1。气味稀释<ol><li>大多数气味溶于石蜡油。然而，DMSO或乙醇也可以被用来作为对特定气味的替代溶剂。准备适当稀释（例如1:10体积：体积，V：V）从纯粹的玻璃小瓶气味。大多数的气味稀释，在室温下稳定，但极易挥发的化合物，它是更好的每周工作稀释。每个感器的响应，以不同浓度范围内不同的气味。对于果蝇 ，一个有用的查表的，适当的浓度，使用一个给定的感器，可以发现在6，7。 对于视频实验中，我们用石蜡油作为溶剂的控制和醋酸甲酯（10 -6 V：v在石蜡油）和1 -辛烯-3 - 醇 （10-7 V：v在石蜡油）对果蝇和按蚊录音，分别为。 </li><li>用剪刀，切成3毫米× 5厘米条层析纸，使他们适合巴斯德吸液管内。 </li><li>移液器30μL的滤纸条上所需的气味，玻璃吸管插入。切〜3厘米的空气管路，插入吸管的开口端，关闭它的连接器。连接器是用来密封吸管，然后将连接到一个空气泵空气管路时，时间，在实验过程中提供的气味。 </li></ol> 2。气味输送系统<ol><li>使用的小钻，切10毫升塑料血清移液器（如在4毫升），并创建两个孔（例如，在-1.5 mL和-0.5毫升商标）将用来存放移液器含有的气味。插入一个200μL枪头刺耦合，并引入到10毫升吸管的钝端的耦合。吸管将被用作气味交付系统的一部分。 </li><li>附加磁性支架上的吸管，用吸管钳和附近的显微镜，它的位置。 </li></ol> 3。锐化电极<ol><li>为了加强电极，准备0.5米的氢氧化钾溶液（KOH）和过滤器以去除细颗粒物（如：采用45微米过滤器）。 20毫升的注射器和一个小孔（直径为2毫米），墙上贴着一针针尖（从尖〜1厘米），在其中插入电线（图1A）。 </li><li>填充注射器，用0.5 M KOH和打击，在显微镜下它的立场上，使针尖放置在视野（图1B，C），。到注射器上墙（图1B）的小孔，插入电线，确保导线是不能直接在注射器入口前。此线连接到直流电源（例如野生Heerbrugg MTR32，见方法）或交流电源（如野生Heerbrugg - LEP 990018）极的阴极。连接到显微镜右侧的手动显微电极支架轴，并附加电缆与鳄鱼夹的电极支架轴的基础。连接电缆的直流电源或交流电源（图1A）的另一极阳极。 </li><li>插入电极支架的钨丝（约5厘米长），并且将它附加到电极支架轴操纵。设置为6 V的电源，插入注射器反复磨练线的一角，小心监控，在显微镜下在这个过程中的提示（图1C）。要得到一个理想的录音的电极，其长度在溶液中的90％，为1分钟，并慢慢地将其拉出。然后插入只有约50％的电极，以进一步薄30秒，并重复削尖（〜10倍）的导线尖端。 电极尖端应足够细，进入了感​​器，但没有这么细，弯曲，当它触动它在录音（步骤6和7）。虽然看解剖显微镜下的电极尖端，而它被削尖，是一个很好的迹象，其厚度仅看它记录在高倍显微镜下将给出一个明确的想法，一个给定的电极是否适合用于记录。 </li></ol> 4。昆虫准备： 果蝇天线<ol><li>构建一只苍蝇抽吸。剪下一块空气管路足够长的时间挂在你的脖子，舒适（约90 - 120厘米）。剪下200μL枪头的尖端和管的一端插入。在另一端，位置1〜1.5厘米× 1.5厘米的网状片，以便它创建了一个物理屏障，但并不妨碍空气管流出。剪下1毫升枪头和管开放的顶部位置更广泛的提示，阻断之间的网格。这部分将用于拿起和操纵成人醋蝇（图2）。 </li><li>以载玻片，放置了一块大约在长边的中间牙科用蜡。