وقد تم تمويل هذا العمل من قبل الجيش الأمريكي غرانت (W81XWH-08-1-0701) وعلى زمالة من مستشفى مؤسسة كارل.

الإجراء هو في التوافق التام مع بروتوكول IACUC عدد 13302 وتمت الموافقة من قبل تقسيم الثروة الحيوانية. 1. أداة إعداد <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الأوتوكلاف جميع الصكوك غير القابل للتصرف الذي كان يستخدم قبل العملية الجراحية لضمان العقم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعقيم الأدوات المستخدمة عدة مرات في جلسة للتعقيم الزجاج حبة بين الاستخدامات. </li></ol> 2. إعداد هيدروجيل <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ذوبان الجليد والخلايا الجذعية لوحة لا تقل عن 24 ساعة قبل إنشاء بناء هيدروجيل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد بقع يوم واحد قبل إجراء العمليات الجراحية باستخدام جهاز المجسمة (أو أداة مماثلة) التي وصفت بالتفصيل الكامل في المنشورات السابقة 8،18. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لإنشاء هيدروجيل، أولا إنشاء التصميم بمساعدة الكمبيوتر (CAD) نموذج من التصحيح المطلوب وتصدير تصميم لشكل المجسم (STL). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إيجاد حل قبل هلام التي كتبها dissolvinز بولي (جلايكول الإثيلين) dimethacrylate (PEGDMA) في العقيمة برنامج تلفزيوني 1X للحصول على 20٪ ث / ت حل. وفي الوقت نفسه، حل photoinitiator 1- [4- (ethoxy 2-هيدروكسي) -phenyl] -2-هيدروكسي-2-ميثيل-1-البروبان-1-واحد في DMSO. إضافة photoinitiator إلى حل PEGDMA في نهائي ث / ت من 0.5٪. مباشرة قبل يشابك، إضافة 100 مل من كثافة المطلوب من الخلايا. ملاحظة: A كثافة الخلايا بين 2.0 × 10 5 -2.0 × 10 6 خلية / مل يوصى. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ماصة الحل قبل هلام في طبق في وسط المنصة جيش تحرير السودان وتشغيل البرنامج جيش تحرير السودان مع المحكمة الخاصة بلبنان تنسيق التصميم التي تم تحميلها سابقا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة البقع من الجهاز واحتضان الهلاميات المائية O / N في تعديل متوسطة النسر Dulbecco و(DMEM) تستكمل مع المصل 5٪ بقري جنيني (FBS)، و 100 U / البنسلين مل، و 100 ملغ / مل الستربتومايسين للسماح للخلايا لضبط على البيئة في التصحيح. </li></ol> 3. إعداد الحيوانية وintubati عن طريق الفمعلى <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تقييم كل فأر قبل الإجراء للتأكد من أن الحيوان هو في صحة جيدة، كما هو محدد من عادات النظافة الشخصية والتفاعل مع زملائه في قفص. ملاحظة: استخدمت أنثى 8-10 أسبوع من العمر C57BL / 6J الفئران لهذا الإجراء، ومع ذلك، أي سن الماوس أو نوع يمكن استخدامها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الحيوانات في دائرة التخدير وفضح إلى 5٪ isofluorane مع 1 لتر / دقيقة O 2 الدعم. رصد مستوى التخدير من قرصة أخمص قدميه لا ارادي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة واحدة يتم تخدير الحيوان بشكل صحيح، تزن ووضعها على الوقوف التنبيب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> توجيه مصدر الضوء نحو تجويف الصدر الحيوان واستخدام الملقط لسحب سطح الحنجرة وفضح الحبال الصوتية. توجيه بعناية 20 G angiocath بين الحبال الصوتية، وإدراج بسلاسة في القصبة الهوائية. الكشف عن الإدراج الصحيح من قبل حركة ميكانيكية من تجويف الصدر بمجرد توصيل القسطرة إلى التنفس الصناعي الحيوانات الصغيرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضبط إعدادات التهوية إلى thه وزن الحيوان استنادا إلى المبادئ التوجيهية للشركة المصنعة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة واحدة مدخل أنبوب، ووضع الحيوان في موقف ضعيف على وسادة التدفئة لمنع انخفاض حرارة الجسم. تأكد من أن لوحة التدفئة لا تتجاوز 40 درجة مئوية. إذا لزم الأمر، ووضع حاجز بين الحيوان وسادة التدفئة لتقليل فرصة الحروق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة الشعر من موقع الجراحية من خلال استخدام كريم مزيل الشعر. تعقيم الموقع من قبل 3 الدعك بالتناوب من betadine و 75٪ من الإيثانول لضمان التعقيم السليم. وضع الستارة لفضح مجرد موقع الجراحية، ووضع مرهم التعليم والتدريب المهني على العيون لمنع جفاف أثناء العملية. </li></ol> 4. إجراء العمليات الجراحية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم تنفيذ بضع الصدر على الجانب الأيسر من الحيوان، وبالتالي، وجعل شق الجلد حوالي 1 سم إلى يسار عظمة القص، الذي يمتد على طول القص. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام ملقط لفصل الطبقة العضلية من القفص الصدري الأساسي في خطوتين. نلاحظ على Deline فيخط أثناء التشغيل الذي يمثل العضلات الصدرية الكبرى للحيوان. رفع هذه العضلة قليلا، تفصلها عن الكامنة في العضلات المائلة الخارجية وسحب إعلامي. ثم، تحرير العضلات المائلة الخارجية من القفص الصدري الأساسي بنفس الطريقة، وسحب أفقيا، وتوفير وجهة نظر غير محجوب من أضلاعه الثاني والثالث، والرابع. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أداء بضع الصدر بين الأضلاع الثالث والرابع. رفع بلطف الضلع الرابع واستخدام cauterizer لفتح تجويف الصدر بين الأضلاع الثالث والرابع. وضع مبعدات لمواصلة فتح تجويف وكشف القلب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام ملقط لتمزق التامور رقيقة من القلب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate الشريان التاجي الأيسر مع النايلون خياطة 8-0 حيدة. وضع الخيط حوالي 4 مم من قمة القلب، مباشرة تحت الحافة السفلي من الأذين الأيسر. تحديد موضع خياطة السليم من قبل ابيضاض من عضلة القلب البطيني وزيادة في حجم الأذين الأيسر بعد sutuوقد تم ربط إعادة. </li></ol> 5. تصحيح التنسيب والغراء <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الحفاظ بقع عند 37 درجة مئوية و 5٪ CO 2 الشروط حتى الاستخدام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> رفع بلطف التصحيح باستخدام ملعقة مسطحة العضوية ووضعه برفق على سطح القلب، في موقع احتشاء. ملاحظة: لمنع الانزلاق البطين الأيسر، ويمكن عقد التصحيح في المكان من خلال الحفاظ على محمل الجد الاتصال باستخدام ملعقة أو غيض من زوج من الملقط. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد الغراء عن طريق خلط نسبة 4: 1 من الفيبرينوجين إلى ثرومبين. مزيج الحل بواسطة pipetting المتكررة حتى يبدأ في رشاقته، عادة في حدود 1 دقيقة بعد بداية الإعداد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وبمجرد وصول اللزوجة حل على المستوى المطلوب، بسرعة نقل ما يقرب من 10 مل إلى السطح التصحيح. ملاحظة: زمن التخثر من الغراء الليفين سريعا، وتوفير نافذة صغيرة من فرصة لنقل فعالة من الغراء. </li></ol> 6. خياطة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><lI&gt; تنفيذ كافة خيوط إغلاق باستخدام 6-0 حيدة النايلون خياطة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إغلاق طبقة ضلع مع 3-4 خيوط متقطعة الفردية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قبل الإغلاق الكامل للطبقة بين الضلوع، اضافة الى وجود قنية PE-10 في شق لاخلاء تجويف الصدر بعد إغلاق اكتمال واعادة الضغط داخل الجنبة السليم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إغلاق عضلات الصدر مع 3-4 خيوط متقطعة الفردية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ختم طبقة الجلد مع خياطة مستمرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد اغلاق تام، ونعلق حقنة 1.0 مل إلى نهاية قنية واستخدامها لاخلاء تجويف الصدر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق لاصق الأنسجة لموقع شق لتعزيز موقع خياطة. </li></ol> 7. علاج ما بعد الجراحة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعطاء الفئران حقن البوبرينورفين (0،05 حتي 1،0 ملغ / كلغ) وكاربروفين (2.2 ملغ / كلغ) تحت الجلد مباشرة بعد ربط الشريان التاجي والأقل 20 دقيقة قبل إحياء. إدارة كل من المخدرات 08/06 ساعة بعد الجراحة، ومن ثم إعطاء مرتين يوميا لمدة تصل إلى ثلاثة أيام للسيطرة على الألم والضيق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستمرار مراقبة الحيوانات حتى ساعة واعية وكل لأول 4 ساعات بعد الجراحة. إجراء فحص ثان ليلة الجراحة (لاحقا 04/02 ساعة) لإدارة جرعة ثانية من مسكن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مراقبة الحيوانات يوميا بعد اليوم الثاني بعد العملية، حتى تظهر الحيوانات مستقرة. </li></ol> تحليل 8. من وظيفة القلب والأنسجة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أداء echocardiographs على الفئران 4 أسابيع بعد إجراء لتحديد مدى الضرر بعد MI. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الفئران مع 4-5٪ الأيزوفلورين داخل غرفة التخدير لتحريض التخدير استنشاق، ومن ثم 2٪ الأيزوفلورين عبر قناع الوجه للتخدير الصيانة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطهير المنطقة التصوير مع كريم مزيل الشعر واستخدام الموجات فوق الصوتية حيوان صغير للحصول على 2D M-وضع تخطيط صدى القلب فحص القلب النابض وتسجيل المعلمات أسو الوظيفيciated معها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الموت ببطء الفئران في غرفة غاز ثاني أكسيد الكربون، ثم جمع قلوب من الحيوانات وضعها في محلول الفورمالين 10٪ لمدة 24 ساعة. بعد 24 ساعة، ونقل القلوب إلى 70٪ من الإيثانول والحفاظ على 4 درجات مئوية حتى معالجة الأنسجة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> معالجة قلوب وتضمينها في كتل البارافين. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع 5 مم أقسام من خلال المنطقة البطين في القلب، بدءا من قمة وتنتهي في الأذين. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وصمة عار مقطوع شرائح مع كل من ثلاثي الألوان ماسون والهيماتوكسيلين وصمة عار يوزين باستخدام البروتوكولات القياسية. </li></ol>

