Name: real-time void spot assay
Uploaded: 2023-02-10T12:00:00
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Este trabajo fue apoyado por una subvención de los NIH R01DK119183 (a G.A. y M.D.C.), una subvención de proyecto piloto a través de P30DK079307 (a M.G.D.), un premio de Desarrollo Profesional de la Asociación Americana de Urología y una subvención de la Fundación Winters (a N.M.), y por los Núcleos de Imágenes Renales de Fisiología Celular y Organismos Modelo del Centro de Investigación Renal de Pittsburgh (P30DK079307).

Ratones Piezo1 /2 uroteliales de doble knockout (Pz1/2-KO, genotipo: Piezo1 fl/fl; Piezo2 fl/fl; Upk2CRE+/-) y controles (Pz1/2-C, genotipo: Piezo1 fl/fl; Piezo2 fl/fl; Upk2CRE-/-) se generaron internamente a partir de cepas parentales obtenidas de los laboratorios Jax (cepa Piezo1 fl/fl # 029213; Piezo2 fl/fl cepa # 027720; Upk2CRE+/- cepa # 029281). Tanto ratones hembr...

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	<li>Dalghi, M. G., Montalbetti, N., Carattino, M. D., Apodaca, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+urothelium:+life+in+a+liquid+environment.">The urothelium: life in a liquid environment.</a> Physiological Reviews. 100 (4), 1621 (2020).</li><li>de Groat, W. C., Griffiths, D., Yoshimura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+control+of+the+lower+urinary+tract.">Neural control of the lower urinary tract.</a> Comprehensive Physiology. 5 (1), 327 (2015).</li><li>Dalghi, M. 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La incorporación de la videomonitorización es una modificación rentable que presenta varias ventajas sobre el VSA clásico. En el VSA clásico, que se usa típicamente como un ensayo de punto final, es difícil distinguir puntos vacíos superpuestos. Esta no es una preocupación trivial, ya que los ratones tienden a orinar varias veces en la misma área cuando el ensayo se prolonga durante varias horas, generalmente en las esquinas de su jaula. Por lo tanto, la primera ventaja de RT-VSA es que el investigador puede id...

