Name: syngeneic mouse orthotopic allografts to model pancreatic cancer
Uploaded: 2022-10-04T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Syngeneic Mouse Orthotopic Allografts to Model Pancreatic Cancer at JoVE.com

Nous tenons à remercier l’animalerie TUM et l’installation centrale d’imagerie du département de médecine nucléaire, Klinikum rechts der Isar, pour leur excellent soutien technique. Cette étude a été soutenue par le German Cancer Consortium (DKTK), la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG SA 1374/4-2, DFG SA 1374/6-1, SFB 1321 Project-ID 329628492 P06, P11 et S01) à D.S., la Wilhelm Sander-Stiftung (2020.174.1 et 2017.091.2) à D.S., et le Conseil européen de la recherche (ERC CoG No. 648521, à D.S.).

Les expériences sur les animaux ont été approuvées par les comités institutionnels de soin et d’utilisation des animaux (IACUC) des autorités locales de l’Université technique de Munich et de la Regierung von Oberbayern.
1. Informations à prendre en considération avant la procédure
<ol><li>S’assurer de l’approbation du protocole animal et du personnel par les autorités locales avant de commencer toute expérimentation animale.</li>
	<li>Sélectionnez les s...

<ol>
	<li>Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer+statistics,+2020.">Cancer statistics, 2020.</a> CA: A Cancer Journal for Clinicians. 70 (1), 7-30 (2020).</li><li>Quaresma, M., Coleman, M. P., Rachet, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=40-year+trends+in+an+index+of+survival+for+all+cancers+combined+and+survival+adjusted+for+age+and+sex+for+each+cancer+in+England+and+Wales,+1971-2011:+A+population-based+study.">40-year trends in an index of survival for all cancers combined and survival adjusted for age and sex for each cancer in England and Wales, 1971-2011: A population-based study.</a> Lancet. 385 (9974), 1206-1218 (2015).</li><li>Rahib, L., Wehner, M. R., Matrisian, L. M., Nead, K. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimated+projection+of+US+cancer+incidence+and+death+to+2040.">Estimated projection of US cancer incidence and death to 2040.</a> JAMA Network Open. 4 (4), 214708 (2021).</li><li>Schneider, G., Schmidt-Supprian, M., Rad, R., Saur, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-specific+tumorigenesis:+Context+matters.">Tissue-specific tumorigenesis: Context matters.</a> Nature Reviews Cancer. 17 (4), 239-253 (2017).</li><li>Olive, K. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inhibition+of+Hedgehog+signaling+enhances+delivery+of+chemotherapy+in+a+mouse+model+of+pancreatic+cancer.">Inhibition of Hedgehog signaling enhances delivery of chemotherapy in a mouse model of pancreatic cancer.</a> Science. 324 (5933), 1457-1461 (2009).</li><li>Ruscetti, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Senescence-induced+vascular+remodeling+creates+therapeutic+vulnerabilities+in+pancreas+cancer.">Senescence-induced vascular remodeling creates therapeutic vulnerabilities in pancreas cancer.</a> Cell. 181 (2), 424-441 (2020).