نود أن نعترف بجهود الدكتور ماري لو Vallano، قسم العلوم العصبية وعلم وظائف الأعضاء، على المدخلات لها قيمة في الكتابة لهذا المخطوط.

1. جراحة الفئران لSAH الموضوع حقنوا 0،15 مل الدم الشرياني ذاتي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الفأر هو تخدير باستخدام 0.1 مجم / كجم من الكيتامين كوكتيل القوارض / زيلازين ويسمح للجلوس لمدة 5 دقائق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وأكد التخدير الكافي من انخفاض في أطرافهم هند منعكس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام ماكينة حلاقة الإلكترونية وحلق لعنق الأنف مجال الشعر حول المنطقة الفرعية القذالي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم وضع الحيوان مستلق على طاولة الجراحة وممسوح الذيل مع betadine لضمان شق العقيمة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم أخذ مستقيم خط الوسط 1 سم على الجانب شق بطني من الذيل </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم توسيع تشريح حتى يتم التعرف على الشريان الذيل ومعزولة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام مقياس العقيمة 26-القسطرة، ومقنى الشريان الذيل ويتم سحب 0،15 مل من الدم الشرياني في حقنة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> واختتم شاش معقم حول شق لضمان الإرقاء قبل تطبيق vetbond لختم الجرح. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Tوهو تحول الفئران المعرضة على الطاولة ومنطقة حلق فوق منطقة شبه القذالي وممسوح مع betadine. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام العمودي الوصول شق خط الوسط لاكتساب ماجنا صهريج لل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم إدراج المحددة مرة واحدة في إبرة قياس 25 إلى ماجنا صهريج ويتم سحب 0،15 مل من السائل النخاعي في حقنة لتجنب الضغوط داخل الجمجمة مع زيادة حجم الدم حقن ذاتي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الآن، يتم حقن 0.15 مل من الدم المستخرج من الشريان الذيل ببطء إلى ماجنا صهريج لل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تبقى الإبرة في مكانها لمدة 30 ثانية لضمان تخثر في الفضاء تحت العنكبوتية ومن ثم سحب بعناية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وتكفل الإرقاء ويتم إغلاق الجرح باستخدام جهاز تدبيس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الآن يتم وضع الحيوان عرضة على سطح الاحترار مع رئيس 20 درجة أسفل المنصب لمدة 20 دقيقة للسماح لتحجر الدم في الشريان الصهاريج في جميع أنحاء القاعدي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وتتكرر الخطوات 1،1 حتي 1،15 خلال ساعة الثانية 48 عملية جراحية على حدة. </li&gt; </ol> 2. جراحة الفئران لSAH الموضوع حقنوا المالحة مل 0،15 <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الفأر هو تخدير باستخدام 0.1 مجم / كجم من الكيتامين كوكتيل القوارض / زيلازين ويسمح للجلوس لمدة 5 دقائق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وأكد التخدير الكافي من انخفاض في أطرافهم هند منعكس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام ماكينة حلاقة الإلكترونية وحلق لعنق الأنف مجال الشعر حول المنطقة الفرعية القذالي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم وضع الحيوان مستلق على طاولة الجراحة وممسوح الذيل مع betadine لضمان شق العقيمة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم أخذ مستقيم خط الوسط 1 سم على الجانب شق بطني من الذيل </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم توسيع تشريح حتى يتم التعرف على الشريان الذيل ومعزولة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام مقياس العقيمة 26-القسطرة، ومقنى الشريان الذيل ويتم سحب 0،15 مل من الدم الشرياني في حقنة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> واختتم شاش معقم حول شق لضمان الإرقاء قبل تطبيق vetbond لختم الجرح. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> رعيتم تشغيل ر عرضة على الطاولة ومنطقة حلق فوق منطقة شبه القذالي هي التي رسمت مع betadine. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام العمودي الوصول شق خط الوسط لاكتساب ماجنا صهريج لل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم إدراج المحددة مرة واحدة في إبرة قياس 25 إلى ماجنا صهريج ويتم سحب 0،15 مل من السائل النخاعي في حقنة ويتم تخزين العينة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الآن، يتم حقن 0.15 مل من المحلول الملحي العادي (37 ° C) ببطء في ماجنا صهريج لل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تبقى الإبرة في مكانها لمدة 30 ثانية وسحب بعناية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وتكفل الإرقاء ويتم إغلاق الجرح باستخدام جهاز تدبيس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الآن يتم وضع الحيوان عرضة على سطح الاحترار مع رئيس أسفل 20 درجة لمدة 20 دقيقة موقف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وتتكرر الخطوات 2،1 حتي 2،15 خلال ساعة الثانية 48 عملية جراحية على حدة. </li></ol> 3. الفئران النحر <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في يوم 5 بعد اجراء عملية جراحية ثانية، يتم التضحية الفئران عن طريق نضح القلب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم إعطاء الفئران جرعة قاتلة (00.2 مل / كجم) من زائد فادح (نوادي المضاربة والإستثمار PHARMACEUTICALS LTD.، ديربورن، MI) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مع شق خط الوسط الرأسي، واقترب من تجويف البطن ويتم فتح الغشاء البريتوني. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم تنفيذ بضع الصدر الأمامي ويتعرض القلب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام قسطرة قياس 26-متصلة الفوسفات العازلة الحل (PBS درجة الحموضة 7.4 وعلى درجة 37) يتم تصريف الدم من الحيوان وperfused ثم مع بارافورمالدهيد 4٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد التأكد من نضح كافية، يتم إيقاف نضح ويتم إحضارها على الفئران الى طاولة قطع الرأس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد قطع الرأس، يتم استخدام مقراض العظم لإزالة الجمجمة لإزالة الدماغ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم استخراج بعناية الدماغ والدماغ من الجمجمة قبو، ووضع في حل بارافورمالدهيد 4٪ وتخزينها في C ° 4 لمدة 48 ساعة. </li></ol> 4. إنشاء أقسام لتقييم بالتشنج <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم إحضارها الدماغ الفئران التي تم الآن غارقة في السكروز 30٪ لمدة 4 أيام إلى عشرةه ناظم البرد لتقطيع. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم إنشاء cryoprotected مرة واحدة، أقسام ميكرومتر 12 باستخدام ناظم البرد، مع الشريان الأمامي السفلي مخيخي (الأيكا) كنقطة انطلاق لضمان الاتساق بين الموضوع. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم إنشاء 20 من الأقسام لكل حيوان، وتنتهي في الشريان مخيخي فخمة (SCA). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم وضع الأقسام على شريحة زجاجية والمقررة لبالتشنج باستخدام منهجية النسيجية </li></ol>

