Name: Author Spotlight: Advancing Coral Research by Exploring Climate Change Resistance, Ex Situ Aquaculture, and Reproduction Strategies
Uploaded: 2023-06-23T14:45:00
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Diese Forschung wurde vom Ministerium für Wissenschaft und Technologie (Taiwan) unter den Fördernummern MOST 111-2611-M-291-005 und MOST 111-2811-M-291-001 finanziert.

1. Hängende Korallenkolonienin Ex-situ-Aquakulturbecken
<ol><li>Positionieren Sie eine gekerbte Stange (Länge x Breite x Höhe: 75 cm x 1 cm x 3 cm), im Folgenden "Hängestange" genannt, quer über das Kulturbecken, um die Korallenkolonien aufzuhängen. HINWEIS: Die in diesem Experiment verwendete Aufhängestange war eine Sonderanfertigung, aber ein einfaches PVC-Rohr mit hervorstehenden Schrauben (d. h. als Kerben) wäre ausreichend, solange es stabil über die Oberseite des Kulturbecken...

Ex Situ Culture of Pocillopora acuta and Effective Feeding Techniques

Diese vorläufige Bewertung des Einflusses von Temperatur und Fütterung auf die Fortpflanzung der Korallen ergab Unterschiede in der Fortpflanzungsleistung und dem Zeitpunkt zwischen Kolonien, die unter unterschiedlichen Behandlungsbedingungen kultiviert wurden. Des Weiteren wurde festgestellt, dass die Verfütterung von Artemia-Nauplien an Korallenkolonien sowohl bei relativ kühlen (24°C) als auch bei warmen Temperaturen (28°C) effektiv zu sein schien. Diese kombinierten Ergebnisse unterstreichen die Anwend...

