JoVE Logo

登录

需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

Botulinum neurotoxin is one of the most potent toxins among Category-A biothreat agents, yet a post-exposure therapeutic is not available. The high content imaging approach is a powerful methodology for identifying novel inhibitors as it enables multiparameter screening using biologically relevant motor neurons, the primary target of this toxin.

摘要

Synaptosomal-associated protein-25 (SNAP-25) is a component of the soluble NSF attachment protein receptor (SNARE) complex that is essential for synaptic neurotransmitter release. Botulinum neurotoxin serotype A (BoNT/A) is a zinc metalloprotease that blocks exocytosis of neurotransmitter by cleaving the SNAP-25 component of the SNARE complex. Currently there are no licensed medicines to treat BoNT/A poisoning after internalization of the toxin by motor neurons. The development of effective therapeutic measures to counter BoNT/A intoxication has been limited, due in part to the lack of robust high-throughput assays for screening small molecule libraries. Here we describe a high content imaging (HCI) assay with utility for identification of BoNT/A inhibitors. Initial optimization efforts focused on improving the reproducibility of inter-plate results across multiple, independent experiments. Automation of immunostaining, image acquisition, and image analysis were found to increase assay consistency and minimize variability while enabling the multiparameter evaluation of experimental compounds in a murine motor neuron system.

引言

细菌肉毒梭菌产生的肉毒杆菌神经毒素,对人类已知1是最有效的生物毒素之一。有7个不同的血清型肉毒毒素(肉毒毒素/ AG)。肉毒毒素/ A-胆引起麻痹的神经肌肉接头处由于SNARE复合体蛋白水解2,3。 SNARE蛋白水解阻止神经递质囊泡膜融合,从而阻止神经递质胞吐4。具体的SNARE目标取决于所涉及的中毒过程中的特殊肉毒毒素血清型。肉毒毒素/ A和肉毒毒素/ E切割SNAP-25,而肉毒毒素/ C切割两种SNAP-25和突触5。剩下的血清型切割突触(也称为囊泡相关膜蛋白(VAMP)。肉毒毒素/ A被选为试验发展,因为它是负责自然发生的肉毒杆菌中毒的比例很高,并具有行动6。发展小分子的最长期限治疗对肉毒毒素/ A是主要目标我们的药物研发项目,并利用传统的基于目标的方法来确定活性位点的蛋白水解酶抑制剂7,8-10。然而,创建活性位点抑制剂具有抗多种血清型和后曝光功效广谱活性的将可能是具有挑战性的。

因此,我们已经实现了一个创新的,表型的药物发现,使用肉毒毒素SNAP-25的切割作为一个功能的端点,以确定小分子,可以阻止肉毒毒素介导的运动神经中毒的方法。 SNAP-25所需的神经递质的释放,如SNAP-25的降解是预测性麻痹和致死的体内 。例如,基于细胞的筛选可能导致发现的负责毒素失活或抑制毒素途径的靶细胞内的细胞因子的新调节剂。在表型检测发展的一个重要因素是生理上相关的生物模型的选择。 W¯¯e和其他人描述了小鼠胚胎干(ES)细胞衍生的运动神经元概括初级运动神经元的免疫学性质,包括SNAP-25 -11- 13的表达。重要的是,这些蜂窝系统到的BoNT / A中毒高度敏感和演示的SNAP-25的剂量依赖性裂解响应于增加毒素11,12的浓度。在分化的运动神经元也产生在量,足以适用于高通量板为基础的分析,并允许细胞试验的阵列的设计。

表型分析是利用两种不同的抗体,肉毒毒素/鼠标运动神经元文化的陶醉在量化内源性表达的全长SNAP-25的裂解免疫荧光法。羧基末端肉毒毒素/ A裂解敏感(BACS)抗体只识别全长SNAP-25允许SNAP-25的肉毒毒素/ A介导的蛋白水解的评价在小鼠运动神经元表达10。的盐酸法的示意图示于图1。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