<ol>
	<li>Kolk, M. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=LAD-ligation:+a+murine+model+of+myocardial+infarction.">LAD-ligation: a murine model of myocardial infarction.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2009).</li><li>Li, Y., Yao, Y., Sheng, Z., Yang, Y., Ma, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dual-modal+tracking+of+transplanted+mesenchymal+stem+cells+after+myocardial+infarction.">Dual-modal tracking of transplanted mesenchymal stem cells after myocardial infarction.</a> International journal of nanomedicine. 6, 815-823 (2011).</li><li>Nagaya, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intravenous+administration+of+mesenchymal+stem+cells+improves+cardiac+function+in+rats+with+acute+myocardial+infarction+through+angiogenesis+and+myogenesis.">Intravenous administration of mesenchymal stem cells improves cardiac function in rats with acute myocardial infarction through angiogenesis and myogenesis.</a> American journal of physiology. Heart and circulatory physiology. 287, H2670-H2676 (2004).</li><li>Wang, J. S., Shum-Tim, D., Chedrawy, E., Chiu, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+coronary+delivery+of+marrow+stromal+cells+for+myocardial+regeneration:+pathophysiologic+and+therapeutic+implications.">The coronary delivery of marrow stromal cells for myocardial regeneration: pathophysiologic and therapeutic implications.</a> The Journal of thoracic and cardiovascular surgery. 122, 699-705 (2001).</li><li>Cashman, T. J., Gouon-Evans, V., Costa, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mesenchymal+stem+cells+for+cardiac+therapy:+practical+challenges+and+potential+mechanisms.">Mesenchymal stem cells for cardiac therapy: practical challenges and potential mechanisms.</a> Stem cell reviews. 9, 254-265 (2013).</li><li>Sutton, M. G., Sharpe, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+ventricular+remodeling+after+myocardial+infarction:+pathophysiology+and+therapy.">Left ventricular remodeling after myocardial infarction: pathophysiology and therapy.</a> Circulation. 101, 2981-2988 (2000).</li><li>Smolina, K., Wright, F. L., Rayner, M., Goldacre, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+survival+and+recurrence+after+acute+myocardial+infarction+in+England,+2004+to+2010.">Long-term survival and recurrence after acute myocardial infarction in England, 2004 to 2010.</a> Circulation. Cardiovascular quality and outcomes. 5, 532-540 (2012).</li><li>Chan, V., Zorlutuna, P., Jeong, J. H., Kong, H., Bashir, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three-dimensional+photopatterning+of+hydrogels+using+stereolithography+for+long-term+cell+encapsulation.">Three-dimensional photopatterning of hydrogels using stereolithography for long-term cell encapsulation.</a> Lab on a chip. 10, 2062-2070 (2010).</li><li>Kai, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cell-loaded+nanofibrous+patch+promotes+the+regeneration+of+infarcted+myocardium+with+functional+improvement+in+rat+model.">Stem cell-loaded nanofibrous patch promotes the regeneration of infarcted myocardium with functional improvement in rat model.</a> Acta biomaterialia. 10, 2727-2738 (2014).</li><li>Serpooshan, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+bioengineered+acellular+collagen+patch+on+cardiac+remodeling+and+ventricular+function+post+myocardial+infarction.">The effect of bioengineered acellular collagen patch on cardiac remodeling and ventricular function post myocardial infarction.</a> Biomaterials. 34, 9048-9055 (2013).</li><li>Cavallo, L. M., Solari, D., Somma, T., Savic, D., Cappabianca, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Awake+Endoscope-Guided+Sealant+Technique+with+Fibrin+Glue+in+the+Treatment+of+Postoperative+Cerebrospinal+Fluid+Leak+After+Extended+Transsphenoidal+Surgery:+Technical+Note.">The Awake Endoscope-Guided Sealant Technique with Fibrin Glue in the Treatment of Postoperative Cerebrospinal Fluid Leak After Extended Transsphenoidal Surgery: Technical Note.</a> World neurosurgery. , (2013).</li><li>Chung, H. W., Mehta, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fibrin+glue+for+Gundersen+flap+surgery.">Fibrin glue for Gundersen flap surgery.</a> Clinical Ophthalmology. 7, 479-484 (2013).</li><li>Dunn, C. J., Goa, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fibrin+sealant:+a+review+of+its+use+in+surgery+and+endoscopy.">Fibrin sealant: a review of its use in surgery and endoscopy.</a> Drugs. 58, 863-886 (1999).</li><li>Chi, N. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+repair+achieved+by+bone+marrow+mesenchymal+stem+cells/silk+fibroin/hyaluronic+acid+patches+in+a+rat+of+myocardial+infarction+model.">Cardiac repair achieved by bone marrow mesenchymal stem cells/silk fibroin/hyaluronic acid patches in a rat of myocardial infarction model.</a> Biomaterials. 33, 5541-5551 (2012).</li><li>Erb, M. A., Claus, T., Hartrumpf, M., Bachmann, S., Albes, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+Tachosil+surgical+patch+or+fibrin+glue+in+coronary+artery+surgery+does+not+affect+quality+of+anastomosis+or+provoke+postoperative+adhesions+in+pigs.">The use of Tachosil surgical patch or fibrin glue in coronary artery surgery does not affect quality of anastomosis or provoke postoperative adhesions in pigs.</a> European journal of cardio-thoracic surgery : official journal of the European Association for Cardio-thoracic Surgery. 36, 703-707 (2009).</li><li>Okada, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+treatment+for+rupture+of+left+ventricular+free+wall+after+acute+myocardial+infarction.">Surgical treatment for rupture of left ventricular free wall after acute myocardial infarction.</a> Interactive cardiovascular and thoracic surgery. 4, 203-206 (2005).</li><li>Simpson, D., Liu, H., Fan, T. H., Nerem, R., Dudley, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+tissue+engineering+approach+to+progenitor+cell+delivery+results+in+significant+cell+engraftment+and+improved+myocardial+remodeling.">A tissue engineering approach to progenitor cell delivery results in significant cell engraftment and improved myocardial remodeling.</a> Stem Cells. 25, 2350-2357 (2007).</li><li>Jeong, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Living'+microvascular+stamp+for+patterning+of+functional+neovessels;+orchestrated+control+of+matrix+property+and+geometry.">Living' microvascular stamp for patterning of functional neovessels; orchestrated control of matrix property and geometry.</a> Advanced Materials. 24, 58-63 (2012).</li><li>Wu, X., Ren, J., Li, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fibrin+glue+as+the+cell-delivery+vehicle+for+mesenchymal+stromal+cells+in+regenerative+medicine.">Fibrin glue as the cell-delivery vehicle for mesenchymal stromal cells in regenerative medicine.</a> Cytotherapy. 14, 555-562 (2012).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

