JoVE Logo

Anmelden

Zum Anzeigen dieser Inhalte ist ein JoVE-Abonnement erforderlich. Melden Sie sich an oder starten Sie Ihre kostenlose Testversion.

In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Targeted cell delivery is useful in a variety of biomedical applications. The goal of this protocol is to use superparamagnetic iron oxide nanoparticles (SPION) to label cells and thereby enable magnetic cell targeting approaches for a high degree of control over cell delivery and localization.

Zusammenfassung

Die gezielte Abgabe von Zellen und therapeutische Mittel bei einer Vielfalt von biomedizinischen Anwendungen durch die Konzentration der therapeutischen Wirkung an der Zielstelle zu minimieren, während nachteilige Wirkungen auf off-Zielstellen zur Verfügung. Magnetischen Zell-Targeting ist eine effiziente, sichere und unkomplizierte Lieferung Technik. Superparamagnetischen Eisenoxidnanopartikel (SPION) sind bioabbaubar, biokompatibel, und kann in die Zellen durch Endozytose um sie auf Magnetfelder anspricht übertragen werden. Das Syntheseverfahren beinhaltet das Erstellen Magnetit (Fe 3 O 4) Nanopartikel durch Hochgeschwindigkeits-Emulgierung, gefolgt, um ein Poly (milch-co-glykolsäure) (PLGA) Beschichtung zu bilden. Die PLGA-Magnetit SPIONs sind ca. 120 nm Durchmesser, einschließlich der etwa 10 nm Durchmesser Magnetitkernteilchen. Wenn in einem Kulturmedium platziert werden SPIONs natürlich von Zellen Endozytose und als kleine Cluster innerhalb zytoplasmatischen Endosomen gespeichert. Diese Partikel verleihen ausreichende magnetische Masse zu den Zellenum für die Ausrichtung im magnetischen Feldern zu ermöglichen. Zahlreiche Zellsortierung und Targeting-Anwendungen werden von Rendering verschiedenen Zelltypen auf Magnetfelder reagiert, aktiviert. SPIONs haben eine Vielzahl von anderen biomedizinischen Anwendungen sowie einschließlich der Verwendung als ein medizinisches Bildgebungskontrastmittel, gezielte Arzneimittel oder Genabgabe diagnostischen Assays und die Erzeugung von lokaler Hyperthermie zur Tumortherapie oder Gewebe Löten.

Einleitung

Targeted delivery and capture of cells to specific sites within the body is desirable for a variety of biomedical applications. Delivery of neural stem cells to the brain by MRI-guided focused ultrasound has been proposed as a possible treatment option for neurodegenerative disease, traumatic brain injury, and stroke1. Mesenchymal stem cells are being studied for their ability to deliver anti-cancer drugs to tumors due to their natural tumor-tropic properties2,3. Cardiac stem cells have been delivered to the heart as a possible treatment for myocardial infarction4,5. Vascular stents have been developed with CD34 antibodies to capture circulating progenitor cells6. While promising, these cell targeting approaches present drawbacks including lack of cell specificity, inconsistent cell retention, and off-target cell delivery.

The overall goal of the current method is to enable magnetically directed targeting of cells for a variety of cell delivery and sorting applications. Magnetic targeting allows for controlled delivery of specific cells to a specific target site with minimal off-target effects7. The magnetic fields can be generated by implanted or external devices to safely direct the movement of magnetically-labeled cells within the body8. Numerous research efforts have focused on magnetically directed targeting of stem cells to injured tissues such as the heart9-14, retina15, lung16, skin17, spinal cord18,19, bone20, liver21, and muscle22,23 in order to improve regeneration outcomes.

Magnetic targeting of cells has also been studied extensively as a means to endothelialize implantable cardiovascular devices. A uniform and complete endothelium provides a barrier between the device and circulating blood elements to mitigate thrombosis and inflammation. Endothelial cells can be delivered to the device either prior to implantation or via the vascular system following implantation. In both cases, magnetic fields are used to capture cells to the surface of the device and retain the cells when subjected to the shear stress generated by circulating blood. Magnetic vascular stents24-27 and vascular grafts28 have both been fabricated and tested for this purpose.