El almacenamiento de orina y la micción están coordinados por un circuito central (sistema nervioso central) que recibe información sobre el estado de llenado de la vejiga a través de los nervios pélvico e hipogástrico. El urotelio, el epitelio que recubre el tracto urinario desde la pelvis renal hasta la uretra proximal, forma una barrera estrecha contra los productos de desecho metabólicos y patógenos presentes en la orina. Es un componente integral de una red sensorial, que detecta y comunica el estado de llenado de la vejiga a los tejidos subyacentes y nervios aferentes 1,2. La ruptura de la barrera urotelial, o alteraciones en las vías de mecanotransducción urotelial, puede conducir a una disfunción miccional junto con síntomas del tracto urinario inferior como frecuencia, urgencia, nicturia e incontinencia 3,4,5,6,7. Del mismo modo, se sabe que el envejecimiento, la diabetes, las infecciones del tracto urinario inferior, la cistitis intersticial y otros procesos de enfermedades que afectan la vejiga urinaria, o el circuito asociado que controla su función, causan disfunción de la vejiga 8,9,10,11,12,13,14,15,16,17, 18,19. Una mejor comprensión del comportamiento miccional normal y anormal depende del desarrollo de métodos que puedan discriminar de manera confiable entre diferentes patrones de micción.
Tradicionalmente, el comportamiento de micción voluntaria de ratones ha sido estudiado utilizando el ensayo de punto vacío (VSA), desarrollado por Desjardins y colegas 20, y ampliamente adoptado debido a su simplicidad, bajo costo y enfoque no invasivo 8,21,22,23,24. Este ensayo se realiza típicamente como un ensayo de punto final, en el que un ratón pasa una cantidad definida de tiempo en una jaula forrada por un papel de filtro, que posteriormente se analiza contando el número y evaluando el tamaño de las manchas de orina cuando el papel de filtro se coloca bajo luz ultravioleta (UV) (las manchas de orina fluorescen en estas condiciones)20. A pesar de estas muchas ventajas, el VSA tradicional presenta algunas limitaciones importantes. Debido a que los ratones a menudo orinan en las mismas áreas, los investigadores tienen que restringir la duración del ensayo a un período de tiempo relativamente corto (≤4 h)25. Incluso cuando el VSA se realiza durante períodos de tiempo más cortos, es casi imposible resolver pequeños puntos vacíos (SVS) que caen sobre grandes puntos vacíos o discriminar SVS del arrastre de orina adherida a colas o patas. También es muy difícil distinguir si las SVS son consecuencia de eventos miccionales frecuentes pero individuales (fenotipo que a menudo se observa en respuesta a la cistitis 4,26), o debido al goteo postmiccional (fenotipo asociado a la obstrucción de la salida de la vejiga 27). Además, el deseo de completar el ensayo durante las horas de trabajo, junto con las dificultades para acceder a las instalaciones de vivienda cuando se apagan las luces, a menudo limita estos ensayos al período de luz del ciclo circadiano de 24 h. Por lo tanto, estas limitaciones de tiempo impiden la evaluación del comportamiento miccional del ratón durante su fase nocturna activa, disminuyendo la capacidad de analizar genes específicos o tratamientos que se rigen por ritmos circadianos.
Para superar algunas de estas limitaciones, los investigadores han desarrollado métodos alternativos para evaluar el comportamiento miccional en tiempo real 26,28,29,30,31,32. Algunos de estos enfoques implican el uso de equipos costosos como jaulas metabólicas26,28,29, o el uso de cámaras térmicas30; Sin embargo, estos también tienen limitaciones. Por ejemplo, en las jaulas metabólicas, la orina tiende a adherirse a los cables del piso de malla y a las paredes del embudo, reduciendo la cantidad de orina que se recolecta y se mide. Por lo tanto, puede ser difícil recopilar con precisión datos sobre pequeños vacíos. Además, las jaulas metabólicas no proporcionan información sobre la distribución espacial de los eventos miccionales (es decir, micción en las esquinas frente al centro de la cámara). Dado que la radiación infrarroja de longitud de onda larga utilizada por las cámaras termográficas no penetra en los sólidos, la actividad miccional evaluada por termografía de video debe realizarse en un sistema abierto, lo que puede ser un desafío con ratones activos, ya que pueden saltar varias pulgadas en el aire. Otro sistema es el enfoque automatizado de tinción en papel (aVSOP)33, que consiste en papel de filtro enrollado que se enrolla a una velocidad constante debajo del piso de malla de alambre de una jaula para ratones. Este enfoque evita el daño del papel y la superposición de manchas de orina que ocurren en el VSA clásico, y su implementación permite al investigador realizar experimentos durante varios días. Sin embargo, no proporciona al investigador el momento preciso de los eventos de micción, y no hay capacidad para examinar el comportamiento y cómo se correlaciona con la detección. Para obtener esta información, los investigadores han incorporado la videomonitorización a los ensayos de micción, un enfoque que permite la evaluación simultánea de la actividad del ratón y los eventos de micción31,32. Un enfoque consiste en colocar un diodo emisor de luz azul (LED) y una cámara de video con un filtro de proteína de fluorescencia verde colocado debajo de la jaula experimental para visualizar los eventos de micción, y un LED infrarrojo y una cámara de video sobre la jaula para capturar la posición32 del ratón. Esta configuración se ha utilizado para monitorear el comportamiento de micción mientras se realiza la fotometría de fibra; Sin embargo, el ambiente brillantemente iluminado de este sistema requirió que los investigadores trataran a sus ratones con un agente diurético para estimular la micción. En otro diseño experimental, se colocaron cámaras gran angular por encima y por debajo de la jaula experimental para visualizar la actividad motora del ratón y los eventos de micción, respectivamente. En este caso, las manchas de orina depositadas en un papel de filtro que recubre el piso de la jaula se revelaron iluminando el papel de filtro con luces UV colocadas debajo de la jaula31. Esta configuración fue utilizada en ensayos cortos, de 4 min de duración, durante la fase ligera del día para estudiar las neuronas del tronco encefálico involucradas en el comportamiento de micción voluntaria31. No se informó la idoneidad de este sistema para su uso durante la fase oscura o por períodos de tiempo >4 min.
En este artículo, se describe un método que mejora el VSA tradicional al permitir el monitoreo de video a largo plazo del comportamiento de vaciado del mouse. Este enfoque rentable proporciona información temporal, espacial y volumétrica sobre eventos miccionales durante largos períodos de tiempo durante las fases de luz y oscuridad del día, junto con detalles relacionados con el comportamiento del ratón 3,4,34. Se proporciona información detallada para la construcción de las cámaras de vaciación, la implementación de un VSA EN TIEMPO REAL (RT-VSA) y el análisis de los datos. El RT-VSA es valioso para los investigadores que buscan comprender los mecanismos fisiológicos que controlan la función del sistema urinario, desarrollar enfoques farmacológicos para controlar la micción y definir las bases moleculares de los procesos de enfermedad que afectan el tracto urinario inferior.