مع هذا النهج إلى نموذج MI الفئران، وقد وضعنا نظاما يقلل من الأضرار التي لحقت المناطق غير عضلة القلب التي ترتبط مع تقنيات MI الفئران الأخرى. وتشمل هذه المناطق الضرر الذي يسببه القصبة الهوائية، وق...

ويعرف احتشاء عضلة القلب (MI)، وانقطاع الدم إلى منطقة القلب الناجمة عن انسداد في الشريان التاجي الرئيسي. الأضرار الناجمة عن MI ويرجع ذلك إلى إعادة تشكيل أنسجة القلب قابلة للحياة إلى ندبا غير وظيفية، مما يقلل من قدرة القلب، أو بشكل أكثر تحديدا، البطين الأيسر، للفوز بشكل صحيح. هذا يؤدي إلى انخفاض في حجم الدم التي يمكن تسليمها للجسم مع كل نبضة قلب، والمعروفة باسم حجم المخ، ونسبة الدم التي يتم ضخها من القلب مع كل نبضة قلب، والمعروفة باسم جزء طرد 6. هذه، جنبا إلى جنب مع وظائف تضاءلت أخرى، ويزيد من الضغط على بقية من القلب للحفاظ على وظيفة مناسبة. في كثير من الأحيان، يمكن أن هذه السلالة زيادة تصبح شديدة بحيث يؤدي إلى نوبة قلبية ثانية، وهي ظاهرة ينظر في ما يقرب من 10٪ من الأفراد (7). بينما تطورت الممارسات الطبية لعلاجوفور وقوع MI، وقد تم تطوير تقنية لوقف أي، بطيئة، أو عكس الآثار الجانبية السلبية لإعادة تشكيل الأنسجة. لم تثبت الجذعية ظهرت علاجات الخلايا باعتبارها السبل الممكنة لمثل هذا العلاج، ولكن، على الرغم من إمكانياتها الواعدة، والخلايا الجذعية بنجاح في إعداد سريرية. نظرية واحدة لأوجه القصور فيها هي عدم القدرة على ضمان بقاء الخلايا مفيدة في موقع احتشاء طويلة بما يكفي لتوليد نتائج إيجابية 5. وقد تبين أن ما لا يزيد عن 24٪ من الخلايا التي يتم حقنها ببساطة إلى موقع احتشاء نجت وبقيت في تلف الموقع 1 يوم بعد الولادة 2. وهناك احتمال ممكن لمعالجة هذه القضية من الاحتفاظ الخلية هو تطوير أنظمة هيدروجيل حيويا التي تغلف إما خلايا أو العلاجات التي يمكن تسليمها إلى الموقع المتضرر. هيدروجيل الاختيار في هذا البروتوكول هو بولي (جلايكول الإثيلين) dimethacrylate بسبب الاستخدام السابق في تغليف الخلايا العلاقات العامةocedures، ومع ذلك، أي هيدروجيل قادرة على التغليف ويمكن استخدام 8. تسليم التصحيح مباشرة إلى موقع الإصابة يضمن اتصال الخلية الى النسيج على مدار فترة طويلة من الزمن، مما يزيد من طول الوقت الذي يمكن لخلايا توفر عوامل مفيدة لعضلة القلب الأساسي. A عنق الزجاجة لنهج التصحيح هو صعوبة الالتزام التصحيح إلى سطح القلب. والتغلب على العديد من المجموعات ذلك من خلال مجموعة متنوعة من التقنيات، والأكثر انتشارا كونه خياطة بسيطة لربط بناء على سطح القلب 9،10. وقد ثبت هذا النجاح في عدد من الحالات التي يتم فيها بناء من مادة أشد، ولكن فشل عندما حاول على نظام هيدروجيل، نظرا لتركيز كميات كبيرة من المياه والطبيعة الحساسة للبناء التصحيح. للتغلب على هذا، ونحن قد تستخدم لالفيبرين الغراء نظام لاصق الخارجي الذي يحاكي كيمياء تشكيل الجلطة. وقد استخدمت الليفين الغراء في العديد من العمليات الجراحية الطبية، المؤتمر الوطني العراقيluding الدموع الجافية، الناسور الشعب الهوائية، وزراعة القرنية، وتسليط الضوء على توافق مع الحياة للمنتج وتسرب الجرح 11-13. بالإضافة إلى ذلك، تم استخدام الفيبرين لمجموعة متنوعة من الأغراض القلب، بما في ذلك العلاج الجراحي للتمزق البطين الأيسر والشريان التاجي جراحات الشريان الالتفافية، ومع ذلك، واستخدامه بمثابة الغراء التصاق لرقعة القلب لا يستخدم عادة 14-17. A صياغة بسيطة من الثرومبين والفيبرينوجين النتائج في الغراء حيويا التي يمكن وضعها مباشرة على السطح الخارجي للرقعة القلب الخارجي، وتوفير نظام التصاق قابل للتطبيق لضمان التصحيح لتفاعل القلب.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Harvard Model 687 Mouse Ventilator</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td>55-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inintech Biosciences LLC Dry Glass Bead Sterilizer</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>NC9531961</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leica MZ6 surgical microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cautery Kit</td>
			<td>Gemini</td>
			<td>GEM 5917</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Delicate Forceps - 0.4mm Tips Angled</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11063-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agricola Retractor - 3.5cm Spread</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>17005-04</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spring Scissors - 2.5mm Blades Straight</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>15000-08</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Castroviejo Needle Holder - w/Lock Tungsten Carbide 14cm</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>12565-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Scissors - Delicate Straight 10.5 cm</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14060-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>8-0 monofilament suture</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>8730P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-0 Silk suture</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>639G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thrombin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T7009</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fibrinogen</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>F3879</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vetbond Tissue Adhesive</td>
			<td>3M</td>
			<td>1469SB</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a hydrogel construct and fibrin-based glue approach to deliver therapeutics in a murine myocardial infarction model.