Magnetic cell targeting requires a strategy for labeling cells with magnetic carrier particles. These particles can be bound to the surface of cells via antibodies or ligand/receptor pairs or they can be endocytosed into the cells. Superparamagnetic iron oxide nanoparticles (SPION) are biodegradable, biocompatible, and readily endocytosed by a variety of cell types29. These particles effectively render a cell responsive to magnetic fields and are naturally degraded over time. SPIONs provide a straightforward and safe means of magnetically labeling cells in culture for a variety of magnetic targeting and sorting applications. A method for synthesizing SPIONs with a magnetite (Fe3O4) core and poly(lactic-co-glycolic acid) (PLGA) shell is provided. In addition, a method for labeling cells in culture with SPIONs is provided.

Protokoll

1. Synthese von Magnetit Gel

  1. Durch Verwendung konzentrierter Salzsäure gefolgt von entionisiertem Wasser, gefolgt von Ethylalkohol Waschen Sie alle Glaswaren. Trocknen lassen O / N, vorzugsweise in einem Trockenofen.
    VORSICHT! Chlorwasserstoffsäure ist schädlich - persönliche Schutzausrüstung tragen und die Arbeit in einer Abzugshaube; Ethylalkohol schädlich ist - persönliche Schutzausrüstung tragen.
  2. Verwenden Sie einen Dreschelflasche durch sanft blubbernden N 2 -Gas 30 Minuten entgasen 500 ml entionisiertem H 2 O.
  3. Set-up die Magnetit Synthesevorrichtung in einem Chemieabzug benutzen.
    1. Legen Sie einen 500 ml Dreihalsrundkolben, der innerhalb einer Heizhaube Heizung und sichern Sie den Mittelhals mit einer Schelle und Ständer.
    2. Installieren einer Gummimembran in eine der Seitenhälse des Rundkolben und einem Rückflußkühler mit einem Gummiseptum in den verbleibenden Seitenhals. Dauerbetrieb Kaltwasser durch die Rückflusskühler.
    3. Puncture the Rundkolben von Gummiseptum mit einer Nadel mit einem N 2 -Gas-Leitung verbunden und Durchstoß der Rückflußkühler Gummiseptum mit einer Nadel mit einer Gasleitung laufen, um eine Waschflasche verbunden (dh Kolben mit Wasser), um Gasaustritt zu visualisieren.
    4. Installieren Sie ein Stechpaddel ins Zentrum Hals des Rundkolben, der über ein Paddel-Adapter. Bringen Sie die Klinge Paddel die Welle auf einem Rührwerk auf ein Stativ montiert.
  4. Spülen Rundkolben, der mit N 2 -Gas und verlassen N 2 -Gas bei einem niedrigen, aber nachweisbaren Rate fließt.
  5. Entfernen Sie die Rückflusskühler aus dem Rundkolben und fügen 1,000 g Eisen (III) -chlorid, 0,6125 g Eisen (II) -chlorid-Tetrahydrat, und 50 ml entgastem H 2 O.
    VORSICHT! Eisen (III) -chlorid und Eisen (II) -chlorid-Tetrahydrat schädlich sind - persönliche Schutzausrüstung tragen.
  6. Ersetzen Sie die Rückflusskühler und rühren bei 1000 Upm unter Erwärmen auf 50° C. Rühren unter diesen Bedingungen produziert 10 nm Durchmesser Magnetit-Nanopartikel.
  7. Einmal bei 50 ° C, mit 10 ml 28% iger Ammoniumhydroxidlösung durch Einspritzen durch das Gummiseptum in den Rundkolben gegeben, während noch gerührt.
    VORSICHT! Ammoniumhydroxid ist schädlich - persönliche Schutzausrüstung tragen.
    HINWEIS: Die Ammoniumhydroxidlösung verwendet, um die Magnetit ausgefällt und die Lösung sollte schwarz.
  8. Die Gummischeidewand und N 2 Gasleitung aus dem Rundkolben und Erhitzen auf 90 ° C zum Sieden aus dem Ammoniakgas während noch gerührt.
    Anmerkung: Es ist optional, um den Fluss von N 2 in den Rundkolben durch Punktieren der Rückflußkühler Gummiseptum beizubehalten, jedoch ist die Oxidation von Magnetit Maghemit während dieser Stufe vernachlässigbar.
  9. Nachdem bei 90 ° C, 1 ml der Ölsäure zu dem Rundkolben, während immer noch gerührt. Die Ölsäure wird zum Beschichten der Magnetit napartikel Magnetit Gels.
    VORSICHT! Ölsäure ist schädlich - persönliche Schutzausrüstung tragen.
  10. Ersetzen Sie die Gummimembran und N 2 Gasleitung auf den Rundkolben, und nehmen Sie die Rückflusskühler.
  11. Schalten Sie die Hitze und rühren bei 500 Upm für 2 Stunden.
  12. Den Rundkolben zu entfernen aus dem Isomantel Heizung und dekantieren restliche Flüssigkeit, während mit einem starken Magneten gegen den Boden des Kolbens, um die Magnetit-Gel zu behalten statt.
    VORSICHT! Griff der starken Magneten mit äußerster Vorsicht, um Schäden oder Verletzungen zu vermeiden.
  13. Erlauben Magnetit-Gel an der Luft trocknen O / N (optional).

