首先,将 80 微升转化的大肠杆菌细胞移液到小瓶中。将 20 微升 4 倍 Laemmli SDS 上样缓冲液移入小瓶中。将悬浮液在加热块中以 100 摄氏度煮沸 10 分钟。
然后将 10 μL 样品加载到预制 SDS 凝胶上。在室温下将凝胶在SDS电泳缓冲液中以120伏电泳一小时。电泳完成后,在考马斯染色剂中染色凝胶一小时。
在含有50%甲醇和10%乙酸的脱色缓冲液中,在蒸馏水中对凝胶进行脱色两小时。将凝胶放入凝胶成像系统中以可视化蛋白质条带。接下来,将SDS凝胶的蛋白质转移到硝酸纤维素膜上。
在洗涤缓冲液中洗涤硝酸纤维素膜三次。将膜转移到含有抗体的 5% 脱脂牛奶中,该抗体稀释至 1 比 2, 000 的比例。将膜与抗体在4摄氏度下孵育,同时以60RPM振荡一小时。
接下来,在 TBS 吐温缓冲液中洗涤硝酸纤维素膜 3 次,每次 15 分钟,以除去任何非特异性结合的抗体。现在将膜转移到装有二抗的培养皿中。将膜在4摄氏度下孵育,同时以60RPM振荡一小时。
像以前一样洗涤膜后,使用增强型化学发光检测试剂来解析条带。使用凝胶成像仪可视化条带。