Name: 저자 스포트라이트: 환경 분석 및 질병 감시를 위한 물에서 Leptospira DNA 검출
Uploaded: 2024-06-14T12:30:00
Description: The dot-blot is a simple, fast, sensitive, and versatile technique that enables the identification of minimal quantities of DNA specifically targeted by ...

우리는 멕시코 국립 자치 대학교 (National Autonomous University of Mexico)의 수의학 및 동물 공학 학부 미생물학 및 면역학과의 렙토스피라 컬렉션에 빚을지고 있습니다. 우리는 참조 Leptospira 균주의 관대 한 기부에 감사드립니다. Leptospira fainei serovar Hurstbridge 균주 BUT6 및 Leptospira biflexa serovar Patoc 균주 Patoc I에서 Dr. Alejandro de la Peña Moctezuma. CIBAC 코디네이터인 Dr. José Antonio Ocampo Cervantes와 직원들의 물류 지원에 감사드립니다. EDT는 Metropolitan Autonomous University-Campus Cuajimalpa의 학부생을 위한 터미널 프로젝트 프로그램에 있었습니다. 우리는 그림 1과 3에서 9까지의 생성을 위한 Biorender.com 소프트웨어를 인정합니다.

1. 시료 전처리
<ol><li>4°C에서 10분 동안 8,000 x g 에서 원심분리하여 각 물 샘플을 1.5mL 미세 원심분리 튜브에 농축합니다. 이 단계를 필요한 만큼 반복하여 샘플을 250μL의 부피로 농축합니다.</li>
	<li>제조업체의 지침에 따라 DNA 추출 키트를 사용하십시오( 재료 표 참조).</li>
	<li>사용할 dot-blot 프로브에 따라 특정 PCR을 수행합니다(표 1).<ol><li>각 물 샘플 ...

물 샘플에서 Leptospira DNA 검출을 위한 Dot-Blot 분석

도트 블롯 기법의 중요한 단계에는 (1) DNA 고정화, (2) 비상동 DNA로 멤브레인의 자유 결합 부위 차단, (3) 어닐링 조건에서 프로브와 타겟 단편 사이의 상보성, (4) 비혼성화 프로브 제거, (5) 리포터 분자41의 검출이 포함됩니다.
PCR-도트-블롯은 특정 제한사항을 갖는데, 이를테면 이 기술은 혼성화된 단편(37)의 크기에 관한 정보를 제공하지 않고...