</li><li>Aung, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genomics-driven+precision+medicine+for+advanced+pancreatic+cancer:+Early+results+from+the+COMPASS+trial.">Genomics-driven precision medicine for advanced pancreatic cancer: Early results from the COMPASS trial.</a> Clinical Cancer Research. 24 (6), 1344-1354 (2018).</li><li>Chan-Seng-Yue, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcription+phenotypes+of+pancreatic+cancer+are+driven+by+genomic+events+during+tumor+evolution.">Transcription phenotypes of pancreatic cancer are driven by genomic events during tumor evolution.</a> Nature Genetics. 52 (2), 231-240 (2020).</li><li>Kalimuthu, S. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphological+classification+of+pancreatic+ductal+adenocarcinoma+that+predicts+molecular+subtypes+and+correlates+with+clinical+outcome.">Morphological classification of pancreatic ductal adenocarcinoma that predicts molecular subtypes and correlates with clinical outcome.</a> Gut. 69 (2), 317-328 (2020).</li><li>Hayashi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+unifying+paradigm+for+transcriptional+heterogeneity+and+squamous+features+in+pancreatic+ductal+adenocarcinoma.">A unifying paradigm for transcriptional heterogeneity and squamous features in pancreatic ductal adenocarcinoma.</a> Nature Cancer. 1 (1), 59-74 (2020).</li><li>Mueller, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolutionary+routes+and+KRAS+dosage+define+pancreatic+cancer+phenotypes.">Evolutionary routes and KRAS dosage define pancreatic cancer phenotypes.</a> Nature. 554 (7690), 62-68 (2018).</li><li>Falcomata, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+multi-kinase+inhibition+sensitizes+mesenchymal+pancreatic+cancer+to+immune+checkpoint+blockade+by+remodeling+the+tumor+microenvironment.">Selective multi-kinase inhibition sensitizes mesenchymal pancreatic cancer to immune checkpoint blockade by remodeling the tumor microenvironment.</a> Nature Cancer. 3 (3), 318-336 (2022).</li><li>Erstad, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+and+heterotopic+murine+models+of+pancreatic+cancer+and+their+different+responses+to+FOLFIRINOX+chemotherapy.">Orthotopic and heterotopic murine models of pancreatic cancer and their different responses to FOLFIRINOX chemotherapy.</a> Disease Models &amp; Mechanisms. 11 (7), (2018).</li><li>von Burstin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=E-cadherin+regulates+metastasis+of+pancreatic+cancer+in+vivo+and+is+suppressed+by+a+SNAIL/HDAC1/HDAC2+repressor+complex.">E-cadherin regulates metastasis of pancreatic cancer in vivo and is suppressed by a SNAIL/HDAC1/HDAC2 repressor complex.</a> Gastroenterology. 137 (1), 361-371 (2009).</li><li>Mallya, K., Gautam, S. K., Aithal, A., Batra, S. K., Jain, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+pancreatic+cancer+in+mice+for+experimental+therapeutics.">Modeling pancreatic cancer in mice for experimental therapeutics.</a> Biochimica et Biophysica Acta - Reviews on Cancer. 1876 (1), 188554 (2021).</li></ol>