Viele Korallenriff-Ökosysteme weltweit gehen verloren und degradieren als Folge von Hochtemperaturstress, der durch den Klimawandel verursacht wird 1,2. Korallenbleiche (d.h. der Zusammenbruch der Korallen-Algen-Symbiose3) galt inder Vergangenheit als relativ selten 4, tritt aber jetzt häufiger auf5, wobei eine jährliche Bleiche in vielen Regionen bis Mitte bis Ende des Jahrhunderts erwartetwird 6,7. Diese Verkürzung der Übergangszeit zwischen Bleichereignissen kann die Fähigkeit zur Widerstandsfähigkeit von Riffen einschränken8. Die direkten Auswirkungen von Hochtemperaturstress auf Korallenkolonien (z. B. Gewebeschäden9; Energiemangel10) sind untrennbar mit indirekten Auswirkungen auf der Ebene der Riffe verbunden, von denen eine Verringerung der Fortpflanzungs-/Rekrutierungskapazität besonders besorgniserregend ist11. Dies hat eine Reihe von angewandten Forschungsarbeiten angeregt, die sich beispielsweise mit der aktiven In-situ-Verbesserung der Rekrutierung (z. B. Riffimpfung12), neuen Technologien zur Skalierung der Korallenwiederherstellung13 und der Simulation von Reproduktionsreizen zur Induktion der Fortpflanzung in Ex-situ-Systemen befassen 14. Komplementär zu diesen aktiven Interventionen sind die kürzlich erfolgte Anerkennung der Vorteile der heterotrophen Ernährung von Korallen unter Hochtemperaturstress15 und die Erforschung der Rolle, die die Nahrungsbereitstellung bei der Fortpflanzung spielen kann16.
Es ist bekannt, dass heterotrophe Fütterung die Leistung von Korallenbeeinflusst 17 und wurde speziell mit einem erhöhten Korallenwachstum18,19 sowie mit thermischer Beständigkeit und Widerstandsfähigkeit 20,21 in Verbindung gebracht. Die Vorteile der Heterotrophie sind jedoch bei Korallenarten nicht allgegenwärtig22 und können je nach Art der verzehrten Nahrung23 sowie dem Grad der Lichtexposition24 unterschiedlich sein. Im Zusammenhang mit der Korallenreproduktion hat die heterotrophe Fütterung unterschiedliche Ergebnisse gezeigt, wobei Beobachtungen einer höheren25- und einer niedrigeren26-Reproduktionskapazität nach heterotropher Fütterung berichtet wurden. Der Einfluss heterotropher Ernährung auf die Fortpflanzung von Korallen über ein Temperaturspektrum hinweg wird selten untersucht, jedoch wurde festgestellt, dass die Heterotrophie in der gemäßigten Koralle Cladocora caespitosa für die Fortpflanzung unter niedrigeren Temperaturbedingungen wichtiger ist27. Ein besseres Verständnis der Rolle der Temperatur und der Nahrungsaufnahme für die Fortpflanzungsleistung ist wahrscheinlich erforderlich, um festzustellen, ob bestimmte Riffe (z. B. Riffe, die mit einer hohen Nahrungsverfügbarkeit verbunden sind28) unter dem Klimawandel eine höhere Rekrutierungskapazität besitzen.
Ähnlich wie bei der Fortpflanzungsleistung ist der Einfluss von Temperatur und Nahrungsaufnahme auf den Fortpflanzungszeitpunkt in Korallen noch relativ wenig untersucht, obwohl die Synchronisierung der Fortpflanzung mit abiotischen/biotischen Bedingungen ein wichtiger Faktor für den Rekrutierungserfolg in einem sich erwärmenden Ozean ist29. Es wurde gezeigt, dass wärmere Temperaturen in Studien zur thermischen Konditionierung von Korallen, die im Labor durchgeführt wurden30, zu einer früheren Fortpflanzung führen, und dies wurde auch bei Korallen beobachtet, die in den31. Jahreszeiten von natürlichen Riffen gesammelt wurden. Interessanterweise wurde jedoch kürzlich der gegenteilige Trend bei gefütterten Korallen beobachtet, die im Laufe eines Jahres in einem Ex-situ-Durchflusssystem kultiviert wurden (d. h. die Fortpflanzung erfolgte früher im Mondzyklus bei kühleren Wintertemperaturen und später im Mondzyklus bei wärmeren Sommertemperaturen)32. Dieses gegensätzliche Ergebnis deutet darauf hin, dass das Fortpflanzungstiming unter Bedingungen, die mit reichlich vorhandenen energetischen Ressourcen verbunden sind, von typischen Mustern abweichen kann.