인간의 렙토스피라증은 주로 환경적 요인에 의해 발생한다 1,2. 호수, 강 및 하천에 렙토스피라가 존재한다는 것은 야생 동물과 결국 이러한 수역과 접촉할 수 있는 가축 및 생산 동물 사이에서 렙토스피라증이 전염된다는 지표입니다 1,3,4. 또한, 렙토스피라(Leptospira)는 하수, 정체 및 수돗물을 포함한 비자연적 자원에서 확인되었습니다 5,6.
렙토스피라는 전 세계에 분포하는 박테리아 7,8이며, 보존 및 전파에 있어 환경의 역할은 잘 알려져 있습니다. 렙토스피라(Leptospira)는 pH와미네랄이 다양한 음용수9와자연 수역1에서 생존할 수 있다. 또한 증류수(10)에서 장기간 생존할 수 있으며, 일정한 pH(7.8)에서는 최대 152일까지 생존할 수 있다11. 더욱이, 렙토스피라(Leptospira)는 가혹한 조건에서도 생존하기 위해 박테리아 컨소시엄(bacterial consortium)에서 상호작용할 수 있다12,13. 그것은 Azospirillum 및 Sphingomonas와 함께 담수에서 생물막의 일부일 수 있으며 49 °C14,15를 초과하는 온도를 성장시키고 견딜 수도 있습니다. 또한 물에 잠긴 토양에서 증식할 수 있으며 최대 379일(16) 동안 생존할 수 있으며, 1년 동안 질병을 유발할 수 있는 능력을 보존할 수 있습니다17,18. 그러나 수역 내의 생태와 수역 내에 어떻게 분포되어 있는지에 대해서는 알려진 바가 거의 없습니다.
발견 이후 Leptospira 속에 대한 연구는 혈청 학적 검사를 기반으로했습니다. 현재 세기가 되어서야 분자 기술이이 spirochaete의 연구에서 더 널리 퍼졌습니다. 점-블롯은 (1) 16S rRNA 및 ISSR(Inter-Simple Sequence Repeat)19,20을 기반으로 하는 동위원소 프로브를 사용하거나, (2) 소변21에 적용되는 인간 렙토스피라증에 대한 나노골드 기반 면역분석법으로, 또는 (3) 소 소변 샘플22에 대한 항체 기반 분석법으로 사용하는 식별에 거의 사용되지 않았습니다. 이 기술은 원래 동위원소 프로브를 기반으로 했기 때문에 사용되지 않았습니다. 그러나 PCR과 결합하여 향상된 결과를 얻을 수 있는 잘 알려진 기술이며 비동위원소 프로브를 사용하기 때문에 안전한 것으로 간주됩니다. PCR은 샘플의 미량에서 발견될 수 있는 특정 DNA 단편을 증폭하여 Leptospira DNA의 농축에 중요한 역할을 합니다. 각 PCR 주기 동안 표적 DNA 단편의 양은 반응에서 두 배가 됩니다. 반응이 끝날 때, 앰플리콘은 100만23 이상의 계수로 곱해졌다. PCR에 의해 증폭된 생성물은 아가로스 전기영동에서 종종 보이지 않지만, 도트 블롯24,25,26에서 DIG 표지 프로브와의 특정 혼성화를 통해 보이게 됩니다.
도트 블롯 기법은 간단하고 견고하며 수많은 샘플에 적합하므로 자원이 제한된 실험실에서 사용할 수 있습니다. 이는 (1) 구강 세균27, (2) 식품 및 배설물과 같은 다른 샘플 유형(28), (3) 배양 불가능한 세균29의 식별을 포함한 다양한 박테리아 연구에 사용되어 왔으며, 종종 다른 분자 기술과 일치합니다. 도트 블롯 기법이 제공하는 장점은 다음과 같습니다 : (1) 멤브레인은 200 μg / cm2 이상의 핵산 및 최대 400 μg / cm2 와 결합 할 수있는 높은 결합 능력을 가지고 있습니다. (2) 도트 블롯 결과는 특별한 장비 없이 시각적으로 해석할 수 있으며 (3) 실온(RT)에서 수년 동안 편리하게 보관할 수 있습니다.
렙토스피라(Leptospira) 속은 병원성, 중간성, 부생식물군(saprophytic clades)30,31로 분류되었다. 이러한 clade 간의 구별은 lipL41, lipL32 및 16S rRNA와 같은 특정 유전자를 기반으로 달성할 수 있습니다. LipL32는 병원성 clades에 존재하며 다양한 혈청학적 및 분자 도구에서 높은 민감도를 나타내는 반면, 부생식물 종21에는 없습니다. 하우스키핑 유전자 lipL41은 안정적인 발현으로 알려져 있으며 분자 기술(32)에 사용되는 반면, 16S rRNA 유전자는 분류에 활용됩니다.
이 방법론은 원심분리에 의해 농축된 많은 양의 물에 적용할 수 있습니다. 이를 통해 수역 내의 다양한 지점과 깊이를 평가하여 렙토스피럴 DNA의 존재와 그것이 속한 클래드를 감지할 수 있습니다. 이 도구는 생태학적 및 일반 스크리닝 목적 모두에 유용하며 물에 존재할 수 있는 다른 배양 불가능한 박테리아를 감지하는 데에도 사용할 수 있습니다.
또한 PCR 및 도트 블롯 분석은 정교하거나 고가의 장비가 없는 실험실을 포함하여 다양한 실험실에서 기술적으로나 경제적으로 저렴합니다. 이 연구는 자연 수역에서 수집된 물 샘플에서 3개의 렙토스피라 군을 식별하기 위해 디곡시게닌 기반 점-블롯을 적용하는 것을 목표로 합니다.
박테리아 균주 이 연구에는 12종의 렙토스피라 혈청형(Autumnalis, Bataviae, Bratislava, Canicola, Celledoni, Grippothyphosa, Hardjoprajitno, Icterohaemorrhagiae, Pomona, Pyrogenes, Tarassovi, Wolffi)이 포함되었습니다. 이 혈청형은 멕시코 국립 자치 대학교 수의학 및 동물원 학부의 미생물학 및 면역학과 컬렉션의 일부이며 현재 미세 응집 검사(MAT)에 사용되고 있습니다.
모든 렙토스피라 혈청형을 EMJH에서 배양하고, 이들의 DNA를 상업용 DNA 추출 키트를 사용하여 추출하였다( 재료 표 참조). 12개의 혈청형의 게놈 DNA 혼합물을 렙토스피라 병원성 군집에 대한 양성 대조군으로 사용했습니다. 렙토스피라 중간 군집의 양성 대조군으로, 렙토스피라 페이네이 혈청형 허스트브리지 균주 BUT6로부터의 게놈 DNA를 포함하였고, 렙토스피라 부생식물 군집에 대한 양성 대조군으로서, 렙토스피라 biflexa serovar Patoc 균주 Patoc I의 게놈 DNA도 포함하였다.
음성 대조군은 빈 플라스미드, 관련 없는 박테리아(Ureaplasma urealyticum, Staphylococcus aureus, Brucella abortus, Salmonella typhimurium, Shigella boydii, Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Escherichia coli)의 DNA, 그리고 비템플릿 대조군으로 작용한 PCR 등급의 물로 구성되었습니다.
물 샘플 Cuemanco Biological and Aquaculture Research Center (CIBAC) (19° 16' 54" N 99° 6' 11" W)에서 층화 우연 샘플링 방법을 사용하여 12개의 시험 채취 샘플을 수집했습니다. 이 샘플은 표층, 10cm 및 30cm의 세 가지 깊이에서 획득되었습니다(그림 1A, B). 물 수집 절차는 멸종 위기에 처한 종이나 보호 종에 영향을 미치지 않았습니다. 각 샘플은 멸균된 15mL 미세 원심분리기 튜브에서 수집되었습니다. 샘플을 수집하기 위해 각 튜브를 물에 부드럽게 담그고 선택한 깊이로 채운 다음 밀봉했습니다. 샘플은 22°C에서 유지되었으며 처리를 위해 즉시 실험실로 운반되었습니다.
각 샘플은 실온에서 20분 동안 8000 x g 의 멸균 1.5mL 미세 원심분리기 튜브에서 원심분리하여 농축했습니다. 이 단계를 반복하여 모든 샘플이 하나의 튜브에 농축될 때까지 이 튜브를 DNA 추출에 사용했습니다(그림 1C).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65435/65435fig01v2.jpg"> 그림 1: 원심분리에 의한 물 샘플의 농도. (A) 물 샘플링 연못, (B) 자연 하천. (C) 원심분리 기반 물 샘플 처리는 필요한 만큼 반복적인 단계로 (n). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65435/65435fig01largev2.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
DNA 추출 총 DNA는 제조업체의 지침에 따라 상용 Genomic DNA 키트를 사용하여 분리하였다( 재료 표 참조). DNA 추출은 20 μL의 용출 완충액에서 용출되고, DNA 농도는 260-280 nm에서 UV 분광 광도계로 측정하고, 사용할 때까지 4 °C에서 보관하였다.
