ويدعم هذا العمل من قبل مختبر جاكسون سرطان المنح الرائدة ومركز للسرطان مؤسسة ولاية ماين.

1. بروتوكول <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الماوس مع الكيتامين وزيلازين بجرعة الكيتامين ملغ 0.1 و 0.01 ملجم من زيلازين في 1 غرام من وزن الجسم. يستخدم كاربروفين (0.005 ملغ لكل 1 غرام من وزن الجسم) لتسكين ويدار قبل الجراحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جميع الأدوات الجراحية، بما في ذلك قمة الحفر الأسنان، وبخار تعقيم الأوتوكلاف في. إذا العمليات الجراحية هي الدفعة التي يتعين القيام بها، لا بد من نصائح من الأدوات الجراحية إعادة تعقيمها مع حبة تعقيم الزجاج (أدوات العلوم الجميلة FST 250) قبل كل عملية جراحية لاحقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة واحدة الماوس قد وصلت إلى الطائرة من التخدير الجراحي، المقررة من قبل عدم وجود استجابة لقرصة أخمص القدمين، يتم وضعها على وسادة من القطن التي يتم وضعها على وسادة ثم ساخنة للحفاظ على درجة حرارة الجسم من ~ 37 ° C. ويتم رصد عمق التخدير أثناء الجراحة في كثير من الأحيان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تتم إزالة الفراء من رئيس الظهرية في منطقة الثلاثي تقريبا 3 مم ~ الذيلية إلى فتحتي الأنف وتمتد إلى نحو caudally مrvical فقرات. يتم تطبيق مرهم للعين للعيون لحمايتهم من الجفاف والاحمرار. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم وضع الماوس في recumbancy بطني وتطهير الجلد مع جراحية اليود، والإيثانول 70٪، ومسحات معقمة. تتم إزالة A الطول 0.8 * 1.0 من رفرف الجلد الذي يغطي الجانب الظهري الأمامي من عظام والجداري من الجمجمة باستخدام مقص غرامة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم تطبيق مسكن موضعي، يدوكائين 0.5٪، محليا إلى السمحاق والأنسجة في محيط يتعرض للجرح. تتم إزالة السمحاق عن طريق كشط بلطف الجمجمة بشفرة مشرط، وهذا سوف يساعد الغراء CYANOACRYLATE التمسك العظام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ويرد في المنطقة القشرية من الفائدة على الجمجمة مع علامة. يجب أن لا مجال الاهتمام يكون موجودا على خطوط خياطة الجمجمة، لتجنب الأضرار التي لحقت السفن الكبيرة الكامنة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم تطبيق طبقة رقيقة من مادة لاصقة CYANOACRYLATE على هامش الجرح، لمنع تسرب السوائل من serosanguinous، والجمجمة إلا فيومجال الاهتمام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ويستخدم ضوء تنشيط الاسمنت الأسنان في بروتوكول لدينا لاغلاق الجمجمة. قبل تطبيق الاسمنت الأسنان، يتم معاملة جميع الجمجمة يتعرض باستثناء المنطقة المخصصة لترقق مع الاشعال في وقت لاحق مع وكيل الرابطة من عدة ضوء تنشيط الاسمنت الأسنان. مرة واحدة يتم تجفيف كيل الرابطة، يتم تطبيق الاسمنت ضوء تنشيط الأسنان لتغطية الجمجمة. لتحقيق الاستقرار في الرأس من الفأرة لعملية جراحية لاحقة والتصوير، وجزءا لا يتجزأ من معقمة عرافة الجوز # 00-90 في الاسمنت الأسنان على مسافة من المنطقة المراد ضعيفة. استخدام ضوء تنشيط الاسمنت الأسنان يتيح لنا إعداد الجمجمة دون الحاجة إلى التسرع في إنهاء الإجراء بأكمله. بمجرد الانتهاء من إعداد الاسمنت الأسنان على الجمجمة، وخلوه من الاسمنت الأسنان مع الضوء المرئي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد الشفاء من الاسمنت الأسنان، هي التي شنت حامل خوذة من الجهاز المجسم إلى عرافة الجوز على رأسه باستخدام الماوس المسمار # 00-90. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> A الدكتورالمرجع درجة الحرارة داخل الغرفة، يتم تطبيق ملحي معقم بنسبة 0.9٪ إلى منطقة الجمجمة التي ضعفت. مع المعونة من stereomicroscope، يتم استخدام عالي السرعة الحفر الصغيرة لمنطقة دائرية رقيقة من الجمجمة (عادة ~ مم 4-5 في القطر) على المنطقة من الفائدة. يتم تنفيذ الحفر وتطبيق المالحة إلى منطقة حفر بشكل متقطع أثناء إجراء رقيق لتجنب الإصابة الحرارية للأنسجة الدماغية الكامنة. المالحة يمتص الحرارة ويساعد ايضا على تخفيف العظام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الجمجمة الماوس تضم اثنين من طبقات رقيقة من العظم المضغوط، يقحم طبقة سميكة من العظم الإسفنجي. يتم إزالة الطبقة الخارجية من العظم المضغوط ومعظم العظم الإسفنجي باستخدام الحفر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد إزالة الغالبية العظمى من العظم الإسفنجي، يمكن أن ينظر تجاويف المتبقية داخل العظم الإسفنجي تحت المجهر تشريح، مشيرا إلى أن الحفر تقترب من طبقة داخلية العظم المضغوط. في هذه المرحلة، يجب أن يكون لا يزال سمك الجمجمة أكثر من 50 ميكرومتر. يجب أن يكون رقيق الجمجمةواصلت بعناية للحصول على إعداد رقيقة جدا (~ 20 ميكرون) وسلس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بمجرد تحقيق سمك المطلوب من الجمجمة (~ 20 ميكرون)، ومصقول لأول مرة الجمجمة باستخدام سوط سيليكون حسب الطلب مع معجون الماس (6-15 ميكرون) لحوالي 10 دقيقة. وتلميع الماس معجون يخدم غرضين. أولا، يخفف المزيد من الجمجمة دون ممارسة الضغط على الجمجمة ضعيفة، وبالتالي تجنب تلف عرضي لأنسجة المخ الأساسية. الثاني، أنها بمثابة خطوة أولية لتلميع الجمجمة ضعيفة قبل استخدام أكسيد القصدير غرامة الحبيبات لتلميع الجمجمة أخرى. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد تلميع الماس لصق، ومصقول الجمجمة ضعيفة مع أكسيد القصدير لحوالي 10 دقيقة. مرة واحدة الجمجمة هو مصقول، يتم مسح بعيدا أكسيد القصدير مع المالحة حتى الجمجمة ضعيفة يبدو نظيفة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في هذه الخطوة، إذا كان إطار الجمجمة هي لاستخدامها في التصوير في الجسم الحي طولية، وجفت تنظيف منطقة الجمجمة رقيقة. قطرة صغيرة من الواضحيتم تطبيق الغراء CYANOACRYLATE لاغلاق النافذة في الجمجمة. يجب طبقة من الغراء CYANOACRYLATE بين الجمجمة ضعيفة وساترة لتكون رقيقة قدر الإمكان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إذا كان الحقن هو المراد تنفيذها بعد إنشاء نافذة الموانئ الجمجمة، في هذه الخطوة، يتم استخدام إبرة حقنة 26-مقياس لخلق فتحة صغيرة على جانب واحد من الإطار رقيقة الجمجمة المصقول. ويستخدم هذا الانفتاح لحقن الخلايا GBM. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم سحبها ماصة زجاجية معقمة مع طرف فتح ما يقرب من 50 ميكرومتر في القطر باستخدام مجتذب ماصة. وسوف تستخدم هذه ماصة للحقن الخلايا GBM، وتحميلها على مياداة مجهرية. يتم تحميل ماصة بزاوية 30 درجة بحيث حقن الخلايا GBM الموقع سيكون بعيدا عن موقع التصوير النهائي. تتم إزالة غيض من ماصة تحت المجهر تشريح. تعليق خلية GBM هو الأمامية تحميلها في ماصة عن طريق الشفط باستخدام مضخة الحقنة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة واحدة يتم تحميل ماصة حقن الخلايا مع الخليج للحاسبات الآلية، يتم نقل الماوس مرة أخرى تحت اله المجهر. وخفضت ماصة حقن نحو فتحة صغيرة في الجمجمة وإدراج نافذة أخيرا إلى الدماغ من خلال فتح باستخدام مياداة مجهرية. يتم حقن 1 ميكرولتر من تعليق خلية GBM في الدماغ 100-200 ميكرون من سطح الدماغ (السرعة: 0.1 ميكرولتر / دقيقة، المدة: 10 دقيقة). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تجفف الجمجمة، يتم تطبيق قطرة صغيرة من الغراء واضحة لCYANOACRYLATE الجمجمة المجفف، وانضمت قطعة من 3 ملم حجم رقم 1 ساترة لمنطقة الجمجمة رقيقة ومصقولة. وختم ساترة مسافة بين الأسنان المجاورة والأسمنت الغراء مع CYANOACRYLATE. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد الجراحة، ويتم حقن تحت الجلد الماوس مع 1 مل العقيمة المالحة الدافئة، وقدمت مع الحرارة تكميلية للحفاظ على درجة حرارة الجسم حتى تعافى تماما من التخدير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التصوير، والفئران هي تخدير مع الكيتامين وزيلازين في جرعة الكيتامين ملغ 0.1 و 0.01 ملجم من زيلازين في 1 غرام من وزن الجسم. ويجمد الفئران باستخدام إطار المجسم مخصصتحت المجهر. إذا يتم تنفيذ المتكررة في التصوير المجراة على أساس يومي، وسوف isofluorane يكون خيارا أفضل، والفئران سوف تظهر علامات الاعتماد مع استخدام المتكررة من الكيتامين. </li></ol> 2. ممثل النتائج A ناجحة الموانئ جراحة الجمجمة يسمح نافذة نافذة الجمجمة أن تبقى واضحة لأسابيع أو أشهر. ويبين الشكل 1 الأوعية الدموية تحت الجمجمة نافذة الموانئ وتصور باستخدام الضوء المرتدة. واستخدمت هذه الصور الأوعية الدموية ومعالم لتحديد مكان وجود مناطق الدماغ نفسه للتصوير المتكررة. لتصور كل من خلايا الأوعية الدموية وخلايا بطانة الأوعية الدموية GBM، عبرنا عن B6.Cg-TG (تك، لجنة المساواة العرقية) 1Ywa / J الماوس، التي تصف خلايا بطانة الأوعية الدموية مع 26Sor (ROSA) B6.Cg GT-tm9 (CAG-tdTomato ) Hze / J الماوس، والفئران ولدت مع خلايا بطانة الأوعية الدموية المسمى مع بروتين فلوري الأحمر tdTomato. نفذنا ثم إجراء حج القحف المنافذ على هذه ميلم، وحقن الخلايا GFP المسمى-GBM في أدمغتهم من خلال فتحة صغيرة على جانب نافذة في الجمجمة. ثم نفذنا في الجسم الحي ثنائي الفوتون التصوير طوليا على الفئران المحقونة. تم تعيين الطول الموجي الإثارة الليزر بمبلغ 910 نانومتر، مما أدى إلى إثارة كلا GFP وtdTomato. تم تنفيذ اثنين من الفوتون التصوير على المجهر مبنية خصيصا الليزر المسح الضوئي ثنائي الفوتون مع اثنين من أجهزة إنذار لللفي وقت واحد الخضراء / الحمراء القدرة على الكشف مضان. الشكل 2 يظهر في الجسم الحي المثال من بدء دبقي من خلايا GBM حقن بالقرب من الأوعية الدموية. نافذة الموانئ الجمجمة أيضا اختيارا ممتازا للالمزمنة الوقت الفاصل بين التصوير في الجسم الحي. ويبين الشكل 3 تلطيخ GFAP من أقسام القشرية من الماوس دون جراحة الموانئ والفأر 7 أيام بعد الجراحة والموانئ، وماوس 7 أيام بعد الجراحة والموانئ المالحة الحقن. ويتضح من الصور التي الماوس دون جراحة والفأر مع البرتغالTS جراحة لم يكن لديك دباق، في حين حقن المياه المالحة بعد، ويلاحظ دباق في أنسجة المخ من الفأرة، وذلك بسبب تغلغل ماصة وحقن محلول ملحي في الدماغ. هذه النتيجة تبين أن دباق لا تحدث تحت النافذة الموانئ الجمجمة، وتوفير التحقق من صحة المستقلة أن منفذي نافذة الجمجمة وصفها هنا لا يؤدي إلى دباق التي ترتبط عادة مع نافذة &quot;الجمجمة مفتوحة&quot; الجمجمة المزمن. ويبين الشكل 4 عالية الدقة تصوير العمود الفقري شجيري من الماوس نفس يوم الجراحة (يوم 0) وبعد 32 يوما من إنشاء نافذة منافذ (يوم 32)، مما يدل على أن الإطار الموانئ أيضا اختيارا ممتازا للذات الدقة العالية في التصوير المجراة. <img alt="الشكل 1" src="/files/ftp_upload/4201/4201fig1.jpg" /> الشكل 1. التصور من الأوعية الدموية تحت نافذة مصقول المقوى والجمجمة الجمجمة ضعيفة باستخدام الضوء المرتدة. تمثل أيام ر<html> تم التقاط صور اعتبارا من اليوم لعملية جراحية على الفور بعد الانتهاء من حقن الخلايا GBM، وأنه عدد الأيام بعد الجراحة. شريط النطاق: 0.5 مم <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/4201/4201fig1large.jpg" target="_blank">اضغط هنا لمشاهدتها بشكل اكبر شخصية</a> . <img alt="الشكل 2" src="/files/ftp_upload/4201/4201fig2.jpg" /> الشكل 2. التصور من الخلايا والأوعية الدموية GBM حقن في الجسم الحي. واستخدمت كل من الفئران تحمل تك لجنة المساواة العرقية، وROSA26 CAG-tdTomato للحقن الخلايا GBM. وصفت الخلايا البطانية الوعائية مع tdTomato (الحمراء)، وخلايا وصفت GBM مع GFP (الخضراء). صور تم الحصول عليها يبدأ في 24 ساعة بعد حقن الخلايا GBM. أخذت ما مجموعه الحقول المجاورة من 10-12 النظر وتم تجميعها بالقرب من بعضها البعض، مع الخلايا التي تم تحديدها GBM حقن في وسط الميدان المجموع، لإنتاج الصور النهائية. أيام تمثل عدد أيام بعد الجراحة. مقياس بار: 100 ميكرومتر.أ href = &quot;http://www.jove.com/files/ftp_upload/4201/4201fig2large.jpg&quot; الهدف = &quot;_blank&quot;&gt; اضغط هنا لمشاهدتها بشكل اكبر الرقم. <img alt="الشكل 3" src="/files/ftp_upload/4201/4201fig3.jpg" /> الشكل 3. دباق لا تحدث بعد الجراحة الموانئ النافذة في الجمجمة. العلوي لوحات: الفأر القسم الدماغ الاكليلية تحت التكبير أقل. ويلاحظ أي التنشيط GFAP في أنسجة المخ؛ ماوس دون أي عملية جراحية في الجمجمة نافذة: اللوحة اليمنى. ويلاحظ أي التنشيط GFAP في أنسجة المخ؛ ماوس مع نافذة الموانئ الجمجمة ولدت في الجانب الأيمن من الدماغ: لوحة الأوسط. اللوحة اليمنى: ماوس مع نافذة الموانئ الجمجمة وحقن المياه المالحة من الجانب من النافذة الموانئ. ويلاحظ GFAP تفعيل على جانب الإطار الموانئ، ولكن ليس على جانب أنسجة المخ سليمة. مقياس بار: 1 مم. اللوحة السفلى: أعلى سلطة صور أنسجة المخ في المناطق كما هو مبين في المربع الأبيض من الصور العلوية لوحة. مقياس بار: 100 ميكرومتر. <aأ href = &quot;http://www.jove.com/files/ftp_upload/4201/4201fig3large.jpg&quot; الهدف = &quot;_blank&quot;&gt; اضغط هنا لمشاهدتها بشكل اكبر الرقم. <img alt="الشكل 4" src="/files/ftp_upload/4201/4201fig4.jpg" /> الشكل 4. التصوير عالية الدقة في العمود الفقري شجيري من خاصتك-1 YFPH الفئران. صور تم الحصول عليها في يوم الجراحة الموانئ، وبعد 32 يوما الموانئ الجراحة. من الواضح من الصور أن معظم أشواك موجودة على يوم 0 مرئية بوضوح 32 يوما بعد الجراحة الموانئ. مقياس بار: 2 ميكرومتر.

