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* Diese Autoren haben gleichermaßen beigetragen
In dieser Arbeit stellen wir ein Protokoll zur Erzeugung und funktionellen Verifizierung von Hypoxie-sensitiven chimären Antigenrezeptor (CAR)-T-Zellen vor. Dieses Protokoll stellt die Lentivirus-basierte Generierung von Hypoxie-sensitiven CAR-T-Zellen und deren Charakterisierung vor, einschließlich der Validierung der Hypoxie-abhängigen CAR-Expression und der selektiven Zytotoxizität.
Umfangreiche Studien haben das Versprechen der chimären Antigenrezeptor-T-ZELLTHERAPIE (CAR-T) bei der Behandlung hämatologischer Malignome bewiesen. Die Behandlung solider Tumore bleibt jedoch eine Herausforderung, wie die Sicherheitsbedenken zeigen, die entstehen, wenn CAR-T-Zellen normale Zellen angreifen, die die Zielantigene exprimieren. Forscher haben verschiedene Ansätze untersucht, um die Tumorselektivität der CAR-T-Zelltherapie zu verbessern. Eine repräsentative Strategie in diesem Sinne ist die Konstruktion von Hypoxie-sensitiven CAR-T-Zellen, die durch die Fusion einer sauerstoffabhängigen Abbaudomäne mit der CAR-Einheit konzipiert sind und so konzipiert sind, dass sie nur in einer hypoxischen Umgebung - der Tumormikroumgebung (TME) - eine hohe CAR-Expression erreichen. In dieser Arbeit wird ein Protokoll für die Erzeugung solcher CAR-T-Zellen und ihre funktionelle Charakterisierung vorgestellt, einschließlich Methoden zur Analyse der Veränderungen der CAR-Expression und der Abtötungskapazität als Reaktion auf unterschiedliche Sauerstoffgehalte, die von einer mobilen Inkubatorkammer festgelegt werden. Es wird erwartet, dass die konstruierten CAR-T-Zellen die CAR-Expression und Zytotoxizität auf sauerstoffempfindliche Weise nachweisen und damit ihre Fähigkeit unterstützen, zwischen hypoxischem TME und normoxischem Normalgewebe für eine selektive Aktivierung zu unterscheiden.
Die Therapie mit chimären Antigenrezeptor-T-Zellen (CAR-T) hat einen bedeutenden Durchbruch in der Krebsbehandlung dargestellt. Seit der Zulassung der ersten CAR-T-Therapie zur Behandlung von fortgeschrittenem/resistentem Lymphom und akuter lymphatischer Leukämie durch die Food and Drug Administration (FDA) im Jahr 2017 1,2,3 1,2,3 haben 10 CAR-T-Therapien, die auf CD19 oder das B-Zell-Reifungsantigen (BCMA) abzielen, weltweit die Zulassung erhalten4. Trotz umfangreicher Forschung bleibt es jedoch....
In dieser Studie wurde HER2-BBz-ODD, ein Hypoxie-sensitives CAR, das auf HER2 abzielt (Gen-ID: 2064), mit seinem regulären Gegenstück HER2-BBz verglichen. Die Schaltpläne der beiden CARs sind in Abbildung 1A dargestellt, die zeigt, dass HER2-BBz-ODD von HER2-BBz abgeleitet wird, indem die ODD-Sequenz an den C-Terminus von CD3ξ angehängt wird. Die Konstruktion von lentiviralen Vektoren, die die beiden CARs exprimieren, und die Erzeugung des entsprechenden Lentivirus durch 293T-Zelltransfektion wurde bereits beschrieben31.
