隔离增效变种的Hsp104利用酵母Proteinopathy模型

摘要

Yeast proteinopathy models are valuable tools to assess the toxicity and aggregation of proteins implicated in disease. Here, we present methods for screening Hsp104 variant libraries for toxicity suppressors. This protocol could be adapted to screen any protein library for toxicity suppressors of any protein that is toxic in yeast.

摘要

Many protein-misfolding disorders can be modeled in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. Proteins such as TDP-43 and FUS, implicated in amyotrophic lateral sclerosis, and α-synuclein, implicated in Parkinson’s disease, are toxic and form cytoplasmic aggregates in yeast. These features recapitulate protein pathologies observed in patients with these disorders. Thus, yeast are an ideal platform for isolating toxicity suppressors from libraries of protein variants. We are interested in applying protein disaggregases to eliminate misfolded toxic protein conformers. Specifically, we are engineering Hsp104, a hexameric AAA+ protein from yeast that is uniquely capable of solubilizing both disordered aggregates and amyloid and returning the proteins to their native conformations. While Hsp104 is highly conserved in eukaryotes and eubacteria, it has no known metazoan homologue. Hsp104 has only limited ability to eliminate disordered aggregates and amyloid fibers implicated in human disease. Thus, we aim to engineer Hsp104 variants to reverse the protein misfolding implicated in neurodegenerative disorders. We have developed methods to screen large libraries of Hsp104 variants for suppression of proteotoxicity in yeast. As yeast are prone to spontaneous nonspecific suppression of toxicity, a two-step screening process has been developed to eliminate false positives. Using these methods, we have identified a series of potentiated Hsp104 variants that potently suppress the toxicity and aggregation of TDP-43, FUS, and α-synuclein. Here, we describe this optimized protocol, which could be adapted to screen libraries constructed using any protein backbone for suppression of toxicity of any protein that is toxic in yeast.

引言

酵母proteinopathy模型已经开发了用于蛋白质错误折叠疾病，包括肌萎缩侧索硬化症（ALS）和帕金森氏病^{（PD）1-3。}蛋白质TDP-43和FUS，在ALS患者其错误折叠的表达，是有毒的，mislocalize形成细胞质聚集在酵母^1,2。类似地，α突触核蛋白（α-顺式），其牵涉在PD的表达，是有毒的和mislocalizes形成细胞质聚集体在酵母^3。这些特性概括在表型的患者患有这些疾病^4,5。因此，酵母模型提供了一个有益的平台，筛选，以防止或逆转这些表型^2,6-13蛋白质或小分子。我们感兴趣的蛋白，其能够可逆聚集和毒性由于TDP-43，FUS，和α - 顺式的发展。我们注重的Hsp104，一个AAA +蛋白酵母是唯一能解聚蛋白的两个FROM无定形聚集和淀粉样蛋白在酵母中，但它没有人类同源^14,15。的Hsp104被精细地调谐到分解的内源性酵母朊病毒，并具有唯一的解聚与人类神经变性疾病的底物，它从不通常遇到^16,17的能力有限。因此，我们的目标是工程师的Hsp104的增强版本，它们能够efficaciously分解这些人的基板。要做到这一点，我们构建大库使用易错PCR变种的Hsp104;这些库可以利用酵母proteinopathy ¹⁷款进行筛选。我们采用了域针对性的方法来构建和筛选库，为的Hsp104是非常大的^17。我们最初集中在中间域的Hsp104 ¹⁷的纵向（MD），但类似的方法可以用于筛选其他领域。这些模型可以筛选disaggregase活动直接，而不是如表面显示，这是剩下的替代技术ricted用于监测结合^18。

我们的协议是基于两个筛选步骤（ 图1）。首先，抑制酵母病衬底的毒性的Hsp104变体被选择。这样做，所述变体的Hsp104和疾病相关的衬底被共转化进ΔHSP104酵母。我们采用ΔHSP104酵母探索在没有野生型^（WT）17的Hsp104的Hsp104序列空间。重要的是，缺失的Hsp104不影响α-顺，FUS，或TDP-43的毒性在酵母和的Hsp104 ^WT的表达提供了最小的救援^1,13,17。酵母，然后铺于诱导培养基来诱导这两种蛋白质的表达。酵母窝藏的压制殖民地的疾病相关基板胙增长毒性变异的Hsp104。这些变体被选择用于进一步分析，而菌落保持变体不抑制毒性死亡。不过，误报是在该屏幕一个很大的问题。 TDP-43，FUS，和α - 顺式的表达是高度有毒的，它创建了对于毒性无关的Hsp104变体的自发遗传抑制器的外观强烈的选择压力被表达。因此，我们已经使用了一个辅助屏幕也相对高吞吐量，以消除这些非特异性毒性抑制器^17。在此二次筛选，选择的酵母与5- Fluorootic酸（5-FOA）处理以对抗选择为的Hsp104质粒^19。的菌株，然后通过点样测定，以确保所述衬底的毒性的Hsp104质粒丢失后恢复评估衬底（TDP-43，FUS，或α - 顺式）的毒性。因此，酵母，其中毒性在本二次筛选恢复推测最初显示毒性抑制因的Hsp104变体的存在。这些酵母被指定为"命中"，然后将质粒的Hsp104应回收并测序，以确定在所述的Hsp104基因^17（ 图1）中的突变。任何命中应该然后通过构建突变独立地使用定点诱变，然后再测试的毒性抑制作确认。该协议的潜在应用是广泛的。使用这些方法，任何类型的蛋白质的文库可以进行筛选，即抑制任何底物蛋白质是在酵母中的有毒的毒性变异体。

