المنغنيز وصفها من الخلايا الجذعية الجنينية البشرية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يعرض للتريبسين ينبع الجنينية البشرية التي تم تربيتها في التغذية الخالية من الشروط لمدة 5 دقائق. تحييد وسائل الإعلام عن طريق إضافة التربسين الثقافة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تدور باستمرار الخلايا الطرد المركزي في 800 دورة في الدقيقة لمدة 5 دقائق عند 20 درجة مئوية. بعد إعادة تعليق الخلية بيليه ، حساب عدد الخلايا التي تلون التريبان الأزرق. استنادا إلى عدد الخلايا التي تم الحصول عليها ، وتقسيم الخلايا إلى أربع aliquots 3 ملايين الخلايا في أنابيب مخروطية. بيليه الخلايا مرة أخرى عن طريق الطرد المركزي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قبل البدء في وضع العلامات والمنغنيز ، ويحل كلوريد المنغنيز الطازجة بنسبة 0.9 ٪ محلول كلوريد الصوديوم لجعل 0.1mM محلول كلوريد المنغنيز. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وبغية مراقبة نشاط قناة الكالسيوم ، أعدت أربع عينات. العينة الأولى سيطرتنا الذي يحتوي على الخلايا المحتضنة في 0.9 ٪ كلوريد الصوديوم وحدها. والنموذج الثاني يحتوي على خلايا المحتضنة في MnCl 0.1 ملم 2. نموذج 3 و 4 تحتوي على خلايا المحتضنة في MnCl 0.1 ملم 2 مع 5 ميكرومتر أي من كا 2 + قناة ناهض و (ق)-(-)- خليج K8644 ، أو 250 ميكرومتر من كا 2 + قناة خصم ، فيراباميل. احتضان العينات الأربعة في 37 درجة مئوية ، مع 5 ٪ CO 2 لمدة 30 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد 30 دقيقة ، وتدور باستمرار في 800 دورة في الدقيقة الخلايا لمدة 5 دقائق عند 20 درجة مئوية. نضح ثم طاف وغسل الخلايا المسمى مرتين مع برنامج تلفزيوني. بعد غسلها ، وإعادة تعليق كل بيليه في برنامج تلفزيوني مع 200 ميكرولتر ونقل إلى أنابيب PCR. هذه الكريات وعادة ما تكون بيضاء. </li></ol> الوسم الحديد الخلايا الجذعية الجنينية البشرية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مزيج السريرية الصف سلفات بروتامين بالماء المقطر للحصول على محلول المخزون 1 ملغ / مل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في أنبوب يحتوي على وسائل الاعلام الإنسان الخلية الجذعية الجنينية الثقافة ، إضافة ferumoxides عند 100 ميكروغرام / مل تليها إضافة 12 ميكروغرام / مل سلفات بروتامين. مزيج الحل بقوة لمدة خمس دقائق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة إلى حل مختلط كمية متساوية من وسائل الإعلام لتحقيق ثقافة خلية تركيز النهائي من 50 ميكروغرام / مل من ferumoxides و 6 ميكروغرام / مل من سلفات بروتامين إلى خلايا التسمية. احتضان خلايا في هذا الحل لمدة 12 ساعة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> غسل الخلايا مرتين مع برنامج تلفزيوني ، مع غسل مشاركة تحتوي على الهيبارين 10U/ml حل خارج الخلية المعقدة ferumoxides - سلفات بروتامين. بعد الغسيل ، ويعرض للتريبسين الخلايا للحصول على تعليق خلية واحدة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> عدد الخلايا وقسامة في العدد المطلوب من العينات. بعد غسلها ، وإعادة تعليق كل بيليه في برنامج تلفزيوني مع 200 ميكرولتر ونقل إلى أنابيب PCR. ينبغي لهذه الكريات تكون مظلمة برتقالي بني اللون. </li></ol> أداء الخلوية التصوير بالرنين المغناطيسي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل الوهمية من أجل تحقيق الاستقرار في الأنابيب التي تحتوي على حبيبات الخلية وأيضا لتجنب الآثار من الهواء المحيط أثناء المسح. للقيام بذلك ، ومزيج من 0.8 ٪ و 1 ٪ آغار من كبريتات النحاس في الماء المقطر ، وجعله ليغلي بواسطة الميكروويف لمدة 5-7 دقائق. تبريد هذا الخليط لمدة لا تقل عن 1 ساعة قبل المسح الضوئي للوصول الى هلام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم وضع الأنابيب التي تحتوي على حبيبات الخلية المسمى في الظاهرية للمسح الضوئي. في المختبر يتم إجراء التصوير بالرنين المغناطيسي الخلوية في التصوير بالرنين المغناطيسي Signa 3T HDX (GE للأنظمة الطبية) باستخدام السريرية لفائف الركبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فحص خلايا المنغنيز المسمى لكل من العينات الثلاث باستخدام تسلسل صدى تدور : TR ؛ مرة = 800 مللي ثانية التكرار. TE ؛ صدى الوقت = الدنيا ، FOV ؛ مجال الرؤية = 12 X 12 سم ؛ مصفوفة = 256x256 ، NEX 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فحص الخلايا الحديد المسمى باستخدام سلسلة متدرجة الصدى. نحن نستخدم المعايير التالية لهذا التصوير : TR = 100 مللي ثانية ؛ = 30 درجة زاوية الوجه ؛ ؛ FOV = 12 X 12 سم ؛ مصفوفة = 256 × 256 ، NEX 1 = 10 مللي ثانية TE ، FA. </li></ol> تحليل نتائج التصوير بالرنين المغناطيسي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحليل صور المسح بالرنين المغناطيسي في الفترة من 4 عينات مختلفة من الخلايا التي تحمل علامات المنغنيز : <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نموذج رقم 1 هو سيطرتنا الذي يحتوي على خلايا المحتضنة في 0.9 ٪ كلوريد الصوديوم وحدها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نموذج رقم 2 يحتوي على خلايا المحتضنة في MnCl 0.1 ملم 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نموذج رقم 3 يحتوي على خلايا المحتضنة في MnCl 0.1 ملم مع 2 من 5 ميكرومتر كا 2 + قناة ناهض و (ق)-(-)- خليج K8644. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نموذج رقم 4 يحتوي على خلايا المحتضنة في MnCl 0.1 ملم 2 مع 250 ميكرومتر من كا 2 + قناة خصم ، فيراباميل. </li></ul></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كما تنبأ ، والاختلافات في كثافة إشارة من المنغنيز الخلايا المسماة مرئية. مقارنة مع الخلايا المسماة بحتة المنغنيز ، وشدة إشارة يزيد بشكل واضح في وجود قناة الكالسيوم ناهض والنقصان في وجود خصم قناة الكالسيوم. ويتم قياس المنطقة حيث كثافة إشارة زاد عن المنغنيز الخلايا المسمى باستخدام صورة J (المعاهد الوطنية للصحة في بيثيسدا ، MD ، الولايات المتحدة). يتم استخدام نفس البرنامج لتحليل مجال إشارة خارج الرنين الظلام من الحديد المسمى الخلايا. حجم إشارة مظلمة من الحديد المسمى الخلايا يعتمد على عدد من الخلايا أو عدد جزيئات الحديد الواردة في الخلايا. في هذه الحالة، 1000000 الخلايا تظهر منطقة أصغر من إشارة مظلمة بالمقارنة مع الإشارة من الخلايا ثلاثة ملايين نسمة. </li></ol>

