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Method Article
Dieses Protokoll zeigt, wie Sie sezieren Drosophila Larven in Vorbereitung für die Immunhistochemie und / oder die Abbildung der neuromuskulären Synapse.
Die
Bevor Sie beginnen
Larven Dissection
Fixierung
Fix jedes Tier in 3,5% Formaldehyd in HL3.1 für 25 Minuten. Waschen Sie die Tiere zweimal in HL3.1 für 5 Minuten.
Lagerung
Entfernen Sie die Stifte und übertragen die Larven in ein 1,5 ml Röhrchen mit 1X PBS. Wenn Sie zum Bild der NMJ mit verschmolzen fluoreszierenden Markierungen planen, sollten Sie Bild der Tiere innerhalb von zwei Tagen. Sie sind berechtigt, die seziert Larven bis zu einer Woche bei 4 ° C.
Repräsentative Ergebnisse
Es gibt mehrere wichtige Komponenten, um ein richtig seziert Drosophila Larve. Zuerst muss man besonders vorsichtig nicht zu den Muskeln, vor allem Muskeln 4, 6 und 7 führen. Dies sind die beliebtesten Muskeln zu studieren und wenn sie beschädigt sind zu verwerfen das Filet prep und sezieren ein anderes Tier. Zweitens muss man darauf achten, dass das Tier maximal ist so gespannt, dass jeder Muskel und NMJ unterschieden werden können.
Die Dissektionstechnik in diesem Video gezeigt, kann zur Drosophila-Larven für eine Vielzahl von experimentellen Techniken vorzubereiten. Wenn fluoreszierende Protein-Tags vorhanden sind, können die Larven montiert und abgebildet sofort. Ansonsten kann Immunfärbung durchgeführt, um spezifische synaptische Fächer zu markieren. Darüber hinaus können Elektrophysiologie leicht auf der präparierten Larven durchgeführt werden, um das Funktionieren der Neurotransmission zu bewerten.
HL3 Dissection Buffer: (in mm) 70 NaCl, 5 KCl, 0,2 CaCl2, 20 MgCl2, 10 NaHCO3, 5 Trehalose, 115 Saccharose und 5 HEPES, pH 7,3.
Sylgard Dissecting Plate: Vorsichtig mischen (um Blasen zu vermeiden) 10:1 in ein Becherglas. Die Mischung in Petrischale (jeglicher Größe). Lassen Sylgard zu heilen über Nacht in 37C Inkubator.
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