Kontrollierte Langzeitexperimente unter verschiedenen Temperaturszenarien könnten dazu beitragen, den Einfluss der Heterotrophie auf die Fortpflanzung in skleraktinischen Korallen besser zu verstehen. Die Aufrechterhaltung der Reproduktion von Korallenkolonien unter Ex-situ-Bedingungen für mehrere Fortpflanzungszyklen kann jedoch eine Herausforderung sein (siehe aber frühere Forschung32,33). Hier werden einfache und effektive Techniken für die aktive Fütterung (Nahrungsquelle: Artemia nauplii) und Langzeitkultur einer brütenden Koralle (Pocillopora acuta) in einem Durchfluss-Aquakultursystem beschrieben; Es ist jedoch zu beachten, dass alle beschriebenen Techniken auch in rezirkulierenden Aquakultursystemen eingesetzt werden können. Um diese Techniken zu demonstrieren, wurde ein vorläufiger Vergleich der Reproduktionsleistung und des Zeitpunkts von Korallenkolonien durchgeführt, die bei 24 °C und 28 °C unter "gefütterten" und "ungefütterten" Behandlungen gehalten wurden. Diese Temperaturen wurden so gewählt, dass sie sich den Meerwassertemperaturen im Winter bzw. Sommer im Süden Taiwans annähern30,34; Eine höhere Temperatur wurde nicht gewählt, da die Förderung einer langfristigen Ex-situ-Kultur ein primäres Ziel dieses Experiments war, anstatt die Reaktion der Korallen auf thermischen Stress zu testen. Darüber hinaus wurde die Dichte der Artemia-Nauplien vor und nach den Fütterungssitzungen quantifiziert, um die Durchführbarkeit einer heterotrophen Fütterung bei beiden Temperaturbehandlungen zu vergleichen.
Konkret wurden 24 Kolonien von P. acuta (mittlere lineare Gesamtausdehnung ± Standardabweichung: 21,3 cm ± 2,8 cm) aus Durchflusstanks in den Forschungseinrichtungen des National Museum of Marine Biology & Aquarium im Süden Taiwans gewonnen. Pocillopora acuta ist eine weit verbreitete Korallenart, die sowohl eine Broadcast-Laich-, aber typischerweise eine brütende Fortpflanzungsstrategie besitzt35,36. Die Elternkolonien dieser Korallen wurden ursprünglich etwa 2 Jahre zuvor für ein anderes Experiment32 aus dem Outlet-Riff (21.931°E, 120.745°N) gesammelt. Folglich waren die im vorliegenden Experiment verwendeten Korallenkolonien ihr ganzes Leben lang unter Ex-situ-Kulturbedingungen gezüchtet worden; Konkret wurden die Kolonien bei Umgebungstemperatur und einem 12 h:12 h Licht-Dunkel-Zyklus bei 250 μmol Quanten m−2·s−1 exponiert und zweimal pro Woche mit Artemia-Nauplien gefüttert. Wir erkennen an, dass diese Langzeit-Ex-situ-Kultur die Reaktion der Kolonien auf die Behandlungsbedingungen in diesem Experiment beeinflusst haben könnte. Wir möchten daher betonen, dass das primäre Ziel hier darin besteht, zu veranschaulichen, wie die beschriebenen Techniken effektiv zur Kultivierung von Korallen ex situ eingesetzt werden können, indem ein Anwendungsbeispiel demonstriert wird, in dem die Auswirkungen von Temperatur und Fütterung auf die Korallenreproduktion bewertet wurden.
Die Korallenkolonien waren gleichmäßig auf sechs Flow-Through-System-Kulturtanks verteilt (Länge des Beckens x Breite x Höhe: 175 cm x 62 cm x 72 cm; Lichtregime des Beckens: 12 h:12h Licht-Dunkel-Zyklus bei 250 μmol Quanten m−2·s−1) (Abbildung 1A). Die Temperatur in drei der Tanks wurde auf 28 °C und die Temperatur in den anderen drei Tanks auf 24 °C eingestellt. Jeder Tank verfügte über einen Logger, der alle 10 Minuten die Temperatur aufzeichnete (siehe Materialtabelle). Die Temperatur wurde in jedem Tank mit Hilfe von Kühlern und Heizungen unabhängig voneinander geregelt, und die Wasserzirkulation wurde mit Durchflussmotoren