Method Article
* Diese Autoren haben gleichermaßen beigetragen
Rekombinante Adeno-assoziierte Virus (rAAVs) Vektoren sind immer wertvoll für In vivo Studien an Tieren. Wir beschreiben, wie rAAVs im Labor hergestellt werden können und wie diese Vektoren können titriert, um eine genaue Ablesung der Anzahl der infektiösen Partikel produziert zu geben.
In den letzten Jahren rekombinante Adeno-assoziierte virale Vektoren (AAV) sind zunehmend wertvoll für in vivo Studien an Tieren und sind auch derzeit in klinischen Studien am Menschen getestet. Wildtyp-AAV ist ein nicht-pathogenen Mitglied der Parvoviridae Familie und Natur replikationsdefizient. Die breite Transduktion Profil, geringe Immunantwort sowie die starke und anhaltende Transgenexpression mit diesen Vektoren erzielt hat sie ein beliebtes und vielseitiges Werkzeug für die in vitro und in vivo Gentransfer. rAAVs können einfach und billig im Labor hergestellt und auf ihre günstige Sicherheitsprofil basieren, sind in der Regel eine geringe Sicherheit Klassifizierung gegeben. Hier beschreiben wir eine Methode für die Produktion und Titrierung von chimären rAAVs mit dem Kapsid-Proteine sowohl AAV1 und AAV2. Der Einsatz dieser sogenannten Chimären-Vektoren kombiniert die Vorteile beider Eltern Serotypen wie hohe Titer Aktien (AAV1) und Reinigungdurch Affinitätschromatographie (AAV2). Diese AAV-Serotypen sind die besten von allen AAV-Serotypen untersucht und individuell über ein breites Infektiosität Muster. Die chimären Vektoren hier beschriebene sollte die infektiösen Eigenschaften der AAV1 und AAV2 und kann somit erwartet, dass eine Vielzahl von Geweben, einschließlich Neuronen, Skelettmuskel, Bauchspeicheldrüse, Nieren ua zu infizieren. Die hier beschriebene Methode nutzt Heparin-Säule Reinigung, glaubte eine Methode, um eine höhere Virustiter und sauberer Viruspräparats als andere Reinigungsmethoden, wie Zentrifugation durch ein Cäsiumchloridgradienten geben. Zusätzlich beschreiben wir, wie diese Vektoren schnell und einfach titriert werden, um genaue Lektüre der Anzahl der infektiösen Partikel produziert zu geben.
Siehe Abbildung 1 für eine Illustration der Zusammenfassung der folgenden Protokoll.
Sicherheitshinweis: Alle Materialien, die in Kontakt mit montiertem viralen Partikel wurde muss mit Virkon Lösung oder einem anderen geeigneten Desinfektionsmittel desinfiziert werden.
1. Herstellung von Plasmid-DNA Aktien (~ 2 Tage)
2. Vorbereitung von humanen embryonalen Nierenzellen 293 (HEK293) Zellen zur Transfektion (2 bis 3 Tage)
3. Die Transfektion der viralen Plasmiden (~ 1 Stunde für die Transfektion, 3 Tage Inkubation)
4. Lyse der Zellen und die Ernte von rAAVs (2 Stunden)
5. Heparin Säule Reinigung von rAAVs (2 bis 3 Stunden)
6. Konzentration und Sterilfiltration von rAAVs (1 Stunde)
7. Titrierung von viralen Aktien (3 Tage)
Dies erfordert ein Promotor, der aktiv in HEK293-Zellen Fahren ein Reporter-Gen oder ein immuncytochemisch nachweisbar Genprodukt ist. Bei der Herstellung eines Vektors, die nicht kompatibel mit HEK293-Zellen anderer Zelllinien oder primäre Zellkulturen verwendet werden kann.