它positio顶部NA玻璃盖略微倾斜向上（〜30），确保蜡是不是直接放在最上面的一部分，这将防止在显微镜下可视化飞醋。拉玻璃电极垂直拉拔。其尖端应薄且具有足够的灵活性，以适应在第二和第三的触角段之间，并保持录音天线稳定。另一块蜡玻璃电极的位置，放在玻璃盖的一侧，远远不够，笔尖的时候，降低到达角落的玻璃盖（图3A）。 </li><li>工作所需的基因型成蝇瓶或小瓶，拿起一个成年人的飞醋，使用飞抽吸​​。虽然女性通常是因为他们的更大的大小，男性也可以使用。 1毫升的小费上放置一个200μL枪头，以避免逃跑的飞行。吹入管，使飞对200μL枪头年底推。修剪刀片的枪头远离苍蝇本身几毫米宽的一端，然后插入一些蜡，以防止飞打了退堂鼓。在显微镜下，再次下调头附近的飞醋，注意不损害动物。有了一个小吸头，推蜡力飞头，使眼睛的一半左右，从尖（图3B）挤出。确保它的腿不出来为好，否则可能会移动和干扰录音。 </li><li>山飞一块蜡，其头部朝上，并将其放置在前面的玻璃盖的幻灯片上。将头微微对玻璃的一角，使触角延伸和休息上的玻璃。下之间的第二次和第三次的触角段（图3B）的玻璃毛细管的尖端。 </li><li>天线的不同部分会进入到不同类型的感受器。根据特定的实验需要，天线将需要面向不同的，允许访问到不同类型的感受器。要记录在我们的例子从大basiconic感器的阿里斯塔向下压在玻璃上（图3B）。 </li></ol> 5。昆虫准备： 按蚊上颌触须<ol><li>使用电动吸引器（图2E），40至60 3-5天（混合男性和女性）老蚊子收集的小塑料箱（图2F）。蚊子应该已经在正常条件下饲养，在昆虫的孵化器或insectary即在25-28℃，湿度70-80％。将冰〜15分钟的小动物的塑料保持架，直到它们被寒冷的麻醉。动物一旦停止移动，只有4-6动物转移的阶段，在显微镜下在任何一个时间内，保持其余的动物，在程序上冰。虽然女性通常是因为他们对CO 2的敏感性，男性也可聘用。选择女性或男性的蚊子，其天线结构（羽毛般的女性，男性长丝）来看，并删除它们的翅膀和腿，用细镊子固定。保持在一个小塑料杯，他们在底部的湿纸，以防止他们从desiccating。 </li><li>把两条双面胶带（〜1厘米的长度），在该中心，并在载玻片两侧平行于对方（〜1厘米），（图3C）。用细镊子，地方对中央磁带之一蚊子解剖显微镜下，侧身把它坚持它的身体和一只眼睛，在磁带上。调整这样既触须延伸到磁带上（图3D）平行的位置上颌骨的触须。弦细（如人的头发）放置在基地和触须（图3D）的尖端修复上颌骨的触须。端磁带存储作为弦细，而中央的磁带需要被替换后，每一个记录（图3C）。 </li></ol> 6。记录果蝇 <ol><li>幻灯片下放置在低倍率的显微镜和天线位置大致在中间领域的视野（FOV）（图4B）（图4A）。轻轻放下，使参比电极电极位于飞和记录电极靠近天线（图4C）眼睛附近。增加在中间的视野（图4D）的放大倍率和重新定位的天线。 </li><li>广场的气味传递给设备密切飞的头，指着在天线。 </li><li>在低倍率（图4C），参比电极插入飞的眼睛。下而不触及其表面上的天线顶端的记录电极。 </li><li>切换到高放大倍率，控制与显微记录电极，并把它插入到选定感器（图4D）。沿感器长度的任何一点是录制好的​​。一旦感器内，电极可推更远（有时所有的方式通过）以获得更好的信噪比。一旦电极感器，可以检测细胞的自发活动。 </li></ol> 7。