aufrechterhalten (siehe Materialtabelle). Die Hälfte der Völker in jedem Becken (n = 2 Kolonien/Tank) wurde zweimal pro Woche mit Artemia-Nauplien gefüttert, während die anderen Völker nicht gefüttert wurden. Jede Fütterungssitzung dauerte 4 Stunden und wurde in zwei unabhängigen temperaturspezifischen Fütterungstanks durchgeführt. Während der Fütterung wurden alle Kolonien, einschließlich der ungefütterten Kolonien, in die Futtertanks gebracht, um den potenziellen Stresseffekt des Bewegens der Kolonien zwischen den Tanks zu standardisieren. Die Kolonien in den gefütterten und ungefütterten Behandlungen wurden in einem eigenen Kompartiment unter Verwendung eines Netzrahmens innerhalb der temperaturspezifischen Futtertanks positioniert, so dass nur die Kolonien im gefütterten Zustand Nahrung erhielten. Die Fortpflanzungsleistung und der Zeitpunkt der Fortpflanzung der Korallen wurden für jede Kolonie täglich um 09:00 Uhr bewertet, indem die Anzahl der Larven gezählt wurde, die über Nacht in die Larvensammelbehälter entlassen worden waren.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Artemia cysts&#160;</td>
			<td>Supreme plus</td>
			<td>NA</td>
			<td>Food source&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chiller</td>
			<td>Resun</td>
			<td>CL650</td>
			<td>To cool down water temperature if needed</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Conductivity portable meter</td>
			<td>WTW</td>
			<td>Cond 3110</td>
			<td>To measure salinity</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Enrichment diets</td>
			<td>Omega</td>
			<td>NA</td>
			<td>Used in Artemia cultivation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fishing line</td>
			<td>Super</td>
			<td>Nylon monofilament</td>
			<td>To hang the coral colonies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flow motors</td>
			<td>Maxspect</td>
			<td>GP03</td>
			<td>To create water flow</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heater 350 W</td>
			<td>ISTA</td>
			<td>NA</td>
			<td>Heaters used in tanks</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HOBO pendant temperature logger</td>
			<td>Onset Computer</td>
			<td>UA-002-08</td>
			<td>To record water temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LED lights</td>
			<td>Mean Well</td>
			<td>FTS: HLG-185H-36B</td>
			<td>NA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light portable meter</td>
			<td>LI-COR</td>
			<td>LI-250A</td>
			<td>Device used with light sensor to measure light intensity in PAR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light sensor</td>
			<td>LI-COR</td>
			<td>LI-193SA</td>
			<td>NA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plankton net 100 &#181;m mesh size</td>
			<td>Omega</td>
			<td>NA</td>
			<td>To collect larvae and artemia&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primary pump 6000 L/H</td>
			<td>Mr. Aqua</td>
			<td>BP6000</td>
			<td>To draw water from tanks into chiller</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propeller-type current meter</td>
			<td>KENEK</td>
			<td>GR20</td>
			<td>Device used with propeller-type detector to measure flow rate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propeller-type detector</td>
			<td>KENEK</td>
			<td>GR3T-2-20N</td>
			<td>NA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereo microscope</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>Stemi 2000-C&#160;</td>
			<td>To count the number of artemia&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Temperature controller 1000 W</td>
			<td>Rep Park</td>
			<td>O-RP-SDP-1</td>
			<td>To set and maintain water temperature</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

