Name: determination of the mating efficiency of haploids in saccharomyces cerevisiae
Uploaded: 2022-12-02T14:00:00
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Este trabajo fue financiado por una subvención DBT/Wellcome Trust (India Alliance) (IA/S/19/2/504632) a S.S. P.N. es un becario de investigación apoyado por una subvención DBT/Wellcome Trust (India Alliance) (IA/S/19/2/504632). A.M. cuenta con el apoyo del Consejo de Investigación Científica e Industrial (CSIR), Gobierno de la India, como investigador principal (09/087(0873)/2017-EMR-I). Los autores agradecen a Paike Jayadeva Bhat por las discusiones.

NOTA: El protocolo implica ampliamente los siguientes pasos: (1) parchear los haploides en las rejillas de eficiencia de apareamiento en una placa YPD, (2) mezclar los haploides en números iguales después de 24 h de incubación y dar a los haploides mixtos unas horas para aparearse (7 h en este estudio), (3) colocar las células mixtas en YPD para aislar colonias individuales después de 7 h a 30 ° C, y finalmente, (4) determinar el número de diploides formados utilizando los marcadores auxotróficos. Estos pasos se...

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La cuantificación de la eficiencia de apareamiento en S. cerevisiae es esencial para llevar a cabo estudios relacionados con los genes implicados en las vías de apareamiento o estudiar la influencia del medio externo en el comportamiento de apareamiento. En las últimas dos décadas, S. cerevisiae también se ha convertido en un modelo popular para abordar cuestiones relacionadas con la especiación 14,36,37,38.</s...

Saccharomyces cerevisiae, comúnmente llamada levadura en ciernes, es un eucariota unicelular. Tiene dos tipos de apareamiento, a y α, y exhibe ciclos reproductivos asexuales y sexuales. Los tipos de apareamiento a y α son haploides y pueden dividirse mitóticamente en ausencia del otro tipo de apareamiento en el entorno circundante, que representa el ciclo asexual de la levadura. Cuando los dos tipos de apareamiento están muy cerca, dejan de dividirse mitóticamente y se fusionan para formar una célula diploide. La levadura diploide puede dividirse mitóticamente cuando los nutrientes están presentes o sufrir meiosis en condiciones de falta de nitrógeno en presencia de una fuente de carbono pobre que no es fermentable, como el acetato1. Esto resulta en la formación de esporas, que permanecen latentes hasta que haya condiciones de crecimiento favorables. El ciclo de vida se completa cuando estas esporas germinan y los dos tipos haploides se liberan de nuevo a la piscina haploide 2,3 (Figura 1).

El apareamiento de las células de levadura incluye varios pasos, como la aglutinación, la formación de una proyección de apareamiento o "shmoo", seguida de la fusión celular y nuclear 4,5. Los dos tipos de apareamiento a y α producen factor a y factor α, respectivamente, para iniciar el apareamiento. Estos factores son feromonas polipeptídicas que se unen a los receptores (Ste2 y Ste3) presentes en la superficie celular del tipo de apareamiento opuesto5. La unión de las feromonas a los receptores inicia la vía de respuesta de feromonas, la vía de transducción de señales de la proteína quinasa activada por mitógenos (MAPK) 6,7,8. Esto resulta en la detención del ciclo celular en la fase G1, lo que lleva a una fase estacionaria metabólicamente activa9. Las células dejan de dividirse mitóticamente y se sintetizan las proteínas necesarias para el apareamiento. Como las células haploides no pueden moverse una hacia la otra, una proyección de apareamiento o "shmoo" se dirige hacia el compañero de apareamiento. Cuando las células entran en contacto, la pared celular se degrada y el contenido citoplasmático se fusiona, lo que resulta en el apareamiento para formar una célula diploide10,11. La eficiencia de apareamiento entre haploides se ha utilizado como medida de especiación en cepas evolucionadas en laboratorio, así como entre especies existentes12.

