Beginnen Sie mit dem Pipettieren von etwa 400 Mikrolitern Dissektions- und Bildgebungsmedium in jede Vertiefung einer Dissektionsschale mit drei Wells. Waschen Sie die Versuchslarven unter einem Präpariermikroskop in einem Sezier- und Bildgebungsmedium, um Speisereste zu entfernen. Während Sie unter dem Präpariermikroskop weiterarbeiten, halten Sie die Larven mit einer Pinzette an den Mundhaken.
Schneiden Sie mit einer weiteren Pinzette vorsichtig etwa 1/3 der Larve von der hinteren Seite ab. Während Sie die Larve mit einer Pinzette an den Mundhaken festhalten, bürsten Sie mit der anderen Pinzette die Nagelhaut sanft in Richtung der Mundhaken. Drücken Sie gleichzeitig mit der Pinzette, die die Maulhaken hält, nach innen, bis die gesamte Larve von innen nach außen gedreht ist.
Drehen Sie die Larve um, um das zentrale Nervensystem und andere Gewebe freizulegen, während Sie ihre Verbindung zur Nagelhaut aufrechterhalten. Lokalisieren Sie das zentrale Nervensystem (ZNS), um eine versehentliche Entfernung zu vermeiden. Entfernen Sie vorsichtig Nicht-ZNS-Gewebe mit einer Pinzette, wobei nur das ZNS und das Gehirn an der Nagelhaut befestigt bleiben.
Um das Gehirn von der Nagelhaut zu befreien, indem die axonalen Verbindungen mit einer Mikrodissektionsschere durchtrennt werden, schneiden Sie vorsichtig unter die Hirnlappen. Schneiden Sie dann die Verbindungen unter dem ventralen Nervenstrang durch. Sezieren Sie die Larven in Chargen, um die Sezierzeit unter 20 Minuten zu halten.
Übertragen Sie das präparierte Gehirn in eine Vertiefung, in der sich das Dissektions- und Bildgebungsmedium befindet. Für eine Bildgebung, die länger als drei Stunden dauert, ergänzen Sie das Medium mit Fettkörpern.