研究方案

板20000分化的小鼠胚胎干细胞(MES)/孔在96孔聚-D-赖氨酸包被的板并在运动神经元的终末分化培养基维持5-7天。

1.复方管理和中毒与肉毒毒素/ A

执行下列所有工作在BSL2外壳,以保证符合CDC / NIH指南。

  1. 在聚丙烯96孔板中制备10mM储备溶液在100%DMSO中的每个库的化合物。使用10mM储备制备中间稀释板,其是10倍高于所需的筛选浓度。制备100μM的中间板通过分配10mM储备到96孔板中并用培养基稀释至100μM的。分配在细胞上11 10微升化合物对90微升的培养基。测试该化合物在10μM的最终浓度,并确保DMSO的终比例不超过0.5%。
  2. 执行所有螺栓IES是利用活细胞和活性的毒素在生物安全二级条件。与使用12通道移液器手动80微升新鲜终末分化培养基代替旧的介质,在96孔板中。进行抽吸和分配步骤,按行,以避免细胞暴露而不媒体到环境空气中。
  3. 预处理细胞之前通过加入10微升从源板使用12通道移液器,随后通过抽吸混合10倍的化合物应用毒素的化合物(两次)。对于每个96孔板中,治疗的6个孔的两列用10倍的DMSO稀释,在媒体上,作为高信号和低信号的控制。未经治疗的BoNT列显示全长的SNAP-25(高信号控制)的最高水平。对待其他列与肉毒毒素单独(无任何化合物)为低信号控制。使用低对照,观察SNAP-25和其检测与BACS的抗体的BoNT裂解的效率( 图2)。
  4. 孵育细胞30分钟,在37℃,6%CO 2,在细胞培养箱中的化合物。
  5. 准备肉毒杆菌神经毒素A以上的磷酸盐浓度为1mg / ml的商业来源与终端分化培养基稀释缓冲液(PBS)到最终的10倍的股票工作。
  6. 通过加入10微升10×的BoNT / A股成指定用于使用多通道移液管( 图2)治疗和低信号控制井引发中毒。把指定为高的控制与单独媒体的井。
  7. 净化所有的塑料制品和其他一次性用品,在水中至少20分钟的研究,浸泡在0.825%次氯酸钠溶液中谈到与肉毒毒素/ A的接触。请在生物安全柜的所有过程和​​两个前,用5%的洗涤剂消毒清洁剂实验如的MicroChem溶液后净化工作区域。
  8. 标签板明确表示毒素的使用和incub吃板处理与1nM / L的BoNT / A 4小时,在37℃,6%CO 2下在细胞培养孵育箱。显示相应的指示牌,告知同事说,毒素是在实验室使用。
  9. 停止BONT / A蛋白裂解甲醇固定。从各孔中除去含有毒素及化合物媒体用多道移液器,并丢弃在10%漂白溶液中。直接添加冰冷的甲醇(100微升)到每个孔中。
  10. 培养板在室温(RT)下15分钟,以允许固定的发生。
  11. 固定后,安全地处理废弃试剂(被认为中和)与生物安全1级协议和相应的丢弃。
  12. 丢弃甲醇并用100微升PBS洗涤细胞并预先水化他们的免疫染色。执行两个额外的PBS洗涤。
  13. 在最后一次洗涤后,留下的PBS中的孔中,密封板与微板粘合膜,并储存在4℃直至分析。商店板在4℃下FOř好几天。

2.免疫染色

免疫染色过程是劳动密集的,多步骤的操作,其包括重复的试剂分配/吸液循环和广泛板洗涤可导致潜在的引入显著板内和板间的变异性。一种半自动化的方法被应用到保存实验室人员的时间,提高测定吞吐量,并减少免疫染色可变性。