The murine MI model is widely recognized in the field of cardiovascular disease, and has consistently been used as a first step to test the efficacy of treatments in vivo1. The traditional, established protocol has been further fine-tuned to minimize the damage to the animal. Notably, the pectoral muscle layers are teased away rather than simply cut, and the thoracotomy is approached intercostally as opposed to breaking the ribs in a sternotomy, preserving the integrity of the ribcage. With these changes, the overall stress on the animal is decreased. 
Stem cell therapies aimed to alleviate the damage caused by MIs have shown promise over the years for their pro-angiogenic and anti-apoptotic benefits. Current approaches of delivering cells to the heart surface typically involve the injection of the cells either near the damaged site, within a coronary artery, or into the peripheral blood stream2-4. While the cells have proven to home to the damaged myocardium, functionality is limited by their poor engraftment at the site of injury, resulting in diffusion into the blood stream5. This manuscript highlights a procedure that overcomes this obstacle with the use of a cell-encapsulated hydrogel patch. The patch is fabricated prior to the surgical procedure and is placed on the injured myocardium immediately following the occlusion of the left coronary artery. To adhere the patch in place, biocompatible external fibrin glue is placed directly on top of the patch, allowing for it to dry to both the patch and the heart surface. This approach provides a novel adhesion method for the application of a delicate cell-encapsulating therapeutic construct.

أثناء إجراء العمليات الجراحية، ربط الشريان التاجي الأيسر يمكن التعرف من خلال وضع علامة ابيضاض المصب من الشريان المغطي. كاختبار قبل ربط العقده، خياطة ويمكن تشديد لفترة وجيزة للتحقق مما إذا كان في المكان المناسب. بالإضافة إلى ذلك، منذ انسداد الشريان النتائج إلى انخفا...

Watch this Scientific Journal Video about A Hydrogel Construct and Fibrin-based Glue Approach to Deliver Therapeutics in a Murine Myocardial Infarction Model. at JoVE.com

A Hydrogel Construct and Fibrin-based Glue Approach to Deliver Therapeutics in a Murine Myocardial Infarction Model.

This protocol aims to alleviate the limitation of poor cell engraftment for stem cell treatment of myocardial infarctions through the use of a hydrogel system and a fibrin-based glue. With this approach, cell-to-tissue contact post-infarction can be maintained, increasing the therapeutic potential of beneficial agents at the site of injury.

A هيدروجيل بناء والليفين المستندة الغراء النهج لتسليم التداوي في الفئران احتشاء عضلة القلب النموذجي.

The murine MI model is widely recognized in the field of cardiovascular disease, and has consistently been used as a first step to test the efficacy of ...

a-hydrogel-construct-fibrin-based-glue-approach-to-deliver

Research

JoVE Journal

Medicine

8.6K Views.  University of Illinois at Urbana-Champaign. This protocol aims to alleviate the limitation of poor cell engraftment for stem cell treatment of myocardial infarctions through the use of a hydrogel system and a fibrin-based glue. With this approach, cell-to-tissue contact post-infarction can be maintained, increasing the therapeutic potential of beneficial agents at the site of injury.

Video: A Hydrogel Construct and Fibrin-based Glue Approach to Deliver Therapeutics in a Murine Myocardial Infarction Model.