8. Erwartete Ergebnisse
HEK293-Zellen transduziert mit einem Virus kodiert Enhanced Green Fluorescent Protein (eGFP) in Abbildung 2B dargestellt sind. Wir in der Regel eine konsistente Titer von etwa 6 x 10 6 infektiöse Partikel pro Mikroliter. Wir verwenden routinemäßig diese Vektoren für stereotaktische injektion in die Erwachsenenwelt Nagetier Gehirn. Dies bietet eine leistungsstarke Technik für Region-spezifische Genexpression 2. Um diese Region Spezifität mit Zell-Typ selektive Genexpression spritzen wir die Rekombinase Cre-abhängigen rAAVs in Zielregionen der Cre-transgenen Mäusen 2 kombinieren. Abbildung 2C-E zeigt Beispiele für stereotaktische Injektion von Cre-abhängigen rAAVs Kodierung eGFP in verschiedenen Hirnregionen der Erwachsenenbildung Parvalbumin-Cre transgenen Mäusen 3.
Abbildung 1. Schematische Darstellung des Protokolls für rAAV Produktion. . 1) HEK293-Zellen sind vernickelt und wuchs auf 70 bis 80% Konfluenz. 2). AAV und Helferplasmide sind bereit und in HEK293-Zellen transfiziert. 3). Medium ist wieder DMEM 16 Stunden nach der Transfektion verändert und HEK293-Zellen sind für weitere 56 Stunden kultiviert. 4). HEK293-Zellen werden geerntet und lysiert. rAAV-Vektoren sind aus Zelltrümmer durch c getrenntentrifugation. 5). Virale Partikel werden durch Heparin Spalten vor Konzentration und Sterilisation gereinigt. 6). HEK293-Zellen werden auf 24-Well-Platten gewachsen und infizieren mit seriellen Verdünnungen des AAV-Vektors auf die Anzahl der infektiösen Einheiten zu bestimmen.
Abbildung 2. Titrierung und in vivo Anwendung der rAAV1 / 2. (A) Setup von HEK293-Zellen für die Messung virale Titer. HEK293-Zellen mit seriellen Verdünnungen von rAAVs transduziert. C, nicht infizierten Kontrolle; N, 1 ul unverdünnter virale Lager. (B) HEK293-Zellen mit rAAVs Ausdruck eGFP infiziert. (CE) Viral eGFP-Expression beschränkt sich auf Cre-exprimierenden Neuronen in verschiedenen Zielregionen Parvalbumin-Cre transgenen Mäusen nach stereotaktische Injektion von Cre-activated rAAVs. Beispiele Bilder zeigen GFP-Immunreaktivität in (C) der retikulären Thalamus und Globus pallidus (D) Gyrus dentatus und (E) der CA1 Region des Hippocampus. DG, dentate Gyrus; RT, retikuläre Thalamuskern; GP, globus pallidus. Maßstabsbalken: B, 500 pm, C, 100 pm, D, 100 pm, E, 500 um.
rAAV-Vektoren sind immer wertvoller für in vivo Studien an Tieren. Hier haben wir ein einfaches und kostengünstiges Protokoll zur Herstellung rAAVs beschrieben, die möglicherweise die breite Anwendung dieses nützlichen Vektor durch die Vermeidung von teuren Outsourcing-Virus-Produktion für Unternehmen zu erleichtern. Das Protokoll (basiert auf Referenz 1) beschreibt die Herstellung von Chimären rAAV1 / 2 Vektoren, die Kapsidproteine von beiden Eltern-Serotypen bei gleicher Übersetzungen 4. Die Reinigung der rAAV-Vektoren durch die Bindung an Heparin Säulen stützt sich auf die Expression von AAV2 Kapsidproteine, kann aber mit den Serotypen außer AAV1 hier skizzierten kombiniert werden. Darüber hinaus hat AAV6 wurde berichtet, dass an Heparin zu binden, allerdings mit einem geringeren Affinität, und könnte mit Heparin Spalten mit diesem Verfahren 5,6 gereinigt werden. Es sollte jedoch angemerkt werden, dass auch andere Serotypen werden verschiedene Konzentrationen von NaCl für Heparin Säulenelution 5,7 erfordern.