<ol>
	<li>Bruvold, M., Nordhoy, W., Anthonsen, H. W., Brurok, H., Jynge, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Manganese-calcium+interactions+with+contrast+media+for+cardiac+magnetic+resonance+imaging:+a+study+of+manganese+chloride+supplemented+with+calcium+gluconate+in+isolated+Guinea+pig+hearts.">Manganese-calcium interactions with contrast media for cardiac magnetic resonance imaging: a study of manganese chloride supplemented with calcium gluconate in isolated Guinea pig hearts.</a> Invest Radiol. 40, 117-125 (2005).</li><li>Aoki, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+labeling+for+magnetic+resonance+imaging+with+the+T1+agent+manganese+chloride.">Cell labeling for magnetic resonance imaging with the T1 agent manganese chloride.</a> NMR Biomed. 19, 50-59 (2006).</li><li>Arbab, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+magnetic+cell+labeling+with+protamine+sulfate+complexed+to+ferumoxides+for+cellular+MRI.">Efficient magnetic cell labeling with protamine sulfate complexed to ferumoxides for cellular MRI.</a> Blood. 104, 1217-1223 (2004).</li><li>Arbab, A. S., Frank, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+MRI+and+its+role+in+stem+cell+therapy.">Cellular MRI and its role in stem cell therapy.</a> Regen Med. 3, 199-215 (2008).</li></ol>

