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Method Article
恶性胶质瘤是一组具有明显临床和分子特征的高度渗透性胶质肿瘤的异质性群体。原位矫形异种格拉夫特在前科动物模型中重新概括恶性胶质瘤亚型的组织病理学和分子特征。
恶性胶质瘤是一组具有明显临床和分子特征的高度渗透性胶质肿瘤的异质性群体。原位矫形异种格拉夫特在前科动物模型中重新概括恶性胶质瘤亚型的组织病理学和分子特征。为了模拟世卫组织在移植检测中的I级和IV级恶性胶质瘤,人类肿瘤细胞被异种移植到免疫功能低下小鼠的正交部位——大脑中。与利用培养肿瘤细胞的继发性异种移植物相比,人类胶质瘤细胞与被切除的标本分离,在组织培养中无需事先通过移植即可产生原发性异种移植。本报告中的程序详细说明了肿瘤样本准备、颅内移植到免疫功能低下的小鼠、肿瘤移植监测以及肿瘤收获,供随后进入受体动物或进行分析。肿瘤细胞准备需要2小时,外科手术需要20分钟/动物。
恶性胶质瘤是发生在大脑和脊髓的中枢神经系统的原发性胶质肿瘤。胶质瘤由世界卫生组织(世卫组织)根据组织学上与星形细胞、寡头细胞或子细胞的相似性进行分类,然后根据恶性病理特征进行数值分级(I至IV)。最常见的组织学亚型是天体细胞瘤、寡头性腺胶质瘤和混合寡头肌细胞瘤。包括世卫组织二至四级在内的恶性胶质瘤的特点是侵入性生长和对现有疗法的顽固不化。在美国,每年约有15,750人被诊断为恶性胶质瘤,估计有12,740名患者死于这种疾病。这些统计数字突出了恶性胶质瘤的特别致命性,以及提高疗效的重要需要。
癌症模型对于研究肿瘤生物学和疗法至关重要。人类癌细胞系是体外操纵和体外异种移植研究(继发性异种移植)1的重要第一步。然而,标准癌细胞培养经历表型和基因型转换2-4,可能无法恢复在继发性异种移植5。此外,基因改变,如异辛酸盐脱氢酶(IDH)突变6,独特的干细胞种群7和对关键信号通路8的依赖,可能会在癌细胞培养中消失。基因组特征可以在癌症领域培养中更好地保持,但仍不能完全反映原肿瘤的基因型2,3。直接正交移植否定了体外培养的影响,提供了适当的微环境,并保留了肿瘤启动细胞9,10的完整性。因此,原生异种移植物是一种强大而相关的临床前模型,用于严格测试靶向剂,以帮助合理设计未来的临床试验5,11,12。
1. 肿瘤细胞悬架的准备
注: 需要为使用患者材料和动物提供适当的机构批准,以建立和维持原发性正畸胶质瘤异种移植物。在范德比尔特大学医学中心,在患者同意下收集超过诊断所需量的肿瘤材料,用于研究组织库。标本标本标注带有随机的 5 位 REDcap 数据库编号,并删除所有患者特定标识符。REDcap 数据库包含组织存储库中每个标本的分离临床数据,包括性别、年龄(年)、种族、生存状态、病理学、癌症治疗、切除年份和进展时间。为了保持无菌性和优化主要异种移植方法的成功,所有试剂、蒸汽自动切割手术器械和手术部位应提前组装或准备。
注: 胶质瘤标本通常含有大量的骨髓和碎片。根据标本大小,可能需要使用超过 4 个不连续梯度管来充分清除骨髓和碎屑。
注: 当没有或很少清晰可见的未分离组织剩余时,这个过程就会完成。避免在三次加工过程中引入气泡。
注: 分离后的细胞生存能力通常为 90%>%。较低的通过率可能反映许多变量,包括从手术室的次优组织处理或运输时间、冷冻保存方法或木瓜分离技术。然而,只要以适当的体积移植足够数量的可行细胞,较低的细胞通过率可能仍然足够。每只小鼠的体积为2μl,可植入50,000-200,000个可行的细胞。由于注射器针的斜尖,应在最后音量中加入额外的 5 μl 细胞悬浮,以确保每次注射时都能将足够的材料抽入注射器中。例如,为 5 只小鼠注射 2μl/鼠标,最终体积应为 15 μl (15 μl = (5 x 2 μl) = 5 μl)。
2. 准备手术场地和仪器
注: 手术过程中佩戴无菌手术手套。根据每个机构的要求,可能需要手术服、帽子和护脸器。
3. 感应、麻醉和镇痛
注: 从小鼠麻醉后超过15分钟的手术需要接触热源。为了防止体温过低,在术前和术后期间,小鼠会获得热源(循环热水毯)。
库存集中度 | 要准备的音量 | |||
一只鼠标 | 五只老鼠 | 十只老鼠 | ||
氯胺酮 | 100毫克/毫升 | 25 微升 | 125 微升 | 250微升 |
西拉津 | 100毫克/毫升 | 2.5 微升 | 12.5 微升 | 25 微升 |
伊索托尼盐水 | 223 微升 | 1,113 微升 | 2,225 微升 | |
总 | 250 ul | 1,250微克 | 2,500微克 |
4. 颅内移植
注: 注射量超过2.5微克对小鼠可能致命。
5. 植入后动物护理和观察
注: 肿瘤移植和渗透生长的最可靠迹象是渐进的,持续的体重减轻,伴随着驼背姿势和粗糙的发衣的发展。在极少数情况下,神经缺陷被注意到,包括厌食症,帕雷西斯和癫痫发作。正交原发性异种移植物具有很强的侵入性,并长期发展。小鼠通常在移植后3-6个月出现肿瘤生长症状。
6. 肿瘤收获
注: 通过这种方法,第一个日冕切片(#1)包含嗅球的后部方面和前叶的前侧。受精肿瘤在随后的3个冠状切片(切片#2、#3和#4)的右半球最为丰富,注射视线通常包含在冠状切片#3中。根据实验需要,该材料可用于肿瘤通道、冷冻组织部分、形式素固定石蜡嵌入组织部分、分离组织流动细胞测量、细胞培养或用于DNA、RNA或蛋白质分析的溶解酶。肿瘤的一部分可以低温保存,以满足未来的需要,细胞存活率在80-95%不等。
7. 肿瘤冷冻保存
分离的胶质瘤细胞被直接移植到免疫功能低下的小鼠的大脑中,以获得原位正畸异种移植线。每个肿瘤标本在移植前被分配一个随机数字,作为去除受保护的健康信息的分离过程的一部分。为此,我们使用 5 位 REDcap 数据库编号。 图1 说明了从胶质母细胞瘤(GBM 17182)与同心酸脱氢酶1(IDH1)突变精氨酸132到组织丁(R132H)建立异种移植线的过程和命名。移植后,肿瘤识别号中添加"X"?...