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		<tr>
			<td>1.00&#8221; X 1.00&#8221; T-Slotted Profile - Four Open T-Slots &#8211;&#160; cut to 10 inches</td>
			<td>80/20</td>
			<td>1010</td>
			<td>Amount: 20</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.00&#8221; X 1.00&#8221; T-Slotted Profile - Four Open T-Slots &#8211;&#160; cut to 12 inches</td>
			<td>80/20</td>
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			<td>Amount: 6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.00&#8221; X 1.00&#8221; T-Slotted Profile - Four Open T-Slots &#8211;&#160; cut to 40 inches</td>
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			<td>Amount: 4</td>
		</tr>
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			<td>1.00&#8221; X 1.00&#8221; T-Slotted Profile - Four Open T-Slots &#8211; cut to 14.75 inches</td>
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			<td>Amount: 12</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.00&#8221; X 1.00&#8221; T-Slotted Profile - Four Open T-Slots &#8211; cut to 32 inches</td>
			<td>80/20</td>
			<td>1010</td>
			<td>Amount: 5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/4-20 Double Slide-in Economy T-Nut</td>
			<td>80/20</td>
			<td>3280</td>
			<td>Amount: 16</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/4-20 Triple Slide-in Economy T-Nut</td>
			<td>80/20</td>
			<td>3287</td>
			<td>Amount: 18</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 &#38; 25 Series 2 Hole - 18mm Slotted Inside Corner Bracket with Dual Support</td>
			<td>80/20</td>
			<td>14061</td>
			<td>Amount: 6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 Series 3 Hole - Straight Flat Plate</td>
			<td>80/20</td>
			<td>4118</td>
			<td>Amount: 8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 Series 5 Hole - &#34;L&#34; Flat Plate</td>
			<td>80/20</td>
			<td>4081</td>
			<td>Amount: 8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 Series 5 Hole - &#34;T&#34; Flat Plate</td>
			<td>80/20</td>
			<td>4080</td>
			<td>Amount: 8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 Series 5 Hole - Tee Flat Plate</td>
			<td>80/20</td>
			<td>4140</td>
			<td>Amount: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 Series Standard Lift-Off Hinge - Right Hand Assembly</td>
			<td>80/20</td>
			<td>2064</td>
			<td>Amount: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 to 15 Series 2 Hole - Lite Transition Inside Corner Bracket</td>
			<td>80/20</td>
			<td>4509</td>
			<td>Amount: 6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24&#8221;-long UV tube lights</td>
			<td>ADJ Products LLC</td>
			<td>T8-F20BLB24</td>
			<td>Amount: 2 
			20W bulb &#8211; 24&#8221; Wavelength: 365nm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acrylic Mirror Sheet</td>
			<td>Profesional Plastics</td>
			<td></td>
			<td>Amount: 1 
			82.5 cm x 26.5 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acrylic Mirror Sheet</td>
			<td>Profesional Plastics</td>
			<td></td>
			<td>Amount: 2 
			26.5 cm X 30.5 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acrylic Mirror Sheet</td>
			<td>Profesional Plastics</td>
			<td></td>
			<td>Amount: 2 
			82.5 cm x 30.5 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AR polycarbonate (UV resistance)</td>
			<td>80/20</td>
			<td>65-2641</td>
			<td>Amount: 2 
			4.5mm Thick, Clear, 38.5 cm x 26.5 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AR polycarbonate (UV resistance)</td>
			<td>80/20</td>
			<td>65-2641</td>
			<td>Amount: 4 
			4.5mm Thick, Clear, 38.5 cm x 21.5 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AR polycarbonate (UV resistance)</td>
			<td>80/20</td>
			<td>65-2641</td>
			<td>Amount: 4 
			4.5mm Thick, Clear, 26.5 cm x 21.5 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AR polycarbonate (UV resistance)</td>
			<td>80/20</td>
			<td>65-2641</td>
			<td>Amount: 4 
			4.5mm Thick, Clear 37.5 cm x 23.9 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AR polycarbonate (UV resistance)</td>
			<td>80/20</td>
			<td>65-2641</td>
			<td>Amount: 4 
			4.5mm Thick, Clear , 24.4 cm x 23.9 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chromatography paper (thin paper)</td>
			<td>&#160;Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>57144</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cosmos blotting paper (thick paper)</td>
			<td>Blick Art Materials</td>
			<td>10422-1005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Excel</td>
			<td>Microsoft Corporation</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GraphPad Prism</td>
			<td>GraphPad Software</td>
			<td>Version 9.4.0</td>
			<td>graphing and statistics software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ImageJ FIJI</td>
			<td>NIH</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td>Merck</td>
			<td></td>
			<td>transparent film</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Quick Time Player 10.5 software&#160;</td>
			<td>Apple</td>
			<td></td>
			<td>multimedia player</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Security spy</td>
			<td>Ben software</td>
			<td></td>
			<td>video surveillance software system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Standard End Fastener, 1/4-20</td>
			<td>80/20</td>
			<td>3381</td>
			<td>Amount: 80</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UV transmitting acrylic</td>
			<td>Spartech</td>
			<td>Polycast Solacryl SUVT</td>
			<td>Amount: 2 
			38.5 cm x 26.5 cm&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water gel: HydroGel</td>
			<td>ClearH2O&#160;</td>
			<td>&#160;70-01-5022</td>
			<td>(https://www.clearh2o.com/product/hydrogel/)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Webcam</td>
			<td>Logitech</td>
			<td>C930e</td>
			<td>Amount: 4</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