<ol>
	<li>Paulino, A. C., Teh, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Treatment+of+brain+tumors.">Treatment of brain tumors.</a> N. Engl. J. Med. 352, 2350-2353 (2005).</li><li>Stupp, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Radiotherapy+plus+concomitant+and+adjuvant+temozolomide+for+glioblastoma.">Radiotherapy plus concomitant and adjuvant temozolomide for glioblastoma.</a> N. Engl. J. Med. 352, 987-996 (2005).</li><li>Singh, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+human+brain+tumour+initiating+cells.">Identification of human brain tumour initiating cells.</a> Nature. 432, 396-401 (2004).</li><li>Hanahan, D., Weinberg, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hallmarks+of+cancer:+the+next+generation.">Hallmarks of cancer: the next generation.</a> Cell. 144, 646-674 (2011).</li><li>Cheng, L., Bao, S., Rich, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Potential+therapeutic+implications+of+cancer+stem+cells+in+glioblastoma.">Potential therapeutic implications of cancer stem cells in glioblastoma.</a> Biochem. Pharmacol. 80, 654-665 (2010).</li><li>Cheng, L., Ramesh, A. V., Flesken-Nikitin, A., Choi, J., Nikitin, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+for+cancer+stem+cell+research.">Mouse models for cancer stem cell research.</a> Toxicol. Pathol. 38, 62-71 (2010).</li><li>Dirks, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brain+tumor+stem+cells:+the+cancer+stem+cell+hypothesis+writ+large.">Brain tumor stem cells: the cancer stem cell hypothesis writ large.</a> Mol. Oncol. 4, 420-430 (2010).</li><li>Ebben, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cancer+stem+cell+paradigm:+a+new+understanding+of+tumor+development+and+treatment.">The cancer stem cell paradigm: a new understanding of tumor development and treatment.</a> Expert Opin. Ther. Targets. 14, 621-632 (2010).</li><li>Germano, I., Swiss, V., Casaccia, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primary+brain+tumors,+neural+stem+cell,+and+brain+tumor+cancer+cells:+where+is+the+link.">Primary brain tumors, neural stem cell, and brain tumor cancer cells: where is the link.</a> Neuropharmacology. 58, 903-910 (2010).</li><li>Park, D. M., Rich, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biology+of+glioma+cancer+stem+cells.">Biology of glioma cancer stem cells.</a> Mol. Cells. 28, 7-12 (2009).</li><li>Bao, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cell-like+glioma+cells+promote+tumor+angiogenesis+through+vascular+endothelial+growth+factor.">Stem cell-like glioma cells promote tumor angiogenesis through vascular endothelial growth factor.</a> Cancer Res. 66, 7843-7848 (2006).</li><li>Calabrese, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+perivascular+niche+for+brain+tumor+stem+cells.">A perivascular niche for brain tumor stem cells.</a> Cancer Cell. 11, 69-82 (2007).</li><li>Barami, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Relationship+of+neural+stem+cells+with+their+vascular+niche:+implications+in+the+malignant+progression+of+gliomas.">Relationship of neural stem cells with their vascular niche: implications in the malignant progression of gliomas.</a> J. Clin. Neurosci. 15, 1193-1197 (2008).</li><li>Gilbertson, R. J., Rich, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Making+a+tumour's+bed:+glioblastoma+stem+cells+and+the+vascular+niche.">Making a tumour's bed: glioblastoma stem cells and the vascular niche.</a> Nat. Rev. Cancer. 7, 733-736 (2007).</li><li>Cho, R. W., Clarke, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recent+advances+in+cancer+stem+cells.">Recent advances in cancer stem cells.</a> Curr. Opin. Genet. Dev. 18, 48-53 (2008).</li><li>Drew, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+optical+access+through+a+polished+and+reinforced+thinned+skull.">Chronic optical access through a polished and reinforced thinned skull.</a> Nat. Methods. 7, 981-984 (2010).</li></ol>

الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

المفتاح لنجاح الموانئ نافذة الجمجمة هو رقيق والتلميع. في حين لا يمكن أن يؤديها الأولية ترقق بسرعة، ينبغي توخي الحذر لضمان متجانسة ترقق في الجمجمة على مساحة واسعة. عادة نطبق طبقة رقيقة من المياه المالحة في الجمجمة، والجمجمة رقيقة ثم مرور واحد في وقت واحد، على ان يكون ?...

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tr><td> اسم كاشف </td><td> شركة </td><td> كتالوج رقم </td><td> التعليقات (اختياري) </td></tr><tr><td> DMEM/F12 (1:1) مع البيروفات الصوديوم </td><td> العلوم الحرارية Hyclone </td><td> SH3026101 </td><td></td></tr><tr><td> B-27 الملحق المصل الحرة (50X) </td><td> إينفيتروجن </td><td> 17504-044 </td><td></td></tr><tr><td> GlutaMax-1 الملحق </td><td> إينفيتروجن </td><td> 35050061 </td><td></td></tr><tr><td> البنسلين الستربتوميسين الحل </td><td> العلوم الحرارية Hyclone </td><td> SV30010 </td><td></td></tr><tr><td> Accutase انزيم متوسطة خلية مفرزة </td><td> eBiosciences </td><td> 00-4555-56 </td><td></td></tr><tr><td> T25-قوارير تنفيس غطاء أخضر </td><td> SARSTEDT </td><td> 83.1810.502 </td><td></td></tr><tr><td> 70٪ كحول </td><td> JAX LAHS </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 10٪ بوفيدون حل موضعي </td><td> JAX LAHS </td><td></td><td></td></tr><tr><td> الكيتامين هيدروكلوريد </td><td> بتلر التموين صحة الحيوان </td><td> NDC # 11695-0550-1 </td><td></td></tr><tr><td> زيلازين </td><td> Akorn، وشركة </td><td> NADA # 139-236 </td><td></td></tr><tr><td> كاربروفين </td><td> JAX LAHS </td><td></td><td></td></tr><tr><td> مرهم العيون </td><td> Dechra منتجات البيطرية </td><td> 17033-211-38 </td><td></td></tr><tr><td> 0.5٪ ليدوكائين هيدروكلوريد </td><td> REGENT، وشركة </td><td> NDC 0517-0625-25 </td><td></td></tr><tr><td> CYANOACRYLATE الغراء </td><td> شركة هنكل </td><td> 46551 </td><td></td></tr><tr><td> معقم مسحات </td><td> فيشر العلمية </td><td> 23-400-114 </td><td></td></tr><tr><td> لصق الماس </td><td> القطعة التموين </td><td> BBE60 </td><td></td></tr><tr><td> القصدير أكسيد </td><td> LORTONE، وشركة </td><td> 591-038 </td><td></td></tr><tr><td> بطانة بوند 2V </td><td> KURARAY الطبية وشركة </td><td> 1921-KA </td><td></td></tr><tr><td> AP-X Clearfil </td><td> KURARAY الطبية وشركة </td><td> 1721-KA </td><td></td></tr><tr><td> ملحي </td><td> JAX LAHS </td><td></td><td></td></tr><tr><td> تغطية الزجاج </td><td> وارنر الصكوك </td><td> 64-0720 </td><td></td></tr><tr><td> عرافة الجوز </td><td> أجزاء صغيرة، وشركة </td><td> HNX-0090-C </td><td></td></tr><tr><td> حقنة مضخة </td><td> Syringepump.com </td><td> NE-1000 </td><td></td></tr><tr><td> ثنائي الفوتون التصوير نظام </td><td> المبنية حسب الطلب (أي نظام من شأنه التجاريةالعمل) </td><td></td><td></td></tr></table>

imaging glioma initiation in vivo through a polished and reinforced thin-skull cranial window