Les allogreffes orthotopiques syngéniques de souris représentent un modèle robuste pour les études précliniques en raison de leur rentabilité, de leur reproductibilité et de leurs procédures expérimentales relativement simples13,15. Ces modèles permettent non seulement l’étude des interactions tumeur-hôte, mais garantissent également la préservation de l’hétérogénéité génétique des tumeurs dont ils proviennent lorsque des cultures primair...

Récemment, l’ACPE est devenue la troisième cause de décès liés au cancer dans le monde occidental1. Il provoque le taux de mortalité le plus élevé parmi tous les cancers et un taux de survie globale à 10 ans de ~ 1%, qui n’a pas changé depuis des décennies2. En raison de l’absence de progrès dans le traitement de la PDAC, cette maladie devrait devenir la deuxième cause de décès liés au cancer d’ici la prochaine décennie3.
Les tumeurs PDAC sont des entités complexes caractérisées par un microenvironnement tumoral diversifié (TME) composé d’un assemblage hétérogène de composants stroma, vasculaires, immunitaires et de matrice extracellulaire4. Les différences dans la composition du TME influencent le pronostic de la maladie et la réponse au traitement 4,5,6. En effet, de nombreuses études ont montré que le sous-type mésenchymateux basal de PDAC est associé à un TME hautement immunosuppresseur et montre une diminution de la survie et une absence de réponse aux thérapies 7,8,9,10,11,12. Par conséquent, une meilleure compréhension des différences dans la composition du TME et de la façon dont ces caractéristiques influencent la biologie tumorale reste un facteur important pour le développement de thérapies moléculairement précises. Pour mieux comprendre la biologie derrière ce phénotype complexe et identifier des stratégies thérapeutiques capables de surmonter la barrière que constitue le TME de PDAC, des modèles in vivo sont indispensables.
Un aspect clé de tout système de modèle préclinique de cancer est qu’il devrait imiter les phénotypes humains, récapitulant à la fois l’hétérogénéité génétique et le milieu incorporant la multitude de populations stromales et immunitaires qui composent le TME. Par conséquent, lors du choix de modèles murins pour la recherche préclinique, plusieurs aspects doivent être pris en considération. Pour étudier l’interaction tumorale-immunitaire, des lignées cellulaires cancéreuses histocompatibles peuvent être injectées à des souris immunocompétentes syngéniques. Dans la plupart des cas, ceux-ci sont injectés par voie sous-cutanée dans le flanc de la souris, ce qui permet une surveillance facile de la tumeur par palpation ou inspection visuelle. Cependant, les modèles résultants n’imitent pas la croissance des cellules tumorales dans leur organe d’origine. Par conséquent, les transplantations orthotopiques sont devenues l’étalon-or pour les modèles d’allogreffe.
Les allogreffes orthotopiques de souris présentent plusieurs avantages: elles sont rentables, peuvent être générées avec une procédure relativement simple et donnent lieu à des modèles avec une composition moléculaire connue, ainsi qu’une progression tumorale et un phénotype reproductibles et prévisibles. En effet, alors que les modèles de xénogreffes dérivés de patients représentent avec précision le comportement des cellules PDAC humaines, la nécessité de l’implantation chez des souris immunodéficientes pour éviter le rejet de greffe limite l’analyse des interactions tumeur-immunité et tumeur-stroma, permettant aux chercheurs de ne capturer qu’une image partielle de la complexité de ces tumeurs. Les allogreffes orthotopiques syngéniques de PDAC présentent un avantage à cet égard également par rapport aux modèles murins génétiquement modifiés (GEMM). Les GEMM récapitulent avec précision la tumorigenèse PDAC humaine et l’hétérogénéité observée chez les patients PDAC. Cependant, en raison de ces caractéristiques, les tumeurs GEMM peuvent présenter une variance élevée dans leur constitution génétique, leur progression tumorale, leur agressivité, leur différenciation histologique et leur composition en ETM. Bien que cela puisse être un avantage dans certaines études, cela limite les études génotype à phénotype et l’étude ciblée des phénotypesPDAC 13. Par conséquent, les allogreffes orthotopiques de souris constituent un bon compromis et un bon modèle pour effectuer des études tumeur-hôte et de traitement in vivo. Cet article décrit un protocole pour les expériences de transplantation orthotopique de cellules PDAC murines dans le pancréas de souris.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>27 G cannula</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>08915992</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atipamezole (Antisedan 5 mg/mL)</td>
			<td>Orion Corporation</td>
			<td>23554.00.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Autoclip Stainless Steel Wound Clips, 9 mm</td>
			<td>Braintree Scientific</td>
			<td>NC9334081</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco`s Modified Eagle Medium&#160;</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D5796-500ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye cream (Bepanthen)</td>
			<td>Bayer Vital GmbH</td>
			<td>1578675</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FBS</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S0615</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fentanyl (50 &#181;g/mL)</td>
			<td>Eurovet Animal Health BV</td>
			<td>9113473</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flumazenile (Flumazenil-hameln 0.1 mg/mL)</td>
			<td>Hameln pharma</td>
			<td>09611975</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medetomidine (Sedator 1 mg/mL)</td>
			<td>Eurovet Animal Health BV</td>
			<td>400926.00.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Meloxicam (Metacam 5 mg/mL)</td>
			<td>Boehringer Ingelheim Vetmedica GmbH</td>
			<td>3937902</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microliter syringe</td>
			<td>Hamilton</td>
			<td>HT80908</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Midazolam (5 mg/mL)</td>
			<td>Hexal</td>
			<td>00886423</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>B. Braun</td>
			<td>2737756</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Naloxone (Naloxon-hameln 0.4 mg/mL)</td>
			<td>hameln pharma</td>
			<td>04464535</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P7059-1L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P4333-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture (Ethilon)</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>9999034</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TrypZean Solution 1x</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T3449</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