<ol>
	<li>Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+blood+flow+and+cerebral+perfusion+pressure+in+a+new+noncraniotomy+model+of+subarachnoid+hemorrhage+in+the+rat.">Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat.</a> Stroke. 26, 1086-1091 (1995).</li><li>Cheng, G., Wei, L., Zhi-Dan, S., Shi-Guang, Z., Xiang-Zhen, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Atorvastatin+ameliorates+cerebral+vasospasm+and+early+brain+injury+after+subarachnoid+hemorrhage+and+inhibits+caspase-dependent+apoptosis+pathway.">Atorvastatin ameliorates cerebral vasospasm and early brain injury after subarachnoid hemorrhage and inhibits caspase-dependent apoptosis pathway.</a> BMC Neurosci. 10, 7-17 (2009).</li><li>Jackowski, A., Crockard, A., Burnstock, G., Russell, R. R., Kristek, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+time+course+of+intracranial+pathophysiological+changes+following+experimental+subarachnoid+hemorrhage+in+the+rat.">The time course of intracranial pathophysiological changes following experimental subarachnoid hemorrhage in the rat.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 10, 835-849 (1990).</li><li>Kaoutzanis, M., Yokota, M., Sibilia, R., Peterson, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurologic+evaluation+in+a+canine+model+of+single+and+double+subarachnoid+hemorrhage.">Neurologic evaluation in a canine model of single and double subarachnoid hemorrhage.</a> J. Neurosci. Methods. 50, 301-307 (1993).</li><li>Karaoglan, A., Akdemir, O., Barut, S., Kokturk, S., Uzun, H., Tasyurekli, M., Colak, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+resveratrol+on+vasospasm+after+experimental+subarachnoid+hemorrhage+in+rats.">The effects of resveratrol on vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage in rats.</a> Surg. Neurol. 70, 337-343 (2008).</li><li>Lee, J. Y., Huang, D. L., Keep, R., Sagher, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+an+improved+double+hemorrhage+rat+model+for+the+study+of+delayed+cerebral+vasospasm.">Characterization of an improved double hemorrhage rat model for the study of delayed cerebral vasospasm.</a> J. Neurosci. Methods. 168, 358-366 (2008).</li><li>Lee, J. Y., Sagher, O., Keep, R., Hua, Y., Xi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+experimental+rat+models+of+early+brain+injury+after+subarachnoid+hemorrhage.">Comparison of experimental rat models of early brain injury after subarachnoid hemorrhage.</a> Neurosurgery. 65 (2), 331-343 (2009).</li><li>Megyesi, J. F., Vollrath, B., Cook, D. A., Findlay, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+animal+models+of+cerebral+vasospasm:+a+review.">In vivo animal models of cerebral vasospasm: a review.</a> Neurosurgery. 46, 448-460 (2000).</li><li>Prunell, G. F., Mathiesen, T., Diemer, N. H., Svendgaard, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+subarachnoid+hemorrhage:+Subarachnoid+blood+volume,+mortality+rate,+neuronal+death,+cerebral+blood+flow,+and+perfusion+pressure+in+three+different+rat+models.">Experimental subarachnoid hemorrhage: Subarachnoid blood volume, mortality rate, neuronal death, cerebral blood flow, and perfusion pressure in three different rat models.</a> Neurosurgery. 52, 165-176 (2003).</li><li>Prunell, G. F., Mathiesen, T., Svendgaard, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+subarachnoid+hemorrhage:+Cerebral+blood+flow+and+brain+metabolism+during+the+acute+phase+in+three+different+models+in+the+rat.">Experimental subarachnoid hemorrhage: Cerebral blood flow and brain metabolism during the acute phase in three different models in the rat.</a> Neurosurgery. 54, 426-436 (2004).</li><li>Ryba, M. S., Gordon-Krajcer, W., Walski, M., Chalimoniuk, M., Chrapusta, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hydroxylamine+attenuates+the+effects+of+simulated+subarachnoid+hemorrhage:+implication+for+the+role+of+oxidative+stress+in+cerebral+vasospasm.">Hydroxylamine attenuates the effects of simulated subarachnoid hemorrhage: implication for the role of oxidative stress in cerebral vasospasm.</a> Neurol. Res. 31, 195-199 (1999).</li><li>Satoh, M., Parent, A. D., Zhang, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inhibitory+effect+with+antisense+mitogen-activated+protein+kinase+oligodeoxynucleotide+against+cerebral+vasospasm+in+rats.">Inhibitory effect with antisense mitogen-activated protein kinase oligodeoxynucleotide against cerebral vasospasm in rats.</a> Stroke. 33, 775-781 (2002).</li><li>Suzuki, H., Kanamaru, K., Tsunoda, H., Inada, H., Kuroki, M., Sun, H., Waga, S., Tanaka, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heme+oxygenase-1+gene+induction+as+an+intrinsic+regulation+against+delayed+cerebral+vasospasm+in+rats.">Heme oxygenase-1 gene induction as an intrinsic regulation against delayed cerebral vasospasm in rats.</a> J. Clin. Invest. 104, 59-66 (1999).</li><li>Swift, D. M., Solomon, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subarachnoid+hemorrhage+fails+to+produce+vasculopathy+or+chronic+blood+flow+changes+in+rats.">Subarachnoid hemorrhage fails to produce vasculopathy or chronic blood flow changes in rats.</a> Stroke. 19, 878-882 (1988).</li><li>Vatter, H., Weidauer, S., Konczalla, J., Dettmann, E., Zimmermann, M., Raabe, A., Preibisch, C., Zanella, F., Seifert, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time+course+in+the+development+of+cerebral+vasospasm+after+experimental+subarachnoid+hemorrhage:+clinical+and+neuroradiological+assessment+of+the+rat+double+hemorrhage+model.">Time course in the development of cerebral vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage: clinical and neuroradiological assessment of the rat double hemorrhage model.</a> Neurosurgery. 58, 1190-1197 (2006).</li><li>Veelken, J. A., Laing, R. J., Jakubowski, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Sheffield+model+of+subarachnoid+hemorrhage+in+rats.">The Sheffield model of subarachnoid hemorrhage in rats.</a> Stroke. 26, 1279-1283 (1995).</li><li>Zubkov, A. Y., Nanda, A., Zhang, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Signal+transduction+pathways+in+cerebral+vasospasm.">Signal transduction pathways in cerebral vasospasm.</a> Pathophysiology. 9, 47-61 (2003).</li></ol>