1. Erzeugung von Hypoxie-se....
Die Fusion der ODD-Domäne von HIF-1α mit der CAR-Einheit stellt eine primäre Strategie zur Erzeugung eines Hypoxie-sensitiven CAR dar. Das in dieser Studie analysierte Hypoxie-sensitive HER2-targeting-CAR mit der Bezeichnung HER2-BBz-ODD wurde unter Verwendung dieser Strategie konstruiert, indem die ODD-Sequenz in sein konventionelles HER2-BBz integriert wurde (Abbildung 1A). In dieser Studie nutzten wir die lentivirale Transduktion zur Expression von HER.......
Sicherheitsbedenken sind wichtige Aspekte, die angegangen werden müssen, damit eine CAR-T-Zelltherapie in den klinischen Einsatz übergehen kann. Die Nutzung der einzigartigen Eigenschaften von Tumorzellen oder der TME ist zu einer primären Forschungsrichtung geworden, die sich auf die Entwicklung von CAR-T-Zellen konzentriert, die selektiv auf Tumorgewebe abzielen. Das Design eines Hypoxie-sensitiven CAR-T ist eine attraktive Strategie in diese Richtung, wobei mehrere Ansätze untersu.......
Die Autoren haben keine Interessenkonflikte anzugeben.
Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse des National Key Research and Development Program of China (2016YFC1303402), des National Megaproject on Key Infectious Diseases (2017ZX10202102, 2017ZX10304402-002-007) und des General Program der Shanghai Municipal Health Commission (201740194) unterstützt.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL Centrifuge tube | QSP | 509-GRD-Q | Supernatants and cells cellection Protocol Step 2,3,4 |
10% ExpressCast PAGE | NCM biotech | P2012 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
10x PBS | NCM biotech | 20220812 | Cell culture Protocol Step 4 |
10 mL pipette | Yueyibio | YB-25H | Pipetting Protocol Step 1 |
10xTRIS-Glycine-SDS electrophoresis buffer | Epizyme | 3673020 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
15 mL Centrifuge tube | Thermo Scientific | 339650 | Supernatants and cells cellection Protocol Step 1 |
25 cm2 EasYFlask | Thermo Scientific | 156367 | Cell culture Protocol Step 3,4 |
4x Protein SDS PAGE Loading Buffer | Takara | 9173 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
6-well flat-bottom tissue culture plates | Thermo Scientific | 140675 | T Cells culture Protocol Step 1 |
96-well black flat-bottom tissue culture plates | Greiner | 655090 | Cytotoxicity assay Protocol Step 4 |
96-well ELISA plates | Corning | 3590 | ELISA Protocol Step 5 |
96-well plate shaker | QILINBEIER | MH-2 | Shake Protocol Step 4 |
96-well U-bottom tissue culture plates | Thermo Scientific | 268200 | Supernatants cellection Protocol Step 4,5 |
anti-FLAG antibody | Sigma | F1804-50UG | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Carbinol | Sinopharm | 10010061 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Carbon dioxide incubator | Thermo Scientific | 360 | Cell culture Protocol Step 1,2,3,4 |
Cell counting plate | Hausser scientific | 1492 | Cell counting Protocol Step 1,3,4 |
CELLection Pan Mouse IgG Kit | Thermo Scientific | 11531D | Mouse IgG magnetic beads Protocol Step 1 |
Centrifuge | Thermo Scientific | 75002432 | Cell culture Protocol Step 1,3,4 |
Chemiluminescence gel imaging system | BIO-RAD | 12003154 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Cobalt chloride solution (0.5 M) | bioleaper | BR4000203 | Hypoxic condition Protocol Step 2,3,4 |
DMEM | Corning | 10-103-CV | Cell culture Protocol Step 4 |
Electronic balance | Sartorius | PRACTUM612-1CN | weigh Protocol Step 5 |
FBS | BI | 04-001-1ACS | Cell culture Protocol Step 3,4 |