دبقي هي واحدة من أكثر أشكال السرطان فتكا من الإنسان. العلاج الأكثر فعالية لدبقي جراحة حديثة تليها الاشعاع المعاملة يقدم المرضى فوائد متواضعة، حيث أن معظم المرضى لا البقاء على قيد الحياة أكثر من خمس سنوات بعد التشخيص بسبب الانتكاس 1،2 دبقي. اكتشاف الخلايا الجذعية السرطانية في أورام الدماغ البشري يحمل وعدا عن وجود تأثير هائل على وضع استراتيجيات علاجية جديدة لدبقي 3. وتعرف الخلايا الجذعية السرطانية بقدرتها على حد سواء في تقرير المصير، وتفرق لتجديد، ويعتقد أن تكون الخلايا السرطانية فقط في أن لديها القدرة على الشروع في أورام جديدة 4. ويعتقد دبقي الانتكاس العلاج الإشعاعي التالي لتنشأ من مقاومة الخلايا الجذعية دبقي (GSCs) للعلاج 5-10. في الجسم الحي، وترد GSCs للإقامة في محراب حول الوعاء وهذا أمر مهم للحفاظ على الخلايا الجذعية من خصائص شبيهة 11-14 . المركزية إلى املنظماتzation من مكانة GSC هي خلايا بطانة الأوعية الدموية 12. الأدلة الموجودة تشير إلى أن GSCs وتفاعلها مع خلايا بطانة الأوعية الدموية هي مهمة للتنمية الورم، وتحديد GSCs وتفاعلها مع الخلايا البطانية كأهداف العلاجية الهامة لدبقي. يتم تحديد وجود GSCs تجريبيا من قدرتها على بدء أورام جديدة على زرع مثلي 15. ويتحقق هذا عادة عن طريق حقن عدد محدد من الخلايا المعزولة من الأورام GBM الإنسان في أدمغة الفئران التي تعاني من نقص المناعة الشديد، أو من الخلايا GBM الماوس في أدمغة الفئران مسانج مشترك المضيف. ثم يتم إجراء فحوصات لنمو الورم بعد الوقت الكافي للسماح GSCs بين خلايا GBM حقن تثير أسابيع الأورام عادة جديدة، أو عدة أشهر. وبالتالي، المقايسات القائمة لا تسمح دراسة العملية المرضية من المهم بدء الورم من GSCs واحدة في الجسم الحي. ونتيجة لذلك، من الضروري طnsights في أدوار معينة من GSCs وتفاعلها مع خلايا بطانة الأوعية الدموية في المراحل الأولى من بدء الورم غير متوفرة. رؤى مثل هذه العناصر الهامة لتطوير استراتيجيات علاجية جديدة لدبقي، وسيكون لها آثار كبيرة على منع الانتكاس في المرضى الذين دبقي. هنا تكيفنا المنافذ الجمجمة إجراء إطار 16 و في الجسم الحي ثنائي الفوتون المجهري للسماح التصور من بدء الورم من الخلايا المحقونة GBM في دماغ فأر حي. سوف أسلوبنا تمهيد الطريق لمستقبل الجهود لتوضيح الآليات الرئيسية عصبي بين خلايا بطانية GSCs والأوعية الدموية أثناء بدء دبقي.

Watch this Scientific Journal Video about Imaging Glioma Initiation In Vivo Through a Polished and Reinforced Thin-skull Cranial Window at JoVE.com

Imaging Glioma Initiation In Vivo Through a Polished and Reinforced Thin-skull Cranial Window

من خلال الجمع بين ومصقول المقوى رقيقة الجمجمة (منافذ) الجمجمة وورم أرومي دبقي إطار حقن الخلايا (GBM)، يمكننا أن نلاحظ بدء دبقي والنمو من خلايا GBM حقن في دماغ فأر حي طوليا.

بدء تصوير دبقي<em&gt; في الجسم الحي</em&gt; من خلال نافذة رقيقة الجمجمة ملمع وعززت القحف

Glioma is the one of the most lethal forms of human cancer. The most effective glioma therapy to date-surgery followed by radiation treatment-offers ...

imaging-glioma-initiation-vivo-through-polished-reinforced-thin-skull

Research

JoVE Journal

Medicine

Imaging Glioma Initiation In Vivo Through a Polished and Reinforced Thin-skull Cranial Window

13.0K Views.  The Jackson Laboratory. من خلال الجمع بين ومصقول المقوى رقيقة الجمجمة (منافذ) الجمجمة وورم أرومي دبقي إطار حقن الخلايا (GBM)، يمكننا أن نلاحظ بدء دبقي والنمو من خلايا GBM حقن في دماغ فأر حي طوليا.