هذه النتائج تشير إلى أن المنغنيز لا يدخل عبر قنوات الكالسيوم الجهد مسور ، ويمكن استخدامها المنغنيز كعامل النقيض من التصوير بالرنين المغناطيسي ، والتي يمكن أن تظهر أيضا بقاء الخلية. لذا ، نقترح أن المنغنيز الموجهة التصوير بالرنين المغناطيسي يمكن أن تكون مفيدة لمراقبة سلامة الخ?...

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Manganese chloride tetrahydrate</td>
<td>Reagent</td>
<td>Sigma</td>
<td>M8054</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>(S)-(-)-Bay K8644 </td>
<td>Reagent</td>
<td>Sigma</td>
<td>B133</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>(+)-Verapamil hydrochloride, minimum 99.0% titration </td>
<td>Reagent</td>
<td>Sigma</td>
<td>V4629</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Sodium Chloride 0.85-0.90% W/V</td>
<td>Reagent</td>
<td>VWR</td>
<td>VW 3257-1</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Feridex I.V. </td>
<td>Reagent</td>
<td>Berlex Laboratories</td>
<td>NDC 59338-7035-5</td>
<td>ferumoxides injectable solution 11.2mg iron/mL</td>
</tr>
<tr>
<td>Protamine sulfate</td>
<td>Reagent</td>
<td>American Pharmaceutical Partners</td>
<td>NDC 63323-229-05 </td>
<td>50 mg (10 mg/mL)</td>
</tr>
<tr>
<td>Knockout SR (Serum replacement for ES cells)</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>10828</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>DMEM/F12 (1:1)</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>11330</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>2- mercaptoethanol 98+%</td>
<td>Reagent</td>
<td>Sigma</td>
<td>M 3148</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>L-Glutamine 200mM 100x</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>25030</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Penicillin-Streptomyocin 10,000 units/ml</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>15140-122</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>MEM Non-Essential Amino Acids 100x solution</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco </td>
<td>11140</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Signa HDx 3T MRI</td>
<td>Tool</td>
<td>GE Medical Systems</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>clinical Knee coil</td>
<td>Tool</td>
<td>GE Medical Systems</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>DPBS</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>14190</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

in vitro labeling of human embryonic stem cells for magnetic resonance imaging

وقد أظهرت الخلايا الجذعية الجنينية البشرية (hESC) القدرة على استعادة عضلة القلب المصاب. وقد برز التصوير بالرنين المغناطيسي (MRI) باعتبارها واحدة من طرائق التصوير السائد لتقييم ترميم عضلة القلب المصاب. وعلاوة على ذلك ، تم توظيف وكلاء العلامات السابقين الحية ، مثل الحديد وأكسيد النانوية ، لتعقب وتوطين الخلايا الجذعية المزروعة. ومع ذلك ، فإن هذا الأسلوب لا مراقبة الممتلكات الأساسية البيولوجيا الخلوية بشأن الجدوى من الخلايا المزروعة. لقد كان من المعروف أن كلوريد المنغنيز (MnCl 2) يدخل الخلايا عبر الجهد بوابات الكالسيوم (كا 2 +) قنوات عندما كانت الخلايا النشطة بيولوجيا ، ويتراكم intracellularly لتوليد تأثير تقصير T 1. لذا ، نقترح أن المنغنيز الموجهة التصوير بالرنين المغناطيسي يمكن أن تكون مفيدة لمراقبة سلامة الخلية بعد زرع hESC في عضلة القلب. في هذا الفيديو ، وسوف نعرض كيفية تسمية hESC مع MnCl (2) وكيف يمكن رؤيتها بوضوح تلك الخلايا باستخدام التصوير بالرنين المغناطيسي في المختبر. في الوقت نفسه ، والنشاط البيولوجي للكا 2 + القنوات سوف يتم استخدام التضمين سواء كا 2 + قناة ناهض وخصم لتقييم التغيرات المصاحبة إشارة.