Packaging rAAV Genome konnte gezeigt werden, zwischen 4,1 und 4,9 kb optimal mit einem deutlichen Rückgang in der Verpackung Wirkungsgrad von bis zu 5,2 kb 8. Diese Verpackung Grenze kann als der größte Nachteil des rAAV-System, da Zelltyp-spezifische Regulation der Transgenexpression ist in der Regel von großen cis wirkende Elemente, die nicht in den kleinen AAV-Partikeln untergebracht erreicht werden kann. Zur Überwindung niedrige Titer Chargen, wie jene, die sich aus dem Versuch, Paket Gene, die in der Nähe des AAV Verpackung beschränken wir die Kombination von getrennten viralen Chargen konzentriert, um 250 ul in eine 500 ul Charge werden, anstatt das Hinzufügen PBS wie in Schritt 6.3 beschrieben werden. Zuverlässige Zelltyp-spezifische Transduktion durch die Kombination Cre-Fahrer Mäusen und bedingte rAAV-Kassetten (siehe unten) zu vermeiden, Dehnen der Verpackung Grenze erreicht werden.
Zu beachten ist, während dieses Protokoll versucht, easy-to-folgen Sie den Anweisungen auf der Produktion von qualitativ t lieferniter rAAV, bedarf es der Anwesenheit von AAV2 Kapsidprotein-Reste für die Reinigung von Heparin-Affinitätschromatographie. Serotypen außer AAV2 muss gereinigt mit alternativen Verfahren 9 sein. Ein Vorteil des Heparin-Säule Reinigung ist es geglaubt wird, um AAV-Vektoren, die größer Infektiosität als diejenigen unter Verwendung eines Cäsiumchloridgradienten 10 haben zu produzieren. Es gibt jedoch auch einige Nachteile dieser Methode. Zum Beispiel können andere Proteine, die Heparin-Bindung auch in der gereinigten viralen Lager. Während des Tropismus von Heparin-gereinigten Vektoren, die durch den Vektor-Titer 10, unser Ansatz, gezielt entweder erregend 20 oder hemmende Neuronen (Abb. 2) beeinflusst werden kann beschäftigt Cre-induzierte Aktivierung von AAV-vermittelte Transgenexpression und Titer-unabhängig. Eine Alternative zu Heparin-Säule Reinigung ist die Verwendung eines Iodixanol Dichtegradienten, die eine höhere Virustiter und reiner Vorbereitung als die Verwendung von produzierteinen Cäsiumchloridgradienten 10. Diese Methode kann auch mit Heparin-Säule Reinigung kombiniert werden, um einen Vektor, der größer als 99% reinem 11 ist zu produzieren. Daher erfordert sorgfältige Abwägung von den einzelnen Gruppen, welche virale Reinigungsverfahren ist am besten für ihre jeweilige nachgeschaltete Antrag.
Das häufigste Problem mit diesem Protokoll ist gering virale Titer. Nach unserer Erfahrung kann dies in der Regel zu geringe Transfektionseffizienz oder die Elution des Virus aus dem Heparin-Säulen zurückgeführt werden. Alle Transfektion Materialien sollten bei Raumtemperatur vor der Transfektion werden, und testen Transfektionen durchgeführt werden, um die optimalen Bedingungen in jedem Labor zu finden. Andere Methoden der Transfektion, wie Lipofektamin sind hocheffiziente, kann aber teuer werden. Darüber hinaus ist die Konzentration und pH-Wert des Heparin-Säule Elutionslösungen von entscheidender Bedeutung für eine vollständige Elution der Virionen von Heparin Spalten ohne C.ut Schaden. Ein weiterer wichtiger Punkt ist, dass die Verpackung Zellen müssen gut haften an der Oberfläche des Gewebes Kulturschalen. Wenn die Zellen zu einem bestimmten Zeitpunkt zu lösen während des Verfahrens ist es ratsam, das Experiment und Abtauung eine neue Flasche von Zellen zu beenden.