Video: Imaging Glioma Initiation In Vivo Through a Polished and Reinforced Thin-skull Cranial Window

A Thin-skull Window Technique for Chronic Two-photon In vivo Imaging of Murine Microglia in Models of Neuroinflammation

Traditionally in neuroscience, in vivo two photon imaging of the murine central nervous system has either involved the use of open-skull1,2 or thinned-skull 3 preparations. While the open-skull technique is very versatile, it is not optimal for studying microglia because it is invasive and can cause microglial activation. Even though the thinned-skull approach is minimally invasive, the repeated re-thinning of skull required for chronic imaging increases the risks of tissue injury and microglial activation and allows for a limited number of imaging sessions. Here we present a chronic thin-skull window method for monitoring murine microglia in vivo over an extended period of time using two-photon microscopy. We demonstrate how to prepare a stable, accessible, thinned-skull cortical window (TSCW) with an apposed glass coverslip that remains translucent over the course of three weeks of intermittent observation. This TSCW preparation is far more immunologically inert with respect to microglial activation than open craniotomy or repeated skull thinning and allows an arbitrary number of imaging sessions during a time period of weeks. We prepare TSCW in CX3CR1 GFP/+ mice 4 to visualize microglia with enhanced green fluorescent protein to &le;150 &mu;m beneath the pial surface. We also show that this preparation can be used in conjunction with stereotactic brain injections of the HIV-1 neurotoxic protein Tat, adjacent to the TSCW, which is capable of inducing durable microgliosis. Therefore, this method is extremely useful for examining changes in microglial morphology and motility over time in the living brain in models of HIV Associated Neurocognitive Disorder (HAND) and other neurodegenerative diseases with a neuroinflammatory component.

A Thin-skull Window Technique for Chronic Two-photon In vivo Imaging of Murine Microglia in Models of Neuroinflammation

We describe a method for repeatedly visualizing murine microglia and circulating monocytes in vivo over hours, days or weeks using transcranial two-photon microscopy. We demonstrate how to prepare a thinned-skull window that allows intermittent observation of quiescent microglia that can be activated by adjacent stereotactic injection of the HIV-1 regulatory protein Tat.

تقنية نافذة رقيقة الجمجمة لالمزمنة ثنائي الفوتون في الجسم الحي التصوير من الخلايا الدبقية الصغيرة في الفئران نماذج من Neuroinflammation

Traditionally in neuroscience, in vivo two photon imaging of the murine central nervous system has either involved the use of open-skull1,2 or ...

Neuroscience

Intracranial Implantation with Subsequent 3D In Vivo Bioluminescent Imaging of Murine Gliomas

The mouse glioma 261 (GL261) is recognized as an in vivo model system that recapitulates many of the features of human glioblastoma multiforme (GBM). The cell line was originally induced by intracranial injection of 3-methyl-cholantrene into a C57BL/6 syngeneic mouse strain 1; therefore, immunologically competent C57BL/6 mice can be used. While we use GL261, the following protocol can be used for the implantation and monitoring of any intracranial mouse tumor model. GL261 cells were engineered to stably express firefly luciferase (GL261-luc). We also created the brighter GL261-luc2 cell line by stable transfection of the luc2 gene expressed from the CMV promoter. C57BL/6-cBrd/cBrd/Cr mice (albino variant of C57BL/6) from the National Cancer Institute, Frederick, MD were used to eliminate the light attenuation caused by black skin and fur. With the use of albino C57BL/6 mice; in vivo imaging using the IVIS Spectrum in vivo imaging system is possible from the day of implantation (Caliper Life Sciences, Hopkinton, MA). The GL261-luc and GL261-luc2 cell lines showed the same in vivo behavior as the parental GL261 cells. Some of the shared histological features present in human GBMs and this mouse model include: tumor necrosis, pseudopalisades, neovascularization, invasion, hypercellularity, and inflammation 1.
Prior to implantation animals were anesthetized by an intraperitoneal injection of ketamine (50 mg/kg), xylazine (5 mg/kg) and buprenorphine (0.05 mg/kg), placed in a stereotactic apparatus and an incision was made with a scalpel over the cranial midline. A burrhole was made 0.1mm posterior to the bregma and 2.3mm to the right of the midline. A needle was inserted to a depth of 3mm and withdrawn 0.4mm to a depth of 2.6mm. Two &mu;l of GL261-luc or GL261-luc2 cells (107 cells/ml) were infused over the course of 3 minutes. The burrhole was closed with bonewax and the incision was sutured.
Following stereotactic implantation the bioluminescent cells are detectable from the day of implantation and the tumor can be analyzed using the 3D image reconstruction feature of the IVIS Spectrum instrument. Animals receive a subcutaneous injection of 150&mu;g luciferin /kg body weight 20 min prior to imaging. Tumor burden is quantified using mean tumor bioluminescence over time. Tumor-bearing mice were observed daily to assess morbidity and were euthanized when one or more of the following symptoms are present: lethargy, failure to ambulate, hunched posture, failure to groom, anorexia resulting in &gt;10% loss of weight. Tumors were evident in all of the animals on necropsy.

Intracranial Implantation with Subsequent 3D In Vivo Bioluminescent Imaging of Murine Gliomas

Intracranial implantation of GL261 cells into C57BL/6 mice produces malignant gliomas that recapitulate many of the hallmarks of human glioblastoma multiforme. We used GL261 cells stably expressing luciferase to allow us to use in vivo imaging to follow tumor progression. The surgery and 3D in vivo imaging are demonstrated.

زرع داخل القحف مع 3d اللاحقة في فيفو Bioluminescent التصوير الاورام الدبقية الفئران

The mouse glioma 261 (GL261) is recognized as an in vivo model system that recapitulates many of the features of human glioblastoma multiforme (GBM). The ...

Longitudinal Intravital Imaging of Brain Tumor Cell Behavior in Response to an Invasive Surgical Biopsy

Biopsies are standard of care for cancer treatment and are clinically beneficial as they allow solid tumor diagnosis, prognosis, and personalized treatment determination. However, perturbation of the tumor architecture by biopsy and other invasive procedures has been associated with undesired effects on tumor progression, which need to be studied in depth to further improve the clinical benefit of these procedures. Conventional static approaches, which only provide a snapshot of the tumor, are limited in their ability to reveal the impact of biopsy on tumor cell behavior such as migration, a process closely related to tumor malignancy. In particular, tumor cell migration is the key in highly aggressive brain tumors, where local tumor dissemination makes total tumor resection virtually impossible. The development of multiphoton imaging and chronic imaging windows allows scientists to study this dynamic process in living animals over time. Here, we describe a method for the high-resolution longitudinal imaging of brain tumor cells before and after a biopsy in the same living animal. This approach makes it possible to study the impact of this procedure on tumor cell behavior (migration, invasion, and proliferation). Furthermore, we discuss the advantages and limitations of this technique, as well as the ability of this methodology to study changes in the cancer cell behavior for other surgical interventions, including tumor resection or the implantation of chemotherapy wafers.