2. Reinigung von Magnetit Gel

  1. In 40 ml Hexan in den Rundkolben, um die Magnetit-Gel auflösen
    VORSICHT! Hexan schädlich ist - persönliche Schutzausrüstung tragen und die Arbeit in einem Abzug.
  2. Verwenden einen Scheidetrichter mit 40 ml entgastem H 2 O, um restliches H 2 O zu entfernen from die Magnetit-Lösung.
    1. Gießen Sie langsam die Magnetit-Lösung auf die H 2 O im Scheidetrichter und schwenken Sie die Zwei-Phasen-Flüssigkeit für 5 Minuten.
    2. Ablassen und entsorgen Sie die untere wässrige Fraktion.
    3. Langsam 40 ml entgastem H 2 O in die Trenntrichter, so dass er siedelt unter dem Magnetit-Lösung und leicht schwenken und Drain wie zuvor.
    4. Wiederholen, um ein drittes Mal zu waschen.
  3. Bringen Magnetit-Lösung, um einen Erlenmeyerkolben, fügen Sie ein paar Spatel im Wert von wasserfreiem Natriumsulfat, und wirbeln, um alle verbleibenden Rest H 2 O aus dem Magnetit-Lösung zu entfernen.
  4. Filtern der Magnetit-Lösung durch 1 & mgr; m-Filterpapier in einem Filtertrichter, um das Natriumsulfat und restliches H 2 O zu entfernen
    HINWEIS: Vakuum-Unterstützung empfohlen.
  5. Übertragen des Magnetits Lösung auf eine 50 ml Verdampferkolben und mit einem Rotationsverdampfer, um das Hexan zu verdampfen2 h unter den folgenden Bedingungen: moderate Drehzahl, Vakuum angelegt, Verdampferkolben in einem 50 ° C Wasserbad, und 24 ° C Wasserzirkulations durch den Kondensator.
    HINWEIS: Wahlweise speichern die Magnetit-Gels vor der mit PLGA Beschichtung.