Watch this Scientific Journal Video about In vitro Labeling of Human Embryonic Stem Cells for Magnetic Resonance Imaging at JoVE.com

In vitro Labeling of Human Embryonic Stem Cells for Magnetic Resonance Imaging

في هذا الفيديو ، فإننا نبين كيفية تسمية الخلايا الجذعية الجنينية البشرية (hESC) مع كلوريد المنغنيز (MnCl<sub&gt; 2</sub&gt;) التي يمكن أن تدخل الخلايا عبر قنوات الكالسيوم الجهد بوابات عندما كانت الخلايا النشطة بيولوجيا. بالإضافة إلى ذلك ، وتبين لنا من استخدام MnCl<sub&gt; 2</sub&gt; الخلوية وكيل النقيض التصوير بالرنين المغناطيسي لتحديد الجدوى من المختبر في hESC.

وصفها في المختبر من خلايا المنشأ الجنينية البشرية لتصوير بالرنين المغناطيسي

Human embryonic stem cells (hESC) have demonstrated the ability to restore the injured myocardium. Magnetic resonance imaging (MRI) has emerged as one of ...

in-vitro-labeling-human-embryonic-stem-cells-for-magnetic-resonance

Research

JoVE Journal

Biology

10.1K Views.  Stanford University. في هذا الفيديو ، فإننا نبين كيفية تسمية الخلايا الجذعية الجنينية البشرية (hESC) مع كلوريد المنغنيز (MnCl 2) التي يمكن أن تدخل الخلايا عبر قنوات الكالسيوم الجهد بوابات عندما كانت الخلايا النشطة بيولوجيا. بالإضافة إلى ذلك ، وتبين لنا من استخدام MnCl 2 ال...

Video: In vitro Labeling of Human Embryonic Stem Cells for Magnetic Resonance Imaging

Propagation of Human Embryonic Stem (ES) Cells

Propagation of Human Embryonic Stem ES Cells

انتشار الخلايا الجنينية البشرية (ES) الجذعية

Derivation of Human Embryonic Stem Cells by Immunosurgery

The ability of human embryonic stem cells to self-renew and differentiate into all cell types of 
the body suggests that they hold great promise for both medical applications and as a research 
tool for addressing fundamental questions in development and disease. Here, we provide a 
concise, step-by-step protocol for the derivation of human embryonic stem cells from embryos 
by immunosurgical isolation of the inner cell mass. 


The ability of human embryonic stem cells to self-renew and differentiate into all cell types of 
the body suggests that they hold great promise for both medical applications and as a research 
tool for addressing fundamental questions in development and disease. Here, we provide a 
concise, step-by-step protocol for the derivation of human embryonic stem cells from embryos 
by immunosurgical isolation of the inner cell mass.

اشتقاق الخلايا الجذعية الجنينية البشرية التي Immunosurgery

The ability of human embryonic stem cells to self-renew and differentiate into all cell types of 
the body suggests that they hold great promise for both ...

Labeling Stem Cells with Fluorescent Dyes for non-invasive Detection with Optical Imaging

Optical imaging (OI) is an easy, fast and inexpensive tool for in vivo monitoring of new stem cell based therapies. The technique is based on ex vivo labeling of stem cells with a fluorescent dye, subsequent intravenous injection of the labeled cells and visualization of their accumulation in specific target organs or pathologies. The presented technique demonstrates how we label human mesenchymal stem cells (hMSC) by simple incubation with the lipophilic fluorescent dye DiD (C67H103CIN2O3S) and how we label human embryonic stem cells (hESC) with the FDA approved fluorescent dye Indocyanine Green (ICG). The uptake mechanism is via adherence and diffusion of the lypophilic dye across the phospholipid cell membrane bilayer. The labeling efficiency is usually improved if the cells are incubated with the dye in serum-free media as opposed to incubation in serum-containing media. Furthermore, the addition of the transfection agent Protamine Sulfate significantly improves contrast agent uptake.

This video shows techniques for labeling of human embryonic stem cells and mesenchymal stem cells with fluorescent dyes. This technique can be used for an in vivo tracking of transplanted stem cells with optical imaging and for histopathological correlations with fluorescence microscopy.

وسم الخلايا الجذعية مع الأصباغ نيون للمنظمات غير الغازية مع الكشف عن التصوير الضوئي

Optical imaging (OI) is an easy, fast and inexpensive tool for in vivo monitoring of new stem cell based therapies. The technique is based on ex vivo ...