real-time void spot assay

El comportamiento miccional normal es el resultado de la función coordinada de la vejiga, la uretra y los esfínteres uretrales bajo el control adecuado del sistema nervioso. Para estudiar el comportamiento de micción voluntaria en modelos de ratón, los investigadores han desarrollado el ensayo de punto vacío (VSA), un método que mide el número y el área de manchas de orina depositadas en un papel de filtro que recubre el piso de la jaula de un animal. Aunque técnicamente simple y barato, este ensayo tiene limitaciones cuando se usa como un ensayo de punto final, incluida la falta de resolución temporal de los eventos miccionales y las dificultades para cuantificar las manchas de orina superpuestas. Para superar estas limitaciones, desarrollamos un VSA monitoreado por video, que llamamos VSA EN TIEMPO REAL (RT-VSA), y que nos permite determinar la frecuencia de micción, evaluar el volumen vaciado y los patrones de micción, y realizar mediciones durante las ventanas de tiempo de 6 h durante las fases oscura y clara del día. El método descrito en este informe se puede aplicar a una amplia variedad de estudios basados en ratones que exploran los aspectos fisiológicos y neuroconductuales de la micción voluntaria en estados de salud y enfermedad.

Comportamiento miccional de ratones picos piezo1/2 uroteliales
Durante la fase de almacenamiento del ciclo miccional, se plantea la hipótesis de que el urotelio detecta la tensión ejercida por la orina acumulada en la vejiga y transduce este estímulo mecánico en respuestas celulares como la liberación de ATP seroso 1,3. Hemos demostrado previamente que los canales PIEZO1 y PIEZO2 activados mecánicamente ...

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Real-Time Void Spot Assay

Este artículo describe un nuevo método para estudiar el comportamiento de micción del ratón mediante la incorporación de la supervisión de vídeo en el ensayo convencional de micción de la micción. Este enfoque proporciona información temporal, espacial y volumétrica sobre los eventos de micción y detalles del comportamiento del mouse durante las fases de luz y oscuridad del día.

Ensayo de punto vacío en tiempo real

Normal voiding behavior is the result of the coordinated function of the bladder, the urethra, and the urethral sphincters under the proper control of the ...