  1. 使用自动化工作站配备有96孔的头部能够传送量高达250微升并集成有机器人夹具臂移动至实验室器具插入模块甲板不同的位置(见材料和​​设备)来获得本协议。
    1. 模块化甲板被设计来承载不同类型的实验室器皿,并且可以在任一时刻支持多达11项。所述自动微处理程序配备了双杂志微孔板堆叠以保持和操纵高达每循环50的板。
    2. 自动化工作站位于II级生物安全柜专为实验室自动化设备,以提供无菌和安全性的内部。用于自动免疫染色,在甲板上被安排为如图3所示,使试剂访问根据需要而无需人工干预。
  2. 预加载板根据需要为液体处理操作包含固定的细胞进入盘盒和传递到甲板上。使用96吸管头部装有250微升提示,从油井吸出PBS下降到10微升。透化细胞膜,促进抗体结合到与透化缓冲液(0.1%的Triton-X 100)的细胞内靶。之前以及将板返回到微孔板堆叠的第二存储盒为一温育15分钟,在室温(RT)下免除透化缓冲液(100微升)到每个。
  3. 删除通透缓冲和PErform板用PBS洗涤(两次),为在步骤1.13如前所述。
  4. 在最后一次洗涤步骤后,除去PBS缓冲液中,并分配100μl的含有在PBS中的1%马血清和0.1%吐温20封闭缓冲液中的成所有微孔板他们在RT返回到盘盒1小时温育之前。
  5. 使用两个初级抗体为免疫染色:兔多克隆抗小鼠BACS的抗体,用于检测全长的SNAP-25和小鼠单克隆抗III微管蛋白抗体用于检测神经元(见材料和​​设备)的。温育60分钟后,除去封闭缓冲液,并分配50微升为4ug / ml的BACS的抗体和III微管蛋白的0.5微克/毫升的在封闭缓冲液入所有的板。
  6. 孵育1小时在室温下除去第一抗体和洗涤用100μl的PBS中含有0.05%吐温(PBST)洗涤3次。
  7. 使用抗小鼠IgG标记的Alexa Fluor 647以可视化的III微管蛋白和抗兔IgG标记的Alexa˚Fluor 568形象化BACS抗体。在封闭缓冲液中制备两种抗体为2微克/毫升的稀释和分配50μl的该混合物在每孔中。
    注意:选择用于免疫染色的二级抗体标记有不同的荧光团,以允许检测其发射的荧光的使用高含量成像仪的检测器内的不同的信道不同的波长的光。
  8. 保温1小时,在室温。吸出的第二抗体和洗涤3次,用100μl的PBST。
  9. 最后一次洗涤后,加入100微升PBS含染料Hoechst公司(32微米)染色的DNA进行核检测。
  10. 封板用不透光的薄膜,以保护从荧光漂白。板可被储存在4   °下星期没有显著信号丢失。

3.影像

注:使用高内涵成像Sys系统进行图像采集TEM(见材料和​​设备)。

  1. 规格高内涵成像定义的:
    1. 选择板型,布局,字段数,目标:格雷纳ü明确,96孔板,16,分别为20倍的水。
    2. 选择通道:核激发EX:405纳米通道4;细胞质EX:644纳米通道2;抗原特异性抗体频道EX:561纳米通道3,每个激光器的设置励磁电源,设置实验为2曝光,曝光1与一个激励,在644纳米,2曝光的两个激励在405纳米和561纳米。选择分级为斌。
    3. 使用高对照孔用于与最大强度为SNAP-25信道和低对照孔为最小强度的曝光最优化。
    4. 调整曝光,使每个信道的强度为约一半的饱和电平(2,000-2,500相对单位)。
    5. 确定使用三角校正脚本小区蒙版通道的最佳Z平面。查看网络连接gure 5染色和成像后的结果。导出数据到其中的图像分析软件是驻留在服务器上。

4.图像分析(图6)