Probing for Mitochondrial Complex Activity in Human Embryonic Stem Cells

Mitochondria are cytoplasmic organelles that have a primary role in cellular metabolism and homeostasis, regulation of the cell signaling network, and programmed cell death. Mitochondria produce ATP, regulate the cytoplasmic redox state and Ca2+ balance, catabolize fatty acids, synthesize heme, nucleotides, steroid hormones, amino acids, and help assemble iron-sulfur clusters in proteins. Mitochondria also have an essential role in heat production. Mutations of the mitochondrial genome cause several types of human disorder. The accumulation of mtDNA mutations correlates with aging and is suspected to have an important role in the development of cancer. Due to their vitally important role in all cell types, the function of mitochondria must also be critical for stem cells. Key advances have been made in our understanding of stem cell viability, proliferation, and differentiation capacity. But the functional activity of stem cells, in particular their energy status, was not yet been studied in detail. Almost nothing is known about the mitochondrial properties of human embryonic stem cells (hESCs) and their differentiated precursor progeny. One way to understand and evaluate the role of mitochondria in hESC function and developmental potential is to directly measure the activity of mitochondrial respiratory complexes. Here, we describe high resolution clear native gel electrophoresis and subsequent in gel activity visualization as a method for analyzing the five respiratory chain complexes of hESCs.

In this video, we will show you how the mitochondrial respiratory chain complexes of human embryonic stem cells can be analyzed using in gel activity assays.

سبر للنشاط مجمع الميتوكوندريا في خلايا المنشأ الجنينية البشرية

Mitochondria are cytoplasmic organelles that have a primary role in cellular metabolism and homeostasis, regulation of the cell signaling network, and ...

In vitro and in vivo Bioluminescence Reporter Gene Imaging of Human Embryonic Stem Cells

The discovery of human embryonic stem cells (hESCs) has dramatically increased the tools available to medical scientists interested in regenerative medicine. However, direct injection of hESCs, and cells differentiated from hESCs, into living organisms has thus far been hampered by significant cell death, teratoma formation, and host immune rejection. Understanding the in vivo hESC behavior after transplantation requires novel imaging techniques to longitudinally monitor hESC localization, proliferation, and viability. Molecular imaging has given investigators a high-throughput, inexpensive, and sensitive means for tracking in vivo cell proliferation over days, weeks, and even months. This advancement has significantly increased the understanding of the spatio-temporal kinetics of hESC engraftment, proliferation, and teratoma-formation in living subjects.

A major advance in molecular imaging has been the extension of noninvasive reporter gene assays from molecular and cellular biology into in vivo multi-modality imaging platforms. These reporter genes, under control of engineered promoters and enhancers that take advantage of the host cell s transcriptional machinery, are introduced into cells using a variety of vector and non-vector methods. Once in the cell, reporter genes can be transcribed either constitutively or only under specific biological or cellular conditions, depending on the type of promoter used. Transcription and translation of reporter genes into bioactive proteins is then detected with sensitive, noninvasive instrumentation (e.g., CCD cameras) using signal-generating probes such as D-luciferin.

To avoid the need for excitatory light to track stem cells in vivo as is required for fluorescence imaging, bioluminescence reporter gene imaging systems require only an exogenously administered probe to induce light emission. Firefly luciferase, derived from the firefly Photinus pyralis, encodes an enzyme that catalyzes D-luciferin to the optically active metabolite, oxyluciferin. Optical activity can then be monitored with an external CCD camera. Stably transduced cells that carry the reporter construct within their chromosomal DNA will pass the reporter construct DNA to daughter cells, allowing for longitudinal monitoring of hESC survival and proliferation in vivo. Furthermore, because expression of the reporter gene product is required for signal generation, only viable parent and daughter cells will create bioluminescence signal; apoptotic or dead cells will not. 

In this video, the specific materials and methods needed for tracking stem cell proliferation and teratoma formation with bioluminescence imaging will be described.

With the growing interest in stem cell therapies, molecular imaging techniques are ideal for monitoring stem cell behavior after transplantation. Luciferase reporter genes have enabled non-invasive, repetitive assessment of cell survival, location, and proliferation in vivo. This video will demonstrate how to track hESC proliferation in a living mouse.