PCR 증폭 PCR 표적은 16개의S rRNA, lipL41 및 lipL32 유전자로, Leptospira 속의 DNA를 식별하고 병원성, 부생성 및 중간성의 세 가지 분류를 구별할 수 있습니다. 프라이머와 프로브 설계는 모두 Ahmed et al., Azali et al., Bourhy et al., Weiss et al. 및 Branger et al.33,34,35,36,37의 이전 작업을 기반으로 했습니다. 각 프로브, 프라이머 및 증폭된 단편의 서열은 표 1에 기재되어 있으며, 참조 서열과의 정렬은 보충 파일 1, 보충 파일 2, 보충 파일 3, 보충 파일 4 및 보충 파일 5에 제공되어 있습니다. PCR 시약 및 열순환 조건은 프로토콜 섹션에 설명되어 있습니다.
증폭 산물은 보충 그림 1에 표시된 바와 같이 에티듐-브로마이드 검출과 함께 60V에서 45분 동안 TAE(40mM Tris 염기, 20mM 아세트산 및 1mM EDTA, pH 8.3)의 1% 아가로스 겔에서 전기영동 분리를 통해 시각화했습니다. 각 혈청형에서 수득한 게놈 DNA는 병원성 렙토스피라의 경우 L. interrogans (4, 691, 184 bp)38의 게놈 크기, 부생식물성 렙토스피라의 경우 L. biflexa(3, 956, 088 bp)39의 게놈 크기를 기준으로 각 PCR 반응에서 6 x 106 내지 1 x 104 게놈 등가 사본(GEq) 범위의 농도로 사용되었으며, 및 등록 번호 AKWZ00000000.2를 가진 L. fainei serovar Hurstbridge 균주 BUT6 (4, 267, 324 bp)의 게놈 크기.
프로브의 민감도는 각 실험에서 각 병원성 혈청형, L. biflexa serovar Patoc 균주 Patoc I 및 L. fainei 혈청형 Hurstbridge 균주 BUT6의 DNA로 평가했습니다. PCR 및 점-블롯 혼성화 분석의 특이성을 평가하기 위해 비관련 박테리아의 DNA를 포함했습니다.
표 1: Leptospira의 병원성, 부생식물 및 중간 clades를 식별하기 위한 제품을 증폭하기 위한 PCR 프라이머 및 프로브. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65435/TABLE_1_%207th_PR_%20EMCC.xlsx" target="_blank">이 표를 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a>
Dot-blot hybridization 어세이 이 기술은 DNA 샘플이 놓인 구멍이 점 모양을 가지고 있기 때문에 도트 블롯이라고 불리며, 진공 흡입에 의해 제자리에 고정되도록 흡입되면 이러한 모양을 얻습니다. 이 기술은 Kafatos et al.40에 의해 개발되었습니다. 이 기술을 사용하면 각 PCR 양성 샘플에서 Leptospira의 반 정량화가 가능합니다. 이 프로토콜은 실온에서 NaOH 0.4M를 사용한 변성으로 구성되며, 6 x 106 to 1 x 104 leptospires에 해당하는 30ng - 0.05ng의 Leptospira DNA가 있는 샘플은 96웰 도트 블롯 장치를 사용하여 나일론 멤브레인에 블롯됩니다. 고정화 후 DNA는 120mJ 자외선에 노출되어 멤브레인에 결합됩니다. 각 DNA 프로브는 3' 말단에서 말단 전이효소 촉매 단계에 의해 digoxigenin-11 dUTP와 접합됩니다(Digoxigenin은 리포터41로 사용되는 Digitalis purpurea에서 얻은 식물 스테로이드입니다). 특정 온도에서 라벨링된 DNA 프로브(50 pmol)를 타겟 DNA에 엄격하게 혼성화한 후, DNA 하이브리드는 기질 CSPD와 공유 결합된 항-디고시게닌 알칼리 인산가수분해효소 항체와의 화학발광 반응에 의해 시각화됩니다. 발광은 X선 필름에 노출되어 캡처됩니다(그림 2).
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65435/65435fig02v2.jpg"> 그림 2: PCR-dot-blot assay를 위한 절차 단계. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65435/65435fig02largev2.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>REAGENTS</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Purelink DNA extraction kit</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>K182002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gotaq Flexi DNA Polimerase (End-Point PCR Taq polymerase kit)</td>
			<td>Promega</td>
			<td>M3001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Whatman filter paper, grade 1,</td>
			<td>Merk</td>
			<td>WHA1001325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nylon Membranes, positively charged Roll 30cm x 3 m</td>
			<td>Roche</td>
			<td>11417240001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-Digoxigenin-AP, Fab fragments Sheep Polyclonal Primary-antibody</td>
			<td>Roche</td>
			<td>11093274910</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medium Base EMJH</td>
			<td>Difco</td>
			<td>S1368JAA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leptospira Enrichment EMJH</td>
			<td>Difco</td>
			<td>BD 279510</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blocking Reagent</td>
			<td>Roche</td>
			<td>11096176001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CSPD ready to use Disodium 3-(4-methoxyspiro {1,2-dioxetane-3,2&#8242;-(5&#8242;-chloro) tricyclo [3.3.1.13,7] decan}8-4-yl) phenyl phosphate</td>
			<td>Merk</td>
			<td>11755633001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Deoxyribonucleic acid from herring sperm</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>D3159</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Developer Carestream</td>
			<td>Carestream Health Inc</td>
			<td>GBX5158621</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digoxigenin-11-ddUTP</td>
			<td>Roche</td>
			<td>11363905910</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EDTA, Disodium Salt (Dihydrate)</td>
			<td>Promega</td>
			<td>H5032</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ficoll 400</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F8016</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fixer Carestream</td>