录音按蚊 <ol><li>放置在低倍率（10倍）的视野和头顶部的中间位置，大约在上颌骨的触须的显微镜下的载玻片（图4E）。旋转舞台，直到在直角与记录电极的触须。 </li><li>调整电极的高度，使参比电极定位略高于眼睛的蚊子和记录电极附近的上颌骨的触须。 </li><li>将气味传送装置，使其尽可能接近的触须。 </li><li>参比电极插入眼睛，在较低的放大倍率（10倍），并切换到更高的放大倍率（100X），触须（图4F）的记录电极插入PEG感器。一旦电极感器，可以检测细胞的自发活动。 </li></ol> 8。代表性的成果根据感器和录音质量，可以区分不同数量的嗅觉神经元在一个单一的跟踪。 果蝇在大basiconic感器，例如，2至4尖峰幅度不同的细胞应该会出现在录制过程中，10 。 我们的视频实验中，果蝇AB2感器显示两个细胞，一个细胞（图5，蓝色的尖峰）和B细胞（图5，绿色尖峰） 。石蜡油（图5A）申请的过程中无论是细胞被激活，而只有在一个细胞响应10-6稀释醋酸甲酯（图5B ）。 在按蚊的上颌触须，沟槽PEG感器包含三个单元格，但只有两个很容易受到歧视（图5C，蓝色和绿色的峰值，分别）。在视频实验中，我们显示的B细胞如何响应一个10-7稀释1 -辛烯-3 -醇（图5D ）。 <img src="/files/ftp_upload/1725/1725fig1.jpg" alt="图1" /> 图1。电极卷笔刀 （二）（A）一般查看电极机设备。的注射器，注射器开幕电极尖端含有0.5 M KOH（左）用于增强电极（右）。（c）关闭。 <img src="/files/ftp_upload/1725/1725fig2.jpg" alt="图2" /> 图2。如何准备飞抽吸和蚊子吸气泵 （A）启动材料：。。空气线塑料管，两个切割枪头，和网状（二）（四）一旦完成飞抽吸（三）年底，是用来捕捉醋蝇的详细细节飞抽吸另一端（E）电动吸引蚊子收集由一个主体和一个可拆卸的塑料保持架（F）可拆卸的蚊子塑料保持架。 <img src="/files/ftp_upload/1725/1725fig3.jpg" alt="图3" /> 图3。准备录制一个飞醋（ 果蝇 ）和疟疾的蚊子（ 按蚊 ） （二）（一）飞行装醋的图片前，它定位在显微镜下幻灯片上。特写玻璃毛细管保持在天线的飞醋头（C）一种通过蚊子传播的图片上安装幻灯片（d）关闭蚊子头长鼻和磁带上的触须坚持。 <img src="/files/ftp_upload/1725/1725fig4.jpg" alt="图4" /> 图4。录制从飞醋（ 果蝇 ）和疟疾的蚊子（ 按蚊 ） （一）电设置（B）的飞行准备关闭安装在显微镜上。请注意各自的位置，记录电极（左），气味传送系统（中间移液器），和记录电极（右）（C）下10倍的目标动态图像（D）飞天线100X的目标;大basiconic感器（箭头），（五）非感官毛（箭头）之间穿插的10X查看记录安装一只蚊子（F）的蚊子的触须和PEG感器（箭头）高倍镜视野。 。 <img src="/files/ftp_upload/1725/1725fig5.jpg" alt="图5" /> 图5。从果蝇的录音和按蚊 （一） 果蝇的AB2感器房子两个感觉神经元;。一个单元格（蓝色尖峰）和B细胞（绿色尖峰）（二 ）10-6醋酸甲酯的应用过程中的A和B 细胞 （C） PEG 按蚊感器设有两个感觉神经元的一个单元格（蓝色尖峰）和B细胞（绿色尖峰）（四）10-7 1 -辛烯-3 -醇PEG感器的应用。