3. Beschichtung von Magnetit-Nanopartikel mit PLGA Shell

  1. Aufzulösen 3,60 g PLGA (75/25 Gemisch) in 240 ml Ethylacetat, um eine 1,5% (m / v) Lösung zu schaffen. ACHTUNG: Ethylacetat schädlich ist - persönliche Schutzausrüstung tragen und die Arbeit in einem Abzug.
  2. Aufzulösen 25,00 g Pluronic F-127 in 500 ml entgastem H 2 O unter Verwendung eines Magnetrührers, um eine 5,0% (m / v) Lösung zu schaffen.
    HINWEIS: Pluronic F-127 ist ein nicht-ionisches amphiphiles Blockcopolymer, das als biokompatibles Tensid wirkt. Es hilft, die Öl-in-Wasser-Emulsion in Schritt 3.3.2 stabilisieren.
  3. Unter Verwendung eines Mikros, sammeln die Magnetit-Gel in sechs 0,040 g-Proben im gewogenen Glasfläschchen. Perform die folgende Beschichtung und Waschprozess für jedes Aliquot.
    HINWEIS: Die Aliquots erforderlich, effiziente Handhabung und magnetisches Dekantieren, die Reinheit und die Ausbeute zu maximieren, wird bei gleichzeitiger Minimierung Abbau vor der Gefriertrocknung der in Schritt 4 zu gewährleisten.
    1. Fügen Sie ein 0.040 g Aliquot der Magnetit-Gel und 40 ml des PLGA-Lösung, um einen Kunststoffbecher und beschallen in einem Ultraschall-Reiniger für 10 Minuten.
    2. 80 ml der Pluronic Lösung der Kunststoffbecher gegossen und sofort mit einem Labormischer emulgieren bei der höchsten Einstellung für 7 Minuten, um die PLGA-Beschichtung auf den magnetischen Nanopartikel als eine Öl-in-Wasser-Emulsion zu bilden.
    3. Unmittelbar verdünnen SPION-Lösung in 1 l deionisiertem H 2 O und beschallen 1 h in einer chemischen Abzugshaube, um das Ethylacetat zu verdampfen.
    4. Legen Sie einen starken Magneten neben dem SPION-Lösung und rühren Sie bis bräunlich SPIONs am Magnet zu sammeln.
      Hinweis: Es kann notwendig sein, um Unterbrechungen für mehrere Stunden rührens vor der Lösung wird weißlich anzeigt, dass die meisten der SPIONs wurden gesammelt.
    5. Man dekantiert die wäßrige Lösung unter Beibehaltung der SPIONs in das Becherglas mit den Magneten.
    6. Wie folgt dreimal waschen Sie die SPIONs.
      1. Suspendieren die SPIONs in 1 l deionisiertem H 2 O.
      2. Beschallen den SPION-Lösung für 20 Minuten.
      3. Legen Sie einen starken Magneten neben dem SPION-Lösung und rühren Sie bis bräunlich SPIONs am Magnet zu sammeln. Es kann notwendig sein, um intermittierend rühre mehrere Stunden, bevor die Lösung klar wird das anzeigt, daß die meisten der SPIONs wurden gesammelt.
      4. Man dekantiert die wäßrige Lösung unter Beibehaltung der SPIONs in das Becherglas mit den Magneten.
  4. Sammeln Sie die SPIONs aus jeder der sechs Magnetit-Gel-Aliquoten synthetisiert in einem einzigen gewogenen Glasfläschchen als wässrige Suspension. Optional dekantieren überschüssiges Wasser magnetisch, wie gebraucht.

4. Freeze--TROCKENTUNNEL der SPIONs

  1. Frieren Sie den SPION-Lösung.
  2. Gefrierzutrocknen den SPION Lösung O / N in einer Gefriertrocknungsanlage.
  3. Wiegen die gefriergetrockneten SPIONs. Gefriergetrocknete SPIONs kann bei -20 ° C gelagert, bis sie zur Markierung von Zellen verwendet werden.
    HINWEIS: Lagerung bei -20 ° C drastisch reduziert Abbaukinetik und erhöht die Haltbarkeit.

5. Markierung von Zellen mit SPIONs

  1. Aussetzung eines Aliquots SPIONs in phosphatgepufferter Salzlösung (PBS) in einer Konzentration von 40 mg / ml und mit Ultraschall 30 Min.
  2. Fügen SPION Lösung auf eine fast konfluente Kolben mit Zellen bei einer Konzentration von 5 & mgr; l / ml Zellkulturmedium. Stellen Sie sicher, gleichmäßige Verteilung durch sanftes Schütteln der Flasche.
  3. Die Zellen für 16 Stunden bei 37 ° C.
  4. Vorsichtig absaugen Kulturmedium und waschen Sie die Zellen zweimal mit PBS.
  5. Sammeln magnetisch markierten Zellen und verwenden für Experimente.
  6. Unbenutzte SPION Lösung kann bei 4 ° C gelagert werden und sollte unsinnerhalb von wenigen Monaten ed. Beschallen 30 Minuten vor jedem Gebrauch.

Ergebnisse

Magnetitnanopartikeln sind ungefähr 10 nm im Durchmesser infolge Rühren eine wässrige Lösung von Eisen (III) -chlorid und Eisen (II) -chlorid-tetrahydrat bei 50 ° C und 1000 rpm (Abbildung 1). Diese Ergebnisse zeigen, gelungene Synthese aus Magnetit-Nanopartikel. Es ist wichtig, die Größe und die Form der magnetischen Nanopartikel aus einer kleinen Probe der Charge entnommen, wenn man versucht, die Synthese zum ersten Mal zu überprüfen. Transmissionselektronenmikroskopie (TEM) ist die bevorzugt...