			<td>Carestream Health Inc</td>
			<td>GBX 5158605</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lauryl sulfate Sodium Salt (Sodium dodecyl sulfate; SDS) C12H2504SNa</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>L5750</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N- Lauroylsarcosine sodium salt CH3(CH2)10CON(CH3) CH2COONa</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>L-9150</td>
			<td>It is an anionic surfactant</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polivinylpyrrolidone (PVP-40)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>PVP40</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylene glycol Sorbitan monolaurate (Tween 20)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>9005-64-5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Chloride (NaCl)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>7647-14-5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium dodecyl sulfate (SDS)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>151-21-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium hydroxide (NaOH)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>1310-73-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium phosphate dibasic (NaH2PO4)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>7558-79-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Terminal transferase, recombinant</td>
			<td>Roche</td>
			<td>3289869103</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris hydrochloride (Tris HCl)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>1185-53-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SSPE 20X</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S2015-1L</td>
			<td>It can be Home-made following Supplementary File 6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primers</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>On demand</td>
			<td>Follow table 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Probes</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>On demand</td>
			<td>Follow table 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nanodrop&#8482; One Spectrophotometer</td>
			<td>Thermo-Scientific</td>
			<td>ND-ONE-W</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Refrigerated microcentrifuge Sigma 1-14K, suitable for centrifugation of 1.5 ml microcentrifuge tubes at 14,000 rpm</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>1-14K</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disinfected adjustable pipettes, range 2-20 &#181;l, 20-200 &#181;l</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>SKU:F167360</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable 1.5 ml microcentrifuge tubes (autoclaved)</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>MCT-150-SP</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable 600 &#181;l microcentrifuge tubes (autoclaved)</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>3208</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable Pipette tips 1-10 &#181;l</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>T-300</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable Pipette tips 1-200 &#181;l</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>TR-222-Y</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dot-Blot apparatus Bio-Dot</td>
			<td>BIORAD</td>
			<td>1706545</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Portable Hergom Suction</td>
			<td>Hergom</td>
			<td>7E-A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scientific Light Box (Visible-light PH90-115V)</td>
			<td>Hoefer</td>
			<td>PH90-115V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UV Crosslinker</td>
			<td>Hoefer</td>
			<td>UVC-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Hybaid PCR Express Thermocycler</td>
			<td>Hybaid</td>
			<td>HBPX110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Radiographic cassette with IP Plate14 X 17</td>
			<td>Fuji</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