<ol>
	<li>Boeckh, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Elektrophysiologische+Untersuchungen+an+einzelnen+Geruchsrezeptoren+auf+der+Antenne+des+TotengrAbers+(Necrophorus+Coleoptera).">Elektrophysiologische Untersuchungen an einzelnen Geruchsrezeptoren auf der Antenne des TotengrAbers (Necrophorus Coleoptera).</a> Z. Vergl. Physiol. 46, 212-248 (1962).</li><li>Schneider, D., Hecker, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zur+Elektrophysiologic+der+Antenne+des+Seidenspinners+Bombyx+mori+bei+Reizung+mit+angereicherten+Extrakten+des+Sexuallockstoffes.">Zur Elektrophysiologic der Antenne des Seidenspinners Bombyx mori bei Reizung mit angereicherten Extrakten des Sexuallockstoffes.</a> Z. Naturforschg. 11b, 121-124 (1956).</li><li>Touhara, K., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensing+odorants+and+pheromones+with+chemosensory+receptors.">Sensing odorants and pheromones with chemosensory receptors.</a> Annu Rev Physiol. 71, 307-332 (2009).</li><li>Sato, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insect+olfactory+receptors+are+heteromeric+ligand-gated+ion+channels.">Insect olfactory receptors are heteromeric ligand-gated ion channels.</a> Nature. 452, 1002-1006 (2008).</li><li>Wicher, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+odorant+receptors+are+both+ligand-gated+and+cyclic-nucleotide-activated+cation+channels.">Drosophila odorant receptors are both ligand-gated and cyclic-nucleotide-activated cation channels.</a> Nature. 452, 1007-1011 (2008).</li><li>Hallem, E. A., Ho, M. G., Carlson, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+molecular+basis+of+odor+coding+in+the+Drosophila+antenna.">The molecular basis of odor coding in the Drosophila antenna.</a> Cell. 117, 965-979 (2004).</li><li>Hallem, E. A., Carlson, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coding+of+odors+by+a+receptor+repertoire.">Coding of odors by a receptor repertoire.</a> Cell. 125, 143-160 (2006).</li><li>Boeckh, J., Kaissling, K. E., Schneider, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insect+olfactory+receptors.">Insect olfactory receptors.</a> Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 30, 263-280 (1965).</li><li>de Bruyne, M., Foster, K., Carlson, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Odor+coding+in+the+Drosophila+antenna.">Odor coding in the Drosophila antenna.</a> Neuron. 30, 537-552 (2001).</li><li>Lu, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Odor+coding+in+the+maxillary+palp+of+the+malaria+vector+mosquito+Anopheles+gambiae.">Odor coding in the maxillary palp of the malaria vector mosquito Anopheles gambiae.</a> Curr Biol. 17, 1533-1544 (2007).</li><li>Hallem, E. A., Fox, A. N., Zwiebel, L. J., Carlson, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Olfaction:+mosquito+receptor+for+human-sweat+odorant.">Olfaction: mosquito receptor for human-sweat odorant.</a> Nature. 427, 212-213 (2004).</li><li>Couto, A., Alenius, M., Dickson, B. J. M. o. l. e. c. u. l. a. r. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=anatomical,+and+functional+organization+of+the+Drosophila+olfactory+system.">anatomical, and functional organization of the Drosophila olfactory system.</a> Curr. Biol. 15, 1535-1547 (2005).</li><li>Fishilevich, E., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+and+functional+subdivision+of+the+Drosophila+antennal+lobe.">Genetic and functional subdivision of the Drosophila antennal lobe.</a> Curr Biol. 15, 1548-1553 (2005).</li></ol>