El método descrito en este informe se puede utilizar para comprender los aspectos fisiológicos y neuroconductuales de la micción voluntaria en estados de salud y enfermedad. Esta técnica nos permite monitorear el comportamiento del volumen del mouse en las fases claras y oscuras del día, y proporciona información temporal, espacial y volumétrica sobre eventos de micción. Para preparar un ensayo de punto vacío en tiempo real o una cámara de grabación RT-VSA, coloque un papel de filtro delgado o grueso, dependiendo de la hora del día, en la parte inferior de la jaula de grabación RT-VSA.Encima del papel de filtro, coloque un iglú de plástico para dormir; un tubo de microcentrífuga estéril de 1,5 ml para enriquecimiento; y un plato de plástico de 60 mm x 15 mm que contenga dos o tres piezas de comida seca de ratón; y de 14 a 16 gramos de agua en forma de paquete de gel. Una vez que la cámara de grabación esté lista, coloque suavemente el mouse sobre el papel de filtro. Asegúrese de que la transferencia del ratón de la jaula de alojamiento a la jaula de grabación se produce con un estrés mínimo.Una vez que el ratón esté dentro de la jaula de grabación, coloque la tapa y cubra la parte superior de la tapa con una almohadilla azul absorbente para minimizar los reflejos directos de la luz ambiental en la superficie de la tapa de plexiglás. Encienda las luces ultravioletas en la cámara inferior. Para grabar vídeo RT-VSA desde las cámaras superior e inferior, utilice un software de grabación de videovigilancia configurado para grabar simultáneamente desde varias cámaras web o cámaras en red.Inicie la grabación presionando Cmd R en la ventana del programa. Realice grabaciones de vídeo a un fotograma por segundo. Inmediatamente después de iniciar las grabaciones, salga de la habitación y cierre la puerta suavemente.Asegúrese de que la habitación permanezca en silencio durante todo el experimento. Detenga las grabaciones presionando Cmd T.Apague las luces ultravioletas. Después de detener la grabación, el software genera automáticamente un archivo de película en formato m4v para cada cámara y lo guarda bajo el nombre de la cámara en una carpeta de destino previamente seleccionada.Verifique que dentro de la carpeta de cada cámara los experimentos estén organizados en carpetas por fecha. En cada carpeta de fecha o experimento, compruebe que hay un archivo m4v y todos los archivos jpeg individuales que corresponden a cada fotograma de película. Cree una carpeta en el escritorio con el nombre y la fecha del experimento y transfiera los archivos m4v a esta carpeta.Copie la carpeta de la película en una unidad flash para analizarla en un equipo externo. Abra un archivo de película recopilado por la cámara inferior durante la fase de luz o la cámara superior durante la fase oscura para su análisis. Después de evaluar la calidad de la película, analice los experimentos moviéndose a la ventana de tiempo correcta usando el comando de avance rápido o el control deslizante de la barra de tiempo.La actividad miccional durante la fase de luz se registra entre las 11:00 a.m. y las 5:00 p.m., y durante la fase oscura, entre la medianoche y las 6:00 a.m. Reproduzca la película en modo de avance rápido haciendo clic en el icono de avance rápido o desplácese manualmente por la película, buscando evidencia de que el mouse se está anulando. Busque la aparición repentina de manchas brillantes de orina en el papel de filtro o los cambios de comportamiento, incluido el movimiento hacia las esquinas de la jaula y un breve período de inactividad cuando el ratón está orinando. Registre la hora a la que se produce cada vacío.Como convención, el tiempo del vacío se registra a la primera señal de que se detecta la orina. Para tomar medidas del vacío, primero use la barra de desplazamiento para avanzar o retroceder en el tiempo, buscando el punto en que se ha producido la difusión máxima de la mancha de orina. Detenga la película en este punto y coloque la flecha del mouse de la computadora en el lugar bajo análisis para marcar el punto de interés en la captura de pantalla.Asigne un nombre al archivo de captura de pantalla utilizando números correlativos para tener en cuenta el orden de aparición en la película. Una vez que se hayan analizado todos los puntos vacíos, mida el área total del papel de filtro capturando una captura de pantalla y delineando el borde del papel de filtro. Calcula el área porcentual de cada una de las manchas urinarias.Transforme los valores del área porcentual en el volumen de orina para cada punto de vacío utilizando las curvas de calibración y la función interpolar en el software de gráficos. El comportamiento miccional de ratones Piezo1, 2, knockout y control hembra y macho se registró durante la fase oscura y clara del día. Durante su fase de luz inactiva, no se observaron diferencias significativas en ningún parámetro analizado para ratones knockout hembra o macho en comparación con el control.Sin embargo, en la fase oscura activa, los ratones knockout hembra y macho mostraron un fenotipo miccional alterado, caracterizado por un aumento significativo en el número y volumen total de pequeñas manchas vacías. No hubo diferencias significativas en los puntos de vacío primario o el número de PVS, el volumen promedio por PVS o el volumen total de PVS en ratones knockout hembra o macho en comparación con los ratones control. El comportamiento miccional de ratones hembra se probó en condiciones basales y después del tratamiento con ciclofosfamida.En comparación con las condiciones basales, la cantidad de liberación de orina por micción es menor después del tratamiento con ciclofosfamida y los eventos miccionales son mucho más frecuentes. Un aspecto clave para la reproducibilidad del ensayo es manipular a los animales lo más suavemente posible y mantenerlos bajo un estrés mínimo durante todo el período de prueba. Como este es un ensayo no invasivo, se pueden realizar procedimientos adicionales después, incluida la citometría y la electromiografía para evaluar las funciones del esfínter de la vejiga y la uretra externa, respectivamente.La implementación de esta técnica permitirá a los investigadores definir la contribución de vías específicas al comportamiento miccional en estados de salud y enfermedad.