ليس لدينا شيء في الكشف عن هذه الدراسة المتعلقة.

الرئيسيات، وجود أكثر تكوين مماثلة الوراثية والخصائص التشريحية للإنسان، بشكل وثيق تقليد أحداث بالتشنج الدماغي وتأخر بسهولة أكبر الخضوع غير الغازية التصوير (MRI وتصوير الأوعية) لمراقبة التغييرات في الشرايين، من القوارض 8. ومع ذلك، ونماذج الرئيسيات من حيث التكلف?...

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> اسم المعدات / كاشف </td><td> شركة </td><td> كتالوج رقم </td></tr><tr><td> ذكر الفئران SD (250-300 ز) </td><td> تاكونيك </td><td> SD-M </td></tr><tr><td> القسطرات 26 G </td><td> ويبستر </td><td> 8416683 </td></tr><tr><td> 25 إبر G </td><td> جاموس </td><td> 305122 </td></tr><tr><td> المحاقن سم مكعب 1 </td><td> المخازن المركزية </td><td> 54245 </td></tr><tr><td> الكيتامين / زيلازين كوكتيل </td><td> رعاية الحيوان (SUNY) * </td><td> - </td></tr><tr><td> Betadine </td><td> المخازن المركزية </td><td> 51458 </td></tr><tr><td> سكر القصب </td><td> سيجما </td><td> S9378-1KG </td></tr><tr><td> بارافورمالدهيد </td><td> سيجما </td><td> P6148-500G </td></tr><tr><td> الفوسفات العازلة الحل </td><td> الصياد </td><td> BP-399-4 </td></tr><tr><td> الجدول الجراحية </td><td> هارفارد </td><td> PY2 72-2590 </td></tr><tr><td> مجمع أكتوبر (cryoprotection) </td><td> VWR </td><td> 25608-930 </td></tr><tr><td> الشرائح Superfrost </td><td> الصياد </td><td> 12-550-15 </td></tr></tbody></table> * تجميعي في قسم رعاية الحيوان المعملية، جامعة ولاية نيويورك شمالي ولاية الطبية الجامعة. إضافة 1 سم مكعب [100 ملغ / مل] من زيلازين إلى 10 مل [100 ملغ / مل] من الكيتامين.

a low mortality rat model to assess delayed cerebral vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage

الهدف: تحديد الخصائص ووضع نموذج يمكن استنساخه تشنج وعائي دماغي الذي يوضح تأخر بعد نزيف تحت العنكبوتية أم الدم (SAH) في الفئران، من أجل تحديد بدء الأحداث، والتغيرات المرضية في جسم المريض والأهداف المحتملة لتلقي العلاج. تم تعيين تعسفا إلى واحدة من مجموعتين - ثمانية وعشرون من الذكور سبراغ داولي الفئران (300 ز 250) - SAH أو السيطرة المالحة: طرق. كان بفعل الجرذان نزيف تحت العنكبوتية SAH في المجموعة (ن = 15) عن طريق الحقن المزدوج من الدم الذاتي، 48 ساعة على حدة، في صهريج للماجنا. تم حقن وبالمثل، ملحي (ن = 13) في ماجنا صهريج للمن السيطرة على المجموعة المالحة. تمت التضحية الفئران في اليوم الخامس بعد الحقن الثاني والدم والحفاظ على العقول للتحليل النسيجي. وقد تم قياس درجة بالتشنج باستخدام مقاطع من الشريان القاعدي، عن طريق قياس اللمعية عبر منطقة الداخلية باستخدام قطاعات NIH-J صورة البرنامج. كان مغزىاختبار توكي باستخدام / كرامر &#39;ق التحليل الإحصائي. النتائج: بعد تحليل المقاطع النسيجية، الشريان القاعدي المنطقة عبر اللمعية قطاعات كانت أصغر في SAH من المياه المالحة في المجموعة، بما يتفق مع تشنج وعائي دماغي في المجموعة الأولى. في المجموعة SAH، كانت منطقة الشريان القاعدي الداخلي (0.056 ميكرون ± 3) أصغر بكثير من بالتشنج بعد خمسة أيام من الحقن بالدم الثانية (سبعة أيام بعد الحقن الدم الأولي)، مقارنة مع مجموعة التحكم المالحة مع منطقة الداخلية (0،069 ± 3، P = 0.004). لم تكن هناك وفيات من تشنج وعائي دماغي. الاستنتاج: نموذج الفئران SAH مزدوجة يدفع، النجاة خفيفة، بالتشنج الشريان القاعدي التي يمكن استخدامها لدراسة آليات المرضية في جسم المريض من تشنج وعائي دماغي في نموذج حيوان صغير. A معدل وفيات منخفضة ومقبولة هو معيار هام ليكون راضيا عن نموذج مثالي الحيوان بحيث SAH آليات بالتشنج يمكن أن يكون elucidated 7 و 8. ويمكن إجراء المزيد من التعديلات لنموذج لضبط شدة زيادة بالتشنج والعصبية الامتحانات.

ضمن البروتوكولات المذكورة أعلاه، هناك العديد من الخطوات التي نعتقد أنها تتطلب أفضل توصيف للنموذج من ما وصف سابقا في الأدب. هنا علينا أن نركز على الخطوات التي لا غنى عنها من أجل تحقيق استنساخه وفيات منخفضة الدماغي نموذج بالتشنج الحيوانات الصغيرة وتجنب المزالق المحتم...