Acute Myocardial Infarction in Rats

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular diseases. Animal models that mimic human cardiac disease, such as myocardial infarction (MI) and ischemia-reperfusion (IR) that induces heart failure as well as pressure-overload (transverse aortic constriction) that induces cardiac hypertrophy and heart failure (Goldman and Tarnavski), are useful models to study cardiovascular disease. In particular, myocardial ischemia (MI) is a leading cause for cardiovascular morbidity and mortality despite controlling certain risk factors such as arteriosclerosis and treatments via surgical intervention (Thygesen). Furthermore, an acute loss of the myocardium following myocardial ischemia (MI) results in increased loading conditions that induces ventricular remodeling of the infarcted border zone and the remote non-infarcted myocardium. Myocyte apoptosis, necrosis and the resultant increased hemodynamic load activate multiple biochemical intracellular signaling that initiates LV dilatation, hypertrophy, ventricular shape distortion, and collagen scar formation. This pathological remodeling and failure to normalize the increased wall stresses results in progressive dilatation, recruitment of the border zone myocardium into the scar, and eventually deterioration in myocardial contractile function (i.e. heart failure). The progression of LV dysfunction and heart failure in rats is similar to that observed in patients who sustain a large myocardial infarction, survive and subsequently develops heart failure (Goldman). The acute myocardial infarction (AMI) model in rats has been used to mimic human cardiovascular disease; specifically used to study cardiac signaling mechanisms associated with heart failure as well as to assess the contribution of therapeutic strategies for the treatment of heart failure. The method described in this report is the rat model of acute myocardial infarction (AMI). This model is also referred to as an acute ischemic cardiomyopathy or ischemia followed by reperfusion (IR); which is induced by an acute 30-minute period of ischemia by ligation of the left anterior descending artery (LAD) followed by reperfusion of the tissue by releasing the LAD ligation (Vasilyev and McConnell). This protocol will focus on assessment of the infarct size and the area-at-risk (AAR) by Evan's blue dye and triphenyl tetrazolium chloride (TTC) following 4-hours of reperfusion; additional comments toward the evaluation of cardiac function and remodeling by modifying the duration of reperfusion, is also presented. Overall, this AMI rat animal model is useful for studying the consequence of a myocardial infarction on cardiac pathophysiological and physiological function.

The rat model of acute myocardial infarction (AMI) is useful to study the consequence of a MI on cardiac pathophysiological and physiological function.

احتشاء عضلة القلب الحاد في الفئران

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular ...

Coronary Artery Ligation and Intramyocardial Injection in a Murine Model of Infarction

Mouse models are a valuable tool for studying acute injury and chronic remodeling of the myocardium in vivo. With the advent of genetic modifications to the whole organism or the myocardium and an array of biological and/or synthetic materials, there is great potential for any combination of these to assuage the extent of acute ischemic injury and impede the onset of heart failure pursuant to myocardial remodeling. 
Here we present the methods and materials used to reliably perform this microsurgery and the modifications involved for temporary (with reperfusion) or permanent coronary artery occlusion studies as well as intramyocardial injections. The effects on the heart that can be seen during the procedure and at the termination of the experiment in addition to histological evaluation will verify efficacy. 
Briefly, surgical preparation involves anesthetizing the mice, removing the fur on the chest, and then disinfecting the surgical area. Intratracheal intubation is achieved by transesophageal illumination using a fiber optic light. The tubing is then connected to a ventilator. An incision made on the chest exposes the pectoral muscles which will be cut to view the ribs. For ischemia/reperfusion studies, a 1 cm piece of PE tubing placed over the heart is used to tie the ligature to so that occlusion/reperfusion can be customized. For intramyocardial injections, a Hamilton syringe with sterile 30gauge beveled needle is used. When the myocardial manipulations are complete, the rib cage, the pectoral muscles, and the skin are closed sequentially. Line block analgesia is effected by 0.25% marcaine in sterile saline which is applied to muscle layer prior to closure of the skin. The mice are given a subcutaneous injection of saline and placed in a warming chamber until they are sternally recumbent. They are then returned to the vivarium and housed under standard conditions until the time of tissue collection. At the time of sacrifice, the mice are anesthetized, the heart is arrested in diastole with KCl or BDM, rinsed with saline, and immersed in fixative. Subsequently, routine procedures for processing, embedding, sectioning, and histological staining are performed. 
Nonsurgical intubation of a mouse and the microsurgical manipulations described make this a technically challenging model to learn and achieve reproducibility. These procedures, combined with the difficulty in performing consistent manipulations of the ligature for timed occlusion(s) and reperfusion or intramyocardial injections, can also affect the survival rate so optimization and consistency are critical.

Numerous genetic manipulations and/or intramyocardial injections of genes, proteins, cells, and/or biomaterials are superimposed upon the dimension of time in studies of acute ischemia/ reperfusion injury and chronic remodeling in mice. This video illustrates the microsurgical procedures for ischemia/reperfusion, permanent coronary artery ligation, and intramyocardial injection studies.

الشريان التاجي ربط Intramyocardial وحقن الفئران في نموذج من احتشاء

Mouse models are a valuable tool for studying acute injury and chronic remodeling of the myocardium in vivo.  With the advent of genetic modifications to ...

