首先,用 HEPES 缓冲 E3 培养基或 E3 制备 1.8% 琼脂糖板。在解剖显微镜下工作时,将6至10个麻醉的幼虫排成一排放在琼脂糖平板上。在每个幼虫的头上放一个昆虫别针。然后用纸巾从板上取出剩余的 E3。
使用另一个昆虫别针,在不干扰任何其他器官的情况下将肠道与幼虫隔离开来。确保正确去除蛋黄。分离后,检查肠道并去除所有非肠道物质,例如皮肤、脂肪或肝脏。
使用镊子收集肠道并将其转移到放置在冰上的微量离心管中含有10%FCS的PBS。解剖所有肠后,立即将微量离心管以13,800g离心30秒。除去上清液,在管中留下约100微升,以防止肠变干。
在试管中向肠道中加入500微升木瓜蛋白酶溶液。通过加入 2.5 微升一摩尔半胱氨酸来激活木瓜蛋白酶。然后将装有肠子的试管在 37 摄氏度的水浴中孵育 10 分钟。
五分钟后,将内容物上下移液一半,以刺激酶组织消化。通过预先焊接的 35 微米细胞过滤器将解离的细胞转移到荧光激活细胞分选管 (FACS) 中。将含有 10% FCS 的 0.5 毫升 PBS 添加到总洗涤量为 2 毫升的 PBS 中多次清洗过滤器。
将收集的滤液在700g下在4°C下离心5分钟,并除去上清液。将每毫升DAPI加入300微升含有10%FCS的PBS中。将该混合物添加到沉淀中并重悬以标记死细胞。
然后在冰上孵育五分钟,以便在随后的FACS分析中将其排除。