Al ser un organismo eucariota simple, la levadura es el modelo de elección para un gran número de preguntas de investigación asociadas con organismos eucariotas complejos. Una de esas preguntas está asociada a la especiación y a la evolución de las barreras reproductivas13,14. Para los organismos que se reproducen sexualmente, una especie se define por el concepto de especie biológica (BSC) propuesto por Ernst Mayr15. Según este concepto, se dice que dos individuos de una población pertenecen a dos especies diferentes si no pueden cruzarse y están aislados reproductivamente. La ruptura del ciclo reproductivo sexual (que implica la fusión de gametos para formar un cigoto, el desarrollo del cigoto en una progenie y el logro de la madurez sexual en la progenie) conduce al aislamiento reproductivo. Como se muestra en la Figura 1, el ciclo de vida de S. cerevisiae es comparable al ciclo reproductivo sexual: a) la fusión de los dos tipos de apareamiento a y α es similar a la fusión de gametos en organismos que se reproducen sexualmente; b) la capacidad del diploide para sufrir división mitótica es equivalente a que el cigoto se convierta en progenie; y c) el diploide sometido a esporulación es comparable al proceso de gametogénesis14.

El aislamiento precigótico ocurre cuando se observa apareamiento selectivo. Dada la misma oportunidad de aparearse con dos tipos a genéticamente diferentes, un tipo α se aparea preferentemente con uno sobre el otro o viceversa14. En el caso de experimentos de evolución en los que los haploides han evolucionado en diferentes entornos, la presencia de una barrera previa al apareamiento se puede determinar mediante la realización de un ensayo de apareamiento. Una disminución en la eficiencia de apareamiento en comparación con el ancestro indica la evolución de una barrera previa al apareamiento. El aislamiento postcigótico podría surgir debido a la incapacidad del diploide para sufrir una división mitótica efectiva y/o esporulación para formar esporas haploides14. Estos pueden cuantificarse midiendo la tasa de crecimiento de los diploides y calculando la eficiencia de esporulación, respectivamente. Por lo tanto, para estudiar la evolución de las barreras reproductivas, se requieren métodos robustos para cuantificar (a) la eficiencia de apareamiento, (b) el crecimiento mitótico del diploide y (c) la eficiencia de esporulación del diploide. En este trabajo, se informa un método robusto para cuantificar la eficiencia de apareamiento de las cepas de levadura.

En experimentos de laboratorio, una de las formas en que se puede detectar la ocurrencia de apareamiento es mediante el uso de marcadores auxotróficos que complementan los requisitos nutricionales. Cuando los dos tipos de apareamiento son auxotrofos para dos aminoácidos diferentes, solo la célula diploide formada por la fusión de los dos tipos de apareamiento puede crecer en un medio deficiente en ambos aminoácidos. Por lo tanto, los marcadores auxotrofos son útiles para detectar el apareamiento tanto cualitativa como cuantitativamente. Una prueba cualitativa será suficiente para identificar el tipo de apareamiento de una cepa después de la meiosis16. Las pruebas cuantitativas son esenciales cuando se está interesado en identificar una reducción en el apareamiento mientras se estudian los genes involucrados en la vía de apareamiento17,18. Además, dado que la levadura se utiliza cada vez más en estudios de especiación, es necesario un ensayo de apareamiento conveniente y reproducible, ya que la cuantificación de la eficiencia de apareamiento es una medida de la barrera precigótica.

La eficiencia de apareamiento entre los dos tipos de apareamiento de levadura se ha cuantificado previamente16,19,20. La mayoría de los métodos utilizados anteriormente son similares en su diseño con algunas variaciones 16,21,22,23,24,25. Algunos de ellos usan cultivos de fase logarítmica temprana, mientras que otros usan cultivos de fase logarítmica media de cepas haploides. Hay variaciones en las proporciones en las que se mezclan los dos tipos de apareamiento. Casi todos los protocolos utilizan una membrana de nitrocelulosa. Las suspensiones de ambos tipos de apareamiento tomadas de cultivos previamente cultivados se mezclan y se filtran sobre una membrana de nitrocelulosa colocada en una placa YPD. En una de las variaciones del protocolo, la suspensión haploide se parcha directamente en una placa YPD21. En experimentos relacionados con los genes involucrados en la producción de feromonas de los dos tipos de apareamiento, las feromonas se agregan externamente mientras se hacen las suspensiones de los dos tipos de apareamiento24.

