horizontal enclaustrado y nido de arena abierta. Prepare nidos artificiales y perdurables con la configuración más adecuada nido vertical enclaustrado, nido horizontal enclaustrado y nido de arena abierta. Prepare una configuración de nido vertical enclaustrado con una cámara de forrajeo, una cámara de desechos y una cámara de jardín de hongos.Luego prepare una configuración de nido horizontal enclaustrado con una cámara de forrajeo, una cámara de desechos y una cámara de jardín de hongos. A continuación, prepare una configuración de nido de arena abierta con una cámara de forrajeo y desechos y una cámara de jardín de hongos conectada a ella. La arena también puede contener la cámara de hongos.Aplique una capa de politetrafluoroetileno líquido en un solo movimiento al borde de la arena para contener las hormigas. Use algodón empapado con los guantes líquidos y de nitrilo. Ofrezca al menos una hoja grande diariamente en la cámara de forrajeo por colonia con un litro del volumen del jardín de hongos.La frecuencia de la oferta depende de la agilidad con la que los trabajadores incorporan el material vegetal sobre el hongo. Si la actividad de corte de las hormigas es intensa, aumente el número de hojas. En los nidos de clausura, realice la ofrenda rápidamente para evitar que las hormigas escapen de la cámara de alimentación.También se pueden ofrecer otros tipos de recursos. En nidos de arena abierta, ofrezca hojas de acuerdo con la cantidad de litros de hongos y lejos de los desechos. Retire todo el contenido de la cámara de desechos cada dos semanas de todas las colonias y nidos duraderos y las obreras, así como para fines de control de la población.Si la cantidad de residuos desechados es alta o demasiado húmeda, retírelos una vez por semana. Si las obreras transfieren el hongo sano a la cámara de desechos, asegúrese de que la reina no esté sobre él y retírelo. Retire el material no tomado por las hormigas de la cámara de forrajeo cada vez que ofrezca otros nuevos, y asegúrese de que siempre esté limpio.Si los trabajadores transfieren el hongo sano a la cámara de forrajeo, molestarla, dejar la tapa del recipiente abierta y aplicar polvo de talco neutro a la superficie del margen de la cámara. De esta manera, los trabajadores transferirán el hongo de nuevo al contenedor sin perderlo ni inmaduros. Si se desea más jardín de hongos, agregue otro recipiente enlucido y mueva una porción de la esponja de hongos en él.El crecimiento del jardín de hongos debe ocurrir gradualmente, para no comprometer el equilibrio de la colonia. Si se desea un recipiente más grande, asegúrese de dejar que el hongo ocupe todo el espacio de los contenedores más pequeños antes de transferirlo. Los desechos de la colonia no deben acumularse en la cámara del jardín de hongos.Al recolectar reinas en diferentes momentos de su ciclo de vida temprano como se describe en el protocolo e introducir un hilo de nylon en el gáster de los individuos, fue posible evaluar y comparar la resistencia inmune individual entre reinas vírgenes, reinas recientemente apareadas y reinas apareadas durante seis meses. Los niveles de encapsulación se evaluaron a través del valor gris medio de las imágenes de los filamentos de nylon insertados en el gáster de los individuos. Se consideró que los hilos más oscuros representaban una defensa celular eficiente.Las reinas recientemente apareadas de Atta laevigata mostraron el nivel de encapsulación más alto, por lo tanto, una defensa inmune individual efectiva. Para mejorar los métodos de control de la población, las colonias recolectadas a través del protocolo se sometieron a pruebas de atractivo de Bates. A lo largo del experimento, se realizaron cinco repeticiones con cinco colonias de cada especie, Atta laevigata y Atta Sextens.Los cebos no tóxicos formulados con diferentes subproductos se organizaron de manera diversa dentro de las repeticiones. Aquí se muestra el porcentaje medio de carga de los trabajadores de Atta laevigata y Atta sexdens. Los tratamientos de pulpa cítrica, soja y soja más pulpa cítrica fueron los más cargados para ambas especies.Sin embargo, el último tratamiento cargado para los sexdens de Atta fue cargado en un 60% por los trabajadores de Atta laevigata. Durante los años 2016 a 2019, aproximadamente 2, 020 estudiantes de alrededor de 34 escuelas pudieron visitar el laboratorio de hormigas cortadoras de hojas para observar las colonias de hormigas recolectadas y mantenidas utilizando los protocolos descritos anteriormente. Es posible ver un aumento en el interés de las organizaciones educativas en la realización de exposiciones de insectos vivos como las hormigas que permiten una observación cercana por parte de los estudiantes.Las visitas tenían diferentes objetivos, desde la biología general hasta el aprendizaje del comportamiento social de acuerdo con el nivel de educación de los estudiantes. Algunos pasos críticos en esta técnica están asociados con la promoción del crecimiento del jardín de hongos, mantener los nidos limpios y evitar posibles escapes. El protocolo se puede aplicar a otras especies de interés científico para comprender el desarrollo de colonias en etapa temprana y la investigación de interacciones de cebo tóxico, por ejemplo.Esta técnica ha sido empleada durante 22 años por investigadores de varias áreas como morfología comparada, histología, toxicología y microbiología, a nivel individual y de colonia.

Research

JoVE Journal

Biology

Collection and Long-Term Maintenance of Leaf-Cutting Ants (Atta) in Laboratory Conditions

Long-term Imaging Mammalian Cells using Wide-Field Microscopy

A largo plazo de imágenes usando las células de mamíferos Wide-Field Microscopía

Investigación

Biología

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Breast cancer is a leading cause of mortality in the Western world. It is well established that the spread of breast cancer, first locally and later ...

Long-term Lethal Toxicity Test with the Crustacean Artemia franciscana

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A largo plazo Prueba de toxicidad letal con el Crustáceo Artemia franciscana</em

Our research activities target the use of biological methods for the evaluation of environmental quality, with particular reference to saltwater/brackish ...

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