effective techniques for the feeding and ex situ culture of a brooding scleractinian coral, pocillopora acuta

Der Klimawandel wirkt sich weltweit auf das Überleben, das Wachstum und die Rekrutierung von Korallen aus, wobei in den nächsten Jahrzehnten große Veränderungen in der Häufigkeit und Zusammensetzung der Lebensgemeinschaften in Riffökosystemen erwartet werden. Die Erkenntnis dieser Verschlechterung des Riffs hat zu einer Reihe neuartiger aktiver Interventionen im Bereich der Forschung und Wiederherstellung geführt. Die Ex-situ-Aquakultur kann durch die Etablierung robuster Korallenkulturprotokolle (z. B. zur Verbesserung der Gesundheit und Fortpflanzung in Langzeitexperimenten) und durch die Bereitstellung eines konsistenten Brutbestands (z. B. für den Einsatz in Renaturierungsprojekten) eine unterstützende Rolle spielen. Hier werden einfache Techniken für die Fütterung und Ex-situ-Kultur von brütenden Skleraktinenkorallen am Beispiel der weit verbreiteten und gut untersuchten Koralle Pocillopora acuta skizziert. Um diesen Ansatz zu demonstrieren, wurden Korallenkolonien unterschiedlichen Temperaturen (24 °C vs. 28 °C) ausgesetzt und Fütterungsbehandlungen (gefüttert vs. ungefüttert) sowie die Durchführbarkeit der Fütterung von Artemia-Nauplien an Korallen bei beiden Temperaturen verglichen. Die Reproduktionsleistung zeigte eine hohe Variation zwischen den Kolonien, wobei unterschiedliche Trends zwischen den Temperaturbehandlungen beobachtet wurden. Bei 24 °C produzierten gefütterte Völker mehr Larven als ungefütterte Völker, aber das Gegenteil wurde bei Völkern festgestellt, die bei 28 °C kultiviert wurden. Alle Kolonien pflanzten sich vor dem Vollmond fort, und Unterschiede im Fortpflanzungszeitpunkt wurden nur zwischen ungefütterten Kolonien in der 28 °C-Behandlung und gefütterten Kolonien in der 24 °C-Behandlung gefunden (mittlerer Mondtag der Fortpflanzung ± Standardabweichung: 6,5 ± 2,5 bzw. 11,1 ± 2,6). Die Korallenkolonien ernährten sich bei beiden Behandlungstemperaturen effizient von Artemia-Nauplien . Diese vorgeschlagenen Fütterungs- und Kulturtechniken konzentrieren sich auf die Reduzierung von Korallenstress und die Förderung der reproduktiven Langlebigkeit auf kostengünstige und anpassbare Weise, mit vielseitiger Anwendbarkeit sowohl in Durchfluss- als auch in rezirkulierenden Aquakultursystemen.