A Murine Closed-chest Model of Myocardial Ischemia and Reperfusion

Surgical trauma by thoracotomy in open-chest models of coronary ligation induces an immune response which modifies different mechanisms involved in ischemia and reperfusion. Immune response includes cytokine expression and release or secretion of endogenous ligands of innate immune receptors. Activation of innate immunity can potentially modulate infarct size. We have modified an existing murine closed-chest model using hanging weights which could be useful for studying myocardial pre- and postconditioning and the role of innate immunity in myocardial ischemia and reperfusion. This model allows animals to recover from surgical trauma before onset of myocardial ischemia.
Volatile anesthetics have been intensely studied and their preconditioning effect for the ischemic heart is well known. However, this protective effect precludes its use in open chest models of coronary artery ligation. Thus, another advantage could be the use of the well controllable volatile anesthetics for instrumentation in a chronic closed-chest model, since their preconditioning effect lasts up to 72 hours. Chronic heart diseases with intermittent ischemia and multiple hit models are other possible applications of this model.
For the chronic closed-chest model, intubated and ventilated mice undergo a lateral blunt thoracotomy via the 4th intercostal space. Following identification of the left anterior descending a ligature is passed underneath the vessel and both suture ends are threaded through an occluder. Then, both suture ends are passed through the chest wall, knotted to form a loop and left in the subcutaneous tissue. After chest closure and recovery for 5 days, mice are anesthetized again, chest skin is reopened and hanging weights are hooked up to the loop under ECG control.
At the end of the ischemia/reperfusion protocol, hearts can be stained with TTC for infarct size assessment or undergo perfusion fixation to allow morphometric studies in addition to histology and immunohistochemistry.

Surgical trauma induces an inflammatory response. Cytokines and endogenous ligands are known to modulate myocardial infarct size following ischemia and reperfusion. We present a modified closed-chest model of murine ischemia and reperfusion using hanging weights to minimize effects of thoracotomy.

والفئران مغلقة الصدر نموذج نقص التروية القلبية وإعادة إشباع الخلايا

Surgical trauma by thoracotomy in open-chest models of coronary ligation induces an immune response which modifies different mechanisms involved in ...

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One important prerequisite is a good understanding of all safety and efficacy aspects obtained in a large animal model that validly reflect the human scenario of myocardial infarction (MI). Pigs are widely used in this regard since their cardiac size, hemodynamics, and coronary anatomy are close to that of humans. Here, we present an effective protocol for using the porcine MI model using a closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. This approach is based on 90 min of myocardial ischemia, inducing large left ventricle infarction of the anterior, septal and inferoseptal walls. Furthermore, we present protocols for various measures of outcome that provide a wide range of information on the heart, such as cardiac systolic and diastolic function, hemodynamics, coronary flow velocity, microvascular resistance, and infarct size. This protocol can be easily tailored to meet study specific requirements for the validation of novel cardioregenerative biologics at different stages (i.e. directly after the acute ischemic insult, in the subacute setting or even in the chronic MI once scar formation has been completed). This model therefore provides a useful translational tool to study MI, subsequent adverse remodeling, and the potential of novel cardioregenerative agents.

This protocol describes the porcine myocardial infarction (MI) model using a 90 min closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. Furthermore, the protocol for several outcome parameters, such as cardiac function, hemodynamics, microvascular resistance, and infarct size, are also presented.

احتشاء عضلة القلب وتقييم نتائج وظيفية في الخنازير

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

Primary Outcome Assessment in a Pig Model of Acute Myocardial Infarction

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are therefore required to confine cardiac damage, promote survival and reduce the disease burden of heart failure. Large animal experiments are an essential part in the translational process from experimental to clinical therapies. To optimize clinical translation, robust and representative outcome measures are mandatory. The present manuscript aims to address this need by describing the assessment of three clinically relevant outcome modalities in a pig acute myocardial infarction (AMI) model: infarct size in relation to area at risk (IS/AAR) staining, 3-dimensional transesophageal echocardiography (TEE) and admittance-based pressure-volume (PV) loops. Infarct size is the main determinant driving the transition from AMI to heart failure and can be quantified by IS/AAR staining. Echocardiography is a reliable and robust tool in the assessment of global and regional cardiac function in clinical cardiology. Here, a method for three-dimensional transesophageal echocardiography (3D-TEE) in pigs is provided. Extensive insight into cardiac performance can be obtained by admittance-based pressure-volume (PV) loops, including intrinsic parameters of myocardial function that are pre- and afterload independent. Combined with a clinically feasible experimental study protocol, these outcome measures provide researchers with essential information to determine whether novel therapeutic strategies could yield promising targets for future testing in clinical studies.

Reliable and accurate outcome assessment is the key for translation of preclinical therapies into clinical treatment. The current paper describes how to assess three clinically relevant primary outcome parameters of cardiac performance and damage in a pig acute myocardial infarction model.

تقييم نتائج الأساسي في نموذج الخنزير من احتشاء عضلة القلب الحاد

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are ...

Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and regeneration, and to define new targets for therapeutics. For decades, models of complete heart regeneration existed in amphibians and fish, but a mammalian counterpart was not available. The recent discovery of a postnatal window during which mice possess regenerative capabilities has led to the establishment of a mammalian model of cardiac regeneration. A surgical model of mammalian cardiac regeneration in the neonatal mouse is presented herein. Briefly, postnatal day 1 (P1) mice are anesthetized by isoflurane and placed on an ice pad to induce hypothermia. After the chest is opened, and the left anterior descending coronary artery (LAD) is visualized, a suture is placed around the LAD to inflict myocardial ischemia in the left ventricle. The surgical procedure takes 10-15 min. Visualizing the coronary artery is crucial for accurate suture placement and reproducibility. Myocardial infarction and cardiac dysfunction are confirmed by triphenyl-tetrazolium chloride (TTC) staining and echocardiography, respectively. Complete regeneration 21 days post myocardial infarction is verified by histology. This protocol can be used to as a tool to elucidate mechanisms of mammalian cardiac regeneration after myocardial infarction.

