PTR-ToF-MS gekoppelt mit einem automatisierten Probenahmesystem und einer maßgeschneiderten Datenanalyse für Lebensmittelstudien: Bioprozessüberwachung, Screening und Nasenraumanalyse

Zusammenfassung

Proton Transfer Reaction Time of Flight Mass Spectrometry allows high-sensitivity, rapid and non-invasive analysis of volatile organic compounds. To demonstrate its potential, we give three examples: lactic acid fermentation of yogurt (on-line bioprocess monitoring), different apple genotypes (large-scale screening), and retronasal space after drinking coffee (nosespace analysis).

Zusammenfassung

Proton-Transfer-Reaktion (PTR), kombiniert mit einem Time-of-Flight (ToF) Massenspektrometer (MS), ist ein analytischer Ansatz, der auf der chemischen Ionisation basiert, die zu den Direct-Injection Mass Spectrometric (DIMS) Technologien gehört. Diese Techniken erlauben die schnelle Bestimmung von flüchtigen organischen Verbindungen (VOCs), die eine hohe Empfindlichkeit und Genauigkeit gewährleisten. Im Allgemeinen erfordert PTR-MS weder Probenvorbereitung noch Probenzerstörung, so dass eine Echtzeit- und nicht-invasive Analyse von Proben möglich ist. PTR-MS werden in vielen Bereichen von der ökologischen und atmosphärischen Chemie bis hin zu medizinischen und biologischen Wissenschaften ausgenutzt. In jüngster Zeit haben wir eine Methodik entwickelt, die auf der Kopplung von PTR-ToF-MS mit einem automatisierten Sampler und maßgeschneiderten Datenanalyse-Tools basiert, um den Automatisierungsgrad zu erhöhen und damit das Potenzial der Technik zu erhöhen. Dieser Ansatz erlaubte es uns, Bioprozesse ( zB enzymatische Oxidation, alkoholische Fermentation) zu überwachen, um große Probenmengen (ZB unterschiedliche Ursprünge, ganze Keimbläschen) und analysieren mehrere experimentelle Modi ( zB unterschiedliche Konzentrationen eines gegebenen Inhaltsstoffs, unterschiedliche Intensitäten eines spezifischen technologischen Parameters) im Hinblick auf den VOC-Gehalt. Hier berichten wir über die experimentellen Protokolle, die verschiedene Anwendungsmöglichkeiten unserer Methodik veranschaulichen: dh die Erkennung von bei der Milchsäure-Fermentation von Joghurt freigesetzten VOCs (Online-Bioprozess-Monitoring), die Überwachung von VOCs, die mit verschiedenen Apfelsorten assoziiert sind (großformatiges Screening) , Und die in vivo Studie der retronasalen VOC Freisetzung während des Kaffees trinken (Nosespace Analyse).

Einleitung

Direct-Injection Mass Spectrometric (DIMS) -Technologien stellen eine Klasse von analytischen Instrumentalansätzen dar, die eine beträchtliche Massen- und Zeitauflösung mit hoher Empfindlichkeit und Robustheit bieten und so die schnelle Erkennung und Quantifizierung von flüchtigen organischen Verbindungen (VOCs) ermöglichen. Zu diesen instrumentellen Ansätzen gehören unter anderem MS-e-Nasen, Atmospheric-Pressure Chemical Ionization Mass Spectrometry (APCI-MS), Proton-Transfer-Reaction Mass Spectrometry (PTR-MS) und ausgewählte Ionen-Flow-Tube-Massenspektrometrie ( SIFT-MS) ¹ . Die Vor- und Nachteile jedes Ansatzes hängen von der Art der Probeninjektion, der Quelle und der Kontrolle der Vorläuferionen, der Kontrolle des Ionisierungsprozesses und des Massenanalysators ^{1 , 2 ab} .