syngeneic mouse orthotopic allografts to model pancreatic cancer

L’adénocarcinome canalaire pancréatique (PDAC) est une maladie très complexe caractérisée par un microenvironnement tumoral hétérogène composé d’un stroma, de cellules immunitaires, de vaisseaux, de nerfs et de composants de la matrice extracellulaire. Au fil des ans, différents modèles murins de PDAC ont été développés pour relever les défis posés par sa progression, son potentiel métastatique et son hétérogénéité phénotypique. Les allogreffes orthotopiques de souris immunocompétentes de PDAC se sont révélées prometteuses en raison de leur progression tumorale rapide et reproductible par rapport aux modèles murins génétiquement modifiés. De plus, combinés à leur capacité à imiter les caractéristiques biologiques observées dans le PDAC autochtone, les modèles murins allogreffés orthotopiques basés sur des lignées cellulaires permettent des expériences in vivo à grande échelle. Ainsi, ces modèles sont largement utilisés dans les études précliniques pour les analyses rapides génotype-phénotype et pharmaco-réponse. L’objectif de ce protocole est de fournir une approche reproductible et robuste pour injecter avec succès des cultures primaires de cellules PDAC de souris dans le pancréas de souris receveuses syngéniques. En plus des détails techniques, des informations importantes sont données qui doivent être prises en compte avant d’effectuer ces expériences.

Dans le cadre d’une étude de pharmaco-réponse à grande échelle, nous avons implanté avec succès plus de 170 souris (souris receveuses C75Bl6/J, sexe de souris mâles et femelles apparié aux lignées cellulaires PDAC injectées) en utilisant le protocole décrit ci-dessus, illustré dans ses principales étapes à la figure 112. Dans ce protocole, nous avons implanté orthotopiquement trois lignées cellulaires PDAC KrasG12D (PDAC 1 et 2 : ...

Watch this Scientific Journal Video about Syngeneic Mouse Orthotopic Allografts to Model Pancreatic Cancer at JoVE.com

Syngeneic Mouse Orthotopic Allografts to Model Pancreatic Cancer

Les allogreffes orthotopiques syngéniques de souris d’adénocarcinome canalaire pancréatique (PDAC) récapitulent la biologie, les phénotypes et les réponses thérapeutiques des sous-types de maladies. En raison de leur progression tumorale rapide et reproductible, ils sont largement utilisés dans les études précliniques. Ici, nous montrons des pratiques courantes pour générer ces modèles, en injectant des cultures PDAC murines syngéniques dans le pancréas.

Allogreffes orthotopiques de souris syngéniques pour modéliser le cancer du pancréas

Pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) is a very complex disease characterized by a heterogeneous tumor microenvironment made up of a diverse stroma, ...