用于生物识别的食物来源，潜在的队友，和食肉动物的嗅觉线索。嗅觉感觉神经元（OSNs）之间的外部刺激，并进一步处理信息的大脑中心的第一个接力中心。在果蝇和按蚊 ，OSNs方便，可以监视他们的电活动而刺激的气味喷。 单感器记录（SSR）技术的解释，该视频已被广泛应用于从OSNs记录和研究它们的电反应，大量的气味6， 7。嗅觉受体（ORS）6，11...

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		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Paraffin oil</td>
<td>Odors</td>
<td>Fluka</td>
<td>76235</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>High purity odors (&gt;98%)</td>
<td>Odors</td>
<td>Sigma-Aldrich</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Methyl acetate 
#296996 
1-octen-3-ol 
#74950 </td>
</tr>
<tr>
<td>Filter paper strips</td>
<td>Odors</td>
<td>Fisherbrand</td>
<td>05-714-1</td>
<td>Chromatography paper</td>
</tr>
<tr>
<td>Connectors</td>
<td>Odors</td>
<td>Cole-Parmer</td>
<td>EW-06365-40</td>
<td>1/16x1/8"</td>
</tr>
<tr>
<td>Glass vials</td>
<td>Odors</td>
<td>Agilent Technologies</td>
<td>5182-0556</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Air line plastic tubing</td>
<td>Odor Delivery</td>
<td>Python Products</td>
<td>500PAL</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>1 serological pipette</td>
<td>Odor Delivery</td>
<td>Corning</td>
<td>4101</td>
<td>10 mL</td>
</tr>
<tr>
<td>Plastic tubing</td>
<td>Odor Delivery</td>
<td>Cole-Parmer</td>
<td>EW-06418-0</td>
<td>0.050"x0.090"OD</td>
</tr>
<tr>
<td>Disposable borosilicate glass Pasteur pipettes</td>
<td>Odor Delivery</td>
<td>FisherBrand</td>
<td>13-678-20A</td>
<td>5-3/4 inches</td>
</tr>
<tr>
<td>Programmable stimulus controller</td>
<td>Odor Delivery</td>
<td>Syntech</td>
<td>CS-55</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Anti-vibration table</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>TMC</td>
<td>63533</td>
<td>36&#x201D;Wx30&#x201D;Dx29&#x201D;H</td>
</tr>
<tr>
<td>Faraday cage</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>TMC</td>
<td>MI8133303</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Inverted microscope</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Nikon</td>
<td>E600FN ECLIPSE</td>
<td>Recording microscope</td>
</tr>
<tr>
<td>10x and 100x objectives</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Nikon</td>
<td>10x Plan Fluor 100x L Plan</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Dissecting microscope</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Nikon</td>
<td>EZ645</td>
<td>electrode sharpening/insect prep microscope</td>
</tr>
<tr>
<td>Magnetic stands</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Newport</td>
<td>MODEL 150</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>IDAC</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Syntech</td>
<td>IDAC-4</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Acquisition software</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Syntech</td>
<td>Autospike</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>1 macromanipulator</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>NARISHIGE</td>
<td>MN-151</td>
<td>Joystick manipulator 
Used for positioning reference electrode
</td>
</tr>
<tr>
<td>1 micromanipulator</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>EXFO</td>
<td>PCS-6000</td>
<td>Used for positioning recording electrode</td>
</tr>
<tr>
<td>Crocodile clip</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Pomona</td>
<td>AL-B-12-0</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Electric cable</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Pomona</td>
<td>B-36-0</td>
<td>Test Cable Assembly</td>
</tr>
<tr>
<td>2 electrode holders</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Syntech</td>
<td>N/A</td>
<td>Electrode holders (set of 2) for tungsten wire electrode</td>
</tr>
<tr>
<td>AC probe</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Syntech</td>
<td>N/A</td>
<td>Universal single ended probe (10xAC)</td>
</tr>
<tr>
<td>Tungsten electrodes</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Microprobes</td>
<td>M210</td>
<td>straight tungsten rods, 0.005&#x201C;x3&#x201C;</td>
</tr>
<tr>
<td>Potassium hydroxide</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>Sigma-Aldrich</td>
<td>221473</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Syringe</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>BD</td>
<td>301625</td>
<td>20 mL</td>
</tr>
<tr>
<td>Power supply</td>
<td>Electrophysiology Equipment</td>
<td>WILD HEERBRUGG 6V 40W</td>
<td>e.g MTR32</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Vertical puller</td>
<td>Insect prep</td>
<td>Narishige</td>
<td>PB-7</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Razor blade</td>
<td>Insect prep</td>
<td>VWR</td>
<td>55411-050</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Dental wax</td>
<td>Insect prep</td>
<td>Patterson</td>
<td>091-1503</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Microscope slide</td>
<td>Insect prep</td>
<td>FisherBrand</td>
<td>12-550A</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Cover glass</td>
<td>Insect prep</td>
<td>FisherBrand</td>
<td>12-541A</td>
<td>18X18 #1.5</td>
</tr>
<tr>
<td>Polypropylene mesh</td>
<td>Insect prep</td>
<td>Small Parts inc.</td>
<td>CMP-0500-B</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Glass electrode</td>
<td>Insect prep</td>
<td>Frederick Haer & Co.</td>
<td>27-32-0-075</td>
<td>Capillary tubing borosilicate 1.5mm OD x 1.12mm ID x 75 mm</td>
</tr>
<tr>
<td>Double-sided tape (3M)</td>
<td>Insect prep</td>
<td>3M</td>
<td>MMM6652P3436</td>
<td>Double-sided tape (3M)</td>
</tr>
<tr>
<td>Forceps</td>
<td>Insect prep</td>
<td>Fine Science Tools</td>
<td>021x0053</td>
<td>Dumont #5 Mirror Finish Forceps</td>
</tr>
<tr>
<td>Small plastic cup</td>
<td>Insect prep</td>
<td>VWR</td>
<td>89009-662</td>
<td>7 x 5.7 (23/4 x 21/4)</td>
</tr>
<tr>
<td>Electric aspirator</td>
<td>Insect prep</td>
<td>Gempler&#x2019;s</td>
<td>RHM200</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