Proton-Transfer-Reaktion Massenspektrometrie (PTR-MS) wurde vor mehr als zwanzig Jahren entwickelt, um in Echtzeit und wi zu überwachenTh niedrige Nachweisgrenzen (meist ein paar ppbv, Teil pro Milliarde Volumen) am meisten flüchtige organische Verbindungen (VOCs) in Luft ^{3 , 4} . Die derzeitigen Verwendungen von PTR-MS reichen von medizinischen Anwendungen über die Lebensmittelkontrolle bis hin zur Umweltforschung ^{5 , 6} . Die Hauptmerkmale dieser Technik sind: die Möglichkeit einer schnellen und kontinuierlichen Messung, die intensive und reine Quelle von Vorläuferionen und die Möglichkeit, die Ionisationsbedingungen (Druck, Temperatur und Driftspannung) zu kontrollieren. Mit diesen Merkmalen lassen sich vielseitige Einsatzmöglichkeiten mit hohem Standardisierungsgrad ^{1 , 4} kombinieren. Tatsächlich beruht das Verfahren auf Reaktionen von Hydroniumionen (H & _sub3 ; O & ^spplus; ), die einen nichtdissoziativen Protonentransfer in den meisten flüchtigen Verbindungen induzieren (insbesondere in jenen, die durch eine Protonenaffinität höher als Wasser gekennzeichnet sind), Protonen von neutralen Verbindungen(M) nach der Reaktion: H ₃ O ⁺ + M → H ₂ O + MH ⁺ . Im Gegensatz zu anderen Techniken, zB APCI-MS, werden die Vorläufer-Ionenerzeugung und die Probenionisation in zwei verschiedene Instrumentalfächer aufgeteilt (eine schematische Darstellung des PTR-MS-Instruments ist in Abbildung 1 dargestellt). Eine elektrische Entladung durch Wasserdampf in der Hohlkathoden-Ionenquelle erzeugt einen Strahl von Hydroniumionen. Nach dieser Phase kreuzen Ionen das Driftrohr, wo die Ionisierung von VOCs stattfindet ⁷ . Ionen geben dann einen Puls-Extraktionsabschnitt ein und werden in den TOF-Abschnitt beschleunigt. Durch die Flugzeiten ist es möglich, die Masse-zu-Ladungs-Verhältnisse der Ionen ⁸ zu bestimmen. Jeder Extraktionsimpuls führt zu einem vollständigen Massenspektrum ⁸ des ausgewählten m / z-Bereichs. Ionenspektren werden durch ein schnelles Datenerfassungssystem ⁷ aufgezeichnet. Ein komplettes Spektrum ist typischerweiseIn einer Sekunde erworben, obwohl eine höhere Zeitauflösung nach dem Signal-zu-Rausch-Niveau erreicht werden kann und eine quantitative Schätzung der VOC-Headspace-Konzentration auch ohne Kalibrierung ^{9 , 10 erfolgen kann} .

Abbildung 1: Schematische Darstellung eines PTR-MS. Schematische Darstellung des PTR-MS-Instruments HC: externe Ionenquelle mit Hohlkathode; SD: Quelldrift; VI, Venturi-Einlass; EM, Elektronenvervielfacher; FC1-2, Durchflussregler. Nachdruck mit Genehmigung von Boschetti et al. ⁷ Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Im Allgemeinen erfordert die PTR-Technik eine schnelle Analysezeit, eine hohe Erkennungsempfindlichkeit und eine relativ kompakte Gerätegröße, erfordert weder eine Probenvorbereitung noch eine Probenzerstörung und ermöglicht somit Echtzeit-Untersuchungen ¹¹ . PTR ist von großem Interesse für die Umwelt-, Atmosphären-, Lebensmittel-, Technologie-, Medizin- und Biowissenschaften ¹² .

VOCs, die mit Nahrungsmittelmatrizen assoziiert sind, sind von herausragendem Interesse an der Lebensmittelwissenschaft und -technologie wegen ihrer wichtigen Rolle in der molekularen Basis von biologischen Phänomenen, die mit Geruch und Geschmackswahrnehmung verbunden sind, und damit in der Nahrungsakzeptanz. Daher ist unser Interesse an Echtzeit und nicht-invasiven Erkennung von VOCs hauptsächlich mit sensorischen Qualitäten von Lebensmitteln beschäftigt. Wenn wir darüber hinaus die Möglichkeit betrachten, Verderb und pathogene Mikroorganismen mittels freigesetzter VOCs ¹³ zu detektieren und / oder flüchtige organische Verbindungen als Marker zu untersuchen,(Z. B. Maillard-Nebenprodukte bei thermischen Behandlungen) ¹⁴ wird deutlich, wie die VOC-Identifizierung und Quantifizierung für das Lebensmittelqualitätsmanagement von Interesse sind. Mehrere neuere Anwendungen von PTR-MS-Technologien zur schnellen Überwachung und Quantifizierung von VOCs in Lebensmittelmatrizen belegen das breite Anwendungsspektrum dieser analytischen Ansätze ( Tabelle 1 ).

Lebensmittelmatrix	Art der Anwendung	Kurze Beschreibung	Referenz
Butter	Screening / Charakterisierung	Geographische Herkunft der europäischen Butters	15
Joghurt	Bioprozessüberwachung	Evolution bei Milchsäure fermentation	16
Müsliriegel	In-vivo- Messung	Nosespace während des Verbrauchs von Getreidestäben mit unterschiedlicher Zuckerzusammensetzung	17
Flüssigmodellsysteme	Simulierte orale Bedingungen	Auswertung von Zungen- und Mundverhältnissen in einem Modellmund	18
Apfel	In-vivo- Messung	Nosespace während des Verbrauchs Apfel mit verschiedenen genetischen, strukturellen und physikochemischen Parametern	19
Kaffee	Screening / Charakterisierung	Differenzierung von Kaffeespezialitäten	20
Traubenmost	Screening / Charakterisierung	Wirkung des Kochprozesses	21
Aromatisierte Süßigkeiten	In-vivo- Messung	Bestimmung auf Panelisten mit unterschiedlichenDirekte Massenspektrometrieverfahren	22
Schinken	Screening / Charakterisierung	Wirkung des Schweinezuchtsystems	23
Brot	Simulierte orale Bedingungen	Simulieren des Brotaromas bei der Mastikation	24
Milch	Screening / Charakterisierung	Überwachung von Photooxidations-induzierten dynamischen Veränderungen in der Milch	25
Kaffee	Screening / Charakterisierung	Vielfalt in gerösteten Kaffees aus verschiedenen geographischen Ursprüngen	26
Brot	Bioprozessüberwachung	Wirkung von verschiedenen Hefe-Startern während der alkoholischen Gärung	27
Kaffee	In-vivo- Messung	Nosespace beim Verzehr von verschiedenen gerösteten Kaffeevorbereitungen	28
Tomaten	Screening / Charakterisierung	Auswirkungen des Produktionsstandortes, des Produktionssystems und der Vielfalt	29
Brot	Bioprozessüberwachung	Wirkung von Mehl, Hefe und deren Wechselwirkung während der alkoholischen Gärung	30
Pilze	Screening / Charakterisierung	Haltbarkeit von getrockneten Steinpilzen	31
Joghurt	Bioprozessüberwachung	Wirkung verschiedener Starterkulturen während der Milchsäurefermentation	32
Apfel	Screening / Charakterisierung	Vielfalt in einer Apfel-Keimplasmasammlung	33
Kaffee	Screening / Charakterisierung	Tracing Kaffee Herkunft	34
Kaffee	In-vivo- Messung	Kombination von aDynamische sensorische Methode und In-vivo-Nosespace-Analyse, um die Kaffee-Wahrnehmung zu verstehen	35

Tabelle 1: Liste der wissenschaftlichen Studien mit PTR-ToF-MS im Lebensmittelbereich. Nicht erschöpfende Liste von wissenschaftlichen Studien mit PTR-basierten Ansätzen zur Überwachung des VOC-Gehalts in lebensmittelbezogenen Experimenten.

In neueren Studien berichteten wir über die Anwendung von PTR-ToF-MS mit einem automatisierten Probenahmesystem und maßgeschneiderten Datenanalyse-Tools, um die Probenahmeautomatisierung und -sicherheit zu erhöhen und damit das Potenzial dieser Technik ^{7 , 10 , 13} zu erhöhen. So konnten wir im Hinblick auf den VOC-Gehalt große Sample-Sets ( zB Lebensmittel unterschiedlicher Herkunft mit vielen Replikaten, ganze Keimbläschen) aufzeigen, um den Einfluss mehrerer experimenteller Modi auf die VOC-Freisetzung zu analysieren ( zB unterschiedliche Konzentrationen)Eines bestimmten Inhaltsstoffs, diverse Intensitäten eines spezifischen technologischen Parameters) und zur Überwachung von VOCs, die mit einem gegebenen Bioprozess assoziiert sind ( zB enzymatische Oxidation, alkoholische Fermentation). Um hier das Potenzial von PTR-ToF-MS im Agrar- und Ernährungssektor zu veranschaulichen, stellen wir drei paradigmatische Anwendungen vor: die Erkennung von VOCs, die während der Milchsäure-Fermentation von Joghurt, die durch verschiedene mikrobielle Starterkulturen induziert wird, freigesetzt werden (Online-Bioprozess-Monitoring ), Die Überwachung von VOCs, die mit verschiedenen Apfelsorten assoziiert sind (großformatiges Screening) und die in vivo- Untersuchung der retronasalen VOC-Freisetzung beim Trinken von Kaffee (Nosespace-Analyse).

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Protokoll

Das Protokoll folgt den Richtlinien unseres institutionellen Ausschusses für Humanforschung Ethik.

1. Probenvorbereitung und Autosampler-Bedingungen

1. Online-Bioprozess-Monitoring: Erkennung von VOCs, die während der Milchsäure-Fermentation von Joghurt freigesetzt werden
   ANMERKUNG: Dieser Abschnitt des Protokolls stellt einen Teil des von Benozzi et al. ³²
   1. Füge 5 ml pasteurisierte Milch zu jeder Durchstechflasche hinzu (20 ml Glasfläschchen mit PTFE / Silikon Septa). Beachten Sie die Art der verwendeten Milch und heizen Sie die Proben schnell auf 45 ° C. Übertragen Sie sie auf einen multifunktionalen GC-Autosampler mit einem temperaturgesteuerten Tablett (45 ° C).
   2. Benutzen Sie den Roboterarm des Autosamplers, um die Fläschchen mit den mikrobiellen Starterkulturen zu impfen (nach den Vorgaben des Starterkulturherstellers). Stellen Sie die Inkubationszeit entsprechend der Typologie des gewünschten Joghurts und der Spezifikation einS berichtet von Starter Kultur Hersteller. Setzen Sie den Autosampler, um eine Probe nach dem anderen bequem zu analysieren, um eine Online-VOC-Überwachung der Milchsäurefermentation während der Joghurtvorbereitung zu erhalten.
2. Großes Screening: Überwachung von VOCs, die mit verschiedenen Apfelgenotypen assoziiert sind
   ANMERKUNG: Dieser Abschnitt des Protokolls stellt einen Teil des von Farneti et al. ^{33 , 36}
   1. Probe Äpfel in der gewünschten Phase der Reifung / Konservierung ( zB im kommerziellen Ernte-Stadium). Wählen Sie mindestens fünf homogene Früchte ohne sichtbare Schäden für jeden Klon. Lagern Sie die Äpfel für den gewünschten Zeitraum bei Raumtemperatur (25 ° C) oder kühlen Sie (4 ° C).
   2. Sammeln Sie fünf zylindrische Scheiben (1,7 cm Durchmesser und 1 cm Dicke) von jedem Apfel mit einem Fleisch Klinge Probenehmer. Füge einen Teil des Kortexgewebes ein und vermeide den Kernteil mit Samen.Die Proben sofort homogenisieren und in flüssigem Stickstoff einfrieren. Bei -80 ° C bis zur Analyse aufbewahren.
   3. Vor der Analyse legen Sie drei Replikate der 2,5 g Apfelprobe aus jedem biologischen Replikat in die Fläschchen (20 ml Glasfläschchen mit PTFE / Silikon Septa). Die Probe mit 2,5 ml entionisiertem Wasser, 1 g Natriumchlorid, 12,5 mg Ascorbinsäure und 12,5 mg Zitronensäure vermischen und die Proben bei 4 ° C bis zur Analyse (maximal 3 Tage) aufbewahren.
   4. Inkubieren Sie die Proben bei 40 ° C und stellen Sie dann den Autosampler ein, um die VOCs automatisch zu analysieren.
3. Nosespace-Analyse: Studium der retronasalen Freisetzung von VOCs beim Kaffee trinken
   ANMERKUNG: Dieser Abschnitt des Protokolls stellt einen Teil des von Romano et al. ²⁸
   1. Bereiten Sie Kaffee aus gemahlenen Kaffeeproben vor.
      1. Verwenden Sie eine Kaffeemaschine: melden Sie das Wasser / Pulver-Verhältnis, die Art des verwendeten Mineralwassers,Die Art der Kaffeemaschine und das Verfahren, um das Kaffeegetränk zu erhalten (Mengen sind eine Funktion der Dimension der Kaffeemaschine).
      2. Verwenden Sie eine 6-Tassen-Herd-Top-Kaffeemaschine, bekannt in Italien als "Moka", mit 450 ml Wasser und 30 g Kaffeepulver. Den gebrühten Kaffee in ein Gefäß geben und in ein Thermostatwasserbad (60 ° C) überführen.
   2. Für jeden Kaffee brauen 7,5 ml Aliquots zu einem Polystyrolbecher (40 ml) mit einer Plastikkappe. Haben Sie jeden Tafelgeschmack das Getränk nach dem Protokoll: i) 30 s freie Atmung, ii) ein einziger Schluck Kaffee, gefolgt von einem schnellen Schluck und iii) 3 min Atmung in ein ergonomisches Glas Nasenstück ²⁸ .
   3. Wiederholen Sie das ganze Experiment für drei aufeinanderfolgende Tage, randomisieren die Reihenfolge der Kaffee Proben und Panelisten jeden Tag.
   4. Führen Sie die Probenahme durch, indem Sie ein einseitiges ergonomisches Nasenstück in Silikonkautschuk auf die Nase der Panelisten auftragen. Verbinden Sie die nDas PTR-ToF-MS mittels eines PEEK-Rohres, das nur im ersten Teil in Kontakt mit dem Plattenkörperkörper unbeheizt ist, wird dann bei 110 ° C in einem Einlassschlauch erwärmt, der die Probenahme-Schnittstelle mit dem PTR-MS verbindet Instrument.
      HINWEIS: In Tabelle 2 wurde eine Liste von Produkten analysiert, die mit analogen Verfahren zu den von Benozzi et al. ³² , Farneti et al. ^{33 , 36} und Romano et al. ²⁸ wird berichtet.

Lebensmittelmatrix	Anzahl und Art der Proben	Referenz
Apfel	Die Autoren zeigten eine Sammlung von 190 Beitritten, die aus alten und neuen Apfelsorten zusammengesetzt waren	33
Joghurt	Vier Starter wurden in Form von VOCs analysiert, die während der Milchsäurefermentation von Joghurt freigesetzt wurden (A, FD-DVS YF-L812 Yo-Flex, Chr. Hansen, B, FD-DVS YC-380 Yo-Flex, Chr. Hansen, C, FD -DVS YC-X11 Yo-Flex, Chr. Hansen, D, YO-MIX 883, Danisco)	32
Kaffee	Drei verschiedene Art von gemahlenem Kaffee, der aus einer einzigen reinen Arabica-Kaffee-Mischung gewonnen wurde, wurden verwendet: mittlerer Braten, dunkler Braten und entkoffeinierter mittlerer Braten	28

Tabelle 2: Liste der analysierten Produkte Liste der mit analogen Verfahren analysierten Produkte zu den von Benozzi et al. ³² , Farneti et al. ^{33 , 36} und Romano et al. ²⁸

2. Experimentelles Design und praktische Vorsichtsmaßnahmen

1. Führen Sie mindestens drei inter-day biologische ReplikTes, jeweils mit drei technischen Replikaten, für jeden experimentellen Modus.
2. Vor der Probeninkubation und -analyse den Kopfraum mit sauberer Luft für 1 min bei 200 sccm für jede Durchstechflasche spülen.
3. Bereiten Sie für jeden experimentellen Modus einen Rohling vor, inkubieren und analysieren Sie den Rohling unter den gleichen Bedingungen der Proben.
4. Randomisieren Sie die Reihenfolge der Proben / Leerzeichen für die Analyse.
5. Ähnlich wie bei anderen Methoden zur Erkennung von VOCs, beschränken Sie die Verwendung von parfümierten Körperpflegeprodukten sowie Gummi und Zigaretten, bevor Sie das Instrument verwenden. Die flüchtigen Chemikalien im Labor vollständig verschließen und bei der Prüfung so viel wie möglich kontrollieren.

3. PTR-MS Instrumentenoptimierung und -analyse

HINWEIS: Die instrumentellen Bedingungen sind in den Referenzen beschrieben ( zB Makhoul et al ., ²⁷ ).

1. Führen Sie Headspace-Messungen der Proben mit einem commerciAl PTR-ToF-MS Gerät im Standard-Konfigurationsmodus.
2. Direkte Einspritzung der Luft in den PTR-MS Driftrohr Headspace ohne Behandlung. Es gibt einen kontinuierlichen Fluss von Probenluft durch die PTR-MS, so dass die Injektion durch einfaches Einführen des Endes des PTR-MS-Einlasses in den Probenkopfraum erreicht wird.
3. Die folgenden Ionisationsbedingungen im Driftrohr kontrollieren und ständig überprüfen: 110 ° C Driftrohrtemperatur, 2,30 mbar Driftdruck, 550 V Driftspannung. Dies führt zu einem E / N-Verhältnis von etwa 140 Td (1 Td = 10 ^-17 cm ² V ^{- 1} s ^{- 1} ). Die Einlassleitung besteht aus einem PEEK-Kapillarrohr (Innendurchmesser 0,04 in.), Das bei 110 ° C erwärmt wurde. Stellen Sie standardmäßig den Eingangsfluss auf 40 sccm ein.
4. Stellen Sie die Abtastzeit pro Kanal der ToF-Erfassung auf 0,1 ns ein und belaufen sich auf 350.000 Kanäle für ein Massenspektrum von bis zu m / z = 400. Jedes einzelne Spektrum ist die Summe von etwa 28.600 Akquisitionen von 35Μs, was zu einer zeitlichen Auflösung von 1 s führt.
   HINWEIS: Spectra werden dann kontinuierlich gespeichert. Spektrometrische Signale wachsen von einem Hintergrundniveau zu einem stabilen Wert in wenigen Sekunden (die Zeit, die benötigt wird, um das Gas in den Einlassleitungen zu ersetzen) und nur die nach diesem Übergang erworbenen Spektren werden in einer weiteren Analyse betrachtet.

4. Maßgeschneiderte Datenanalyse

HINWEIS: Die maßgeschneiderte Datenanalyse wurde mit einem Verfahren in MATLAB entwickelt.

1. Korrigieren Sie die Zählverluste aufgrund der Ionendetektor-Totzeit über eine Methodik, die auf Poisson-Statistiken basiert, wie von Cappellin et al. ¹⁰
2. Führen Sie die interne Kalibrierung nach einem von Cappellin et al. Um eine gute Massengenauigkeit (bis zu 0,001 Th) zu erreichen.
3. Durchführen einer zusammengesetzten Annotation, die die erhaltenen Spektraldaten mit Fragmentierungsdaten von Referenzstandards und mit Daten r vergleichtIn der wissenschaftlichen Literatur eingegeben.
4. Führen Rauschunterdrückung, Baseline-Entfernung und Peak-Intensität Extraktion nach Cappellin et al. ³⁹ , mit modifizierten Gaußern, um die Gipfel passen.
5. Berechnen Sie die Peakintensität in ppbv (Teile pro Milliarde Volumen) über die von Lindinger et al. ⁵ , unter Verwendung des geeigneten Reaktionsgeschwindigkeitskoeffizienten oder eines konstanten Wertes für den Reaktionsgeschwindigkeitskoeffizienten (k = 2,10 ^{- 9} cm ³ s ^{- 1} ), wenn die darunterliegende Verbindung nicht bekannt ist. Letzteres führt einen systematischen Fehler von bis zu 30% ein, der bei der Angabe des tatsächlichen Koeffizienten berücksichtigt werden kann.
6. Mine die Daten durch die Durchführung von Principal Component Analysis, Analysis of Variance, Tukey's Post-Hoc-Test und andere statistische Test / Analyse Anpassung der bestehenden Pakete entwickelt mit R ( zB Cappellin et al. ^10).

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Ergebnisse

Das flüchtige Profil der Proben ergab ein vollständiges Massenspektrum für den gewünschten Massenbereich, der jede Sekunde erworben wurde. In Fig. 2 ist ein Beispiel für die erworbenen Durchschnittsspektren während des Joghurt-On-line-Bioprozesses gegeben ³² . In jedem Spektrum können mehr als 300 Massenspitzen im m / z Bereich bis zu 250 Th identifiziert werden ³² .

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Diskussion

Protonentransfer-Reaktions-Massenspektrometrie (PTR-MS), gekoppelt an Flugzeit- (ToF-) Massenanalysatoren, stellen einen gültigen Kompromiss zwischen der Notwendigkeit der Identifizierung und Quantifizierung flüchtiger organischer Verbindungen und der Notwendigkeit einer schnellen analytischen Profilierung dar. Die hohe Massenauflösung, die den ToF-Massenanalysator charakterisiert, gibt / liefert relevante Empfindlichkeits- und Massenspektren mit erheblichem Informationsgehalt. Darüber hinaus erhöht die Anwendung v...

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Materialien

Name	Company	Catalog Number	Comments
PTR-TOF 8000 High-Resolution PTR-TOF-MS	Ionicon Analytik Ges.m.b.H.	PTR-TOF 8000	An detector for volatile organic compounds (VOCs) that allows for continuous VOC quantification with a very high mass resolution
GERSTEL MPS 2XL	Gerstel		A multifunctional autosampler
Gas Calibration Unit	Ionicon Analytik Ges.m.b.H.	GCU-s / GCU-a	A dynamic gas dilution system that provides variable but known quantities of different standard compounds in a carrier gas stream
TofDaq	Tofwerk AG	free available at http://soft.tofwerk.com/	A data acquisition software (for spectra  acquisition)
MATLAB	MathWorks	http://it.mathworks.com/products/matlab/	A technical computing language and interactive environment for algorithm development, data visualization, and data analysis
R	The R Foundation	free available at https://cran.r-project.org/mirrors.html	A language and environment for statistical computing and graphics