Ce protocole fournit des modèles PDAC in vivo reproductibles et immunocompétents adaptés aux études de génotype, de phénotype et de réponse aux médicaments. Le principal avantage de cette technique est sa capacité à aider à étudier la progression tumorale avec un microenvironnement tumoral biologique syngénique tout en maintenant la reproductibilité de l’expérience. Stefanie Barthel et Chiara Falcomata, toutes deux issues de notre laboratoire, feront la démonstration de la procédure.Commencez la préparation des cellules tumorales en lavant l’adénocarcinome canalaire pancréatique, ou cellules PDAC, cultivées dans un flacon de culture T75 avec une solution saline tamponnée au phosphate ou PBS. Ajouter ensuite 0,5 millilitre de trypsine pendant cinq à 10 minutes pour se détacher de la fiole. Re-suspendre les cellules détachées dans 10 millilitres de DMEM avec 10% de sérum bovin fœtal, ou FBS, et 0,1% de pénicilline streptomycine avant de transférer la suspension cellulaire dans un tube de 15 millilitres.Centrifuger la suspension cellulaire à 200G pendant cinq minutes et aspirer le surnageant. Re-suspendre la pastille cellulaire dans du DMEM sans additifs, en fonction de la concentration finale requise des cellules pour injection. Comptez les cellules dans 10 microlitres de suspension cellulaire, en utilisant la chambre de Neubauer et calculez le nombre de cellules disponibles.Transférer un millilitre de la suspension diluée, selon la concentration finale requise, dans un tube de 1,5 millilitre. Placez le tube sur un rotateur jusqu’à l’implantation pour empêcher l’agrégation cellulaire. Pour l’implantation orthotopique des cellules PDAC, appliquez une crème pour les yeux sur la souris analgosédée pendant que la souris dort.Vérifiez l’analgosédation suffisante avant de raser le flanc abdominal latéral gauche de la souris analgosédée. Placez la souris, couchée sur le côté droit, sur un tapis chauffant stérile et collez les pattes à la surface. Portez de nouveaux gants et désinfectez-les.À l’aide de ciseaux chirurgicaux, couper environ un centimètre de la peau et du tissu adipeux sous-cutané longitudinalement sur le flanc gauche où la rate est projetée. À l’aide de ciseaux et de forceps, séparez la peau du péritoine pour faciliter l’accès au péritoine. Changez la paire de ciseaux avant d’ouvrir le péritoine à l’emplacement de la rate avec une coupe longitudinale d’un centimètre.Tout en mobilisant la rate et le pancréas attaché à l’aide d’une pince émoussée et à pointe fine, assurez-vous que les organes ne sont pas attachés à d’autres tissus. Vérifiez également les vaisseaux sanguins d’alimentation pour éviter de blesser les vaisseaux ou les tissus environnants lors de la manipulation du pancréas. Retirez soigneusement le pancréas de l’incision pour permettre un accès plus facile à la queue de l’organe et observez la rate après le pancréas.Assurez-vous que l’organe n’est pas plié pendant l’injection et que la capsule de l’organe est maintenue sous tension au site de pénétration de l’aiguille pour éviter les déversements. Visez un morceau de tissu pancréatique entre les vaisseaux sanguins visibles pour minimiser le risque de perforation ou d’injection du vaisseau. À l’aide de la main dominante, pénétrez soigneusement dans la capsule de l’organe avec une canule de calibre 27 et une seringue de 50 microlitres en suivant l’axe longitudinal de l’organe.Après avoir injecté les 20 microlitres de suspension contenant 2 500 cellules dans la région de la queue du pancréas, gardez le pancréas et la seringue insérée immobiles pendant environ une minute pour éviter de renverser les cellules tumorales. Ensuite, retirez l’aiguille du site d’injection. Ensuite, réorganisez soigneusement les organes à l’intérieur de l’abdomen sans blesser le tissu pour éviter de renverser les cellules.Évitez l’adhérence des organes en versant un millilitre de chlorure de sodium à 0,9% sur les organes. Après avoir suturé le péritoine en utilisant la technique simple de suture interrompue, fermez la peau à l’aide de deux à trois clips enroulés en acier inoxydable de neuf millimètres. Antagoniser ensuite l’analgosédation avec le midazolam, la médétomadine et le fentanyl, ou MMF, avec une injection sous-cutanée d’AFN en fonction du poids corporel de la souris.Une fois cela fait, placez la souris dans une chambre chauffée à 37 degrés Celsius jusqu’à ce qu’elle soit éveillée et complètement active. Replacez la souris active dans sa cage d’origine et surveillez l’état de santé de la souris en vérifiant la fourrure, la couleur de la peau et l’activité, et répétez-la trois à quatre heures après la chirurgie. Dans l’IRM de souris implantée, la greffe de cellules PDAC a été palpée abdominalement le plus tôt environ sept jours après la chirurgie, en fonction du nombre de cellules injectées et des caractéristiques d’agressivité et de croissance de la lignée cellulaire inoculée.La survie des souris implantées résultantes variait en fonction des caractéristiques intrinsèques des cellules tumorales des lignées cellulaires. Des injections intra-pancréatiques réussies ont conduit à des tumeurs à part entière dans le pancréas de souris. En revanche, les implantations infructueuses ont entraîné l’absence de tumeurs pancréatiques en raison de l’injection de cellules non viables, du rejet des cellules implantées ou de l’injection d’un nombre insuffisant de cellules.N’oubliez pas de faire attention à ne pas renverser de cellules pendant les injections et à ne pas blesser les tissus environnants pour empêcher les cellules de se propager à l’intérieur de l’abdomen. Après cette procédure, des études in vivo, comme les études précliniques de réponse aux médicaments, peuvent être réalisées sur des souris immunocompétentes, suivies, par exemple, de faits, de séquençage ou d’analyses histologiques pour étudier les interactions tumeur-hôte.