في المختبر والمجراة في ضوء بارد مراسل التصوير الجيني للخلايا منشأ جنينية بشرية

The discovery of human embryonic stem cells (hESCs) has dramatically increased the tools available to medical scientists interested in regenerative ...

Chromatin Immunoprecipitation from Human Embryonic Stem Cells

The functional and structural complexity of the myriad of cells in metazoan organisms arises from a small number of stem cells. Stem cells are characterized by two fundamental properties: self-renewal and multipotency that allows a stem cell to differentiate into virtually any cell type 1. The progression stem cell to differentiated cell is characterized by loss of multipotency, structural and morphological changes and the hierarchic activity of transcription factors and signaling molecules, whose activities establish and maintain cell-type specific gene expression patterns. At the molecular level, cell differentiation involves dynamic changes of the structure and composition of chromatin and the detection of those dynamic changes can provide valuable insights into the functional features of stem cells and the cell differentiation process 2,3. Chromatin is a highly compacted DNA-protein complex that forms when cells package chromosomal DNA with proteins, mainly histones 4. Stemcellness and cell differentiation has been correlated with the presence of specific arrays of regulatory proteins such as epigenetic factors, histone variants, and transcription factors 2,3,5.
 Chromatin immunoprecipitation (ChIP) provides a valuable method to monitor the presence of RNA, proteins, and protein modifications in chromatin 6,7. The comparison of chromatin from different cell types can elucidate dynamic changes in protein-chromatin associations that occur during cell differentiation.
Chromatin immunoprecipitation involves the purification of in vivo cross-linked chromatin. The isolated chromatin is reduced to smaller fragments by enzymatic digestion or mechanical force. Chromatin fragments are precipitated using specific antibodies to target proteins or protein and DNA modifications. The precipitated DNA or RNA is purified and used as a template for PCR or DNA microarray based assays. Prerequisites for a successful ChIP are high quality antibodies to the desired antigen and the availability of chromatin from control cells that do not express the target molecule. ChIP can correlate the presence of proteins, protein and RNA modifications, and RNA with specific target DNA, and depending on the choice of outread tool, detects the association of target molecules at specific target genes or in the context of an entire genome. The comparison of the distribution of proteins in the chromatin of differentiating cells can elucidate the dynamic changes of chromatin composition that coincide with the progression of cells along a cell lineage.

The differentiation of ESC coincides with cell-type specific changes in the structure and composition of chromatin. The detection of those changes provides valuable insights into the mechanisms that define stemcellness and cell differentiation. Chromatin immunoprecipitation (ChIP) represents a valuable method to dissect the molecular mechanisms underlying stem cell differentiation.

مناعي لونين من الخلايا الجذعية الجنينية البشرية

The functional and structural complexity of the myriad of cells in metazoan organisms arises from a small number of stem cells. Stem cells are ...

Culture and Maintenance of Human Embryonic Stem Cells  

Human embryonic stem (hES) cells must be monitored and cared for in order to maintain healthy, undifferentiated cultures. At minimum, the cultures must be  fed  every day by performing a complete medium change to replenish lost nutrients and to keep the cultures free of unwanted differentiation factors. Although a small amount of differentiation is normal and expected in stem cell cultures, the culture should be routinely cleaned up by manually removing, or "picking" differentiated areas. Identifying and removing excess differentiation from hES cell cultures are essential techniques in the maintenance of a healthy population of cells.

Culture and Maintenance of Human Embryonic Stem Cells

This protocol demonstrates how to maintain healthy, undifferentiated human embryonic stem (ES) cells.

الثقافة والمحافظة على الخلايا الجذعية الجنينية البشرية

Human embryonic stem (hES) cells must be monitored and cared for in order to maintain healthy, undifferentiated cultures. At minimum, the cultures must be ...