polymerase chain reaction and dot-blot hybridization for leptospira detection in water samples

도트 블롯은 운반체 DNA가 있는 상태에서 프로브 교잡에 의해 특이적으로 표적이 되는 최소한의 DNA를 식별할 수 있는 간단하고 빠르며 민감하고 다재다능한 기술입니다. 이는 알려진 양의 DNA를 나일론 멤브레인과 같은 불활성 고체 지지체에 전달하여 도트 블롯 장치를 사용하고 전기 영동 분리 없이 수행하는 것을 기반으로 합니다. 나일론 멤브레인은 높은 핵산 결합력(400 μg/cm2), 고강도의 장점이 있으며 양전하 또는 중성으로 대전됩니다. 사용된 프로브는 디곡시게닌(digoxigenin, DIG)으로 길게 표지된 18-20개의 염기로 구성된 매우 특이적인 ssDNA 단편입니다. 프로브는 렙토스피라 DNA와 결합합니다. 프로브가 표적 DNA와 하이브리드화되면 항-디고시제닌 항체에 의해 검출되어 X선 필름에 드러난 방출을 통해 쉽게 검출할 수 있습니다. 방출이 있는 점은 관심 DNA 조각에 해당합니다. 이 방법은 프로브의 비동위원소 라벨링을 사용하며, 이는 매우 긴 반감기를 가질 수 있습니다. 이 표준 면역 표지의 단점은 동위원소 프로브보다 민감도가 낮다는 것입니다. 그럼에도 불구하고 중합효소 연쇄 반응(PCR)과 도트 블롯 분석을 결합하여 완화됩니다. 이 접근 방식을 통해 표적 염기서열과 검출을 강화할 수 있습니다. 또한, 잘 알려진 표준물질의 연속 희석과 비교할 때 정량적 응용 분야로 사용될 수 있습니다. 물 샘플의 세 가지 주요 clades에서 Leptospira 를 검출하기 위한 dot-blot 응용 프로그램이 여기에 제시되어 있습니다. 이 방법론은 렙토스피나선형 DNA의 존재에 대한 증거를 제공하기 위해 원심분리에 의해 농축된 많은 양의 물에 적용할 수 있습니다. 이것은 일반적인 스크리닝 목적을 위한 가치 있고 만족스러운 도구이며, 물에 존재할 수 있는 다른 배양 불가능한 박테리아에 사용할 수 있어 생태계에 대한 이해를 높일 수 있습니다.