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研究方案

1.生成库

1. 构造的Hsp104利用特定于域的易错PCR文库，首先扩增感兴趣与易出错的DNA聚合酶²⁰的域。
2. 纯化PCR产物通过凝胶提取。
3. 使用标准的定点诱变协议进行大引物延伸步骤:结合为50ng模板质粒，250ng的大引物，200μMdNTPs和高保真DNA聚合酶在PCR缓冲液，并稀释至50μl总体积PCR级水²⁰ 。运行一个标准的PCR程序。
   注意:用于将基于要被扩增的基因的特定区域而变化的特定的引物。
   1. 下述PCR，在37℃下消化亲代DNA模板与1μl的DPN限制性内切酶处理2小时。
4. 通过电穿孔或其他方法在ultracompetent 大肠杆菌转化库大肠杆菌和小量净化它。
   注:库代差异极大基于给定实验的目的。的Hsp104是一个非常大的蛋白质，因此它是不现实的随机化的完整基因，这就是为什么我们利用特定于域的易错PCR。此外，的Hsp104的结构仍然知之甚少，使得定向库挑战²¹的设计。库可以用定向或随机的方法来诱变来构建，唯一的限制是，该模板质粒骨架应包含URA3基因，以允许在葡萄糖介质5-FOA反选择。

2.转型的Hsp104图书馆

1. 使用标准的醋酸锂/ PEG转化协议²²集成的疾病相关的基板为W303aΔHSP104酵母。选择单菌落，筛选它们的毒性隔离关联基板²³该病的高毒性菌株。
   注:使用集成的应变和IsolaTE的一种单菌落，以确保在所有细胞中表达的平等。克隆病基底到质粒允许整合下比尿嘧啶以外的任何标记（我们使用组氨酸）和所述的Hsp104文库的基因导入pAG416GAL质粒（尿嘧啶标记^）24。为了让5-FOA反选择，确保库是从与尿嘧啶标记的质粒表达。其他的酵母菌株也可使用。我们注意到使用W303a和BY4741酵母菌株在WT和ΔHSP104背景（MEJ和JS，未发表意见）相似的毒性抑制的表型。
2. 使用相同的醋酸锂/ PEG转化协议²²改造图书馆的Hsp104这个压力。向上扩展变换适当地保持库的序列空间和保存预测的文库大小。
3. 制版用足够板的转化混合物到非诱导，选择性平板（ 例如 SD-他浦）确保大量菌落的生长。使用大陪替氏培养皿（150毫米），最小化所需的板的数量。回收利用板的转化使转化效率进行评估。
4. 变换的Hsp104 ^WT和载体的阴性对照平行。

3.筛选抑制Proteotoxicity的

1. 利用棉子糖补充丢失的介质（ 如 SRaff，他的浦）洗掉板的殖民地。用血清学移液器和无菌敷料木从板松开殖民地。转移的液体洗涤至50ml锥形管中，涡旋彻底分离的细胞中的任何团块。稀释至轻微浑浊的文化，外径_{600〜0.025。}
   注:这里的棉子糖的作用是缓解诱导葡萄糖介导的抑制的细胞，从而引发细胞的半乳糖介导的诱导。
2. 振荡在3一夜长大稀释文化，棉子糖辍学媒体0ºC。成长^WT的Hsp104和矢量控制并行。
3. 第二天早晨，制版浓度范围到个别半乳糖（ 例如 SGal-他浦）的板（1微升至2毫升浓培养于400μl总体积）。镀了广泛的浓度范围内可以保证一板将具有单个菌落。所需的实际浓度取决于所关注的疾病衬底的毒性。
4. 归一化矢量和的Hsp104 ^野生型培养物到库中的OD ₆₀₀和板等体积的比较相对于所述控件库的增长。
5. 为了评估选择严格，板块葡萄糖库（抑制）的媒体。孵育平板2-3天，在30°C以上，直至菌落出现（ 图2）。评估所产生的菌落并比较对照。
   注:通常大型和小型的殖民地获得，但菌落大小和行为之间无相关性ivity观察。筛选使用5-FOA计数器选择技术（步骤4），以尽量减少结转测序误报这些潜在的命中。