Diskussion

Wie bei jedem Nanopartikelsynthese-Protokoll, die Reinheit der Reaktionschemikalien ist kritisch zur Erzielung einer hohen Qualität SPIONs das minimale zytotoxische Effekte haben wird. Es ist daher wichtig, um sehr reine Reagenzien einschließlich Ölsäure (≥99%), Eisen (II) -chlorid-Tetrahydrat (≥99.99%), Eisen (III) -chlorid (≥99.99%), Ethylacetat kaufen (HPLC-Qualität, ≥99.9% ), Hexan (HPLC grade, ≥97.0%) Ammoniumhydroxid (≥99.99%) und Natriumsulfat (≥99.0%). Es ist von besonderer Bedeutung für sehr...

Offenlegungen

The authors declare that they have no competing financial interests.

Danksagungen

The authors wish to acknowledge funding from the European Regional Development Fund – FNUSA-ICRC (no. CZ.1.05/ 1.1.00/ 02.0123), the American Heart Association Scientist Development Grant (AHA #06-35185N), and the National Institutes of Health (NIH #T32HL007111).

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
Ammonium Hydroxide solution, 28% NH3 in H2O, ≥99.99% trace metal basisSigma-Aldrich338818-100ML Harmful reagent - wear personal protective equipment
Dreschel bottle, 500 mlAce Glass5516-16
Ethyl Acetate, CHROMASOLVR Plus, for HPLC, 99.9% Sigma-Aldrich650528-1LHarmful reagent - wear personal protective equipment & work in fume hood
Ethyl alcoholSigma-AldrichE7023Harmful reagent - wear personal protective equipment
Evaporating flask, 50 ml, 24/40 jointSigma-AldrichZ515558For use with rotoevaporator
Filter paper, 3 cm dia, grade 1Fisher09-805PFor use with glass filter funnel
Glass beakers, 1 LFisherFB-101-1000For washing SPIONs
Glass filter funnel, vacuum hose adapter, fits 24/40, 30 mLFisherK954100-0344 
Glass vial capsFisher03-391-46For use with glass vials
Glass vials, 2 mlFisher03-391-44For collecting magnetite gel & SPIONs
Hexane, CHROMASOLVR, for HPLC, ≥97.0% (GC)Sigma-Aldrich34859-1L Harmful reagent - wear personal protective equipment & work in fume hood
Hydrochloric acidSigma-AldrichH1758Harmful reagent - wear personal protective equipment & work in fume hood
Iron(II) chloride tetrahydrate, ≥99.99% trace metals basis Sigma-Aldrich380024-5GHarmful reagent - wear personal protective equipment
Iron(III) chloride anhydrous, powder, ≥99.99% trace metals basisSigma-Aldrich451649-1GHarmful reagent - wear personal protective equipment
Isomantle heater, 500 mLVoight GlobalEM0500/CEX1
Laboratory mixerSilversonL5M-A
LyophilizerLabconco7670520
MicrospatulasFisher21-401-25AFor transfering magnetite gel
NdFeB magnet, 1 in x 1 in x 1 inAmazing MagnetsC1000H-MVery strong magnet, handle with care
Oleic acid, ≥99% (GC)Sigma-AldrichO1008-5G Store in freezer; Harmful reagent - wear personal protective equipment
Overhead stirrerIKA2572201
Overhead stirrer clampIKA2664000For use with overhead stirrer
Overhead stirrer H-standIKA1412000For use with overhead stirrer
Phosphate buffered salineLife Technologies10010-023
Plastic beakers, 250 mlFisher02-591-28
PLGA PURASORB PDLG (75/25 blend)PuracPDLG 7502PDLG 7502A may be used as well; Store in freezer
Pluronic F-127 powder, BioReagent, suitable for cell cultureSigma-AldrichP2443-250G 
PTFE expandable blade paddle, 8 mm diaSciQuipSP4018
PTFE vessel adapter, fits 24/40, 8 mm dia paddleMonmouth ScientificPTFE Vessel Adaptor A480For use with PTFE expandable blade paddle
Recirculating chillerClarkson696613For use with rotoevaporator
Reflux condenser, fits 24/40, 250 mmAce Glass5997-133
RotoevaporatorClarkson216949
Rubber septa, fits 24/40Ace Glass9096-56
Separatory funnel with stopper, 250 mlFisher10-438E
Sodium sulfate ACS reagent, ≥99.0%, anhydrous, granularSigma-Aldrich239313-500G 
Three neck round bottom flask, angled, 24/40 joints, 500 mlAce Glass6948-16
Ultrasonic cleaner perforated panFisher15-335-20AFor use with ultrasonic cleaner
Ultrasonic cleaner, 2.8 LFisher15-335-20
Vacuum controllerClarkson216639For use with rotoevaporator (optional)
Vacuum pumpClarkson219959For use with rotoevaporator

