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Dieses Protokoll beschreibt die halbautomatische Isolierung der stromalen vaskulären Fraktion (SVF) aus murinem Fettgewebe, um Präadipozyten zu erhalten und eine Adipozytendifferenzierung in vitro zu erreichen. Die Verwendung eines Gewebedissoziators für den Kollagenaseverdau reduziert die experimentelle Variation und erhöht die Reproduzierbarkeit.
Die in vitro Untersuchung der Differenzierung von weißen, braunen und beigen Adipozyten ermöglicht die Untersuchung zellautonomer Funktionen von Adipozyten und ihrer Mechanismen. Immortalisierte weiße Präadipozyten-Zelllinien sind öffentlich zugänglich und weit verbreitet. Die Entstehung von beigen Adipozyten im weißen Fettgewebe als Reaktion auf äußere Signale lässt sich jedoch nur schwer in vollem Umfang mit öffentlich zugänglichen weißen Adipozytenzelllinien rekapitulieren. Die Isolierung der stromalen vaskulären Fraktion (SVF) aus murinem Fettgewebe wird üblicherweise durchgeführt, um primäre Präadipozyten zu erhalten und eine Adipozytendifferenzierung durchzuführen. Das Zerkleinern und die Kollagenase-Verdauung von Fettgewebe von Hand kann jedoch zu experimentellen Variationen führen und ist anfällig für Verunreinigungen. Hier stellen wir ein modifiziertes halbautomatisches Protokoll vor, das einen Gewebedissoziator für den Kollagenaseverdau verwendet, um eine einfachere Isolierung des SVF zu erreichen, mit dem Ziel, die experimentelle Variation zu reduzieren, die Kontamination zu reduzieren und die Reproduzierbarkeit zu erhöhen. Die gewonnenen Präadipozyten und differenzierten Adipozyten können für funktionelle und mechanistische Analysen verwendet werden.
Die Biologie des Fettgewebes hat aufgrund der weltweit zunehmenden Prävalenz von Fettleibigkeit und Typ-2-Diabetes immer mehr Aufmerksamkeit auf sich gezogen1. Adipozyten speichern überschüssige Energie in Form von Lipidtröpfchen, die beim Verhungern freigesetzt werden. Darüber hinaus hält das Fettgewebe die systemische Energiehomöostase aufrecht, indem es als endokrines Organ dient und mit anderen Geweben kommuniziert 2,3. Interessanterweise werden sowohl überschüssiges Fettgewebe (Fettleibigkeit) als auch Fettabbau (Lipodystrophie) mit Insulinresistenz und Diabetes in Verbindung gebra....
Alle in diesem Protokoll beschriebenen Tierversuche wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der Universität Tokio genehmigt und nach den institutionellen Richtlinien der Universität Tokio durchgeführt.
1. Herstellung von Enzymlösung und Medium
Dieses Protokoll liefert vollständig differenzierte, lipidbeladene Adipozyten 7 Tage nach Induktion der Adipozytendifferenzierung. Der Grad der Adipozytendifferenzierung kann durch die Ölrotfärbung von Triglyceriden und Lipiden (Abbildung 1A) oder durch eine mRNA-Expressionsanalyse mittels qPCR-RT von Adipozytengenen, wie dem Hauptregulator der Adipogenese Pparg und seinem Zielmolekül Fabp4 (Abbildung 1B), bewertet werden. Um eine Differenz.......
In dieser Arbeit haben wir ein Protokoll zur Isolierung des SVF aus murinem Fettgewebe beschrieben, um Präadipozyten zu erhalten und eine Adipozytendifferenzierung in vitro durchzuführen. Die Verwendung eines Gewebedissoziators für den Kollagenaseverdau verringerte die experimentelle Variation, verringerte das Risiko einer Kontamination und erhöhte die Reproduzierbarkeit. Obwohl dieses Verfahren ein kritischer Schritt innerhalb des vorgestellten Protokolls ist, ist der Prozess hochgradig automatisiert und es.......
Keiner der Autoren hat ein konkurrierendes finanzielles Interesse im Zusammenhang mit dieser Arbeit.
Die Autoren danken Takahito Wada und Saiko Yoshida (The University of Tokyo, Tokyo, Japan) für ihre experimentelle Unterstützung. Diese Arbeit wurde durch die folgenden Stipendien an Y.H. finanziert: Forschungsstipendium des University of Tokyo Excellent Young Researcher Program; Japanische Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaft (JSPS) KAKENHI-Stipendium für Nachwuchswissenschaftler, Fördernummer 19K17976; Stipendium für den Front Runner of Future Diabetes Research (FFDR) der Japan Foundation for Applied Enzymology, Förderkennzeichen 17F005; Stipendium der Stiftung für Pharmakologische Forschung; Stipendium der Mochida Memorial Foundation for Medical and Pharmace....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
100 mm dish | Corning | 430167 | |
12 well plate | Corning | 3513 | |
60 mm dish | IWAKI | 3010-060 | |
Adipose Tissue Dissociation Kit, mouse and rat | Miltenyi Biotec | 130-105-808 | contents: Enzyme D, Enzyme R, Enzyme A and Buffer A |
Cell strainer 70 µm | BD falcon | #352350 | |
Collagen coated dishes, 100 mm | BD | #356450 | |
Collagen coated dishes, 60 mm | BD | #354401 | |
Collagen I Coat Microplate 6 well | IWAKI | 4810-010 | |
Dexamethasone | Wako | 041-18861 | |
Dissecting Forceps | N/A | N/A | autoclave before use |
Dissecting Scissors, blunt/sharp | N/A | N/A | autoclave before use |
Dissecting Scissors, sharp/sharp | N/A | N/A | autoclave before use |
DMEM/F-12, GlutaMAX supplement | Gibco | 10565-042 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | N/A | N/A | |
gentleMACS C Tubes | Milteny Biotec | 130-093-237 | |
gentleMACSOcto Dissociator with Heaters | Miltenyi Biotec | 130-096-427 | |
Humulin R Injection U-100 | Eli Lilly | 872492 | |
Indomethacin | Sigma | I7378-5G | |
Isobutylmethylxanthine (IBMX) | Sigma | 17018-1G | |
Lipofectamine 2000 | Life Technologies | 11668-019 | |
Neomycin Sulfate | Fujifilm | 146-08871 | |
Opti-MEM | Invitrogen | 31985-062 | |
pBABE-neo largeTcDNA (SV40) | Add gene | #1780 | |
PBS tablets | Takara | T900 | |
Platinum-E (Plat-E) Retroviral Packaging Cell Line | cell biolab | RV-101 | |
Polybrene | Nacalai Tesque | 12996-81 | |
Power Sybr Green Master Mix | Applied Biosystems | 4367659 | |
ReverTra Ace qPCR RT Master Mix | TOYOBO | #FSQ-201 | |
RNeasy Mini Kit (250) | QIAGEN | 74106 | |
Rosiglitazone | Wako | 180-02653 | |
T3 | Sigma | T2877-100mg | |
Trypsin-EDTA (0.05%) | Gibco | 25200-056 |
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