Name: partial sciatic nerve ligation: a mouse model of chronic neuropathic pain to study the antinociceptive effect of novel therapies
Uploaded: 2022-10-06T14:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Partial Sciatic Nerve Ligation: A Mouse Model of Chronic Neuropathic Pain to Study the Antinociceptive Effect of Novel Therapies at JoVE.com

Cette recherche a été soutenue par le National Center for Complementary and Integrative Health [R01AT009716, 2017] (M.M.I.), le Comprehensive Chronic Pain and Addiction Center-University of Arizona (M.M.I.) et le Medical Scientist Training Program (MSTP) de l’Université de l’Arizona, College of Medicine, Tucson.

Toutes les procédures ont été approuvées par le Comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux de l’Université de l’Arizona et sont conformes aux directives pour l’utilisation des animaux de laboratoire des National Institutes of Health (publication NIH no. 80-23, 1966). Des souris C57Bl6/J adultes exemptes d’agents pathogènes (poids au test : 22-28 g) ont été logées dans des cages de souris vivarium standard (cinq souris par cage) dans des pièces climatisées selon un cycle lumière/obsc...

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Le traitement de la douleur chronique nécessite souvent des médicaments à long terme, ce qui rend la gestion de la douleur difficile. Ainsi, les modèles précliniques sont un outil essentiel pour évaluer les bénéfices potentiels de thérapies innovantes reposant sur des approches pharmacologiques ou non pharmacologiques. Les nombreux modèles de douleur neuropathique chronique posent des défis en raison de la variabilité accrue des techniques chirurgicales entre les différents chercheurs, ce qui réduit la repr...

La douleur chronique est un problème de santé important à travers le monde et est l’un des problèmes de santé les plus coûteux aux États-Unis. La douleur chronique est mieux gérée lorsque les modalités pharmacologiques et non pharmacologiques sont utilisées de manière multidisciplinaire1. La prise en charge de la douleur chronique est difficile et, dans certains cas, ne traite pas adéquatement la douleur2. Par conséquent, des méthodes nouvelles et complémentaires sont nécessaires pour améliorer la gestion de la douleur chronique, et les modèles animaux sont cruciaux pour étudier des thérapies innovantes.
La douleur neuropathique chronique résulte de lésions ou de maladies du système somatosensoriel, notamment le diabète, les infections, les compressions nerveuses ou les maladies auto-immunes3. La douleur neuropathique repose à la fois sur des mécanismes de sensibilisation périphériques et centraux et provient d’une lésion des nerfs. Cette douleur peut être caractérisée par une hyperalgésie et une allodynie évoquées au toucher et thermiques, une douleur continue et des changements de température du membre affecté4. Pour mieux comprendre les mécanismes et faire progresser de nouveaux traitements, plusieurs modèles ont été développés chez les rongeurs pour imiter les symptômes et les causes de la douleur neuropathique5. Par exemple, la douleur neuropathique peut être induite par des injections d’agents chimiothérapeutiques, la ligature du nerf rachidien (SNL), une lésion de constriction chronique (CCI) du nerf sciatique, une pSNL, une lésion nerveuse épargnée, une transsection du nerf sciatique et une trisection6 du nerf sciatique. Notamment, la ligature du nerf sciatique reproduit de multiples caractéristiques de la douleur neuropathique observée chez l’homme, telles que l’hypersensibilité mécanique et thermique, ou les changements de température du membre affecté, caractéristiques du syndrome douloureux régional complexe (SDRC)7. Ainsi, ce modèle est bien adapté à l’étude du SDRC ou de toute autre affection de lésion nerveuse qui induit une douleur neuropathique chronique. Le modèle a été développé pour la première fois par Seltzer en 19908 et est largement utilisé dans les études sur la douleur pour étudier de nouveaux composés analgésiques ou évaluer les effets cognitifs de la douleur chronique 9,10,11,12,13. Le modèle présente une reproductibilité élevée, et la ligature partielle préserve les réponses comportementales aux stimuli périphériques6.
Bon nombre des modèles actuellement utilisés présentent des lacunes qui n’ont pas été observées dans le pSNL. Le modèle CCI présente une variabilité beaucoup plus élevée des blessures entre chaque animal en fonction de la finesse du constricteur, et l’autotomie modifie les doigts de la patte postérieure, rendant le modèle impropre à l’analyse comportementale6. Le modèle SNL est une chirurgie beaucoup plus compliquée et plus longue qui nécessite non seulement des compétences techniques avancées, mais comporte également un risque élevé de déficits moteurs sévères3. Ces lacunes ne sont pas observées dans le modèle pSNL. La facilité de reproductibilité, la courte durée de la chirurgie et le risque réduit de déficits moteurs observés en postopératoire rendent ce modèle précieux pour l’étude de la douleur neuropathique périphérique 8,14. Néanmoins, la procédure de ligature partielle elle-même peut avoir une variabilité entre les expérimentateurs, ce qui entraîne moins de cohérence dans le nombre de fibres nerveuses ligaturées. Ainsi, la présentation des détails de la chirurgie est cruciale pour augmenter la reproductibilité entre les études.
Pour induire une neuropathie chronique, une suture en nylon non résorbable 9-0 est utilisée pour ligaturer un tiers de la largeur du nerf sciatique. Après la chirurgie, les réponses aux stimuli thermiques et mécaniques sont exagérées, commençant au jour 1 postopératoire et durant plus de 50 jours8. Ici, les sensibilités thermiques et mécaniques ont été évaluées sur 28 jours à l’aide de Hargreaves, de plaques chauffantes et de tests de filament de von Frey. Tous les tests comportementaux ont démontré la cohérence de l’hypersensibilité de longue durée. Il a été démontré que ce modèle a des effets dose-dépendants de la morphine et de l’ibuprofène, ce qui confirme qu’il est bien adapté aux études précliniques sur la douleur. Cet article décrit notamment les instructions pour un outil en verre unique fait à la main, appelé « crochet en verre nerveux ». Cet outil est utilisé à la place des forceps pour manipuler le nerf et prévenir les lésions nerveuses supplémentaires involontaires pendant la chirurgie.