Leptospirosis in humans mainly originates from environmental sources1,2. The presence of Leptospira in lakes, rivers, and streams is an indicator of leptospirosis transmission among wildlife, and domestic and production animals that may eventually come into contact with these bodies of water1,3,4. Furthermore, Leptospira has been identified in non-natural sources, including sewage, stagnant and tap water5,6.
Leptospira is a worldwide distributed bacteria7,8, and the role of the environment in its preservation and transmission has been well recognized. Leptospira can survive in drinking water under variable pH and minerals9, and in natural bodies of water1. It can also survive for long periods in distilled water10, and under constant pH (7.8), it may survive up to 152 days11. Moreover, Leptospira may interact in bacterial consortiums to survive harsh conditions12,13.&#160;It may be part of biofilms in freshwater with Azospirillum and Sphingomonas and is even capable of growing and enduring temperatures exceeding 49 &#176;C14,15. It can also multiply in waterlogged soil and remain viable for up to 379 days16, preserving its ability to cause the disease for as long as a year17,18. However, little is known about the ecology within water bodies and how it is distributed within them.
Since its discovery, the study of the genus Leptospira was based on serological tests. It was not until the current century that molecular techniques became more prevalent in the study of this spirochaete. The dot-blot has been scarcely used for its identification using (1) an isotopic probe based on the 16S rRNA and on an inter-simple sequence repeat (ISSR)19,20, (2) as a nanogold based immunoassay for human leptospirosis applied to urine21, or (3) as an antibody-based assay for bovine urine samples22. The technique fell in disuse because it was originally based on isotopic probes. However, it is a well-known technique that, coupled with PCR, yields enhanced results, and it is considered safe due to the use of non-isotopic probes. PCR plays a crucial role in the enrichment of the Leptospira DNA by amplifying a specific DNA fragment that may be found in trace amounts in a sample. During each PCR cycle, the amount of the targeted DNA fragment is doubled in the reaction. At the end of the reaction, the amplicon has been multiplied by a factor of more than a million23. The product amplified by PCR, often not visible in agarose electrophoresis, becomes visible through specific hybridization with a DIG-labeled probe in the dot-blot24,25,26.
The dot-blot technique is simple, robust, and suitable for numerous samples, making it accessible to laboratories with limited resources. It has been employed in a variety of bacteria studies, including (1) oral bacteria27, (2) other sample types such as food and feces28, and (3) the identification of unculturable bacteria29, often in agreement with other molecular techniques. Among the advantages offered by the dot-blot technique are: (1) The membrane has a high binding capacity, capable of binding over 200 &#956;g/cm2 of nucleic acids and up to 400 &#956;g/cm2; (2) Dot-blot results can be visually interpreted without requiring special equipment, and (3) they can be conveniently stored for years at room temperature (RT).
The genus Leptospira has been classified into pathogenic, intermediate, and saprophytic clades30,31. The distinction among these clades can be achieved based on specific genes such as lipL41, lipL32, and the 16S&#160;rRNA. LipL32 is present in the pathogenic clades and exhibits high sensitivity in various serological and molecular tools, whereas it is absent in saprophyte species21. The housekeeping gene lipL41 is&#160;known for its stable expression and used in molecular techniques32, while the 16S&#160;rRNA gene is utilized for their classification.
This methodology can be applied to large volumes of water once they have been concentrated by centrifugation. It allows the assessment of various points and depths within a water body to detect the presence of leptospiral DNA and the clade to which it belongs. This tool is valuable for both ecological and general screening purposes and can also be employed to detect other non-culturable bacteria that may be present in water.
Additionally, PCR and dot-blot assays are technically and economically affordable to a wide range of laboratories, even those lacking sophisticated or expensive equipment. This study aims to apply the digoxigenin-based dot-blot for the identification of the three Leptospira clades in water samples collected from natural bodies of water.
Bacterial strains 
Twelve Leptospira serovars (Autumnalis, Bataviae, Bratislava, Canicola, Celledoni, Grippothyphosa, Hardjoprajitno, Icterohaemorrhagiae, Pomona, Pyrogenes, Tarassovi, and Wolffi) were included in this study. These serovars are part of the collection at the Department of Microbiology and Immunology, Faculty of Veterinary Medicine and Zootechnics, National Autonomous University of Mexico,&#160;and they are currently used in the microagglutination test (MAT).
All Leptospira serovars were cultured in EMJH, and their DNA was extracted using a commercial DNA extraction kit (see Table of Materials). A genomic DNA mix of the twelve serovars was used as a positive control for the Leptospira pathogenic clade. As a positive control of the Leptospira intermediate clade, genomic DNA from Leptospira fainei serovar Hurstbridge strain BUT6 was included, and as a positive control for the Leptospira saprophyte clade, genomic DNA of Leptospira biflexa serovar Patoc strain Patoc I, was also included.
Negative controls consisted of an empty plasmid, DNA from non-related bacteria (Ureaplasma urealyticum, Staphylococcus aureus, Brucella abortus, Salmonella typhimurium, Shigella boydii, Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, and Escherichia coli), and PCR-grade water, which served as non-template control.
Water samples 
Twelve trial grab samples were collected using a stratified-haphazard sampling method from the Cuemanco Biological and Aquaculture Research Center (CIBAC) (19&#176; 16&#39; 54&#34; N 99&#176; 6&#39; 11&#34; W). These samples were obtained at three depths: superficial, 10, and 30 cm (Figure 1A, B). The water collection procedures did not impact any endangered or protected species. Each sample was collected in a sterile 15 mL microcentrifuge tube. To collect the sample, each tube was gently submerged in the water, filled at the selected depth, and then sealed. The samples were maintained at 22 &#176;C and promptly transported to the laboratory for processing.
Each sample was concentrated by centrifugation in sterile 1.5 mL microcentrifuge tubes at 8000 x g for 20 min at room temperature. This step was repeated until all the samples were concentrated into one tube, which was then used for DNA extraction (Figure 1C).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65435/65435fig01v2.jpg" /> 
Figure 1: Concentration of water samples by centrifugation. (A) Water sampling ponds, and (B) Natural streams. (C) Centrifugation-based water sample processing in repeated steps as many times as needed (n). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65435/65435fig01largev2.jpg" target="_blank">Please click here to view a larger version of this figure.</a>
DNA extraction 
Total DNA was isolated using a commercial Genomic DNA kit according to the manufacturer&#39;s instructions (see Table of Materials). DNA extractions were eluted in 20 &#181;L of elution buffer, and DNA concentration was determined by a UV Spectrophotometer at 260-280 nm, and stored at 4 &#176;C until use.
PCR amplification 
The PCR targets were the 16S rRNA, lipL41, and lipL32 genes, which identify DNA from the genus Leptospira and allow the distinction among the three clades: pathogenic, saprophytic, and intermediate. Both primers and probe designs were based on the previous works by Ahmed et al., Azali et al., Bourhy et al., Weiss et al., and Branger et al.33,34,35,36,37. The sequence of each probe, primer, and amplified fragment are described in Table 1, and their alignment with reference sequences are provided in Supplementary File 1, Supplementary File 2, Supplementary File 3, Supplementary File 4, and Supplementary File 5. The PCR reagents and thermocycling conditions are described in the protocol section.
Amplification products were visualized by electrophoretic separation on a 1% agarose gel in TAE (40 mM Tris base, 20 mM Acetic acid, and 1 mM EDTA; pH 8.3), at 60 V for 45 min with ethidium-bromide detection, as shown in Supplementary Figure 1. Genomic DNA obtained from each serovar was used with concentrations ranging from 6 x 106 to 1 x 104 genomic equivalent copies (GEq) in each PCR reaction, based on the genome size of L. interrogans (4, 691, 184 bp)38 for pathogenic Leptospira, the genome size of L. biflexa (3, 956, 088 bp)39 for saprophytic Leptospira, and the genome size of L. fainei serovar Hurstbridge strain BUT6 (4, 267, 324 bp) with accession number AKWZ00000000.2.
The sensitivity of the probes was assessed with DNA from each pathogenic serovar, L. biflexa serovar Patoc strain Patoc I, and L. fainei serovar Hurstbridge strain BUT6 in each experiment. To assess the specificity of the PCR and dot-blot hybridization assay, DNA from non-related bacteria was included.
Table 1: PCR primers and probes to amplify products for identifying the pathogenic, saprophyte, and intermediate clades of Leptospira. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65435/TABLE_1_ 7th_PR_ EMCC.xlsx" target="_blank">Please click here to download this Table.</a>
Dot-blot hybridization assay 
The technique is called dot-blot because the holes in which the DNA sample is placed have a dot shape, and when they are sucked to be fixed in place by vacuum suction, they acquire this shape. This technique was developed by Kafatos et al.40. The technique allows the semi-quantification of Leptospira in each PCR-positive sample. The protocol consists of a denaturation with NaOH 0.4 M at room temperature, samples with Leptospira DNA from 30 ng to 0.05 ng, corresponding to 6 x 106 to 1 x 104 leptospires, are blotted onto a nylon membrane with a 96-well dot-blot apparatus. After immobilization, the DNA is bound to the membrane by exposure to 120 mJ UV light. Each DNA probe is conjugated with digoxigenin-11 dUTP by a terminal transferase catalysis step at the 3&#39; end (Digoxigenin is a plant steroid obtained from Digitalis purpurea, used&#160;as a reporter41). Following the stringent hybridization of the labeled DNA probe (50 pmol) at the specific temperature onto the target DNA, the DNA hybrids are visualized by the chemiluminescence reaction with the anti-digoxigenin alkaline phosphatase antibody covalently conjugated with its substrate CSPD. The luminescence is captured by exposure to an X-ray film (Figure 2).
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65435/65435fig02v2.jpg" /> 
Figure 2: Steps of the procedure for the PCR-dot-blot assay. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65435/65435fig02largev2.jpg" target="_blank">Please click here to view a larger version of this figure.</a>