Watch this Scientific Journal Video about A Low Mortality Rat Model to Assess Delayed Cerebral Vasospasm After Experimental Subarachnoid Hemorrhage at JoVE.com

A Low Mortality Rat Model to Assess Delayed Cerebral Vasospasm After Experimental Subarachnoid Hemorrhage

أم الدم نزيف تحت العنكبوتية (SAH) والذي يحدث نزيف في الفضاء تحت العنكبوتية عندما تمزق تمدد الأوعية الدموية. في حين كانت معدلات الاعتلال والوفيات من هذا الحدث على انخفاض بسبب النهج تحسين العلاج، وخطر بالتشنج بعد نزيف تحت العنكبوتية لا يزال هو نفسه كما كان قبل عدة سنوات. كانت أهمية إنشاء نموذج حيواني شاملة وقابلة للتكرار لتحديد بدء الأحداث من تشنج وعائي دماغي محور البحوث منذ أول استخدام للالفئران في نموذج بالتشنج التجريبية في عام 1979 من قبل باري<em&gt; وآخرون.</em&gt; العمل في وقت مبكر في الفئران أظهرت أن حقنة واحدة من الدم الذاتي في ماجنا صهريج وأدى إلى الحادة (في غضون دقائق)، ولكن لا تتأخر بالتشنج الدماغي<sup&gt; 3، 6، 14</sup&gt;. نحن هنا تميز انخفاض معدل وفيات الفئران SAH نموذج الذي يؤدي إلى تشنج وعائي تأخر استنساخه.

A فأر معدل وفيات منخفض الموديل بالتشنج الدماغي لتقييم تأخر بعد نزيف تحت العنكبوتية التجريبية

Objective: To characterize and establish a reproducible model that demonstrates delayed cerebral vasospasm after aneurysmal subarachnoid hemorrhage (SAH) ...

a-low-mortality-rat-model-to-assess-delayed-cerebral-vasospasm-after

Research

JoVE Journal

Medicine

14.2K Views.  SUNY Upstate Medical University. أم الدم نزيف تحت العنكبوتية (SAH) والذي يحدث نزيف في الفضاء تحت العنكبوتية عندما تمزق تمدد الأوعية الدموية. في حين كانت معدلات الاعتلال والوفيات من هذا الحدث على انخفاض بسبب النهج تحسين العلاج، وخطر بالتشنج بعد نزيف تحت العنكبوتية لا يزال هو نفسه كما كان قبل عدة س?...

Video: A Low Mortality Rat Model to Assess Delayed Cerebral Vasospasm After Experimental Subarachnoid Hemorrhage

Modeling Stroke in Mice - Middle Cerebral Artery Occlusion with the Filament Model

Stroke is among the most frequent causes of death and adult disability, especially in highly developed countries. However, treatment options to date are very limited. To meet the need for novel therapeutic approaches, experimental stroke research frequently employs rodent models of focal cerebral ischaemia. Most researchers use permanent or transient occlusion of the middle cerebral artery (MCA) in mice or rats.
Proximal occlusion of the middle cerebral artery (MCA) via the intraluminal suture technique (so called filament or suture model) is probably the most frequently used model in experimental stroke research. The intraluminal MCAO model offers the advantage of inducing reproducible transient or permanent ischaemia of the MCA territory in a relatively non-invasive manner. Intraluminal approaches interrupt the blood flow of the entire territory of this artery. Filament occlusion thus arrests flow proximal to the lenticulo-striate arteries, which supply the basal ganglia. Filament occlusion of the MCA results in reproducible lesions in the cortex and striatum and can be either permanent or transient. In contrast, models inducing distal (to the branching of the lenticulo-striate arteries) MCA occlusion typically spare the striatum and primarily involve the neocortex. In addition these models do require craniectomy. In the model demonstrated in this article, a silicon coated filament is introduced into the common carotid artery and advanced along the internal carotid artery into the Circle of Willis, where it blocks the origin of the middle cerebral artery. In patients, occlusions of the middle cerebral artery are among the most common causes of ischaemic stroke. Since varying ischemic intervals can be chosen freely in this model depending on the time point of reperfusion, ischaemic lesions with varying degrees of severity can be produced. Reperfusion by removal of the occluding filament at least partially models the restoration of blood flow after spontaneous or therapeutic (tPA) lysis of a thromboembolic clot in humans.
In this video we will present the basic technique as well as the major pitfalls and confounders which may limit the predictive value of this model.

Filamentous occlusion of the Middle cerebral artery is a common model for studying ischemic stroke in mice.

السكتة الدماغية النمذجة في الفئران -- الشرق انسداد الشريان الدماغي مع نموذج الشعيرة

Stroke is among the most frequent causes of death and adult disability, especially in highly developed countries. However, treatment options to date are ...

Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

The number of patients with end-stage renal disease, and the number of kidney allograft recipients continuously increases. Episodes of acute cellular allograft rejection (AR) are a negative prognostic factor for long-term allograft survival, and its timely diagnosis is crucial for allograft function 1. At present, AR can only be definitely diagnosed by core-needle biopsy, which, as an invasive method, bares significant risk of graft injury or even loss. Moreover, biopsies are not feasible in patients taking anticoagulant drugs and the limited sampling site of this technique may result in false negative results if the AR is focal or patchy. As a consequence, this gave rise to an ongoing search for new AR detection methods, which often has to be done in animals including the use of various transplantation models.
Since the early 60s rat renal transplantation is a well-established experimental method for the examination and analysis of AR 2. We herein present in addition small animal positron emission tomography (PET) using 18F-fluorodeoxyglucose (FDG) to assess AR in an allogeneic uninephrectomized rat renal transplantation model and propose graft FDG-PET imaging as a new option for a non-invasive, specific and early diagnosis of AR also for the human situation 3. Further, this method can be applied for follow-up to improve monitoring of transplant rejection 4.

Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

We herein present a rat renal transplantation model to non-invasively assess acute allograft rejection using positron emission tomography with 18F-fluorodeoxyglucose.

التصوير غير الغازية الحاد رفض طعم خيفي بعد الجرذ زراعة الكلى عن طريق<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG PET

The number of patients with end-stage renal  disease, and the number of kidney allograft recipients continuously increases.  Episodes of acute cellular ...

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as studies on graft preservation and ischemia-reperfusion injury 1,2, immunological responses 3,4, hemodynamics 5,6, and small-for-size syndrome 7. The rat OLT is among the most difficult animal models in experimental surgery and demands advanced microsurgical skills that take a long time to learn. Consequently, the use of this model has been limited. Since the reliability and reproducibility of results are key components of the experiments in which such complex animal models are used, it is essential for surgeons who are involved in rat OLT to be trained in well-standardized and sophisticated procedures for this model.
While various techniques and modifications of OLT in rats have been reported 8 since the first model was described by Lee et al. 9 in 1973, the elimination of the hepatic arterial reconstruction 10 and the introduction of the cuff anastomosis technique by Kamada et al. 11 were a major advancement in this model, because they simplified the reconstruction procedures to a great degree. In the model by Kamada et al., the hepatic rearterialization was also eliminated. Since rats could survive without hepatic arterial flow after liver transplantation, there was considerable controversy over the value of hepatic arterialization. However, the physiological superiority of the arterialized model has been increasingly acknowledged, especially in terms of preserving the bile duct system 8,12 and the liver integrity 8,13,14.
In this article, we present detailed surgical procedures for a rat model of OLT with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft after ex vivo liver resection. The reconstruction procedures for each vessel and the bile duct are performed by the following methods: a 7-0 polypropylene continuous suture for the supra- and infrahepatic vena cava; a cuff technique for the portal vein; and a stent technique for the hepatic artery and the bile duct.

Orthotopic liver transplantation in rats is an indispensable experimental model for biomedical research. Here we present our surgical procedures for orthotopic rat liver transplantation with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft.

العمليات الجراحية لنموذج الفئران من الجزئي زرع الكبد orthotopic مع إعادة الإعمار الكبدي الشرياني

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

Optimized System for Cerebral Perfusion Monitoring in the Rat Stroke Model of Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusion

The translational potential of pre-clinical stroke research depends on the accuracy of experimental modeling. Cerebral perfusion monitoring in animal models of acute ischemic stroke allows to confirm successful arterial occlusion and exclude subarachnoid hemorrhage. Cerebral perfusion monitoring can also be used to study intracranial collateral circulation, which is emerging as a powerful determinant of stroke outcome and a possible therapeutic target. Despite a recognized role of Laser Doppler perfusion monitoring as part of the current guidelines for experimental cerebral ischemia, a number of technical difficulties exist that limit its widespread use. One of the major issues is obtaining a secure and prolonged attachment of a deep-penetration Laser Doppler probe to the animal skull. In this video, we show our optimized system for cerebral perfusion monitoring during transient middle cerebral artery occlusion by intraluminal filament in the rat. We developed in-house a simple method to obtain a custom made holder for twin-fibre (deep-penetration) Laser Doppler probes, which allow multi-site monitoring if needed. A continuous and prolonged monitoring of cerebral perfusion could easily be obtained over the intact skull.

Cerebral perfusion monitoring has been demonstrated to improve accuracy in ischemic stroke models. Technical difficulties often limit the use of this essential tool for cerebrovascular research. In this video, an optimized system is shown to obtain a single or multi-site hemodynamic monitoring during intraluminal middle cerebral artery occlusion in rats.