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		<tr>
			<td>5/0, FS-2, 30&#34; Undyed PGA Braided Polyglycolic Acid Synthetic Absorbable Suture</td>
			<td>CP Medical</td>
			<td>421A</td>
			<td>https://cpmedical.com/suturesearch/product/421a-visorb-50-fs-2-30/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6/0, P-1, 18&#34; Blue Polypropylene Monofilament Non-Absorbable Suture</td>
			<td>CP Medical</td>
			<td>8697P</td>
			<td>https://cpmedical.com/suturesearch/product/8697p-polypro-60-p-1-18/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>9/0 (0.3 metric) Nylon Black Monofilament Suture</td>
			<td>Crestpoint Ophthalmics</td>
			<td>MANI 1407</td>
			<td>https://crestpointophthalmics.com/mani-1407-suture-trape-spatula-nylon-black-mono-box-of-12.html</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Allodynia Software&#160;</td>
			<td>National Instruments, LabView 2015</td>
			<td></td>
			<td>Quantification of mean withdrawal thresholds (Von Frey data)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C57Bl6/J mice&#160;</td>
			<td>The Jackson Laboratory, Bar Harbor, ME</td>
			<td>000664</td>
			<td>https://www.jax.org/strain/000664</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Castroviejo needle holder</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>12565-14</td>
			<td>https://www.finescience.com/en-US/Products/Wound-Closure/Needle-Holders/Castroviejo-Needle-Holder/12565-14</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cold Hot Plate Test</td>
			<td>Bioseb</td>
			<td>BIO-CHP</td>
			<td>https://www.bioseb.com/en/pain-thermal-allodynia-hyperalgesia/563-cold-hot-plate-test.html</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Elevated metal mesh stand for Von Frey</td>
			<td>Bioseb</td>
			<td>BIO-STD2-EVF</td>
			<td>https://www.bioseb.com/en/pain-mechanical-allodynia-hyperalgesia/1689-elevated-metal-mesh-stand-30-cm-height-to-fit-up-to-2-pvf-cages.html</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Extra fine Graefe forceps</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11152-10</td>
			<td>https://www.fishersci.com/shop/products/fisherbrand-curved-medium-point-general-purpose-forceps/16100110</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine Castroviejo needle holder</td>
			<td>Simovision/Geuder</td>
			<td>17565</td>
			<td>https://simovision.com/assets/Uploads/Brochure-Geuder-Ophthalmic-Surgical-Instruments-EN2.pdf</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine scissors (11.5 cm)</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14558-11</td>
			<td>https://www.finescience.com/en-US/Products/Scissors/Standard-Scissors/Fine-Scissors-Tungsten-Carbide-ToughCut%C2%AE/14558-11</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine scissors (9 cm)</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14558-09</td>
			<td>https://www.finescience.com/en-US/Products/Scissors/Standard-Scissors/Fine-Scissors-Tungsten-Carbide-ToughCut%C2%AE/14558-09</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris forceps</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11064-07</td>
			<td>https://www.finescience.com/en-US/Products/Forceps-Hemostats/Fine-Forceps/Iris-Forceps/11064-07</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Adson forceps</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>392487</td>
			<td>https://www.fishersci.com/shop/products/micro-adson-tissue-forceps-1x2-teeth-german-steel/13820072#?keyword=adson%20forceps</td>
		</tr>
		<tr>
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			<td>Bioseb</td>
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			<td>https://www.bioseb.com/en/pain-mechanical-allodynia-hyperalgesia/1206-modular-holder-cages-for-rats-and-mice.html</td>
		</tr>
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			%3D%3D%7Ctkp%3ABk9SR4q6- 
			6LfYA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plantar Test for Thermal Stimulation - Hargreaves Apparatus</td>
			<td>Ugo Basile</td>
			<td>37570</td>
			<td>https://ugobasile.com/products/categories/pain-and-inflammation/plantar-test-for-thermal-stimulation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Touch-Test Sensory Evaluators, Set of 20 Monofilaments</td>
			<td>North Coast Medical</td>
			<td>NC12775-99</td>
			<td>https://www.ncmedical.com/products/touch-test-sensory-evaluators_1278.html</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tying forceps</td>
			<td>Duckworth &#38; Kent</td>
			<td>2-504ER8</td>
			<td>https://duckworth-and-kent.com/product/tying-forceps-9/</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

partial sciatic nerve ligation: a mouse model of chronic neuropathic pain to study the antinociceptive effect of novel therapies

La gestion de la douleur chronique reste difficile à ce jour, et les traitements actuels sont associés à des effets indésirables, y compris la tolérance et la dépendance. La douleur neuropathique chronique résulte de lésions ou de maladies du système somatosensoriel. Pour étudier les thérapies potentielles avec des effets secondaires réduits, les modèles de douleur animale sont l’étalon-or dans les études précliniques. Par conséquent, des modèles bien caractérisés et bien décrits sont cruciaux pour le développement et la validation de thérapies innovantes. 
La ligature partielle du nerf sciatique (pSNL) est une procédure qui induit une douleur neuropathique chronique chez la souris, caractérisée par une hypersensibilité mécanique et thermique, une douleur continue et des changements de température des membres, ce qui fait de ce modèle un excellent choix pour étudier la douleur neuropathique de manière préclinique. pSNL est un modèle avantageux pour étudier la douleur neuropathique car il reproduit de nombreux symptômes observés chez les humains souffrant de douleur neuropathique. De plus, l’intervention chirurgicale est relativement rapide et simple à réaliser. Le pSNL unilatéral d’un membre permet de comparer les pattes ipsilatérales et controlatérales, ainsi que d’évaluer la sensibilisation centrale. 
Pour induire une hypersensibilité neuropathique chronique, un fil de nylon non résorbable 9-0 est utilisé pour ligaturer le tiers dorsal du nerf sciatique. Cet article décrit l’intervention chirurgicale et caractérise le développement de la douleur neuropathique chronique grâce à de multiples tests comportementaux couramment utilisés. Alors qu’une pléthore de thérapies innovantes sont actuellement à l’étude pour traiter la douleur chronique, cet article fournit des concepts cruciaux pour la normalisation et une description précise des chirurgies nécessaires pour induire une douleur neuropathique.

La douleur neuropathique chronique a été induite par ligature partielle du nerf sciatique de souris mâles C57Bl6/J (Figure 1A). La sensibilité mécanique a été évaluée à l’aide de filaments de von Frey et de la méthode « up-and-down ». La sensibilité thermique à la chaleur a été évaluée à l’aide des essais Hargreaves et sur plaque chauffante. Toutes les données ont été analysées avec une ANOVA bidirectionnelle à mesures répétées avec correction de Geisser-Gre...

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Partial Sciatic Nerve Ligation: A Mouse Model of Chronic Neuropathic Pain to Study the Antinociceptive Effect of Novel Therapies

La ligature partielle du nerf sciatique induit une douleur neuropathique chronique de longue durée, caractérisée par des réponses exagérées aux stimuli thermiques et mécaniques. Ce modèle murin de douleur neuropathique est couramment utilisé pour étudier des thérapies innovantes pour la gestion de la douleur. Cet article décrit en détail l’intervention chirurgicale pour améliorer la standardisation et la reproductibilité.

Ligature partielle du nerf sciatique : un modèle murin de douleur neuropathique chronique pour étudier l’effet antinociceptif de nouvelles thérapies

Management of chronic pain remains challenging to this day, and current treatments are associated with adverse effects, including tolerance and addiction. ...

Alors qu’une pléthore de thérapies innovantes sont actuellement à l’étude pour traiter la douleur chronique, notre protocole fournit des concepts cruciaux pour la normalisation des chirurgies nécessaires pour induire une douleur neuropathique. La ligature partielle du nerf sciatique, ou PSNL, est un modèle avantageux pour étudier la douleur neuropathique car elle reproduit de nombreux symptômes observés chez les humains souffrant de douleur neuropathique. Comme la PSNL reproduit de nombreux symptômes observés chez les humains souffrant de douleur neuropathique, ce protocole fournit des concepts cruciaux pour étudier et développer de nouvelles thérapies de gestion de la douleur.La démonstration de la procédure sera Kevin Cheng, un candidat au doctorat en médecine dans mon laboratoire. Pour commencer, habituez les souris à l’appareil de test Von Frey pendant une heure avant le test en les plaçant dans des boîtes en plexiglas transparent sur un treillis métallique dans la même pièce que la salle de test. Appliquer une série de filaments mono fins étalonnés perpendiculairement à la surface de la jardinière de la patte postérieure ipsilatérale PSNL des animaux maintenus dans des cages suspendues en treillis métallique.Déterminer le seuil de retrait en augmentant ou en diminuant séquentiellement la force de stimulus correspondant à la taille du filament. Augmentez la taille du filament lorsque la réponse est négative et diminuez la taille du filament lorsque l’animal retire sa patte. Signalez les réponses négatives et positives dans la fiche technique et testez la même patte quatre fois avec des filaments différents après la première réponse positive.Habituez les souris à l’appareil de test Hargreaves pendant une heure avant le test en les plaçant dans des boîtes en plexiglas transparent dans la même pièce que la salle d’essai. Établir les latences de retrait des pattes de base à l’aide de l’appareil Hargreaves. Concentrez une source de chaleur rayonnante sur la surface de la jardinière de la patte postérieure ipsilatérale au PSNL et commencez la stimulation.Lorsque l’animal retire sa patte, attendez qu’un détecteur de mouvement arrête le stimulus et arrête la minuterie. Ajustez l’intensité de la source de chaleur pour obtenir une latence de retrait de la patte de base d’environ 10 secondes. Ensuite, enregistrez le temps de retrait dans un tableau.Réglez la plaque chauffante à 52 degrés Celsius. Placez l’animal dans la chambre d’essai et démarrez un chronomètre. Observez les comportements nocifensifs et arrêtez le chronomètre dès que le comportement nocifensif est observé.Ensuite, retirez l’animal de la chambre et enregistrez la latence de ce comportement. Assurez-vous de nettoyer l’appareil de toute urine entre chaque animal testé pour éviter d’affecter la température du stimulus thermique. Nettoyez la chambre d’essai avec 70% d’éthanol entre les animaux pour réduire l’impact comportemental des odeurs.Pour fabriquer un crochet en verre nerveux, allumez le brûleur bunsen. Tenez une extrémité de la tige de verre au feu dans une main. Au fur et à mesure que cette tige de verre fond, utilisez une autre tige de verre dans l’autre main pour guider et tirer sur le verre fondu sur la première tige.Retirez la première tige de verre du feu et laissez l’extrémité de la partie fondue rouler naturellement vers l’intérieur pour former une petite boule à l’aide de la deuxième tige de verre. Pincez les orteils sur une patte postérieure avec une pince à épiler pour vous assurer de l’absence de réflexe de patte et vérifiez le réflexe de clignement cornéen avant d’appliquer une pommade ophtalmique lubrifiante. Après avoir choisi le côté où effectuer la chirurgie, façonnez la patte postérieure de l’animal autour de la région de la cuisse, vers le bas vers la rotule, plus haut vers la hanche et au-dessus du fémur.Ensuite, essuyez trois fois avec de la chlorhexidine dans une direction avec trois gazes séparées alternées avec une solution saline stérile chaude. Ensuite, glissez la jambe à travers une fente faite dans un champ stérile de 10 par 10 centimètres pour créer un champ stérile autour de la jambe de choix. À l’aide de fins ciseaux chirurgicaux, faites une petite coupe de deux millimètres de la peau dans la ligne médiane de l’aspect latéral de la cuisse.Faites glisser les ciseaux sous la peau dans un mouvement circulaire pour percer le fascia et créer un dégagement, en agrandissant l’espace d’incision. Ensuite, à l’aide de pinces à attacher, créez une incision nette d’un centimètre de profondeur verticalement à un angle de 90 degrés dans les muscles de la cuisse. Ensuite, insérez les petits ciseaux fins dans la même incision également à un angle de 90 degrés et ouvrez-les doucement pour séparer les muscles jusqu’à ce que le nerf sciatique soit visualisé.Localisez le nerf sciatique parallèle à la cuisse verticale dans la direction de la hanche au genou. Retirez les ciseaux dans la pince à attacher du corps avant de continuer. Utilisez la pince extra fine dans le crochet en verre nerveux pour isoler le nerf du dessous.Libérez soigneusement les nerfs des tissus conjonctifs environnants à un endroit près du trochanter du fémur qui est le plus proche de la hanche et le plus éloigné du genou. Laissez le nerf reposer sur la tige de verre et assurez-vous que l’extrémité de la tige empêche le nerf de rouler. Placez un nœud chirurgical pour attacher un tiers de la largeur du nerf sciatique en utilisant une suture en nylon neuf zéro avant qu’il ne se divise en branches communes des nerfs péronier, tibial et sural.Glissez soigneusement le nerf de la tige de verre une fois le nœud terminé et remettez-le à l’emplacement d’origine au niveau inférieur aux muscles séparés. Ensuite, suturez l’incision musculaire à l’aide d’une suture polyglycolique résorbable à cinq zéros. Séparément, suturez la peau à l’aide d’une suture en polypropylène six zéro non résorbable.Ensuite, notez le temps d’arrêt de la chirurgie et de l’anesthésie. Laissez la souris se réveiller seule dans une cage de récupération avant de la remettre dans une nouvelle cage propre. Utilisez le test de Von Frey, Hargreaves ou la plaque chauffante pour évaluer l’hypersensibilité thermique et mécanique et son inversion potentielle.Les souris qui ont subi une chirurgie PSNL ont démontré des seuils de stimuli mécaniques inférieurs à ceux des animaux fictifs pendant 28 jours. Des résultats similaires ont été obtenus avec l’évaluation de l’hypersensibilité thermique. Les latences de retrait des pattes après exposition à un stimulus thermique radiant ont augmenté chez les animaux PSNL ainsi que les latences de retrait lorsque les animaux ont été placés sur une plaque de 52 degrés Celsius.Les groupes injectés avec deux doses différentes de morphine ont montré une inversion de l’hypersensibilité qui a duré d’une à deux heures. L’hypersensibilité mécanique est revenue à la ligne de base quatre heures après l’injection de morphine. Lorsque deux doses différentes d’ibuprofène ont été administrées par voie intrapéritonéale aux souris, les résultats ont démontré une diminution de l’hypersensibilité mécanique par rapport aux souris injectées de solution saline.Il est essentiel de limiter les dommages supplémentaires au nerf car cela peut affecter les seuils sensoriels de la douleur. L’expérimentateur doit porter une attention particulière et utiliser le crochet en verre pour réduire les dommages involontaires Suite à cette procédure, ce modèle de douleur neuropathique chronique peut être utilisé pour identifier et caractériser l’effet antinociceptif des médicaments menant au développement de nouvelles thérapies de gestion de la douleur.

Research

JoVE Journal

Medicine

Orthotopic Aortic Transplantation: A Rat Model to Study the Development of Chronic Vasculopathy

Orthotopique aortique transplantation: un modèle de rat pour étudier le développement de la vasculopathie chronique

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant ...

Recherche

Médecine

Chronic Constriction of the Sciatic Nerve and Pain Hypersensitivity Testing in Rats

Constriction chronique du nerf sciatique et les essais hypersensibilité à la douleur chez le rat

Chronic neuropathic pain, resulting from damage to the central or peripheral nervous system, is a prevalent and debilitating condition, affecting 7-18% of ...

Use of Animal Model of Sepsis to Evaluate Novel Herbal Therapies

L&#39;utilisation de modèle animal de sepsis pour évaluer de nouvelles thérapies à base de plantes

Sepsis refers to a systemic inflammatory response syndrome resulting from a microbial infection. It has been routinely simulated in animals by several ...

Breathing-controlled Electrical Stimulation (BreEStim) for Management of Neuropathic Pain and Spasticity

Breathing-controlled Electrical Stimulation BreEStim for Management of Neuropathic Pain and Spasticity

La respiration contrôlée stimulation électrique (BreEStim) pour la gestion de la douleur neuropathique et la spasticité

Electrical stimulation (EStim) refers to the application of electrical current to muscles or nerves in order to achieve functional and therapeutic goals. ...

Urinary Bladder Distention Evoked Visceromotor Responses as a Model for Bladder Pain in Mice

Réponses vessie distension évoqués viscéromotrice comme modèle pour douleur à la vessie chez la souris

Approximately 3-8 million people in the United States suffer from interstitial cystitis/bladder pain syndrome (IC/BPS), a debilitating condition ...

The Sciatic Nerve Cuffing Model of Neuropathic Pain in Mice

Le nerf sciatique menottes modèle de douleur neuropathique chez les souris

Neuropathic pain arises as a consequence of a lesion or a disease affecting the somatosensory system. This syndrome results from maladaptive changes in ...

Chronic Constriction Injury of the Rat's Infraorbital Nerve (IoN-CCI) to Study Trigeminal Neuropathic Pain

Chronic Constriction Injury of the Rat's Infraorbital Nerve IoN-CCI to Study Trigeminal Neuropathic Pain

Constriction chronique blessures de orbitaire du nerf de la Rat (ion-CCI) d&#39;étudier trijumeau douleur neuropathique

Animal models are important tools to study the pathophysiology and pharmacology of neuropathic pain. This manuscript describes the surgical and behavioral ...

The Monoiodoacetate Model of Osteoarthritis Pain in the Mouse

Le modèle monoïodacétate de douleur arthrosique chez la souris

A major symptom of patients with osteoarthritis (OA) is pain that&#160;is triggered by peripheral as well as central changes within the pain pathways. The ...

A Mouse Model of Orthopedic Surgery to Study Postoperative Cognitive Dysfunction and Tissue Regeneration

Un modèle murin de la chirurgie orthopédique pour étudier la dysfonction Cognitive postopératoire et régénération des tissus

Surgery is commonly used to improve and maintain quality of life. Unfortunately, in vulnerable patients such as the elderly, complications may occur and ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

Mesure de la contractilité isométrique de l’artère mésentérique de souris à l’aide de fil myographie

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...