Research

JoVE Journal

Behavior

Asymmetric Walkway: A Novel Behavioral Assay for Studying Asymmetric Locomotion

Asimétrica Pasarela: Un Ensayo Novela conductual para Estudiar asimétrica Locomoción

Behavioral assays are commonly used for the assessment of sensorimotor impairment in the central nervous system (CNS). The most sophisticated methods for ...

Investigación

Comportamiento

Automated Analysis of a Nematode Population-based Chemosensory Preference Assay

Análisis Automatizado de un Ensayo de Preferencia Chemosensorial Basada en Población de Nematodo

The nematode, Caenorhabditis elegans' compact nervous system of only 302 neurons underlies a diverse repertoire of behaviors. To facilitate the dissection ...

Using the FishSim Animation Toolchain to Investigate Fish Behavior: A Case Study on Mate-Choice Copying In Sailfin Mollies

Using the FishSim Animation Toolchain to Investigate Fish Behavior: A Case Study on Mate-Choice Copying In Sailfin Mollies

Utilizando la cadena de herramientas de animación de FishSim para investigar el comportamiento de pescado: un estudio de caso en la elección de pareja copia en Mollies aletón

Over the last decade, employing computer animations for animal behavior research has increased due to its ability to non-invasively manipulate the ...

Using a Real-Time Locating System to Measure Walking Activity Associated with Wandering Behaviors Among Institutionalized Older Adults

Utilizando un sistema de localización en tiempo real a medida que poca actividad asociada con comportamientos errantes entre los adultos mayores institucionalizados

A real-time locating system (RTLS) can be used to track the walking activity of institutionalized older adults in long-term care who are at risk for ...

Brain State-dependent Brain Stimulation with Real-time Electroencephalography-Triggered Transcranial Magnetic Stimulation

Estimulación cerebral dependiente del estado cerebral con estimulación magnética transcraneal activada por electroencefalografía en tiempo real

The effect of a stimulus to the brain depends not only on the parameters of the stimulus but also on the dynamics of brain activity at the time of the ...

A Cross-Disciplinary and Multi-Modal Experimental Design for Studying Near-Real-Time Authentic Examination Experiences

Un diseño experimental multidisciplinar iológico y multimodal para estudiar experiencias de examen auténtico casi en tiempo real

Over the past ten years, research into students&#39; emotions in educational environments has increased. Although researchers have called for more studies ...

Implementation of a Real-Time Psychosis Risk Detection and Alerting System Based on Electronic Health Records using CogStack

Implementación de un sistema de detección y alerta de riesgos de psicosis en tiempo real basado en registros médicos electrónicos utilizando CogStack

Recent studies have shown that an automated, lifespan-inclusive, transdiagnostic, and clinically based, individualized risk calculator provides a powerful ...

Two Different Real-Time Place Preference Paradigms Using Optogenetics within the Ventral Tegmental Area of the Mouse

Dos paradigmas de preferencia de lugar en tiempo real diferentes utilizando optogenética dentro del área tegmental ventral del ratón

Understanding how neuronal activation leads to specific behavioral output is fundamental for modern neuroscience. Combining optogenetics in rodents with ...

Real-Time Proxy-Control of Re-Parameterized Peripheral Signals using a Close-Loop Interface

Control de proxy en tiempo real de señales periféricas re-parametrizadas utilizando una interfaz de bucle cercano

The fields that develop methods for sensory substitution and sensory augmentation have aimed to control external goals using signals from the central ...

Large-Scale Gravitaxis Assay of Caenorhabditis Dauer Larvae

Large-Scale Gravitaxis Assay of Caenorhabditis Dauer Larvae

Ensayo de gravitaxis a gran escala de larvas de Caenorhabditis dauer

Gravity sensation is an important and relatively understudied process. Sensing gravity enables animals to navigate their surroundings and facilitates ...