Chromosomal Spread Preparation of Human Embryonic Stem Cells for Karyotyping

Although human embryonic stem cells (hESC) have been shown to present a stable diploid karyotype 1, many studies have reported that depending on culture conditions they become prone to acquire chromosomal anomalies such as addition of whole or parts of chromosomes. Indeed, during long-term culture, karyotypic alterations are observed when enzymatic or chemical dissociation are used 2,3,4, while manual dissection of colonies for passaging retains a stable karyotype 5. Besides, changes in the environment such as the removal of feeder cells also seem to compromise the genetic integrity of hESC 3,6. Once chromosomal alterations could affect cellular physiology, the characterization of the genetic integrity of hESC in vitro is crucial considering hESC as an essential tool in embryogenesis studies and drug testing. Furthermore, for future therapeutic purposes chromosomal changes are a real concern as it is frequently associated to carcinogenesis.
Here we show a simple and useful method to obtain high quality chromosome spreads for subsequent analysis of chromosome set by G-banding, FISH, SKY or CGH techniques 7,8. We recommend checking the chromosomal status routinely with intervals of 5 passages in order to monitor the appearance of translocations and aneuploidies
Priscila Britto and Rafaela Sartore contributed equally to the paper.

Karyotyping is a simple and useful technique widely used for detecting genetic alterations. Here we describe a step by step protocol for chromosome spread preparation of human embryonic stem cells for monitoring the chromosomal status of these cells maintained in culture.

الكروموسومات التحضير انتشار الخلايا الجذعية الجنينية البشرية لKaryotyping

Although human embryonic stem cells (hESC) have been shown to present a stable diploid karyotype 1, many studies have reported that depending on culture ...

Freezing and Thawing Human Embryonic Stem Cells

Since James Thomson et al developed a technique in 1998 to isolate and grow hES in culture, freezing cells for later use and thawing and expanding cells from a frozen stock have become important procedures performed in routine hES cell culture. Since hES cells are very sensitive to the stresses of freezing and thawing, special care must taken. Here we demonstrate the proper technique for rapidly thawing hES cells from liquid nitrogen stocks, plating them on mouse embryonic feeder cells, and slowly freezing them for long-term storage.

Since James Thomson et al developed a technique in 1998 to isolate and grow hES in culture, freezing cells for later use and thawing and expanding cells from a frozen stock have become important procedures performed in routine hES cell culture. Since hES cells are very sensitive to the stresses of freezing and thawing, special care must taken. Here we demonstrate the proper technique for rapidly thawing hES cells from liquid nitrogen stocks, plating them on mouse embryonic feeder cells, and slowly freezing them for long-term storage.

تجميد والذوبان الخلايا الجذعية الجنينية البشرية

Since James Thomson et al developed a technique in 1998 to isolate and grow hES in culture, freezing cells for later use and thawing and expanding cells ...

Video Bioinformatics Analysis of Human Embryonic Stem Cell Colony Growth

Because video data are complex and are comprised of many images, mining information from video material is difficult to do without the aid of computer software.  Video bioinformatics is a powerful quantitative approach for extracting spatio-temporal data from video images using computer software to perform dating mining and analysis. In this article, we introduce a video bioinformatics method for quantifying the growth of human embryonic stem cells (hESC) by analyzing time-lapse videos collected in a Nikon BioStation CT incubator equipped with a camera for video imaging. In our experiments, hESC colonies that were attached to Matrigel were filmed for 48 hours in the BioStation CT.  To determine the rate of growth of these colonies, recipes were developed using CL-Quant software which enables users to extract various types of data from video images.  To accurately evaluate colony growth, three recipes were created. The first segmented the image into the colony and background, the second enhanced the image to define colonies throughout the video sequence accurately, and the third measured the number of pixels in the colony over time.  The three recipes were run in sequence on video data collected in a BioStation CT to analyze the rate of growth of individual hESC colonies over 48 hours. To verify the truthfulness of the CL-Quant recipes, the same data were analyzed manually using Adobe Photoshop software. When the data obtained using the CL-Quant recipes and Photoshop were compared, results were virtually identical, indicating the CL-Quant recipes were truthful. The method described here could be applied to any video data to measure growth rates of hESC or other cells that grow in colonies. In addition, other video bioinformatics recipes can be developed in the future for other cell processes such as migration, apoptosis, and cell adhesion.  

Video bioinformatics is the automated processing, analysis, understanding, and data mining of biological spatio-temporal data extracted from microscopic videos. The purpose of this article is to demonstrate a method for measuring human embryonic stem cell colony growth using a video bioinformatics method.

الفيديو المعلوماتية الحيوية تحليل النمو البشري الخلية الجذعية الجنينية كولوني

Because video data are complex and are comprised of many images, mining information from video material is difficult to do without the aid of computer ...