Many coral reef ecosystems globally are being lost and degraded as a result of high-temperature stress driven by climate change1,2. Coral bleaching (i.e., the breakdown of the coral-algal symbiosis3) was considered relatively rare in the past4 but is now occurring more frequently5, with annual bleaching expected to occur in many regions by&#160;mid to late century6,7. This shortening of the interim period between bleaching events can limit the capacity for reef resilience8. The direct impacts of high-temperature stress on coral colonies (e.g., tissue damage9; energy depletion10) are intrinsically linked to indirect impacts at the reef-scale level, of which a reduction in reproductive/recruitment capacity is of particular concern11. This has spurred a range of applied research exploring, for example, the active in situ enhancement of recruitment (e.g., reef seeding12), new technologies for scaling-up coral restoration13, and the simulation of reproductive cues to induce reproduction in ex situ systems14. Complementary to these active interventions are the recent recognition of the advantages of heterotrophic feeding in corals under high-temperature stress15 and the exploration of the role that food provision may play in reproduction16.
Heterotrophic feeding is known to influence the performance of corals17 and has been specifically linked to increased coral growth18,19, as well as thermal resistance and resilience20,21. Yet, the benefits of heterotrophy are not ubiquitous among coral species22 and can differ based on the type of food being consumed23, as well as the level of light exposure24. In the context of coral reproduction, heterotrophic feeding has shown variable results, with observations of higher25 as well as lower26 reproductive capacity following heterotrophic feeding being reported. The influence of heterotrophic feeding on coral reproduction across a spectrum of temperatures is rarely assessed, yet in the temperate coral Cladocora caespitosa, heterotrophy was found to be more important for reproduction under lower temperature conditions27. A better understanding of the role of temperature and feeding on reproductive output is likely needed to determine whether specific reefs (e.g., reefs associated with high food availability28) possess a higher capacity for recruitment under climate change.
Similar to reproductive output, the effect of temperature and feeding on reproductive timing in corals remains relatively understudied, despite the synchronization of reproduction with abiotic/biotic conditions being an important consideration for recruitment success in a warming ocean29. Warmer temperatures have been shown to result in earlier reproduction in coral thermal conditioning studies conducted in the lab30, and this has also been observed in corals collected from natural reefs across seasons31. Yet, interestingly the opposite trend was recently observed in fed corals cultured over the course of 1 year in an ex situ flow-through system (i.e., reproduction occurred earlier in the lunar cycle at cooler winter temperatures and later in the lunar cycle at warmer summer temperatures)32. This contrasting result suggests that reproductive timing may stray from typical patterns under conditions associated with abundant energetic resources.
Long-term controlled experiments under different temperature scenarios could contribute to a better understanding of the influence of heterotrophy on reproduction in scleractinian corals. Maintaining reproducing coral colonies under ex situ conditions for multiple reproductive cycles, however, can be challenging (but see previous research32,33). Herein, straightforward and effective techniques for the active feeding (food source: Artemia nauplii) and long-term culture of a brooding coral (Pocillopora acuta) in a flow-through aquaculture system are described; yet, it should be noted that all the techniques described can also be used in recirculating aquaculture systems. To demonstrate these techniques, a preliminary comparison of the reproductive output and timing of coral colonies held at 24 &#176;C and 28 &#176;C under &#34;fed&#34; and &#34;unfed&#34; treatments was conducted. These temperatures were chosen to approximate seawater temperatures in winter and summer, respectively, in southern Taiwan30,34; a higher temperature was not chosen because the promotion of long-term ex situ culture, rather than testing coral response to thermal stress, was a primary goal of this experiment. Further, the density of Artemia nauplii before and after the feeding sessions was quantified&#160;to compare the feasibility of heterotrophic feeding at both temperature treatments.
Specifically, 24 colonies of P. acuta (mean total linear extension &#177; standard deviation: 21.3 cm &#177; 2.8 cm) were obtained from flow-through tanks at the research facilities of the National Museum of Marine Biology &#38; Aquarium, southern Taiwan. Pocillopora&#8203;&#160;acuta is a common coral species that possesses both a broadcast spawning, but&#160;typically brooding reproductive strategy35,36. The parent colonies of these corals were originally collected from the Outlet reef (21.931&#176;E, 120.745&#176;N) approximately 2 years earlier for another experiment32. Consequently, the coral colonies used in the present experiment had been reared for their entire lives under ex situ culture conditions; specifically, the colonies were exposed to ambient temperature and a 12 h:12 h light: dark cycle at 250 &#181;mol quanta m&#8722;2&#183;s&#8722;1 and were fed Artemia nauplii twice per week. We recognize that this long-term ex situ culture could have affected how the colonies responded to the treatment conditions in this experiment. We, therefore, would like to emphasize that the primary aim here is to illustrate how the described techniques can be effectively used to culture corals ex situ by demonstrating an applied example wherein the effects of temperature and feeding on coral reproduction were assessed.
Coral colonies were evenly distributed across six flow-through system culture tanks (tank interior length x width x height: 175 cm x 62 cm x 72 cm; tank light regime: 12 h:12h light:dark cycle at 250 &#181;mol quanta m&#8722;2&#183;s&#8722;1) (Figure 1A). The temperature in three of the tanks was set at 28 &#176;C, and the temperature in the other three tanks was set at 24 &#176;C; each tank had a logger that recorded the temperature every 10 min (see the Table of Materials). The temperature was independently controlled in each tank using chillers and heaters, and water circulation was maintained using flow motors (see the Table of Materials). Half of the colonies in each tank (n = 2 colonies/tank) were fed Artemia nauplii twice per week, while the other colonies were not fed. Each feeding session was 4 h in duration and was conducted in two independent temperature-specific feeding tanks. During feeding, all the colonies were moved into the feeding tanks, including the unfed colonies, to standardize the potential stress effect of moving the colonies between the tanks. The colonies in the fed and unfed treatments were positioned in their own compartment using a meshed frame within the temperature-specific feeding tanks so that only the colonies in the fed condition received food. The coral reproductive output and timing were assessed for each colony daily at 09:00 A.M. by counting the number of larvae that had been released into the larval collection containers overnight.