注:以下步骤描述了应用程序的哥伦布软件算法。

  1. 选择一个合适的算法来分割的主要对象(核)。如果需要的话,调整背景阈值和对比度参数。哥伦布软件提供4核的检测方法。选择的方法,该方法段准确细胞核通过目视检查分段核(F中igure 6a的方法M被选中)。
  2. 选择突起算法(CSIRO轴突分析2)段中的突起如果需要,调整背景阈值和对比度参数来去除背景。参见图6b用于检测突起的参数。
  3. 识别轴突区域(突起部分),BAS版上使用β-III微管蛋白的通道(Alexa的面粉640)作为掩模( 图6c)的-3像素扩展的二次对象(突起)。
  4. 计算信号通道(SNAP-25,(Alexa的面粉568)的突起区域和β-III微管蛋白通道( 图6d&6E)的强度。
  5. 选择出口所需的参数,如神经突长度,SNAP-25的平均强度,β-III微管蛋白,核数,轴突段数图1207米 )。
  6. 转让板使用机器人和负载到高内涵成像仪图像采集板堆垛。

5.数据分析:

评估设计测定法的鲁棒性,计算从该板为基础的实验中使用以下参数。

  1. 信号(S)到背景(B)中:S / B =平均值高信号控制的强度)/平均值低信号控制的强度
  2. <利>信号与背景的变化(CV)的系数(以测量特定信号的均匀性):CV =(标准偏差(SD)的样品/平均值)×100(%),以确定在液体处理的可变性,试剂等
  3. 信噪比:S =(平均信号强度 - 指低信号控制的强度)低控制/ SD
    1. 计算用的二分之一的96孔板的,而另一半的一个模拟中毒中毒的Z'因子。 Z'= 1 - 3 *(高信号控制+低信号控制的SD SD)/(平均高信号控制 - 低信号控制的意思)。用于筛选数据的进一步分析,正常化一些在平板上的基础的主原料的参数,以允许板之间和比较实验不同天之间。
  4. %的裂解,这反映了信号的全长度的SNAP-25的特异性抗体检测(BACS)相关联的降低:%裂解= 100%*(MEA高信号控制的n个强度 - 试样的强度)/平均高信号控制的力度。
  5. 抑制裂解的百分比:抑制%= 100%*(样品的强度 - 指低信号控制的强度)/(平均高信号控制的强度 - 指低信号控制的强度)。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

结果

从高和低控制数据创建两个不同的群体与两个位数超过3个标准差(图7A)的差。该筛选方法的目的是要找到样品群体中的化合物,其值越接近阳性对照群体,假定样品群体( 图7B中,(i))内的正态分布。数据点,超出平均值的3个标准偏差被认为是从噪声统计上不同的,并且分类为有效的"命中"( 图7B(ii)中 ,红色框)。被归类为"命中"化合物将受到在未?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

讨论

肉毒杆菌神经毒素,相对缓解他们的武器化的高效力,导致其分类为A类(最高优先级)生物威胁剂由美国疾病控制和预防。不幸的是,没有FDA批准的治疗剂来对抗的BoNT中毒后的毒素已被内化的运动神经元。促进从肉毒毒素中毒的神经元恢复任何成药机制可能会导致对潜在疗法的发展对这种生物的威胁,以保护双方的军种和公众。在这篇文章中,我们提出了一个详细的分析HCI协议进行筛选的致命?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

披露声明

Krishna P Kota is an employee of Perkin Elmer Inc. Waltham, MA, that produces instruments and software used in this manuscript. The content of this publication does not necessarily reflect the views or policies of the U.S. Department of Health and Human Services, the U.S. Department of Defense, the U.S. Department of the Army, or the institutions and companies affiliated with the authors.