single sensillum recordings in the insects drosophila melanogaster and anopheles gambiae

昆虫的嗅觉寻找食物，配偶，天敌和产卵场所3，。昆虫的嗅觉感觉神经元（OSNs）被称为感受器的感觉毛，其中包括嗅觉器官表面封闭。每个感器的表面覆盖着微小的孔隙，通过气味传递和化解感器淋巴液的液体，沐浴安置在一个给定的感器OSNs的感官树突。通过OSN树突表达气味受体（OR）的蛋白质，它在昆虫气味门控离子通道4，5的功能。互动的ORs要么增加气味或减少通过OSN基础射速。这在动作电位形成的神经元活动体现的质量，强度和时间特征的气味6，7的第一个代表性。 鉴于方便地访问这些感觉毛，它可以执行从单一OSNs引入感器淋巴结记录电极，参比电极放置在昆虫的眼睛或身体的淋巴结外的录音。在果蝇 ，一至四个OSNs感器的房子，但每个OSN通常会显示一个特征的尖峰幅度。穗排序技术使人们有可能分配扣球个别OSNs的反应。这种单一感器记录（SSR）技术监控潜在OSNs 1，2，8受体活性产生的尖峰电脉冲感器淋巴液和参比电极之间的区别。在尖峰数量变化的气味代表的气味编码在昆虫细胞的基础。这里，我们描述的制备方法，目前在我们的实验室用来执行对果蝇和按蚊的SSR，并显示在感器特定方式的气味引起的代表痕迹。

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Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae

在使用单一感器录音昆虫气味的嗅觉感官神经元的电生理反应，可测。在这个视频文章，我们将演示如何执行单一飞醋的触角感器录音（。<em&gt;果蝇</em&gt;）和疟疾的蚊子的上颌触须（<em&gt;按蚊</em&gt;）。

在昆虫单感器记录果蝇按蚊</em

The sense of smell is essential for insects to find foods, mates, predators, and oviposition sites3. Insect olfactory sensory neurons (OSNs) are enclosed ...

single-sensillum-recordings-insects-drosophila-melanogaster-anopheles

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae

25.0K 次观看.  Rockefeller University. 在使用单一感器录音昆虫气味的嗅觉感官神经元的电生理反应，可测。在这个视频文章，我们将演示如何执行单一飞醋的触角感器录音（。果蝇）和疟疾的蚊子的上颌触须（按蚊）。