Referenzen

  1. Burgess, A., et al. Targeted delivery of neural stem cells to the brain using MRI-guided focused ultrasound to disrupt the blood-brain barrier. PLoS One. 6 (11), e27877 (2011).
  2. Nguyen, K. T. Mesenchymal Stem Cells as Targeted Cell Vehicles to Deliver Drug-loaded Nanoparticles for Cancer Therapy. J Nanomed Nanotechol. 4 (1), e128 (2013).
  3. Kean, T. J., Lin, P., Caplan, A. I., Dennis, J. E. MSCs: Delivery Routes and Engraftment, Cell-Targeting Strategies, and Immune Modulation. Stem Cells Int. , 732742 (2013).
  4. Suzuki, K., et al. Targeted cell delivery into infarcted rat hearts by retrograde intracoronary infusion: distribution, dynamics, and influence on cardiac function. Circulation. 110 (11 Suppl 1), II225-II230 (2004).
  5. Garbern, J. C., Lee, R. T. Cardiac stem cell therapy and the promise of heart regeneration. Cell Stem Cell. 12 (6), 689-698 (2013).
  6. Duckers, H. J., et al. Accelerated vascular repair following percutaneous coronary intervention by capture of endothelial progenitor cells promotes regression of neointimal growth at long term follow-up: final results of the Healing II trial using an endothelial progenitor cell capturing stent (Genous R stent). EuroIntervention. 3 (3), 350-358 (2007).
  7. Pan, Y., Du, X., Zhao, F., Xu, B. Magnetic nanoparticles for the manipulation of proteins and cells. Chem Soc Rev. 41 (7), 2912-2942 (2012).
  8. Huang, Z. Y., et al. Deep magnetic capture of magnetically loaded cells for spatially targeted therapeutics. Biomaterials. 31 (8), 2130-2140 (2010).
  9. Shen, Y., et al. Comparison of Magnetic Intensities for Mesenchymal Stem Cell Targeting Therapy on Ischemic Myocardial Repair: High Magnetic Intensity Improves Cell Retention but Has No Additional Functional Benefit. Cell Transplant. , (2014).
  10. Cheng, K., et al. Magnetic antibody-linked nanomatchmakers for therapeutic cell targeting. Nat Commun. 5, 4880 (2014).
  11. Vandergriff, A. C., et al. Magnetic targeting of cardiosphere-derived stem cells with ferumoxytol nanoparticles for treating rats with myocardial infarction. Biomaterials. 35 (30), 8528-8539 (2014).
  12. Huang, Z., et al. Magnetic targeting enhances retrograde cell retention in a rat model of myocardial infarction. Stem Cell Res Ther. 4 (6), 149 (2013).
  13. Chaudeurge, A., et al. Can magnetic targeting of magnetically labeled circulating cells optimize intramyocardial cell retention. Cell Transplant. 21 (4), 679-691 (2012).
  14. Cheng, K., et al. Magnetic targeting enhances engraftment and functional benefit of iron-labeled cardiosphere-derived cells in myocardial infarction. Circ Res. 106 (10), 1570-1581 (2010).
  15. Yanai, A., et al. Focused magnetic stem cell targeting to the retina using superparamagnetic iron oxide nanoparticles. Cell Transplant. 21 (6), 1137-1148 (2012).
  16. Ordidge, K. L., et al. Coupled cellular therapy and magnetic targeting for airway regeneration. Biochem Soc Trans. 42 (3), 657-661 (2014).
  17. El Haj, A. J., et al. An in vitro model of mesenchymal stem cell targeting using magnetic particle labelling. J Tissue Eng Regen Med. , (2012).
  18. Vanecek, V., et al. Highly efficient magnetic targeting of mesenchymal stem cells in spinal cord injury. Int J Nanomedicine. 7, 3719-3730 (2012).
  19. Sasaki, H., et al. Therapeutic effects with magnetic targeting of bone marrow stromal cells in a rat spinal cord injury model. Spine (Phila Pa 1976). 36 (12), 933-938 (2011).
  20. Oshima, S., et al. Enhancement of bone formation in an experimental bony defect using ferumoxide-labelled mesenchymal stromal cells and a magnetic targeting system. J Bone Joint Surg Br. 92 (11), 1606-1613 (2010).