Räumlich-zeitliche Kontrolle der Transgenexpression in Nagetieren ist leicht durch genaue anatomische Ausrichtung und das Entwicklungsstadium der Tiere erreicht. Effiziente AAV-vermittelte Gentransfer in utero 12,13 gezeigt. Im erwachsenen Gehirn, kann die Fläche mit rAAV-Partikel nach stereotaktische Injektion infiziert von sehr kleinen Zielregionen, um viel größere Gebiete, die nicht nur durch Änderungen in der virale Titer, sondern auch durch die Veränderung der Injektion Parameter eingestellt werden. Dazu gehören das Volumen und die Geschwindigkeit der Injektionen und die Einbeziehung der Polyol-Mannit mit der Virussuspension 14. Mannitol kann auch zur Infektion von einer Vielzahl von Geweben nach systemischer rAAV Injektion 15 erhöhen </ Sup>.
Die Verpackung Kapazität von rAAV (ca. 4,7 kb) ist wahrscheinlich der limitierende Faktor in Bezug auf die Gene, die aus dieser viralen Vektoren ausgedrückt werden kann. Allerdings haben neuere Studien gezeigt, dass diese teilweise durch Spaltung größere Gene oder Expressionskassetten werden in separate rAAV-Vektoren zu überwinden und die Einführung eines Bridging-Sequenz, die Einleitung der Genexpression bei Virionen der gleichen Zelle 16 zu infizieren. Expression von Genen durch rAAV-Vektoren durchgeführt können auch stark mit sich selbst kostenlos rAAV-Vektoren 17 erhöht werden. Stereotaktische Injektion von rAAV-Vektoren bietet eine schnelle, kostengünstige und leistungsfähige Methode zur Induktion der Genexpression in einer Region spezifische Art und Weise. In Kombination mit der 2. Generation der RNA-Interferenz-Strategien 18 rAAVs können auch für regional spezifische Gen-knock down verwendet werden. rAAVs mit Cre-transgenen Mäusen oder Zelltyp-spezifische Promotoren kombiniert werden, um Leistungs-und Zell-Typ zu erreichen-Spezifische Gen-Expression, erlauben genetische Manipulationen mit hoher räumlicher Auflösung 2,19-21, während Montage rAAVs z. B. mit der Tet-System fügt zeitliche Kontrolle über Virus-vermittelten Genexpression 22,23. Diese Beispiele zeigen die enorme kombinatorische Potential dieser Vektoren und sagen eine rasche Zunahme der rAAV-basierte Studien über die Jahre zu kommen.
Keine Interessenskonflikte erklärt.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Name des Reagenz | Firma | Katalog-Nummer | Kommentare |
Amicon Ultra Filterzentrifugen | Millipore | UFC810024 | 100.000 MWCO |
Benzonase-Nuclease | Sigma-Aldrich | E1014 | |
Dulbeco s modifiziertem Eagle Medium (DMEM) | Invitrogen | 10567014 | Supplement mit 10% FCS und 10 Einheiten / ml penicillin/100 ug / ml Streptomycin |
HEK293-Zellen | American Type Culture Collection | CRL-1573 | Verwenden Sie bei dem Durchgang weniger als 30 |
HEPES gepufferte Salzlösung | Sigma-Aldrich | 51558 | |
HiTrap Heparin Patrone | Sigma-Aldrich | 54836 | |
Iscove-modifiziertes Dulbecco-Medium | Invitrogen | 12440-053 | Supplement mit 5% FCS |
Natriumdesoxycholat | Sigma-Aldrich | D5670 | Machen Sie frische Lösung für jede Charge |
15 cm Tissue Kulturschalen | Fisher Scientific | 157150 | |
Stbl2 kompetenten Zellen | Invitrogen | 10268-019 | |
Virkon Lösung | Fisher Scientific | NC9821357 | Lassen Sie zu desinfizieren Nacht vor der Entsorgung zu entwässern |
Tabelle 1. Spezifischen Reagenzien für Protokoll erforderlich
Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden
Genehmigung beantragenThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Alle Rechte vorbehalten