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Fluorescent Orthotopic Mouse Model of Pancreatic Cancer

Fluorescent modèle de souris orthotopique de cancer du pancréas

Pancreatic cancer remains one of the cancers for which survival has not improved substantially in the last few decades. Only 7% of diagnosed patients will ...

Recherche

Recherche en cancérologie

A Syngeneic Mouse Model of Metastatic Renal Cell Carcinoma for Quantitative and Longitudinal Assessment of Preclinical Therapies

Un modèle de souris syngénique rénal métastatique Carcinome cellulaire pour l&#39;évaluation des thérapies quantitatives et longitudinales précliniques

Renal cell carcinoma (RCC) affects &#62; 60,000 people in the United States annually, and ~ 30% of RCC patients have multiple metastases at the time of ...

Isolation of Circulating Tumor Cells in an Orthotopic Mouse Model of Colorectal Cancer

Isolation des cellules tumorales circulantes dans un modèle de souris orthotopique du cancer colorectal

Despite the advantages of easy applicability and cost-effectiveness, subcutaneous mouse models have severe limitations and do not accurately simulate ...

A Syngeneic Pancreatic Cancer Mouse Model to Study the Effects of Irreversible Electroporation

Un modèle de souris syngénique Cancer du pancréas pour étudier les effets de l’électroporation irréversible

Pancreatic cancer (PC), a disease which kills approximately 40,000 patients each year in the US, has successfully evaded several therapeutic approaches ...

A Bioluminescent and Fluorescent Orthotopic Syngeneic Murine Model of Androgen-dependent and Castration-resistant Prostate Cancer

Un modèle murin syngénique bioluminescentes et Fluorescent orthotopique du Cancer de la Prostate androgéno-dépendants et résistant à la Castration

Orthotopic tumor modeling is a valuable tool for pre-clinical prostate cancer research, as it has multiple advantages over both subcutaneous and ...

Immunophenotyping of Orthotopic Homograft (Syngeneic) of Murine Primary KPC Pancreatic Ductal Adenocarcinoma by Flow Cytometry

Immunophenotyping of Orthotopic Homograft Syngeneic of Murine Primary KPC Pancreatic Ductal Adenocarcinoma by Flow Cytometry

Immunophénotypage de homogreffe orthotopique (syngéniques) d’adénocarcinome Ductal pancréatique KPC primaires murines par cytométrie en flux

Homograft (syngeneic) tumors are the workhorse of today&#39;s immuno-oncology (I/O) preclinical research. The tumor microenvironment (TME), particularly ...

Orthotopic Transplantation of Syngeneic Lung Adenocarcinoma Cells to Study PD-L1 Expression

Orthotopic Transplantation de cellules d’adénocarcinome pulmonaire syngénique pour étudier l’Expression des PD-L1

The use of mouse models is indispensable for studying the pathophysiology of various diseases. With respect to lung cancer, several models are available, ...

A Syngeneic Mouse B-Cell Lymphoma Model for Pre-Clinical Evaluation of CD19 CAR T Cells

Un modèle de lymphome de B-cellule souris syngénique pour évaluation préclinique des cellules de T de voiture CD19

The astonishing clinical success of CD19 chimeric antigen receptor (CAR) T-cell therapy has led to the approval of two second generation chimeric antigen ...

Studying Triple Negative Breast Cancer Using Orthotopic Breast Cancer Model

Étudier le cancer du sein triple négatif à l’aide d’un modèle orthotopique de cancer du sein

Triple-negative breast cancer (TNBC) is an aggressive breast cancer subtype with limited therapeutic options. When compared to patients with less ...

Ultrasound-Guided Orthotopic Implantation of Murine Pancreatic Ductal Adenocarcinoma

Implantation orthotopique guidée par ultrasons de l'adénocarcinome ductal pancréatique murine

The recent success of immune checkpoint blockade in melanoma and lung adenocarcinoma has galvanized the field of immuno-oncology as well as revealed the ...