GAPDH Mouse mAb | ABclonal | AC002 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Gel electrophoresis apparatus | BIO-RAD | 1645070 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
GloMax Microplate Readers | Promega | GM3000 | luciferase activity measurement Protocol Step 4 |
Goat anti-Mouse IgG (H+L) | Yeasen | P1126151 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
High speed microfreezing centrifuge | eppendorf | 5810 R | Cell culture Protocol Step 1 |
Human IFN-γ ELISA Set | BD | 555142 | ELISA Protocol Step 5 Items: Recombinant Human IFN-γ Lyophilized Standard, Detection Antibody Biotin Anti-Human IFN-γ , Capture Antibody Purified Anti-Human IFN-γ, Enzyme Reagent Streptavidin-horseradish peroxidase conjugate (SAv-HRP) |
Human IL-2 ELISA Set | BD | 555190 | ELISA Protocol Step 5 Items: Recombinant Human IL-2 Lyophilized Standard, Detection Antibody Biotin Anti-Human IL-2 , Capture Antibody Purified Anti-Human IL-2, Enzyme Reagent Streptavidin-horseradish peroxidase conjugate (SAv-HRP) |
IL-15 | R&D systems | P40933 | T Cells culture Protocol Step 1 |
IL-21 | Novoprotein | GMP-CC45 | T Cells culture Protocol Step 1 |
IL-7 | R&D systems | P13232 | T Cells culture Protocol Step 1 |
Inverted microscope | Olympus | CKX41 | Cell culture Protocol Step 1,3,4 |
Jurkat | ATCC | TIB-152 | CAR-Jurkat construction Protocol Step 3 |
LSRFortessa | BD | LSRFortessa | Flow cytometry Protocol Step 2 |
Luciferase Assay System | Promega | E1501 | luciferase reporter assay Protocol Step 4 Items: Passive lysis buffer, firefly luciferase substrate |
Microplate reader | BioTek | HTX | ELISA Protocol Step 5 |
mobile CO2/O2/N2 Incubator Chamber | China Innovation Instrument Co., Ltd. | Smartor118 | Hypoxic condition Protocol Step 2, 3, 4 |
Mouse Anti-Hexa Histidine tag | Sigma | SAB2702218 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
NcmBlot Rapid Transfer Buffer | NCM biotech | WB4600 | Immunoblotting |
NcmECL Ultra | NCM biotech | P10300 | Immunoblotting Protocol Step 3 Items: NcmECL Ultra Luminol/Enhancer Reagent (A) ,NcmECL Ultra Stabilized Peroxide Reagent (B) |
NovoNectin -coated 48-well flat plates | Novoprotein | GMP-CH38 | CAR-T cells construction Protocol Step 1 |
OPD (o-phenylenediamine dihydrochloride) tablet set | Sigma | P9187 | Substrate Reagent Protocol Step 5 Items: OPD tablet (silver foil),urea hydrogen peroxide tablet (gold foil) |
PE-conjugated anti-DYKDDDDK | Biolegend | 637310 | Flow cytometry Protocol Step 2 |
Protamine sulfate | Sigma | P3369-1OG | Lentivirus infection Protocol Step 1 |
Protein Marker 10 Kda-250 KDa | Epizyme | WJ102 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Purifed NA/LE Mouse Anti-Human CD3 | BD | 566685 | T Cells culture Protocol Step 1 |
Purified NA/LE Mouse Anti-Human CD28 | BD | 555725 | T Cells culture Protocol Step 1 |
PVDF membrane | Millipore | 168627 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
RPMI 1640 | Corning | 10-040-CVRC | Cell culture Protocol Step 3 |
Skim milk powder | Yeasen | S9129060 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
SKOV3-Luc | ATCC | HTB-77 | Cytotoxicity assay Protocol Step 4 |
Trypsin-EDTA | NCM biotech | C125C1 | Cell culture Protocol Step 4 |
Tween 20 | Sinopharm | 30189328 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Water bath | keelrein | NB014467 | Heating Protocol Step 1 |
X-VIVO 15 | LONZA | 04-418Q | Serum-free lymphocyte culture medium Protocol Step 1 |
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