培养细胞系、异种移植和转基因小鼠是模拟胶质瘤的最常见方法,每个模型系统3,13,14都有明显的益处和局限性。原位正交胶质瘤异种移植的相关好处包括渗透性生长,这些生长是弥漫性胶质瘤的典型代表,以及保留遗传改变和重要的信号机制,这些机制在培养的胶质瘤细胞中可能极其难以维持。例如,isocitrate脱氢酶突变和声波刺猪配体生产可以维持在原位矫形异种格拉夫特...
作者宣称他们没有相互竞争的经济利益。
我们特别感谢范德比尔特大学医学中心的患者,他们为分子神经外科组织库提供了宝贵的研究材料。我们感谢那些建立和维护组织银行的人,里德·汤普森MD(首席调查员),樱桃金纳德RN(研究护士)和拉里A.皮尔斯MS(经理)。组织学服务部分由范德比尔特大学医学中心 (VUMC) 转化病理共享资源(由 5P30 CA068485 奖支持范德比尔特-英格拉姆癌症中心)执行。这项工作得到了国家发展局(1R21NS070139)、伯劳斯威康基金和VMC发展基金向MKC提供的赠款的支持。MKC 由退伍军人事务部、退伍军人健康管理局、研究和发展办公室、生物医学实验室研究和发展部通过赠款 1 I01 BX000744-01 获得支持。内容不代表退伍军人事务部或美国政府的意见。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Phosphate buffered saline | Life Technologies | 14040-133 | |
Papain dissociation system | Worthington Biochemical Corp. | LK003150 | |
Trypan blue solution 0.4% | Life Technologies | 15250061 | |
Ketamine HCl | Obtained from institutional pharmacy or local veterinary supply company | ||
Xylazine HCl | |||
Ketoprofen | |||
Ophthalmic ointment | |||
Povidone-iodine | Fisher Scientific | 190061617 | |
Cryopreservation medium and proliferation supplement | StemCell Technologies | 05751 | |
0.2% Heparin sodium salt in PBS | StemCell Technologies | 07980 | |
Penicillin-streptomycin | Life Technologies | 15140-122 | |
Dimethyl sulfoxide | Sigma-Aldrich | D6250-5X10ML | |
NOD.Cg-Prkdcscid I/2rgtm1Wjl/SzJ mice | The Jackson Laboratory | 005557 | NSG mice |
Anti-human vimentin antibody | Dako | M7020 | Use 1:200 to 1:800 |
Anti-human IDH1 R132H antibody | Dianova | DIA-H09 | Use 1:100 to 1:400 |
Centrifuge with swinging bucket rotor | |||
Pipetter with dispensing speed control | |||
Disposable hemocytometer | Fisher Scientific | 22-600-100 | |
Sterile surgical gloves | Fisher Scientific | 11-388128 | |
Disposable gown | Fisher Scientific | 18-567 | |
Surgical mask | Fisher Scientific | 19-120-1256 | |
Tuberculin syringe | BD | 305620 | |
Alcohol pads | Fisher Scientific | 22-246-073 | |
Portable electronic scale | Fisher Scientific | 01-919-33 | |
Zoom stereomicroscope | |||
Surgical clipper | Stoelting | 51465 | |
Scalpel handle | Fine Science Tools | 10003-12 | |
Scalpel blades, #10 | |||
Stereotaxic instrument | Stoelting | 51730 | |
High-speed drill | Stoelting | 51449 | |
Drill bit, 0.6 mm | Stoelting | 514552 | |
Hamilton syringe | Hamilton | 80336 | |
Autoclip, 9 mm | BD | 427630 | |
Circulating water warming pad | Kent Scientific | TP-700 TP-1215EA | |
Hot bead dry sterilizer | Kent Scientific | INS300850 | |
Surgical scissors | Fine Science Tools | 14101-14 | |
Fine scissors | Fine Science Tools | 14094-11 | |
Spring scissors | Fine Science Tools | 15018-10 | |
Dumont forceps | Fine Science Tools | 11251-30 | |
Semimicro spatulas | Fisher Scientific | 14374 | |
Mouse brain slicer matrix | Zivic Instruments | BSMAS002-1 | |
Cryogenic storage vials | Fisher Scientific | 12-567-501 |
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