Here we describe a method for high-resolution time-lapse multiphoton imaging of brain tumor cells before and after invasive surgical intervention (e.g., biopsy) within the same living animal. This method allows studying the impact of these invasive surgical procedures on tumor cells&#39; migratory, invasive, and proliferative behavior at a single cell level.

التصوير التحيئي الطولي لسلوك خلايا أورام الدماغ استجابة لخزعة جراحية غازية

Biopsies are standard of care for cancer treatment and are clinically beneficial as they allow solid tumor diagnosis, prognosis, and personalized ...

Cancer Research

A Polished and Reinforced Thinned-skull Window for Long-term Imaging of the Mouse Brain

In vivo imaging of cortical function requires optical access to the brain without disruption of the intracranial environment. We present a method to form a polished and reinforced thinned skull (PoRTS) window in the mouse skull that spans several millimeters in diameter and is stable for months. The skull is thinned to 10 to 15 &mu;m in thickness with a hand held drill to achieve optical clarity, and is then overlaid with cyanoacrylate glue and a cover glass to: 1) provide rigidity, 2) inhibit bone regrowth and 3) reduce light scattering from irregularities on the bone surface. Since the skull is not breached, any inflammation that could affect the process being studied is greatly reduced. Imaging depths of up to 250 &mu;m below the cortical surface can be achieved using two-photon laser scanning microscopy. This window is well suited to study cerebral blood flow and cellular function in both anesthetized and awake preparations. It further offers the opportunity to manipulate cell activity using optogenetics or to disrupt blood flow in targeted vessels by irradiation of circulating photosensitizers.

We present a method to form an imaging window in the mouse skull that spans millimeters and is stable for months without inflammation of the brain. This method is well suited for longitudinal studies of blood flow, cellular dynamics, and cell/vascular structure using two-photon microscopy.

مصقول وعززت ضعيفة، جمجمة نافذة على المدى الطويل التصوير من مخ الفأر

In vivo imaging of cortical function requires optical access to the brain without disruption of the intracranial environment. We present a method to form ...

A Novel High-resolution In vivo Imaging Technique to Study the Dynamic Response of Intracranial Structures to Tumor Growth and Therapeutics

We have successfully integrated previously established Intracranial window (ICW) technology 1-4 with intravital 2-photon confocal microscopy to develop a novel platform that allows for direct long-term visualization of tissue structure changes intracranially. Imaging at a single cell resolution in a real-time fashion provides supplementary dynamic information beyond that provided by standard end-point histological analysis, which looks solely at 'snap-shot' cross sections of tissue.
Establishing this intravital imaging technique in fluorescent chimeric mice, we are able to image four fluorescent channels simultaneously. By incorporating fluorescently labeled cells, such as GFP+ bone marrow, it is possible to track the fate of these cells studying their long-term migration, integration and differentiation within tissue. Further integration of a secondary reporter cell, such as an mCherry glioma tumor line, allows for characterization of cell:cell interactions. Structural changes in the tissue microenvironment can be highlighted through the addition of intra-vital dyes and antibodies, for example CD31 tagged antibodies and Dextran molecules.
Moreover, we describe the combination of our ICW imaging model with a small animal micro-irradiator that provides stereotactic irradiation, creating a platform through which the dynamic tissue changes that occur following the administration of ionizing irradiation can be assessed.
Current limitations of our model include penetrance of the microscope, which is limited to a depth of up to 900 &mu;m from the sub cortical surface, limiting imaging to the dorsal axis of the brain. The presence of the skull bone makes the ICW a more challenging technical procedure, compared to the more established and utilized chamber models currently used to study mammary tissue and fat pads 5-7. In addition, the ICW provides many challenges when optimizing the imaging.

A Novel High-resolution In vivo Imaging Technique to Study the Dynamic Response of Intracranial Structures to Tumor Growth and Therapeutics

We describe a novel in vivo imaging technique that couples fluorescent chimeric mice with intracranial windows and high-resolution 2-photon microscopy. This imaging platform aids studies of dynamic changes in brain tissue and microvasculature, at a single-cell level, following pathological insults and is adaptable to assess intracranial drug delivery and distribution.

رواية عالية الدقة<em&gt; في الجسم الحي</em&gt; تقنية التصوير لدراسة الاستجابة الديناميكية للمنشآت داخل القحف لنمو الورم والتداوي

We have successfully integrated previously established Intracranial window (ICW) technology 1-4 with intravital 2-photon confocal microscopy to develop a ...

An Orthotopic Glioblastoma Mouse Model Maintaining Brain Parenchymal Physical Constraints and Suitable for Intravital Two-photon Microscopy

Glioblastoma multiforme (GBM) is the most aggressive form of brain tumors with no curative treatments available to date.
Murine models of this pathology rely on the injection of a suspension of glioma cells into the brain parenchyma following incision of the dura-mater. Whereas the cells have to be injected superficially to be accessible to intravital two-photon microscopy, superficial injections fail to recapitulate the physiopathological conditions. Indeed, escaping through the injection tract most tumor cells reach the extra-dural space where they expand abnormally fast in absence of mechanical constraints from the parenchyma.
Our improvements consist not only in focally implanting a glioma spheroid rather than injecting a suspension of glioma cells in the superficial layers of the cerebral cortex but also in clogging the injection site by a cross-linked dextran gel hemi-bead that is glued to the surrounding parenchyma and sealed to dura-mater with cyanoacrylate. Altogether these measures enforce the physiological expansion and infiltration of the tumor cells inside the brain parenchyma. Craniotomy was finally closed with a glass window cemented to the skull to allow chronic imaging over weeks in absence of scar tissue development.
Taking advantage of fluorescent transgenic animals grafted with fluorescent tumor cells we have shown that the dynamics of interactions occurring between glioma cells, neurons (e.g. Thy1-CFP mice) and vasculature (highlighted by an intravenous injection of a fluorescent dye) can be visualized by intravital two-photon microscopy during the progression of the disease.
The possibility to image a tumor at microscopic resolution in a minimally compromised cerebral environment represents an improvement of current GBM animal models which should benefit the field of neuro-oncology and drug testing.