الأمثل نظام لرصد الإرواء الدماغي في نموذج الفئران من السكتة الدماغية داخل اللمعة انسداد الشريان الدماغي الأوسط

The translational potential of pre-clinical stroke research depends on the accuracy of experimental modeling. Cerebral perfusion monitoring in animal ...

A Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

In this video publication a standardized mouse model of subarachnoid hemorrhage (SAH) is presented. Bleeding is induced by endovascular Circle of Willis perforation (CWp) and proven by intracranial pressure (ICP) monitoring. Thereby a homogenous blood distribution in subarachnoid spaces surrounding the arterial circulation and cerebellar fissures is achieved. Animal physiology is maintained by intubation, mechanical ventilation, and continuous on-line monitoring of various physiological and cardiovascular parameters: body temperature, systemic blood pressure, heart rate, and hemoglobin saturation. Thereby the cerebral perfusion pressure can be tightly monitored resulting in a less variable volume of extravasated blood. This allows a better standardization of endovascular filament perforation in mice and makes the whole model highly reproducible. Thus it is readily available for pharmacological and pathophysiological studies in wild type and genetically altered mice.

A standardized mouse model of subarachnoid hemorrhage by intraluminal Circle of Willis perforation is described. Vessel perforation and subarachnoid bleeding are monitored by intracranial pressure monitoring. In addition various vital parameters are recorded and controlled to maintain physiologic conditions.

A نموذج من الفئران تحت العنكبوتية نزف

In this video publication a standardized mouse model of subarachnoid  hemorrhage (SAH) is presented. Bleeding is induced by endovascular Circle of  Willis ...

The Rabbit Blood-shunt Model for the Study of Acute and Late Sequelae of Subarachnoid Hemorrhage: Technical Aspects

Early brain injury and delayed cerebral vasospasm both contribute to unfavorable outcomes after subarachnoid hemorrhage (SAH). Reproducible and controllable animal models that simulate both conditions are presently uncommon. Therefore, new models are needed in order to mimic human pathophysiological conditions resulting from SAH.
This report describes the technical nuances of a rabbit blood-shunt SAH model that enables control of intracerebral pressure (ICP). An extracorporeal shunt is placed between the arterial system and the subarachnoid space, which enables examiner-independent SAH in a closed cranium. Step-by-step procedural instructions and necessary equipment are described, as well as technical considerations to produce the model with minimal mortality and morbidity. Important details required for successful surgical creation of this robust, simple and consistent ICP-controlled SAH rabbit model are described.

The experimental intracranial pressure-controlled blood shunt subarachnoid hemorrhage (SAH) model in the rabbit combines the standard procedures &#8212; subclavian artery cannulation and transcutaneous cisterna magna puncture, which enables close mimicking of human pathophysiological conditions after SAH. We present step-by-step instructions and discuss key surgical points for successful experimental SAH creation.

الأرنب نموذج الدم تحويلة لدراسة الحاد وعقابيل في وقت متأخر نزيف تحت العنكبوتية: الجوانب التقنية

Early brain injury and delayed cerebral vasospasm both contribute to unfavorable outcomes after subarachnoid hemorrhage (SAH). Reproducible and ...

Leprdb Mouse Model of Type 2 Diabetes: Pancreatic Islet Isolation and Live-cell 2-Photon Imaging Of Intact Islets

Type 2 diabetes is a chronic disease affecting 382 million people in 2013, and is expected to rise to 592 million by 2035 1. During the past 2 decades, the role of beta-cell dysfunction in type 2 diabetes has been clearly established 2. Research progress has required methods for the isolation of pancreatic islets. The protocol of the islet isolation presented here shares many common steps with protocols from other groups, with some modifications to improve the yield and quality of isolated islets from both the wild type and diabetic Leprdb (db/db) mice. A live-cell 2-photon imaging method is then presented that can be used to investigate the control of insulin secretion within islets.

Leprdb Mouse Model of Type 2 Diabetes: Pancreatic Islet Isolation and Live-cell 2-Photon Imaging Of Intact Islets

We present here a protocol for the isolation of islets from the mouse model of type 2 diabetes, Leprdb and details of a live-cell assay for measurement of insulin secretion from intact islets that utilizes 2 photon microscopy.

Lepr<sup&gt; ديسيبل</sup&gt; نموذج الفأر من النوع 2 من مرض السكري: البنكرياس عزل جزيرة وتعيش خلية 2 فوتون التصوير من الجزر سليمة

Type 2 diabetes is a chronic disease affecting 382 million people in 2013, and is expected to rise to 592 million by 2035 1. During the past 2 decades, ...