저자 스포트라이트: 환경 분석 및 질병 감시를 위한 물에서 Leptospira DNA 검출

물 샘플에서 Leptospira 검출을 위한 중합효소 연쇄 반응 및 점-블롯 혼성화

This protocol is designed to identify the presence of Leptospira DNA in water samples. The dot-blot technique is utilized for this purpose, which enables accurate detection and analysis of the DNA. The dot-blot is an easy and versatile non-isotopic technique and may help to answer key questions about the environmental distribution of Leptospira.This method has the potential to assess huge water bodies and aid in disease surveillance.

이 기술의 효과를 평가하기 위해 각 Leptospira 혈청형의 순수 배양에서 얻은 게놈 DNA와 clade 특이적 프로브를 함께 사용했습니다. 멤브레인은 각 혈청형에 대해 PCR 반응당 100ng의 게놈 DNA로 제조한 후, 비관련 박테리아의 8개 게놈 DNA와 임시 렙토스피라 혈청형의 다양한 농도의 게놈 DNA로 제조했습니다. 각 분석에는 양성, 음성 및 비템플릿 대조군이 포함되었습니다. 이러한 비관련 게놈 ...

이 연구에서는 물 샘플의 세 가지 주요 clade에서 Leptospira 를 검출하도록 dot-blot 응용 프로그램을 설계했습니다. 이 방법을 사용하면 항-디곡시제닌 항체에 의해 쉽게 검출되는 디곡시제닌 표지 프로브에 의해 특이적으로 표적화된 최소 DNA 양을 식별할 수 있습니다. 이 접근 방식은 스크리닝 목적에 유용하고 만족스러운 도구입니다.

The dot-blot is a simple, fast, sensitive, and versatile technique that enables the identification of minimal quantities of DNA specifically targeted by ...

이 프로토콜은 물 샘플에서 렙토스피라 DNA의 존재를 식별하도록 설계되었습니다. 이를 위해 도트 블롯 기법이 사용되어 DNA를 정확하게 검출하고 분석할 수 있습니다. 도트 블롯은 쉽고 다재다능한 비동위원소 기법이며 렙토스피라의 환경 분포에 대한 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다.이 방법은 거대한 수역을 평가하고 질병 감시를 지원할 수 있는 잠재력이 있습니다.

polymerase-chain-reaction-dot-blot-hybridization-for-leptospira

Research

JoVE Journal

Biology

Polymerase Chain Reaction and Dot-Blot Hybridization for Leptospira Detection in Water Samples

The dot-blot is a simple, fast, sensitive, and versatile technique that enables the identification of minimal quantities of DNA specifically targeted by probe hybridization in the presence of carrier DNA. It is based on the transfer of a known amount of DNA onto an inert solid support, such as a nylon membrane, utilizing the dot-blot apparatus and without electrophoretic separation. Nylon membranes have the advantage of high nucleic acid binding capacity (400 &#181;g/cm2), high strength, and are positively or neutrally charged. The probe used is a highly specific ssDNA fragment of 18 to 20 bases long labeled with digoxigenin (DIG). The probe will conjugate with the Leptospira DNA. Once the probe has hybridized with the target DNA, it is detected by an anti-digoxigenin antibody, allowing its easy detection through its emissions revealed in an X-ray film. The dots with an emission will correspond to the DNA fragments of interest. This method employs the non-isotopic labeling of the probe, which may have a very long half-life. The drawback of this standard immuno-label is a lower sensitivity than isotopic probes. Nevertheless, it is mitigated by coupling polymerase chain reaction (PCR) and dot-blot assays. This approach enables the enrichment of the target sequence and its detection. Additionally, it may be used as a quantitative application when compared against a serial dilution of a well-known standard. A dot-blot application to detect Leptospira from the three main clades in water samples is presented here. This methodology can be applied to large amounts of water once they have been concentrated by centrifugation to provide evidence of the presence of Leptospiral DNA. This is a valuable and satisfactory tool for general screening purposes, and may be used for other non-culturable bacteria that may be present in water, enhancing the comprehension of the ecosystem.

In this study, a dot-blot application was designed to detect Leptospira from the three main clades in water samples. This method allows for the identification of minimal DNA quantities specifically targeted by a digoxigenin-labeled probe, easily detected by an anti-digoxigenin antibody. This approach is a valuable and satisfactory tool for screening purposes.