This protocol describes a highly reproducible model of cardiac regeneration by surgical induction of myocardial infarction in the left ventricle of postnatal day 1 mice. The method involves induction of hypothermic anesthesia and ligation of the left anterior descending coronary artery.

احتشاء عضلة القلب في الفئران حديثي الولادة، نموذج للتجديد القلب

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and ...

Murine Myocardial Infarction Model using Permanent Ligation of Left Anterior Descending Coronary Artery

Myocardial infarction (MI) and acute coronary diseases are among the most prominent causes of death in population with western lifestyle. The murine models of MI with permanent ligation of left-anterior descending (LAD) coronary artery closely mimics MI in humans. Murine models benefit from the extensive genetic engineering available nowadays. Here we propose a reproducible murine surgical model of myocardial infarction by permanent LAD coronary ligation. Our technique comprises anesthesia with ketamine/xylazine that can be rapidly reversed by administration of an antagonist, intubation without tracheotomy for mechanical-assisted ventilation, ventilation with application of extrinsic positive end-expiratory pressure (PEEP) to avoid alveolar collapse, a thoracotomy method limiting to the minimum surgical lesions made to skeletal muscles, and lung inflation without thoracentesis. This method is sparsely invasive, reproducible and reduces post-surgery mortality and complications.

Herein we describe a surgical procedure showing how to achieve permanent ligation of the left-anterior descending coronary artery in mice. This model is of high relevance to investigate the pathophysiology of myocardial infarction and the concomitant biological processes.

نموذج احتشاء عضلة القلب Murine باستخدام الربط الدائم للشريان التاجي الأمامي الأيسر

Myocardial infarction (MI) and acute coronary diseases are among the most prominent causes of death in population with western lifestyle. The murine ...

A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we demonstrate a murine cryoinjury infarct model that generates precise infarct sizes with high reproducibility and replicability. In brief, after intubation and sternotomy of the animal, the heart is lifted from the thorax. The probe of a handheld liquid nitrogen delivery system is applied onto the myocardial wall to induce cryoinjury. Impaired ventricular function and electrical conduction can be monitored with echocardiography or optical mapping. Transmural myocardial remodeling of the infarcted area is characterized by collagen deposition and loss of cardiomyocytes. Compared to other models (e.g., LAD-ligation), this model utilizes a handheld liquid nitrogen delivery system to generate more uniform infarct sizes.

This article demonstrates a model to study cardiac remodeling after myocardial cryoinjury in mice.

نموذج الإصابة بالتبريد لدراسة احتشاء عضلة القلب في الماوس

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we ...

Establishing a Swine Model of Post-myocardial Infarction Heart Failure for Stem Cell Treatment

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major causes of mortality and morbidity around the world. Cell-based therapies for cardiac repair and improvement of left ventricular function after MI have attracted considerable attention. Accordingly, the safety and efficacy of these cell transplantations should be tested in a preclinical large animal model of HF prior to clinical use. Pigs are widely used for cardiovascular disease research due to their similarity to humans in terms of heart size and coronary anatomy. Therefore, we sought to present an effective protocol for the establishment of a porcine chronic HF model using closed-chest coronary balloon occlusion of the left circumflex artery (LCX), followed by rapid ventricular pacing induced with pacemaker implantation. Eight weeks later, the stem cells were administered by intramyocardial injection in the peri-infarct area. Then the infarct size, cell survival, and left ventricular function (including echocardiography, hemodynamic parameters, and electrophysiology) were evaluated. This study helps establish a stable preclinical large animal HF model for stem cell treatment.

We sought to establish a swine model of heart failure induced by left circumflex artery blockage and rapid pacing to test the effect and safety of intramyocardial administration of stem cells for cell-based therapies.

إنشاء نموذج الخنازير من فشل القلب احتشاء ما بعد عضلة القلب لعلاج الخلايا الجذعية

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major ...

Intramyocardial Transplantation of MSC-Loading Injectable Hydrogels after Myocardial Infarction in a Murine Model

One of the major issues facing current cardiac stem cell therapies for preventing postinfarct heart failure is the low retention and survival rates of transplanted cells within the injured myocardium, limiting their therapeutic efficacy. Recently, the use of scaffolding biomaterials has gained attention for improving and maximizing stem cell therapy. The objective of this protocol is to introduce a simple and straightforward technique to transplant bone marrow-derived mesenchymal stem cells (MSCs) using injectable hydroxyphenyl propionic acid (GH) hydrogels; the hydrogels are favorable as a cell delivery platform for cardiac tissue engineering applications due to their ability to be cross-linked in situ and high biocompatibility. We present a simple method to fabricate MSC-loading GH hydrogels (MSC/hydrogels) and evaluate their survival and proliferation in three-dimensional (3D) in vitro culture. In addition, we demonstrate a technique for intramyocardial transplantation of MSC/hydrogels in mice, describing a surgical procedure to induce myocardial infarction (MI) via left anterior descending (LAD) coronary artery ligation and subsequent MSC/hydrogels transplantation.

Stem cell-based therapy has emerged as an efficient strategy to repair injured cardiac tissues after myocardial infarction. We provide an optimal in vivo application for stem cell transplantation using gelatin hydrogels that are able to be enzymatically cross-linked.

زرع داخل القلب من هيدروجيلات هيدروجيل القابلة للحقن MSC التحميل بعد احتشاء عضلة القلب في نموذج مورين

One of the major issues facing current cardiac stem cell therapies for preventing postinfarct heart failure is the low retention and survival rates of ...