Beginnen Sie damit, die Zebrafische aus ihren Hauptbecken in die einzelnen Becken umzusiedeln und sie nach der Aufnahme wieder in die Becken zurückzubringen. Tauchen Sie den Zebrafisch in 0,05%iges Tricain-Methansulfonat, um den Fisch zu betäuben. Machen Sie mit einer Kamera ein Bild von jedem Fisch neben einem Lineal, um die Größe, Länge und den Gesundheitszustand aufzuzeichnen.
Dann legen Sie den betäubten Fisch mit einem feuchten Taschentuch auf eine Petrischale. Positionieren Sie den Fisch auf der Seite und führen Sie eine Flankenbildgebung mit einem Stereomikroskop bei entsprechender Vergrößerung durch. Entnehmen Sie Schuppen mit einer feinen Pinzette und Pinzette unter dem Stereomikroskop und überführen Sie sie zur späteren Färbung in 1,5- oder 2-Milliliter-Sammelröhrchen.
Zur alkalischen Phosphatase- und von-Kossa-Färbung werden die Schuppen mit deionisiertem Milli-Q-Wasser in Röhrchen überführt. Nehmen Sie Bilder von einzelnen geernteten Schuppen auf, bevor Sie sie in Röhrchen übertragen. Eine frühe Musterung der neu gebildeten Schuppen ist am 2. Tag der Regeneration zu sehen.
Regenerierte Schuppen zeigten eine höhere OSX-Expression im Vergleich zu Tag 0 auf genetischen Skalen.