We have established a cortical orthotopic glioblastoma model in mice for intravital two-photon microscopy that recapitulates the biophysical constraints normally at play during the growth of the tumor. A chronic glass window replacing the skull above the tumor enables the follow-up of the tumor progression over time by two-photon microscopy.

ومثلي الأشكال ورم أرومي نموذج الفأر القيود الحفاظ على الدماغ متني البدنية ومناسبة لحيوي داخلي ثنائي الفوتون المجهري

Glioblastoma multiforme (GBM) is the most aggressive form of brain tumors with no curative treatments available to date.
Murine models of this pathology ...

تتبع في الوقت الحقيقي للجسيمات النانوية في أورام المخ باستخدام 2P-IVM في الفئران

Two-Photon Intravital Microscopy of Glioblastoma in a Murine Model

The delivery of intravenously administered cancer therapeutics to brain tumors is limited by the blood-brain barrier. A method to directly image the accumulation and distribution of macromolecules in brain tumors in vivo would greatly enhance our ability to understand and optimize drug delivery in preclinical models. This protocol describes a method for real-time in vivo tracking of intravenously administered fluorescent-labeled nanoparticles with two-photon intravital microscopy (2P-IVM) in a mouse model of glioblastoma (GBM).
The protocol contains a multi-step description of the procedure, including anesthesia and analgesia of experimental animals, creating a cranial window, GBM cell implantation, placing a head bar, conducting 2P-IVM studies, and post-surgical care for long-term follow-up studies. We show representative 2P-IVM imaging sessions and image analysis, examine the advantages and disadvantages of this technology, and discuss potential applications.
This method can be easily modified and adapted for different research questions in the field of in vivo preclinical brain imaging.

تسليط الضوء على المؤلف: استراتيجيات التصوير متعدد الوسائط لتحسين توصيل الدواء والكشف المبكر في علاج الورم الأرومي الدبقي

We present a novel approach for two-photon microscopy of the tumor delivery of fluorescent-labeled iron oxide nanoparticles to glioblastoma in a mouse model.

الفحص المجهري ثنائي الفوتون داخل الجسم للورم الأرومي الدبقي في نموذج الفئران

The delivery of intravenously administered cancer therapeutics to brain tumors is limited by the blood-brain barrier. A method to directly image the ...

Precise Brain Mapping to Perform Repetitive In Vivo Imaging of Neuro-Immune Dynamics in Mice

The central nervous system (CNS) is regulated by a complex interplay of neuronal, glial, stromal, and vascular cells that facilitate its proper function. Although studying these cells in isolation in vitro or together ex vivo provides useful physiological information; salient features of neural cell physiology will be missed in such contexts. Therefore, there is a need for studying neural cells in their native in vivo environment. The protocol detailed here describes repetitive in vivo two-photon imaging of neural cells in the rodent cortex as a tool to visualize and study specific cells over extended periods of time from hours to months. We describe in detail the use of the grossly stable brain vasculature as a coarse map or fluorescently labeled dendrites as a fine map of select brain regions of interest. Using these maps as a visual key, we show how neural cells can be precisely relocated for subsequent repetitive in vivo imaging. Using examples of in vivo imaging of fluorescently-labeled microglia, neurons, and NG2+ cells, this protocol demonstrates the ability of this technique to allow repetitive visualization of cellular dynamics in the same brain location over extended time periods, that can further aid in understanding the structural and functional responses of these cells in normal physiology or following pathological insults. Where necessary, this approach can be coupled to functional imaging of neural cells, e.g., with calcium imaging. This approach is especially a powerful technique to visualize the physical interaction between different cell types of the CNS in vivo when genetic mouse models or specific dyes with distinct fluorescent tags to label the cells of interest are available.

This protocol describes a chronic cranial window implantation technique that can be used for longitudinal imaging of neuro-glio-vascular structures, interactions, and function in both healthy and diseased conditions. It serves as a complementary alternative to the transcranial imaging approach that, while often preferred, possesses some critical limitations.

رسم خرائط دقيقة للدماغ لأداء المتكررة في التصوير فيفو من ديناميات العصبية المناعية في الفئران

The central nervous system (CNS) is regulated by a complex interplay of neuronal, glial, stromal, and vascular cells that facilitate its proper function. ...

بدء تصوير دبقي

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

تقنية نافذة رقيقة الجمجمة لالمزمنة ثنائي الفوتون في الجسم الحي التصوير من الخلايا الدبقية الصغيرة في الفئران نماذج من Neuroinflammation

زرع داخل القحف مع 3d اللاحقة في فيفو Bioluminescent التصوير الاورام الدبقية الفئران

التصوير التحيئي الطولي لسلوك خلايا أورام الدماغ استجابة لخزعة جراحية غازية

مصقول وعززت ضعيفة، جمجمة نافذة على المدى الطويل التصوير من مخ الفأر

رواية عالية الدقة

ومثلي الأشكال ورم أرومي نموذج الفأر القيود الحفاظ على الدماغ متني البدنية ومناسبة لحيوي داخلي ثنائي الفوتون المجهري

الفحص المجهري ثنائي الفوتون داخل الجسم للورم الأرومي الدبقي في نموذج الفئران

الفحص المجهري ثنائي الفوتون داخل الجسم للورم الأرومي الدبقي في نموذج الفئران

الفحص المجهري ثنائي الفوتون داخل الجسم للورم الأرومي الدبقي في نموذج الفئران

رسم خرائط دقيقة للدماغ لأداء المتكررة في التصوير فيفو من ديناميات العصبية المناعية في الفئران