Después de la incubación durante unas horas (típicamente alrededor de 5 h) después de mezclar los haploides, las células se lavan de la membrana, se diluyen y se colocan en medios selectivos. En uno de los métodos anteriores reportados en 1973, la eficiencia de la formación o apareamiento de cigotos se calculó contando el número de células brotadas, células sin brotes y pares de apareamiento bajo un microscopio utilizando un hemocitómetro26. Sin embargo, la mayoría de los métodos reportados más tarde usan marcadores auxotrofos para distinguir haploides y diploides. La eficiencia de apareamiento se calcula como el porcentaje de células diploides en relación con el número de células diploides y haploides en el conjunto celular 16,21,23.

Sin embargo, a pesar de una serie de informes que utilizan la levadura como organismo modelo para estudiar la especiación, no existe un protocolo estandarizado reportado en la literatura hasta ahora para calcular la eficiencia del apareamiento. Las células en la fase logarítmica pueden no ser ideales para la cuantificación de la eficiencia de apareamiento. Durante el apareamiento, el ciclo celular de los dos haploides se detiene, y por lo tanto, las células durante el apareamiento no se están dividiendo9. Como también se sabe que el ciclo celular se detiene de manera similar en las células en la fase estacionaria27, el uso de tales células puede hacer que el protocolo sea más reproducible. Las células de fase estacionaria se pueden mezclar y colocar en placas YPD (es decir, un ambiente nutricionalmente rico) para el apareamiento. Los procedimientos convencionales también requieren una membrana de nitrocelulosa y el lavado de las células, lo que hace que el proceso sea engorroso y susceptible de errores de manejo. Además, los protocolos utilizados hasta la fecha cuantifican la eficiencia de apareamiento en términos de un haploide. Sin embargo, cuando se mide el aislamiento reproductivo, la eficiencia de apareamiento se cuantifica para una combinación particular de haploides en lugar de un solo haploide.

Para abordar estos problemas, aquí, informamos un método robusto para la cuantificación de la eficiencia de apareamiento en levadura que es altamente reproducible y fácil de usar. Además, este método y las cepas de levadura empleadas aquí también se pueden utilizar en estudios que examinan el efecto del flujo génico en la evolución de las barreras de apareamiento.

En este estudio se utilizaron dos cepas diferentes de S. cerevisiae. Una de las cepas se deriva del fondo SK1; esto se modificó en nuestro laboratorio agregando los marcadores auxotrofos cerca del locus MAT. Los genotipos resultantes de los haploides se proporcionan en la Tabla 128,29,30. En la cepa SK1, el haploide tenía el gen TRP1 insertado cerca del locus MAT, y el haploide α tenía el gen LEU2 insertado cerca del locus MAT. En la cepa ScAM, los genes TRP1 y URA3 se insertaron en los haploides a y α, respectivamente. La localización de la inserción fue en la región ARS del cromosoma III (Chr III: 197378..197609). Para el protocolo reportado aquí, los marcadores auxotrofos en cualquier parte del genoma serían suficientes. Sin embargo, tener los marcadores auxotrofos cerca del locus MAT significa que estas cepas también pueden ser utilizadas para estudios que examinan el efecto del flujo génico sobre la especiación31,32. Los marcadores se agregaron cerca del locus MAT para evitar la reorganización de los marcadores debido a la recombinación. Por lo tanto, este protocolo se puede utilizar para cuantificar la eficiencia de apareamiento en estudios que involucran especiación y también para identificar la alteración de la eficiencia de apareamiento cuando se estudian las proteínas involucradas en la vía de apareamiento.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Adenine</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>A8626</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agar Powder regular grade for bacteriology</td>
			<td>SRL</td>
			<td>19661 (0140186)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonium Sulphate, Hi-AR</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>GRM1273</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-(+)-glucose</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>G8270</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Petri plates</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>PW008</td>
			<td>&#160;90 mm x 15 mm dimension</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Arginine</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>A8094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Aspartic acid</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>A7219</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Histidine monochloride monohydrate</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>H5659</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Isoleucine</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>I2752</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Leucine</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>L8912</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Lysine</td>
			<td>Aldrich</td>
			<td>62840</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Methionine</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>M5308</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Phenylalanine</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>P5482</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Threonine</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>T8625</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Tyrosine</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>T8566</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Valine</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>V0513</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mating efficiency grid</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1 cm x 1.5 cm rectangular grid drawn on the Petri plate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microcentrifuge tubes</td>
			<td>Tarsons</td>
			<td>500010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peptone</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>RM001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Uracil</td>
			<td>Sigma Life Science</td>
			<td>U0750</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Yeast Extract Powder</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>RM027</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Yeast Nitrogen Base w/o Amino acids and Ammonium Sulphate</td>
			<td>BD Difco</td>
			<td>233520</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

determination of the mating efficiency of haploids in saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae es un organismo modelo ampliamente utilizado en genética, evolución y biología molecular. En los últimos años, también se ha convertido en un organismo modelo popular para estudiar problemas relacionados con la especiación. El ciclo de vida de la levadura implica fases reproductivas asexuales y sexuales. La facilidad para realizar experimentos de evolución y el corto tiempo de generación del organismo permiten el estudio de la evolución de las barreras reproductivas. La eficiencia con la que los dos tipos de acoplamiento (a y α) se acoplan para formar el diploide a/α se conoce como eficiencia de acoplamiento. Cualquier disminución en la eficiencia de apareamiento entre haploides indica una barrera precigótica. Por lo tanto, para cuantificar el grado de aislamiento reproductivo entre dos haploides, se requiere un método robusto para cuantificar la eficiencia de apareamiento. Con este fin, se presenta aquí un protocolo simple y altamente reproducible. El protocolo implica cuatro pasos principales, que incluyen parchear los haploides en una placa YPD, mezclar los haploides en números iguales, diluir y chapar para colonias individuales y, finalmente, calcular la eficiencia basada en el número de colonias en una placa de abandono. Los marcadores auxotrofos se emplean para hacer claramente la distinción entre haploides y diploides.

Cuantificación de la eficiencia de apareamiento de los dos tipos de apareamiento El protocolo descrito aquí se utilizó para cuantificar la eficiencia de apareamiento entre dos cepas de levadura, entre SK1AM a y SK1AM α y entre ScAMa y ScAMα (Figura 3A). En estos experimentos, el apareamiento entre los dos haploides se repitió al menos 12 veces. En cada una de las repeticiones del experimento, al men...

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Determination of the Mating Efficiency of Haploids in Saccharomyces cerevisiae

En este trabajo, se describe un método robusto para la cuantificación de la eficiencia de apareamiento en la levadura Saccharomyces cerevisiae . Este método es particularmente útil para la cuantificación de barreras precigóticas en estudios de especiación.

Determinación de la eficiencia de apareamiento de haploides en Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae is a widely used model organism in genetics, evolution, and molecular biology. In recent years, it has also become a popular ...

Este protocolo es un método simple para cuantificar la eficiencia con la que diferentes cepas y especies de levaduras se aparean entre sí. El método propuesto es simple, robusto y eficiente. El método se puede extender a cualquier cepa de levadura.El método descrito en este estudio se puede utilizar para comprender cómo se produce la especiación en la levadura. Además, las cepas que describimos pueden ser particularmente útiles para diseñar experimentos con el flujo de genes. La fuerza del método es que es realmente simple.Algunos ajustes leves, como el tiempo de incubación, pueden ser necesarios dependiendo de la cepa particular utilizada. Comience a revivir los haploides A y Alfa de las existencias congeladas rayando el inóculo de levadura en una placa de agar peptona dextrosa de extracto de levadura, o placa de agar YPD. Permítales crecer durante 48 horas a 30 grados centígrados para obtener colonias individuales.Después de la incubación, inocular colonias individuales de la placa YPD y cinco mililitros de YPD medio, e incubar a 30 grados centígrados durante 48 horas con agitación de 250 RPM. Las células están en la fase estacionaria de crecimiento después de este período de incubación. En una placa YPD nueva, dibuje la rejilla de eficiencia de acoplamiento como un rectángulo de 1 por 1,5 centímetros dividido en tres cajas, cada una con una dimensión de 1 por 0,5 centímetros.Inocular cinco microlitros del cultivo YPD de los dos tipos de apareamiento en los rectángulos más a la izquierda y a la derecha. Este volumen corresponde aproximadamente 5 veces 10 a la quinta célula haploide en cada sección. Incubar las placas durante 24 horas a 30 grados centígrados.Para mezclar un número igual de células de levadura, retire aproximadamente 1/3 del crecimiento de levadura desarrollado en las cajas exteriores utilizando un palillo estéril y resuspenda las células eliminadas en 20 microlitros de agua en un vial estéril de 1,5 mililitros. Siga esto para cada haploide. Luego, diluya cinco microlitros de esta suspensión en dos mililitros de agua y mida la densidad óptica usando un espectrofotómetro a 600 nanómetros.Según el valor de densidad óptica y el número de células por mililitro a una densidad óptica, agregue los volúmenes requeridos de ambos haploides en un vial fresco y estéril de 1,5 mililitros. Mezclar bien con una pipeta. El volumen final de esta suspensión es generalmente de alrededor de seis a ocho microlitros.A continuación, inocula esta suspensión en la rejilla central. Incubar la placa a 30 grados centígrados durante siete horas, permitiendo que los haploides se apareen. Después de siete horas de incubación, raspe las células del rectángulo central con un palillo de dientes o una punta de pipeta y diluya en dos mililitros de agua estéril.Llevar a cabo diluciones adicionales, y luego extender la suspensión celular en agar YPD para obtener colonias individuales. Después del emplatado, incubar las placas YPD a 30 grados centígrados durante 36 a 48 horas para desarrollar colonias individuales. Asegúrese de que se obtengan unos pocos cientos de colonias individuales de cada experimento de apareamiento para la detección para garantizar la significación estadística de los datos.Para identificar las colonias diploides en la placa, transfiera las colonias individuales rayándolas individualmente en una placa de doble caída, careciendo de los aminoácidos para los que las cepas son auxotróficas. Incubar las placas a 30 grados centígrados durante 48 horas y calcular la eficiencia de apareamiento, nu. La robustez del protocolo permitió una fácil diferenciación de la eficiencia de acoplamiento entre las dos cepas, SK1AM y ScAM.Mientras que las cepas SK1 se acoplaron con una eficiencia muy alta, las cepas ScAM se acoplaron con una eficiencia relativamente menor. La eficiencia de apareamiento de las cepas ScAM disminuyó significativamente cuando el ambiente no contenía glucosa como fuente primaria de carbono, lo que indica que el apareamiento es un proceso energéticamente costoso y el crecimiento en fuentes alternativas de carbono reduce cualitativamente la eficiencia del apareamiento. Cuando se les permitió aparearse durante diferentes períodos de tiempo, no se observó apareamiento durante las primeras cuatro a cinco horas.Los primeros diploides aparecieron solo después de cuatro a cinco horas, lo que indica que este es el tiempo necesario para que el proceso de apareamiento se complete en el entorno dado. Después de eso, la eficiencia de apareamiento aumentó rápidamente. Más allá de siete horas, los cálculos de eficiencia de apareamiento fueron influenciados por el hecho de que el crecimiento mitótico comenzó en la placa.Asegúrese de que se mezcle el mismo número de ambos haploides. Las desviaciones de esto conducirían a variaciones en las repeticiones independientes del protocolo. Cómo el flujo genético afecta la adaptación y la especiación es una pregunta abierta.Dado que los marcadores auxotrofos se insertan junto al locus MAT en nuestras cepas, esto ayuda a abordar esta importante pregunta.

Research

JoVE Journal

Biology

Determination of the Mating Efficiency of Haploids in Saccharomyces cerevisiae

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