4. 5-FOA反选择和定位，以消除误报

1. 连胜出单菌落重复到双人和单人辍学介质（ 如 SD-他的浦和SD-他的车牌），并在30ºC成长过夜。重复使用矢量和^WT的Hsp104控制。镀上的SD-他之前的5-FOA，增加的可能性，细胞就会失去了质粒的Hsp104当它们被镀上5-FOA增加了5-FOA步骤的效率。
2. 为了防止板变干，敷SD-他的浦板块的​​封口膜，并储存在4ºC，同时进行5-FOA屏幕。这些板最终将被用于测序。
3. 条纹从菌落中的SD-他的板，以单菌落对5-FOA平板（YPD培养基+1克/ L的5-FOA）并孵育1-2天，在30＆＃186; C，直到单菌落出现。这里，5-FOA转化成毒性产物（5-氟脱氧尿苷）在包含URA3基因的细胞。因此，任何细胞仍窝藏质粒的Hsp104会死。
4. 连胜从5-FOA平板式两份的单菌落到SD浦和SD-他的板。测试3个菌落为每个命中的可能性增加，至少一个集落的每个命中会失去了的Hsp104质粒。孵育1-2天，在30℃下。已经失去了质粒的Hsp104将生长在SD-他的板，但没有SD浦板块的殖民地。
5. 成长已经失去了质粒的Hsp104用于探测试验菌株。长株棉子糖辍学媒体饱和度（ 如 SRaff-他）在96深孔2毫升板过夜30ºC震荡。一定要包括5-FOA处理的对照菌株。
6. 准备板的斑点检测。使用多道移液器，分装200微升棉子糖辍学介质（ 如 SRaff-他）每以及一个96孔板的，保留列1和7为纯的培养物。等份加入250μl各16的饱和培养物的成列1和板7。
7. 连续稀释的培养物5倍到板的各列中，用多通道移液管充分混合。从柱6和12去除50微升稀释的培养物，以确保每个孔中的最终体积为200微升。这是必要的，以确保均匀的斑点。
8. 用96螺栓复制工具（青蛙），发现一式两份的培养到SD-他和SGal，他的板。孵育所述板在30°C以上为2-3天。
9. 选择用于测序显示出对SGal-他板类似于对照的毒性菌株。放弃误报菌株，但并不像控制有毒。 5-FOA也是对自己往往有毒的，所以放弃，表现出对SD-他的片生长不良或表现出显着毒性较大比单独的疾病基板株（ 的图3）。

5.测序的变体的Hsp104菌落PCR

1. 从SD-他浦板刮〜10微升酵母在3微升的20mM的NaOH中的PCR条管和冻融裂解细胞。放置在-80ºC冷冻带状管10分钟，或在液氮中，然后孵育99ºC在热循环仪进行10分钟。稀释该菌株以100微升用PCR级水。
2. 准备PCR反应:5μLPCR模板，0.5微升100μM的引物各0.5微升10毫的dNTP，在PCR缓冲液0.25微升的DNA聚合酶，并进行多达25微升总体积PCR级水。设计引物来扩增随机区域加上两端约100bp。最小化的放大区域的尺寸，以增加成功的扩增的可能性。运行一个标准的PCR程序。
3. 分析通过琼脂糖凝胶电泳的样品，以确认适当的SIZ的PCR产物的扩增Ë。重复PCR，如果没有产品存在。
   注:PCR失败通常是由于过多的酵母在步骤5.1被使用。
4. 制备样品用于DNA测序。除去PCR引物或者通过PCR纯化或使用PCR产物的清除剂，如外切核酸酶I和虾碱性磷酸酶的酶（ExoSAP-IT）的降解单链DNA。此试剂酶促降解未掺入的引物和dNTP，从而允许更高的吞吐量。
5. 序列的PCR产物。一定要深入分析测序图谱的基因突变。突变可以被观察到的两个核苷酸在给定的位点（ 图4）的混合物，如酵母经常怀有多种质粒。

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结果

我们已经构建了随机的中间领域的Hsp104变体库，并筛选其用于抑制TDP-43毒性。库进行转化并接种到葡萄糖和半乳糖的板（ 图2），以评估在屏幕的严格性。单菌落，选择并且该菌株，使用5-FOA消除的Hsp104质粒计数器选中。将这些菌株再评估以确认毒性是由于TDP-43的单独，没有的Hsp104变体。在初始屏幕中选择的变体的一个子集的点样分析表明，所选择的4菌落，2显示的Hsp104介导的TDP-43的?...

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讨论

在这里，我们提出我们的方法来隔离的抑制用酵母proteinopathy车型疾病相关基材的毒性增效的Hsp104变种。使用这种方法，变体大文库可以筛选在高吞吐量，唯一的限制是对所有通过5-FOA二次筛选变体的数量。通过在96孔格式这些步骤，我们例行公事地检查了200个命中在5-FOA步过1-2周的课程时间。在最初的筛选步骤中求出的匹配个数将变化很大程度上取决于衬底毒性和每一特定库的组成。当测序命中，...

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材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
GeneMorphII EZClone Domain Mutagenesis Kit	Agilent	200552
150 mm Petri dishes	Falcon	351058
5-Fluorootic Acid	Research Products International	f10501-5.0
96-DeepWell 2 ml Plates	Eppendorf	0030 502.302
96 bold replicator tool	V&P Scientific	vp-404
ExoSAP-IT	Affymetrix	78200