Integrated Compensatory Responses in a Human Model of Hemorrhage

Hemorrhage is the leading cause of trauma-related deaths, partly because early diagnosis of the severity of blood loss is difficult. Assessment of hemorrhaging patients is difficult because current clinical tools provide measures of vital signs that remain stable during the early stages of bleeding due to compensatory mechanisms. Consequently, there is a need to understand and measure the total integration of mechanisms that compensate for reduced circulating blood volume and how they change during ongoing progressive hemorrhage. The body&#39;s reserve to compensate for reduced circulating blood volume is called the &#39;compensatory reserve&#39;. The compensatory reserve can be accurately evaluated with real-time measurements of changes in the features of the arterial waveform measured with the use of a high-powered computer. Lower Body Negative Pressure (LBNP) has been shown to simulate many of the physiological responses in humans associated with hemorrhage, and is used to study the compensatory response to hemorrhage. The purpose of this study is to demonstrate how compensatory reserve is assessed during progressive reductions in central blood volume with LBNP as a simulation of hemorrhage.

The purpose of this protocol is to demonstrate the techniques for measuring compensatory responses to reduced central blood volume using lower body negative pressure as a noninvasive experimental model of human hemorrhage which can be used to quantify the total integration of compensatory mechanisms to blood volume deficit in humans.

الردود التعويضية متكاملة في نموذج الإنسان من نزف

Hemorrhage is the leading cause of trauma-related deaths, partly because early diagnosis of the severity of blood loss is difficult. Assessment of ...

Transplantation of Adipose Tissue-Derived Stem Cell Sheet to Reduce Leakage After Partial Colectomy in A Rat Model

Anastomotic leakage is a disastrous complication after colorectal surgery. Although current methods for leakage prevention have different levels of clinical efficacy, they are until now imperfect solutions. Stem cell therapy using ASC sheets could provide a solution to this problem. ASCs are considered as promising candidates for promoting tissue healing because of their trophic and immunomodulatory properties. Here, we provide methods to produce high-density ASC sheets, that are transplanted onto a colorectal anastomosis in a rat model to reduce the leakage. ASCs formed cell sheets in thermo-responsive culture dishes that could be easily detached. On the day of the transplantation, a partial colectomy with a 5-suture colorectal anastomosis was performed. Animals were immediately transplanted with 1 ASC sheet per rat. ASC sheets adhered spontaneously to the anastomosis without any glue, suture, or any biomaterial. Animal groups were sacrificed 3 and 7 days postoperatively. Compared to transplanted animals, the incidence of anastomotic abscesses and leakage was higher in control animals. In our model, the transplantation of ASC sheets after colorectal anastomosis was successful and associated with a lower leakage rate.

The preparation and transplantation of adipose tissue derived stem cell (ASC) sheets onto insufficiently sutured colorectal anastomoses in a rat model is presented. This novel application shows that ASC sheets can reduce colorectal anastomosis leakage.

زرع صفحة الخلايا الجذعية المشتقة من الأنسجة الدهنية للحد من تسرب بعد Colectomy الجزئية في نموذج الفئران

Anastomotic leakage is a disastrous complication after colorectal surgery. Although current methods for leakage prevention have different levels of ...

Implantation of hiPSC-derived Cardiac-muscle Patches after Myocardial Injury in a Guinea Pig Model

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss of relevant amounts of heart muscle mass can lead to the heart failure. Besides heart transplantation, there is no curative treatment option for the end-stage heart failure. In times of organ donor shortage, organ independent treatment modalities are needed. Left-ventricular assist devices are a promising therapy option, however, especially as destination therapy, limited by its side-effects like stroke, infections and bleedings. In recent years, several cardiac repair strategies including stem cell injection, cardiac progenitors or myocardial tissue engineering have been investigated. Recent improvements in cell biology allow for the differentiation of large amounts of cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells (iPSC). One of the cardiac repair strategies currently under evaluation is to transplant artificial heart tissue. Engineered heart tissue (EHT) is a three-dimensional in vitro created cardiomyocyte network, with functional properties of native heart tissue. We have created EHT-patches from hiPSC derived cardiomyocytes. Here we present a protocol for the induction of left ventricular myocardial cryoinjury in a guinea pig, followed by implantation of hiPSC derived EHT on the left ventricular wall.

Here we present a protocol for the induction of left ventricular cryoinjury followed by the implantation of a cardiac muscle patch, derived from human iPS-cell cardiomyocytes in a guinea pig model.

غرس المستمدة من هيبسك بقع عضلة القلب بعد "إصابة احتشاء عضلة القلب" في "نموذج خنزير غينيا"

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss ...