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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Das Hauptziel dieser Studie ist es, zu standardisieren und testen Sie die pneumatische Erhebungsmethode (Luft-stripping) Eier in Regenbogenforelle und Bachforelle. Diese Methode ermöglicht effektive und einfache Auflistung der Eier ohne die Notwendigkeit von Fisch-Bauch-Massage.

Zusammenfassung

Eizellentnahme ist eines der wichtigsten Verfahren bei der Fortpflanzung der Fische in Lachsfische Brütereien. Klassische Methoden beinhalten die Verwendung von Handmassage auf Fisch Bäuche, die Eier zu vertreiben. Eine alternative Methode nutzt den Druck des Gases in der Körperhöhle, wodurch die anschließende Freisetzung der Eizellen injiziert. Diese Methode wird geglaubt, um weniger negative Auswirkungen auf das Wohlergehen und die Eizelle Qualität der Brutbestände haben. Hier vergleichen wir die Ergebnisse der Luft und Hand abstreifen Methoden in Bezug auf ein-Jahres-Überlebensrate und Ei Quantität und Qualität in zwei Lachsfische Fisch, Regenbogenforelle (Oncorhynchus Mykiss) und Bachforelle (Salmo Trutta Morpha Fario). Unsere Ergebnisse deuten darauf hin, dass Luft Abisolieren ergab eine bessere Qualität der Eier und höher ein-Jahres-Überlebensrate in Regenbogenforellen. Darüber hinaus ergaben sich Luft Abisolieren in niedrigere Mortalitätsrate als die Gruppe ausgesetzt Hand abstreifen (25 % Vs. 35 %). PH-Wert und Schlupf lag der Hand abgestreift-Gruppe die niedriger als das Geschwader abgestreift. Im Falle von Bachforelle war die Qualität der Eizellen mit der Hand und Luft-stripping-Methoden ähnlich; jedoch lagen die Einjahres-Verluste bei Fischen in beraubt Luftgruppe (15 % im Vergleich zu 0 % in Hand abgestreift Fisch). Obwohl die Vorteile der Luft stripping Methode über Hand in Bezug auf die eiqualität Abisolieren in allen Salmoniden-Arten nicht beobachtet werden können, möglicherweise das Luft-stripping-Verfahren eine vielversprechende Option in Brütereien angenommen werden, da es ein hohes Maß an Reproduzierbarkeit gewährleistet und Effizienz.

Einleitung

Die Regenbogenforelle (Oncorhynchus Mykiss) und Bachforelle (Salmo Trutta Morpha Fario) gehören zu der Familie der Salmoniden Salmoniformes1. Die Produktion dieser beiden Arten in globale Aquakultur hat schnelles Wachstum, wegen ihrer kommerziellen und Freizeit Bedeutung gewonnen. In Polen Produktion von Salmoniden Fischen liegt bei rund 20 000 Tonnen mit Regenbogenforellen wird die dominante Spezies. Auf der anderen Seite stellt die Bachforelle eine wichtige Quelle für Süßwasserfische Ressourcen in Europa wegen seiner kommerziellen Wert in Aquakultur und Bedeutung zum Angeln. In vielen aquatischen Ökosystemen ist die Existenz der Bachforelle Bevölkerung bedroht. Infolgedessen wurde künstlichen Befruchtung angewandt, um lokale Populationen dieser Art2aufzufüllen.

Regenbogenforelle und Bachforelle erreichen sexuelle Reife in der Regel im Alter von drei, mit Reifen ein Jahr früher als Weibchen1Männchen. Unter künstlichen Bedingungen werden Ei- und Samenzellen der Regenbogenforelle und Bachforelle in der Regel durch sanfte Bauchmassage gesammelt. In der Praxis, in kleinem Maßstab ist eine Hand-stripping-Methode des Sammelns Eier kostengünstig. Auf einer großen Skala, kann die Hand-stripping-Methode arbeitsintensiv und anstrengend jedoch. Infolgedessen kann diese Technik zerbrochene Eier aufgrund der Erschöpfung der Brüterei Arbeitnehmer führen. Bruch der Eier führt oft zu einem Rückgang der pH-Wert des Eierstockkrebs Flüssigkeit und die Freisetzung von Eigelb, die sich negativ auf die Befruchtung der Eier3beeinflussen. Diese traditionelle Methode der Eizellentnahme (wiederholtes Drücken des Bauches) kann darüber hinaus auch Brutbeständen Sterblichkeit verursacht durch Infektion der Haut, verbunden mit der Verschlechterung der Schutzbarriere des Schleims führen.

Pneumatische Methode der Eizellentnahme wurde erstmals im Jahre 19574in Australien verwendet. Die Methode basiert auf der Injektion von Gasen (Luft, Stickstoff oder Sauerstoff) in die Körperhöhle, Eier mit Gasdruck zu vertreiben. Diese schnelle und einfache Technik wurde erfolgreich in Lachsfische Fisch ohne irgendwelche negativen Nebenwirkungen auf dem Fisch4angewandt. Vor kurzem wurde diese Methode in Wildarten (Hecht, Esox Lucius), Reife Eizellen in künstlichen Bedingungen5sammeln verwendet. Es zeigte sich, dass Luft Eier beraubt höhere Düngung und Preise im Vergleich zu Hand schlüpft Eier, unabhängig von der Lösung zur Befruchtung (Woynarovich Lösung, Billard Puffer oder Brüterei Wasser)5abgestreift hatte.

Das Hauptziel dieser Studie war die pneumatische Erhebungsmethode (Luft-stripping) Eier in Regenbogenforelle und Bachforelle im Vergleich zu traditionellen Hand stripping-Methode zu testen. Wirkungsgrade von beiden Methoden (Volumen der erhaltenen Eier) und Zeit der Sammlung, die Qualität der Gameten (Eierstockkrebs Flüssigkeit pH) sowie Schlupf Rate und nach dem Laichen Mortalität wurden verglichen.

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Protokoll

Verfahren wurden im Einklang mit dem Lokalkomitee auf die Ethik von Tierversuchen in Olsztyn, Polen durchgeführt.

1. Ausrüstung Vorbereitung

  1. Verwenden Sie eine Spritze und Nadel für Einspritzung des Gases in die Körperhöhle Fisch.
  2. Den Gasdruck auf 0,5 Bar eingestellt und pflegen diesen Druck unter 1 Bar im ganzen sein.
  3. Steuern Sie den Luftstrom. Für die Lachsfische Fisch ist 1,5 L/min die effizienteste Geschwindigkeit von Gas Erschöpfung. Halten Sie die optimale Geschwindigkeit, weil höherer Geschwindigkeit nicht alle Eier erhalten könnte, während eine langsamere Geschwindigkeit das Verfahren unnötig verlängern könnte.
  4. Schließen Sie die Spritze mit einer aufgeschraubten Nadel (0,8-1,2 mm Durchmesser), Nadel-Ablösung durch den Gasdruck verursacht zu vermeiden.

2. Luft Laichen

  1. Den Fisch mit 0,2 % zu betäuben Propiscin. Legen Sie den Fisch in ein Wasserbad mit den 0,2 % Propiscin und warten Sie, bis die Fische nicht mehr reagiert.
  2. Trocknen Sie sorgfältig vor dem Laichen durch Abwischen mit einem trockenen Baumwolltuch.
  3. Legen Sie den Fisch auf die schräge Bett über 35-40°, an ihrer Seite-Heck-Seite nach unten. Ein sanfter Druck von Fisch Bauch überprüfen Sie den Ei-Flow aus den Genitaltrakt. Wenn die Eier nicht vorhanden sind, sollten die Fische nicht hervorgebracht.
  4. Stellen Sie einen Behälter bedeckt mit Netz unterhalb der Fische Papille, die Eier zu sammeln.
  5. Schnell stechen Sie die Nadel unter die Abdominal-Rippen.
  6. Entfernen Sie die Eier frei durch das Gas, bis nur einzelne Eier aus dem Körper des Fisches entfernt werden.
  7. Massieren Sie den Bauch um überschüssiges Gas aus den Körper des Fisches zu entfernen.
  8. Nach dem laichen, übertragen Sie sanft die Fische in einen Behälter mit Wasser-Strömung. Fish Tank freigegeben, nachdem Luft Laichen zunächst auf der Oberfläche des Wassers schwimmen könnte. Nach einigen Minuten den Fisch löst das restliche Gas beim Schwimmen und beginnt normalerweise schwimmen.
    Hinweis: Die erhaltenen Eier sind sehr sauber und frei von Blut oder Kot Kontamination.

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Ergebnisse

Reife Männchen und Weibchen von Regenbogenforellen (1700 ± 328 g 2 + Jahre) und Bachforelle (1900 ± 435 g 3 + Jahre) wurden von der Lachsfische Fish Hatchery (in Rutki-Żukowo, im Landesinneren Fischerei Institut in Olsztyn, Polen) erhalten. Männchen und Weibchen wurden in separaten Tanks mit einem Volumen von ca. 5 m3platziert. Die Wassertemperatur war 12±1 ° C. Vor Manipulation, wurden die Fische betäubt mit 0,2 % Propiscin. Die Fische wurden in zwei Grupp...

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Diskussion

Die pneumatische Methode der Entnahme der Eizellen aus Fisch, obwohl mehr Zeit in Anspruch als die traditionelle Methode (Hand-stripping), sichern eine hohe Qualität der gereifte Eizellen (diese Arbeit). Dies bezieht sich auf das geringe Risiko einer mechanischen Störung der Eier während der Anwendung dieses Verfahrens. Hoher pH-Wert von Eierstock-Flüssigkeit, sowie eine Erhöhung der befruchtungsrate bezeugen die Nützlichkeit der pneumatischen Methode. Insgesamt könnte die Luft stripping Methode der Eizellentnahme...

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Danksagungen

Die vorgestellte Studie wurde unterstützt vom Projekt "pneumatische Methode des Abtrags Fisch - Einsatzmöglichkeit, Einfluss auf die Gameten Qualität und Quantität und das Wohlergehen der Fische" (Abkürzung: PNEUFISH) finanzierten "operationelle Programm Entwicklung für die Fischerei Sektor und Coastal 2007-2013"(OR-61724-OR1400001/10), Institute of Animal Reproduction und Lebensmittelforschung bereitgestellten Mittel polnische Akademie der Wissenschaften, Olsztyn, Polen, und unterstützen durch COST-Büros (Lebensmittel und Landwirtschaft COST Action FA1205: AQUAGAMETE ). Wir möchten danken, Stanley Islami Ugwu für tolle Unterstützung in der englischen Bearbeitung. Wir wollen auch die Animation-Produzenten "Studio Filmowe Ruchome Obrazki" erkennen.

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Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
Glycine pure P.A.AVANTOR527560117sperm activating buffer
Trizma baseSigma AldrichT1503sperm activating buffer
Sodium chloride BioreagentSigma AldrichS5886sperm activating buffer
Calcium chloride anhydrousSigma AldrichC4901sperm activating buffer
Propiscin (0.2% etomidate solution)IRS Olsztyn, Polandnot indicated
compressorThomas  Sheboigan WI USA DT/SR 070800001882
reduction valveCamozzi cRJUS U7J
air hoseZEC T.P.U. SH.98 
syrgineEFD7012118
Air spawning stageBiopasz, PolandPNEU001
Orion Ross Ultra electrodeThermo Scientific, Waltham, MA, USA8102BNUWP

Referenzen

  1. Nelson, J. S. Fishes of the World. , 4th, JohnWiley and Sons, Inc. Hoboken, NJ, USA. (2006).
  2. García-Marín, J. L., Sanz, N., Pla, C. Proportions of native and introduced brown trout in adjacent fished and unfished Spanish rivers. Conservation Biology. 12, 313-319 (1998).
  3. Dietrich, G. J., Wojtczak, M., Slowinska, M., Dobosz, S., Kuzminski, H., Ciereszko, A. Broken eggs decrease pH of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) ovarian fluid. Aquaculture. 273, 748-751 (2007).
  4. Zurbuch, P. E. A structure for easy fish recovery during drainage of an impoundment. Progressive FishCulturist. 27, 237-238 (1965).
  5. Cejko, B. I., et al. Effects of different stripping methods of female and activation medium on fertilization success in northern pike (Esox lucius). Czech Journal of Animal Sciences. 10, 481-486 (2016).
  6. Morisawa, S., Morisawa, M. Induction of potential for sperm motility by bicarbonate and pH in rainbow trout and chum salmon. Journal of Experimental Biology. 136, 13-22 (1988).
  7. Billard, R., Cosson, J., Perchec, G., Linhart, O. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. 129, 95-112 (1995).
  8. Iuchi, I., Ha, C. R., Sugiyama, H., Nomura, K. Analysis of chorion hardening of eggs of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Development Growth and Differentiation. 38, 299-306 (1996).
  9. Wojtczak, M. A., Kowalski, R. K., Dobosz, S., Goryczko, K., Kuźminski, H., Glogowski, J., Ciereszko, A. Assessment of water turbidity for evaluation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) egg quality. Aquaculture. 242, 617-624 (2004).
  10. Tabrizi, E. N., Khara, H., Nezami, S. A., Lorestani, R., Shamspour, S. Broken Eggs Influence on Fertilization Capacity and Viability of Eggs, Turbidity and pH of Ovarian Fluid and Fertilization Water in the Endangered Caspian Brown Trout, Salmo Trutta Caspius. International Journal of Biology. 3 (1), 161-166 (2011).
  11. Carl, G. C. Beware of the broken egg! A possible cause of heavy losses of salmon eggs. Progresive Fish-Culturist. 53, 30-31 (1941).

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Nachdrucke und Genehmigungen

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