致谢

Funding was provided by the Joint Science and Technology Office – Chemical Biological Defense (JSTO-CBD) Defense Threat Reduction Agency (DTRA) under sponsor project number CCAR# CB3675 and National Institutes of Health (1 R21 AI101387-01 and 5 U01AI082051-05).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Botulinum neurotoxin A MetabiologicsNANo catalog number
Microtitre platesGreiner 655946Poly-D-Lysine 96-well plates
BACs antibodyLampire BiologicalNA
MicrochemNational 0255
MethanolThermo ScientificA412-20
FormaldehydeThermo Scientific28908
Horse serumInvitrogen16050
PE JANUS MDT Mini Automated WorkstationPerkin ElmerAJMDT01
OperaPerkin ElmerOP-QEHS-01
Triton X-100Sigma-Aldrich9002-93-1
BIII tubulin antibodyR&D SystemsBAM1195
Tween 20SigmaP1379-1L
Hoechst 33342dye Invitrogen3570
Antimouse IgGInvitrogenA21236
Anti rabbit IgGInvitrogenA10042
Columbus Image analysis softwarePerkin ElmerVer 2.4
SpotfirePerkin ElmerVer 5.5
Clorox bleachFisher Scientific18-861-284
PlateStack

参考文献

  1. Lamanna, C. The most poisonous poison. Science. 130, 763-772 (1959).
  2. Dover, N., Barash, J. R., Hill, K. K., Xie, G., Arnon, S. S. Molecular Characterization of a Novel Botulinum Neurotoxin Type H Gene. J. Infect. Dis. , (2013).
  3. Hakami, R. M., Ruthel, G., Stahl, A. M., Bavari, S. Gaining ground: assays for therapeutics against botulinum neurotoxin. Trends in microbiology. 18, 164-172 (2010).
  4. Yersin, A., et al. Interactions between synaptic vesicle fusion proteins explored by atomic force microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100, 8736-8741 (2003).
  5. Dong, M., Tepp, W. H., Johnson, E. A., Chapman, E. R. Using fluorescent sensors to detect botulinum neurotoxin activity in vitro and in living cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 14701-14706 (2004).
  6. Stahl, A. M., Adler, M., and, C. B. M., Gilfillan, L. Accelerating botulism therapeutic product development in the Department of Defense. Drug Development Research. 70, 303-326 (2009).
  7. Nuss, J. E., et al. Development of cell-based assays to measure botulinum neurotoxin serotype A activity using cleavage-sensitive antibodies. Journal of biomolecular screening. 15, 42-51 (2010).
  8. Opsenica, I., et al. A chemotype that inhibits three unrelated pathogenic targets: the botulinum neurotoxin serotype A light chain, P. falciparum malaria, and the Ebola filovirus. Journal of medicinal chemistry. 54, 1157-1169 (2011).
  9. Opsenica, I., et al. The synthesis of 2,5-bis(4-amidinophenyl)thiophene derivatives providing submicromolar-range inhibition of the botulinum neurotoxin serotype A metalloprotease. European journal of medicinal chemistry. 53, 374-379 (2012).
  10. Nuss, J. E., et al. Pharmacophore Refinement Guides the Rational Design of Nanomolar-Range Inhibitors of the Botulinum Neurotoxin Serotype A Metalloprotease. ACS medicinal chemistry letters. 1, 301-305 (2010).
  11. Kiris, E., et al. Embryonic stem cell-derived motoneurons provide a highly sensitive cell culture model for botulinum neurotoxin studies, with implications for high-throughput drug discovery. Stem cell research. 6, 195-205 (2011).
  12. Pellett, S., et al. Neuronal targeting, internalization, and biological activity of a recombinant atoxic derivative of botulinum neurotoxin A. Biochemical and biophysical research communications. 405, 673-677 (2011).
  13. McNutt, P., Celver, J., Hamilton, T., Mesngon, M. Embryonic stem cell-derived neurons are a novel, highly sensitive tissue culture platform for botulinum research. Biochemical and biophysical research communications. 405, 85-90 (2011).
  14. Fischer, A., et al. Bimodal modulation of the botulinum neurotoxin protein-conducting channel. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 1330-1335 (2009).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

93

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。