Author Spotlight: Advancing Coral Research by Exploring Climate Change Resistance, Ex Situ Aquaculture, and Reproduction Strategies 

Effektive Techniken für die Fütterung und Ex-situ-Kultivierung einer brütenden Skleractinien-Koralle, Pocillopora acuta

Our lab is interested in understanding climate change, resistance, and resilience in coral and exploring ex-situ aquaculture's role. Specifically, we aim to cultivate coral in a lab that can be used for restoration and research efforts. Over the past few years, we have seen major advances in coral ex-situ aquaculture, including being able to induce reproduction, as well as complete the entire coral life cycle in both broadcast spawning and brooding corals.Maintaining the long-term reproduction of brooding corals in the lab is usually quite challenging, with reproduction typically stopping after a few months. However, we found that if we culture the colonies together in mesocosm tanks and provide them with supplemental food, they can continue to produce larvae each month. In general, we have a good understanding of how feeding and temperature independently affect coral reproduction, but their interactive effects remain relatively understudied.For example, heterotrophy may have different benefits, or limitations at warmer compared to cooler temperatures. Using the protocols that we have described, we can effectively feed and culture the colonies long-term in X2 aquaculture systems, and can ultimately track the reproduction at the colony level to help infer the influence of heterotrophy on reproduction, and recruitment in a warming ocean.

Die beschriebenen Protokolle ermöglichten (1) den Vergleich der Fortpflanzungsleistung und des Zeitpunkts einzelner Korallenkolonien zwischen verschiedenen Fütterungs- und Temperaturbehandlungen und (2) eine Bewertung der Durchführbarkeit der Fütterung von Artemia-Nauplien bei verschiedenen Temperaturen. Hier wird ein kurzer Überblick über die Ergebnisse gegeben, aber Vorsicht ist geboten in Bezug auf die breite Interpretation der berichteten Auswirkungen von Temperatur und Nahrungsaufnahme auf die Koralle...

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Der Klimawandel wirkt sich weltweit auf die Ökosysteme der Korallenriffe aus. Korallen, die aus Ex-situ-Aquakultursystemen stammen, können dazu beitragen, Renaturierungs- und Forschungsbemühungen zu unterstützen. In dieser Arbeit werden Fütterungs- und Korallenkulturtechniken beschrieben, die zur langfristigen Erhaltung brütender Skleraktinenkorallen ex situ eingesetzt werden können.

Climate change is affecting the survival, growth, and recruitment of corals globally, with large-scale shifts in abundance and community composition ...

Unser Labor ist daran interessiert, den Klimawandel, die Resistenz und die Widerstandsfähigkeit von Korallen zu verstehen und die Rolle der Ex-situ-Aquakultur zu erforschen. Konkret wollen wir Korallen in einem Labor kultivieren, die für Restaurierungs- und Forschungsbemühungen genutzt werden können. In den letzten Jahren haben wir große Fortschritte in der Ex-situ-Aquakultur von Korallen gesehen, einschließlich der Fähigkeit, die Fortpflanzung zu induzieren und den gesamten Lebenszyklus der Korallen sowohl bei laichenden als auch bei brütenden Korallen zu vervollständigen.Die langfristige Fortpflanzung brütender Korallen im Labor ist in der Regel eine ziemliche Herausforderung, wobei die Fortpflanzung in der Regel nach einigen Monaten aufhört. Wir haben jedoch herausgefunden, dass die Kolonien weiterhin jeden Monat Larven produzieren können, wenn wir sie gemeinsam in Mesokosmos-Becken kultivieren und ihnen zusätzliches Futter zur Verfügung stellen. Im Allgemeinen haben wir ein gutes Verständnis dafür, wie sich Fütterung und Temperatur unabhängig voneinander auf die Fortpflanzung von Korallen auswirken, aber ihre interaktiven Auswirkungen sind noch relativ wenig untersucht.Zum Beispiel kann Heterotrophie bei wärmeren Temperaturen im Vergleich zu kühleren Temperaturen unterschiedliche Vorteile oder Einschränkungen haben. Mit den Protokollen, die wir beschrieben haben, können wir die Kolonien effektiv und langfristig in X2-Aquakultursystemen füttern und kultivieren und letztendlich die Fortpflanzung auf Kolonieebene verfolgen, um den Einfluss der Heterotrophie auf die Fortpflanzung und Rekrutierung in einem sich erwärmenden Ozean abzuleiten.