  21. Luciani, A., et al. Magnetic targeting of iron-oxide-labeled fluorescent hepatoma cells to the liver. Eur Radiol. 19 (5), 1087-1096 (2009).
  22. Oshima, S., Kamei, N., Nakasa, T., Yasunaga, Y., Ochi, M. Enhancement of muscle repair using human mesenchymal stem cells with a magnetic targeting system in a subchronic muscle injury model. J Orthop Sci. 19 (3), 478-488 (2014).
  23. Ohkawa, S., et al. Magnetic targeting of human peripheral blood CD133+ cells for skeletal muscle regeneration. Tissue Eng Part C Methods. 19 (8), 631-641 (2013).
  24. Tefft, B. J., et al. Magnetizable Duplex Steel Stents Enable Endothelial Cell Capture. Ieee T Magn. 49 (1), 463-466 (2013).
  25. Uthamaraj, S., et al. Design and validation of a novel ferromagnetic bare metal stent capable of capturing and retaining endothelial cells. ABME. 42 (12), 2416-2424 (2014).
  26. Polyak, B., et al. High field gradient targeting of magnetic nanoparticle-loaded endothelial cells to the surfaces of steel stents. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 105 (2), 698-703 (2008).
  27. Pislaru, S. V., et al. Magnetically targeted endothelial cell localization in stented vessels. J Am Coll Cardiol. 48 (9), 1839-1845 (2006).
  28. Pislaru, S. V., et al. Magnetic forces enable rapid endothelialization of synthetic vascular grafts. Circulation. 114 (1 Suppl), 314-318 (2006).
  29. Wang, Y. X., Xuan, S., Port, M., Idee, J. M. Recent advances in superparamagnetic iron oxide nanoparticles for cellular imaging and targeted therapy research. Curr Pharm Des. 19 (37), 6575-6593 (2013).
  30. Yellen, B. B., et al. Targeted drug delivery to magnetic implants for therapeutic applications. J Magn Magn Mater. 293 (1), 647-654 (2005).
  31. Granot, D., et al. Clinically viable magnetic poly(lactide-co-glycolide) particles for MRI-based cell tracking. Magn Reson Med. , (2013).
  32. Levy, M., et al. Long term in vivo biotransformation of iron oxide nanoparticles. Biomaterials. 32 (16), 3988-3999 (2011).
  33. Mirshafiee, V., Mahmoudi, M., Lou, K., Cheng, J., Kraft, M. L. Protein corona significantly reduces active targeting yield. Chem Commun (Camb). 49 (25), 2557-2559 (2013).
  34. Salvati, A., et al. Transferrin-functionalized nanoparticles lose their targeting capabilities when a biomolecule corona adsorbs on the surface. Nat Nanotechnol. 8 (2), 137-143 (2013).
  35. Landazuri, N., et al. Magnetic targeting of human mesenchymal stem cells with internalized superparamagnetic iron oxide nanoparticles. Small. 9 (23), 4017-4026 (2013).
  36. Sun, J. H., et al. In vitro labeling of endothelial progenitor cells isolated from peripheral blood with superparamagnetic iron oxide nanoparticles. Mol Med Rep. 6 (2), 282-286 (2012).
  37. Zhang, B., et al. Detection of viability of transplanted beta cells labeled with a novel contrast agent - polyvinylpyrrolidone-coated superparamagnetic iron oxide nanoparticles by magnetic resonance imaging. Contrast Media Mol Imaging. 7 (1), 35-44 (2012).
  38. Song, M., et al. Labeling efficacy of superparamagnetic iron oxide nanoparticles to human neural stem cells: comparison of ferumoxides, monocrystalline iron oxide, cross-linked iron oxide (CLIO)-NH2 and tat-CLIO. Korean J Radiol. 8 (5), 365-371 (2007).

Nachdrucke und Genehmigungen

Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden

Genehmigung beantragen

Weitere Artikel entdecken

BioengineeringHeft 104paramagnetischmagnetischSPIONPLGAMagnetitFe 3 O 4Ferrofluidbiologisch abbaubarErfassungLieferungSortieren

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Datenschutz

Nutzungsbedingungen

Richtlinien

Forschung

Lehre

ÜBER JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Alle Rechte vorbehalten